Name: Non invasif In Vivo Imagerie optique à fluorescence dune activité MMP inflammatoire à laide dun agent dimagerie fluorescente activable (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 46 s
Description: Découvrez l'imagerie optique à fluorescence non invasive pour visualiser l'activité des MMPs dans des modèles d'inflammation in vivo. Cette méthode rapide et économique facilite l'étude des mécanismes inflammatoires.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Nous remercions Daniel Bukala, Natalie Altmeyer et Funda Cay pour un excellent support technique. Nous remercions Jonathan Cotton, Greg Bowden et Paul Soubiran pour l&#39;édition du manuscrit. Ce travail a été soutenu par la Fondation Werner Siemens et la Faculté de Médecine de l&#39;Université Eberhard Karlsund Tübingen (&#39;&#39; Promotionskolleg &#39;&#39;) et par le DFG par le biais du CRC 156 (projet C3).

Toutes les procédures décrites dans cet article ont suivi les lignes directrices et les normes internationales relatives aux soins et à l&#39;utilisation des animaux de laboratoire et ont été approuvées par le Comité local d&#39;éthique et d&#39;éthique des animaux de la Commission du pays Tuebingen (Allemagne). Les souris BALB / c et C57BL / 6 de 12 à 12 semaines ont été conservées sur une lumière de 12 h: 12 h: cycle sombre et ont été logées dans des IVC et des conditions environnementales normalisées à 22 ± 1 ° C dans des groupes de 2 à 5 avec de l&#39;eau et Accès alimentaire ad libitum . 1. Préparation du matériel <ol><li> Diluer le colorant OI pour l&#39;imagerie par fluorescence proche infrarouge selon la fiche de données respective directement avant l&#39;injection. Le colorant OI activable (sonde commerciale avec une excitation à 680 nm) pour mesurer les MMP in vivo est prêt à l&#39;emploi à une concentration de 20 nmol dans 1,5 mL 1x PBS. Agiter doucement ou tourbillonner la solution avant utilisation. Le colorant OI peut être conservé à 2 à 8 ° C pendant jusqu&#39;à 6 mois lorsqu&#39;il est protégé de la lumière. </li&gt; <li> Pour les injections par voie intraveineuse (iv) préparer un cathéter veineux. Utiliser un 20 U (0,5 ml) de seringue à insuline remplie de solution à 0,9% de solution saline (contenant 10 unités d&#39;injection d&#39;héparine dans 50 mL), et une aiguille de calibre 30 fixée à un cathéter en polyethylene. Injecter la dose recommandée de 2 nmol par souris du colorant OI. </li></ol> 2. L&#39;induction de la polyarthrite rhumatoïde et chronique contact Réaction d&#39;hypersensibilité <ol><li> La polyarthrite rhumatoïde: <ol><li> Diluer 100 ul de sérum (obtenu à partir de K / BxN souris 10) contenant des anticorps (AB) contre isomérase glucose-6-phosphate (GPI) 1: 1 avec 1 x PBS (200 ul) pour induire RA. Stocker le sérum dilué à -80 ° C. Des procédures détaillées pour l&#39; induction de la polyarthrite rhumatoïde sont décrits par Monach et al. 8. </li><li> Pour induire RA, soulever chaque souris doucement par la queue et injecter 200 ul de la intrapéritonéale de sérum dilué (ip) au jour 0 de til expérience. Après l&#39;injection placer la souris directement dans sa cage. </li><li> Eventuellement, mesurer le diamètre de la cheville de chaque cheville, avant les injections AB et définir un « score arthritique » (figure 1A). Continuer la mesure de la cheville de gonflement par jour jusqu&#39;à ce jour 6 après GPI-sérum en utilisant un dispositif de mesure mécanique (micromètre). </li><li> Injecter le colorant activable OI (étape 1.1 à 1.2), pour mesurer in vivo l&#39; activité de MMP iv dans la veine caudale de souris RA au jour 5 après l&#39;injection GPI-sérum et dans la veine de la queue des souris témoins. Réaliser des expériences d&#39;imagerie optique 24 h après injection dans la veine de la queue. </li></ol></li><li> Contactez réaction d&#39;hypersensibilité: <ol><li> Pour la sensibilisation des souris C57BL / 6, préparer une solution à 5% de TNCB dissous dans un mélange 4: 1 d&#39;acétone / huile. </li><li> Anesthésier souris C57BL / 6 en utilisant 1,5% d&#39;isoflurane vaporisé dans 100% d&#39;oxygène (1,5 L / min). Une fois que les souris sont anesthésiées, placez-le dans une auto-fou<html> Le cône du nez (une seringue en polyéthylène de 5 ml, reliée au tube isoflurane à 1,5% en volume) et à maintenir l&#39;anesthésie. Appliquer la pommade visuelle sur les animaux anesthésiés afin d&#39;éviter la sécheresse des yeux lorsqu&#39;ils sont anesthésiés. </li><li> Raser soigneusement l&#39;abdomen (2 x 2 cm) à l&#39;aide d&#39;un coupe-cheveux pour animaux. Évitez de nuire à la peau, car cela peut conduire à des signaux fluorescents non spécifiques dans l&#39;animal et peut influencer les résultats de l&#39;étude. </li><li> Appliquer 80 μL de la solution à 5% de TNCB lentement à l&#39;abdomen rasé en utilisant une pipette de 100 μl pour sensibiliser l&#39;animal. Placez la souris doucement dans sa cage en prenant soin de s&#39;assurer que les yeux de la souris ne sont pas en contact avec le lit pour éviter les lésions de la cornée et éviter les faibles températures corporelles pendant la phase de récupération. </li><li> Six jours après la sensibilisation, préparer une solution de TNCB à 1% (dissous dans un mélange 9: 1 d&#39;acétone / huile) et appliquer 20 μL à l&#39;oreille droite en utilisant une pipette pour provoquer une CHSR aiguë et chronique.&quot;&gt; 1 <ol><li> Commencez par le 1 er défi des deux côtés de l&#39;oreille droite avec 20 μL de solution à 1% de TNCB en utilisant une pipette de 100 μL et répétez le défi tous les deux jours jusqu&#39;à cinq fois (jour 15 après sensibilisation) pour obtenir CHR ( Figure 1B ) . Mesurez l&#39;épaisseur de l&#39;oreille tous les jours, en utilisant un appareil de mesure micrométrique. </li></ol></li><li> Injecter le colorant OI activable (une sonde commerciale avec excitation à 680 nm) (étape 1.1-1.2) pour mesurer l&#39;activité MMP in vivo dans des souris CHR 12 h après la provocation. Effectuer des expériences d&#39;imagerie optique 24 h après injection de veine de queue ( iv ). </li></ol></li></ol> 3. Préparation animale pour l&#39;imagerie optique <ol><li> Passez la souris (au moins 3 jours avant l&#39;imagerie) à des aliments peu ou non fluorescents ( p. Ex . Sans manganèse) pour éviter l&#39;interférence de l&#39;auto-fluorescence (environ 700 nm) avec le signal de fluorescence des agents OI utilisés. </li><li> Placez l&#39;animal dansÀ une boîte d&#39;anesthésie et anesthésie en utilisant 1,5% en volume d&#39;isoflurane vaporisé avec de l&#39;oxygène (1,5 L / min) (l&#39;oxygène peut être remplacé par de l&#39;air mais doit être normalisé au cours d&#39;une expérience). </li><li> Lorsque la souris est visiblement anesthésiée, placez-la dans un cône de nez fabriqué à l&#39;envers (construisez par une seringue en polyéthylène de 5 mL, reliée au tube isoflurane à 1,5 vol%) et maintenez l&#39;anesthésie. </li><li> Raser soigneusement l&#39;animal sur le site cible (2 cm x 2 cm) à l&#39;aide d&#39;un coupe-cheveux pour animaux. Évitez de nuire à la peau, car cela peut conduire à des signaux fluorescents non spécifiques dans l&#39;animal et peut influencer les résultats de l&#39;étude. REMARQUE: Les poils peuvent absorber le signal de fluorescence pendant l&#39;OI (en fonction de la contrainte de la souris, plus ou moins d&#39;absorption est observée) selon la région d&#39;intérêt (ROI). </li><li> Pour une injection intraveineuse, placez la queue de la souris dans de l&#39;eau chaude, pour induire une vasodilatation, nettoyez doucement la peau au point d&#39;injection avec de l&#39;alcool et commencez par placer le cathéter àLe site distal de la queue. Placez le bord &quot;coupé&quot; de l&#39;aiguille dans un angle de 20 ° dans la veine de la queue et testez le bon placement du cathéter en ré-suspendre la seringue. </li><li> Si le cathéter est placé correctement, remplacez la seringue et injectez la sonde OI (2 nmol). Après l&#39;injection, remplacez la seringue et injectez 25 μL de solution saline à 0,9% pour nettoyer complètement le volume mort du tube en polyéthylène. NOTE: La demi-vie des tissus du colorant OI usé (une sonde commerciale avec excitation à 680 nm) pour mesurer l&#39;activité MMP in vivo est de 72 h. Pour assurer un dégagement complet, une nouvelle injection du colorant n&#39;est pas recommandée avant 7 jours après une injection préalable. </li></ol> 4. Imagerie optique <ol><li> Placez une feuille de plastique ou de papier noir dans la boîte noire du scanner OI au centre du champ de vision (FOV). </li><li> Configurez un protocole de mesure et choisissez la longueur d&#39;onde droite (excitation: 680 ± 10 nm et eMission: 700 ± 10 nm) et des paramètres d&#39;imagerie. REMARQUE: Dans certains systèmes d&#39;OI, la configuration de plusieurs colorants d&#39;imagerie est pré-défini. </li><li> Pour choisir le protocole approprié pour l&#39;imagerie de fluorescence, ouvrez le logiciel d&#39;imagerie (fourni par le fabricant) et initialiser le système. La plupart des caméras CCD doivent refroidir à leur température de fonctionnement, et cela peut prendre 10 minutes. Pour des résultats fiables, attendez que le système est prêt. </li><li> Observer le panneau de commande d&#39;acquisition de système d&#39;imagerie in vivo sautent vers le haut , et chaque paire de filtres sélectionné représente une image de la séquence. Dans ce cas, acquérir une image avec les paires de filtres pour le colorant commercial avec et une longueur d&#39;onde d&#39;excitation et d&#39;émission de 680 ± 10 nm et 700 ± 10 nm, respectivement, et commencer la mesure (Appuyez sur « Acquisition séquence »). Pour obtenir des instructions plus détaillées, s&#39;il vous plaît consulter le manuel du fabricant. </li><li> Étiqueter les images correctement et enregistrer les informations dans le « Modifier l&#39;imageLes étiquettes » fenêtre qui apparaîtra après la « séquence Acquire ». </li><li> Prenez une analyse de base de chaque animal avant l&#39;injection du colorant OI, ou utiliser les animaux témoins naïfs pour différencier le signal d&#39;arrière-plan. </li><li> h après l&#39;injection de la veine de la queue du colorant OI, placer les animaux dans le centre de la FOV, en mesure de mesurer le signal le plus élevé dans le système OI, et le début des mesures. REMARQUE: Important: Hypothermie peut influencer de manière significative la distribution des agents d&#39;imagerie. Assurez-vous que la scène est chauffée à 37 ° C pour éviter l&#39;hypothermie de l&#39;animal. L&#39;imagerie peut être effectuée en même temps que les animaux par groupes de 1 à 5 souris. Choisissez la taille du FOV en fonction du nombre d&#39;animaux à mesurer en même temps. Vous pouvez prendre une image de champ lumineux pour vérifier si chaque souris est visible. </li></ol> 5. Analyse des données REMARQUE: Effectuer une analyse des données à l&#39;aide du logiciel d&#39;imagele protocole du fabricant. <ol><li> Pour les mesures de RA, utiliser l&#39;unité calibrée de l&#39;émission de photons , comme indiqué sur la figure 2, alors que CHSR chronique est représenté comme l&#39; intensité du signal en pour cent (efficacité). </li><li> Pour dessiner manuellement ROI, utiliser la plaque d&#39;outil. Pour l&#39;analyse des images RA utiliser un cercle normalisé, placé autour du signal le plus élevé dans toutes les chevilles et les pattes de chaque animal. Pour analyser le CHSR, placez les ROIs dans toute droite et l&#39;oreille gauche selon l&#39;image de champ lumineux. </li><li> Pour mesurer l&#39;émission de photons ou de signaler des valeurs d&#39;intensité dans la ROI spécifique dessinée, appuyez sur « mesure ». Le système fournira des valeurs dans le retour sur investissement pour l&#39;analyse statistique tirée descriptive. </li></ol>

<ol><li>Veale, D. J., Ritchlin, C., FitzGerald, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunopathology+of+psoriasis+and+psoriatic+arthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Rheum+Dis%22%5BJournal%5D)">Immunopathology of psoriasis and psoriatic arthritis.</a> Ann Rheum Dis. 64, 26(2005).</li>
<li>Harris, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rheumatoid+arthritis.+Pathophysiology+and+implications+for+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Rheumatoid arthritis. Pathophysiology and implications for therapy.</a> N Engl J Med. 322 (18), 1277-1289 (1990).</li>
<li>Lee, D. M., Weinblatt, M. E. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11567728">Rheumatoid arthritis.</a> Lancet. 358 (9285), 903-911 (2001).</li>
<li>Firestein, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunologic+mechanisms+in+the+pathogenesis+of+rheumatoid+arthritis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Rheumatol%22%5BJournal%5D)">Immunologic mechanisms in the pathogenesis of rheumatoid arthritis.</a> J Clin Rheumatol. 11, S39-S44 (2005).</li>
<li>Pap, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+expression+pattern+of+membrane-type+matrix+metalloproteinases+in+rheumatoid+arthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Rheum%22%5BJournal%5D)">Differential expression pattern of membrane-type matrix metalloproteinases in rheumatoid arthritis.</a> Arthritis Rheum. 43 (6), 1226-1232 (2000).</li>
<li>Firestein, G. S., Paine, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stromelysin+and+tissue+inhibitor+of+metalloproteinases+gene+expression+in+rheumatoid+arthritis+synovium%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Stromelysin and tissue inhibitor of metalloproteinases gene expression in rheumatoid arthritis synovium.</a> Am J Pathol. 140 (6), 1309-1314 (1992).</li>
<li>Schwenck, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+optical+imaging+of+matrix+metalloproteinase+activity+detects+acute+and+chronic+contact+hypersensitivity+reactions+and+enables+monitoring+of+the+antiinflammatory+effects+of+N-acetylcysteine%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">In vivo optical imaging of matrix metalloproteinase activity detects acute and chronic contact hypersensitivity reactions and enables monitoring of the antiinflammatory effects of N-acetylcysteine.</a> Mol Imaging. 13, (2014).</li>
<li>Monach, P. A., Mathis, D., Benoist, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+K%2FBxN+arthritis+model%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Immunol%22%5BJournal%5D)">The K/BxN arthritis model.</a> Curr Protoc Immunol. 15, 22(2008).</li>
<li>Zelmer, A., Ward, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+fluorescence+imaging+of+small+animals%5BTitle%5D)+AND+%22J+Microsc%22%5BJournal%5D)">Noninvasive fluorescence imaging of small animals.</a> J Microsc. 252 (1), 8-15 (2013).</li>
<li>Kouskoff, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ-specific+disease+provoked+by+systemic+autoimmunity%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Organ-specific disease provoked by systemic autoimmunity.</a> Cell. 87 (5), 811-822 (1996).</li>
<li>Fuchs, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+of+cell+proliferation+enables+the+detection+of+the+extent+of+experimental+rheumatoid+arthritis+by+3%27-deoxy-3%27-18f-fluorothymidine+and+small-animal+PET%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging of cell proliferation enables the detection of the extent of experimental rheumatoid arthritis by 3'-deoxy-3'-18f-fluorothymidine and small-animal PET.</a> J Nucl Med. 54 (1), 151-158 (2013).</li>
<li>Schwenck, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+and+Cerenkov+luminescence+imaging.+Applications+in+small+animal+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nuklearmedizin%22%5BJournal%5D)">Fluorescence and Cerenkov luminescence imaging. Applications in small animal research.</a> Nuklearmedizin. 55 (2), 63-70 (2016).</li>
<li>Mahling, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Comparative+pO2+Probe+and+%5B18F%5D-Fluoro-Azomycinarabino-Furanoside+%28%5B18F%5DFAZA%29+PET+Study+Reveals+Anesthesia-Induced+Impairment+of+Oxygenation+and+Perfusion+in+Tumor+and+Muscle%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A Comparative pO2 Probe and [18F]-Fluoro-Azomycinarabino-Furanoside ([18F]FAZA) PET Study Reveals Anesthesia-Induced Impairment of Oxygenation and Perfusion in Tumor and Muscle.</a> PLoS One. 10 (4), 0124665(2015).</li>
<li>Fuchs, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxygen+breathing+affects+3%27-deoxy-3%27-18F-fluorothymidine+uptake+in+mouse+models+of+arthritis+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">Oxygen breathing affects 3'-deoxy-3'-18F-fluorothymidine uptake in mouse models of arthritis and cancer.</a> J Nucl Med. 53 (5), 823-830 (2012).</li>
<li>Fuchs, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+anesthetics+on+3%27-%5B18F%5Dfluoro-3%27-deoxythymidine+%28%5B18F%5DFLT%29+uptake+in+animal+models+of+cancer+and+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">Impact of anesthetics on 3'-[18F]fluoro-3'-deoxythymidine ([18F]FLT) uptake in animal models of cancer and inflammation.</a> Mol Imaging. 12 (5), 277-287 (2013).</li>
<li>Liu, N., Shang, J., Tian, F., Nishi, H., Abe, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+optical+imaging+for+evaluating+the+efficacy+of+edaravone+after+transient+cerebral+ischemia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">In vivo optical imaging for evaluating the efficacy of edaravone after transient cerebral ischemia in mice.</a> Brain Res. 1397, 66-75 (2011).</li>
<li>Sheth, R. A., Maricevich, M., Mahmood, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+optical+molecular+imaging+of+matrix+metalloproteinase+activity+in+abdominal+aortic+aneurysms+correlates+with+treatment+effects+on+growth+rate%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">In vivo optical molecular imaging of matrix metalloproteinase activity in abdominal aortic aneurysms correlates with treatment effects on growth rate.</a> Atherosclerosis. 212 (1), 181-187 (2010).</li>
<li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Near-infrared+fluorescent+imaging+of+matrix+metalloproteinase+activity+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Near-infrared fluorescent imaging of matrix metalloproteinase activity after myocardial infarction.</a> Circulation. 111 (14), 1800-1805 (2005).</li>
<li>Wallis de Vries, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Images+in+cardiovascular+medicine.+Multispectral+near-infrared+fluorescence+molecular+imaging+of+matrix+metalloproteinases+in+a+human+carotid+plaque+using+a+matrix-degrading+metalloproteinase-sensitive+activatable+fluorescent+probe%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Images in cardiovascular medicine. Multispectral near-infrared fluorescence molecular imaging of matrix metalloproteinases in a human carotid plaque using a matrix-degrading metalloproteinase-sensitive activatable fluorescent probe.</a> Circulation. 119 (20), e534-e536 (2009).</li>
<li>Weissleder, R., Tung, C. H., Mahmood, U., Bogdanov, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+of+tumors+with+protease-activated+near-infrared+fluorescent+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging of tumors with protease-activated near-infrared fluorescent probes.</a> Nat Biotechnol. 17 (4), 375-378 (1999).</li>
<li>Cortez-Retamozo, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+assessment+of+inflammation+and+treatment+response+in+a+mouse+model+of+allergic+airway+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Real-time assessment of inflammation and treatment response in a mouse model of allergic airway inflammation.</a> J Clin Invest. 118 (12), 4058-4066 (2008).</li>
<li>McIntyre, J. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+novel+fluorogenic+proteolytic+beacon+for+in+vivo+detection+and+imaging+of+tumour-associated+matrix+metalloproteinase-7+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">Development of a novel fluorogenic proteolytic beacon for in vivo detection and imaging of tumour-associated matrix metalloproteinase-7 activity.</a> Biochem J. 377, 617-628 (2004).</li>
<li>Scherer, R. L., VanSaun, M. N., McIntyre, J. O., Matrisian, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+imaging+of+matrix+metalloproteinase-7+activity+in+vivo+using+a+proteolytic+nanobeacon%29%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">Optical imaging of matrix metalloproteinase-7 activity in vivo using a proteolytic nanobeacon).</a> Mol Imaging. 7 (3), 118-131 (2008).</li>
<li>Olson, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+characterization+of+activatable+cell+penetrating+peptides+for+targeting+protease+activity+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Integr+Biol+%28Camb%22%5BJournal%5D)">In vivo characterization of activatable cell penetrating peptides for targeting protease activity in cancer.</a> Integr Biol (Camb. 1 (5-6), 382-393 (2009).</li>
<li>Duijnhoven, S. M., Robillard, M. S., Nicolay, K., Grull, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+targeting+of+MMP-2%2F9+activatable+cell-penetrating+imaging+probes+is+caused+by+tumor-independent+activation%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">Tumor targeting of MMP-2/9 activatable cell-penetrating imaging probes is caused by tumor-independent activation).</a> J Nucl Med. 52 (2), 279-286 (2011).</li>
<li>Schafers, M., Schober, O., Hermann, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix-metalloproteinases+as+imaging+targets+for+inflammatory+activity+in+atherosclerotic+plaques%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">Matrix-metalloproteinases as imaging targets for inflammatory activity in atherosclerotic plaques.</a> J Nucl Med. 51 (5), 663-666 (2010).</li>
<li>Wagner, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+18F-labelled+derivative+of+the+MMP+inhibitor+CGS+27023A+for+PET%3A+radiosynthesis+and+initial+small-animal+PET+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Radiat+Isot%22%5BJournal%5D)">A new 18F-labelled derivative of the MMP inhibitor CGS 27023A for PET: radiosynthesis and initial small-animal PET studies.</a> Appl Radiat Isot. 67 (4), 606-610 (2009).</li>
<li>Waschkau, B., Faust, A., Schafers, M., Bremer, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+of+a+new+fluorescence-labeled+MMP+inhibitor+to+image+tumor+MMP+activity+in+vivo+in+comparison+to+an+MMP-activatable+probe%5BTitle%5D)+AND+%22Contrast+Media+Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">Performance of a new fluorescence-labeled MMP inhibitor to image tumor MMP activity in vivo in comparison to an MMP-activatable probe.</a> Contrast Media Mol Imaging. 8 (1), 1-11 (2013).</li>
<li>Vogl, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alarmin+S100A8%2FS100A9+as+a+biomarker+for+molecular+imaging+of+local+inflammatory+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Alarmin S100A8/S100A9 as a biomarker for molecular imaging of local inflammatory activity.</a> Nat Commun. 5, 4593(2014).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à dévoiler.

OI est un outil très utile, rapide et peu coûteux pour l&#39;imagerie moléculaire in vivo non invasive dans la recherche préclinique. Une force particulière d&#39;OI est la capacité de surveiller des processus hautement dynamiques comme les réponses inflammatoires. En outre, OI permet de suivre le cours d&#39;une maladie pendant une période prolongée, allant de jours en semaines. OI présente plusieurs avantages par rapport à d&#39;autres modalités d&#39;imagerie in vivo...

Les maladies auto-immunes telles que la polyarthrite rhumatoïde (RA) ou le psoriasis vulgaire sont classées comme des réactions d&#39;hypersensibilité de type retardé (DTHR). 1 La PR est une maladie auto-immune commune caractérisée par une synovite érosive et une destruction articulaire. 2 Les articulations arthritiques inflammées démontrent l&#39;infiltration et la prolifération de cellules inflammatoires, une expression accrue de cellules pro-inflammatoires conduisant à la formation de pannus, au cartilage et aux destructions osseuses. 3 , 4 Le clivage de molécules de matrice extracellulaire, comme le collagène par métalloproteinases matricielles (MMP), est essentiel pour la conversion tissulaire et l&#39;angiogenèse et provoque des destructions tissulaires. 5 , 6 Les réactions d&#39;hypersensibilité au contact (CHR) sont caractérisées par l&#39;agrégation des neutrophiles conduisant à un éclatement oxydatif. 7 Similaires à la RA, les MMP en CHR sont involontairesDans la conversion des tissus, la migration cellulaire et l&#39;angiogenèse afin d&#39;établir une inflammation chronique. Pour étudier la PR, on a utilisé le modèle de souris à injection injectable de glucose-6-phosphate isomérase (GPI) -serum. 8 Le sérum provenant de souris K / BxN transgéniques contenant des anticorps contre GPI a été injecté dans des souris BALB / c naïves après quoi une inflammation rhumatismale a commencé à se développer dans les 24 h avec un gonflement maximal de la cheville au jour 6 après une injection de GPI-sérum (voir 1.1). Pour analyser la CHR chronique, les souris C57BL / 6 ont été sensibilisées avec du trinitrochlorobenzène (TNCB) sur l&#39;abdomen. L&#39;oreille droite a été remise en question jusqu&#39;à 5 fois, commençant 1 semaine après la sensibilisation (voir aussi 1.1 et 1.2). L&#39;OI de petit animal non invasif est une technique basée sur l&#39;étude in vivo des signaux fluorescents, chimioluminescents et bioluminescents, qui sont principalement utilisés dans la recherche préclinique. Les données semi-quantitatives acquises donnent des indications sur la moléculeDans les organes et les tissus des modèles animaux expérimentaux sains et malades, et permet des mesures longitudinales de suivi ( par exemple pour évaluer les profils de réponses thérapeutiques in vivo ). Un grand avantage des études longitudinales est la réduction du nombre d&#39;animaux, car les mêmes animaux peuvent être mesurés dans des études de suivi à plusieurs moments au lieu d&#39;utiliser différentes souris par point de temps. La résolution de l&#39;OI permet une imagerie fonctionnelle détaillée des organes et même des structures tissulaires plus petites dans les animaux expérimentaux. L&#39;utilisation de filtres d&#39;excitation et d&#39;émission spécifiques avec un spectre de transmission étroit, une protection contre la lumière dispersée par une &quot;boîte foncée&quot; résistant à la lumière et une caméra de dispositif à couplage chargé (CCD) sensible qui est refroidie dans de nombreux appareils jusqu&#39;à -70 ° C , Permet des mesures très spécifiques et sensibles des signaux de fluorescence. En utilisant des agents fluorescents à excitation etLes spectres d&#39;émission dans la fenêtre de fluorescence proche infrarouge (650 - 950 nm), les rapports signal sur bruit peuvent être considérablement améliorés. La fenêtre de fluorescence proche du rayon infrarouge se caractérise par une absorption relativement faible du signal par l&#39;hémoglobine et l&#39;eau ainsi que par une faible fluorescence d&#39;arrière-plan. 9 Cela permet une profondeur de pénétration allant jusqu&#39;à 2 cm dans le tissu des petits animaux. Les sondes OI peuvent traiter directement une cible ( par exemple par un anticorps marqué par fluorescence) ou peuvent être activées dans le tissu cible ( par exemple par des protéases). Les sondes OI activables sont optiquement silencieuses sous leur forme inactivée en raison du transfert d&#39;énergie de résonance de Förster (FRET) à une fraction de trempe qui transfère l&#39;énergie d&#39;excitation dans la molécule à un autre domaine. Si le colorant est clivé (par une protéase par exemple), l&#39;énergie n&#39;est plus transférée dans la molécule et un signal fluorescent peut être détecté par OI. Cela permet de concevoir des sondes OI avec une spécificité élevéeY pour des processus biologiques distincts et d&#39;excellents rapports signal / bruit. Le protocole suivant explique en détail la préparation des animaux, les mesures OI en utilisant une sonde activable OI pour imaginer l&#39;activité MMP-2, -3, -9 et -13 in vivo et deux modèles expérimentaux d&#39;inflammation (RA, CHR).

<table><tbody><tr><td>Cornergel</td><td>Gerhard Mann GmbH</td><td>1224635</td><td>pommade ophtalmique</td></tr><tr><td>Forene</td><td>Abbott GmbH</td><td>4831850</td> seringue à <td>insuline isoflurane</td></tr><tr><td>U40</td><td>Becton Dickinson and Company</td><td>324876</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Sintetica</td><td>6093089</td><td></td></tr><tr><td>High-Med-PE 0,28 x 0,61 mm</td><td>Reichelt Chemietechnik GmbH+Co</td><td>28460</td><td>tube en polyéthylène, diamètre intérieur 0,28 mm, diamètre extérieur 0,61&nbsp ; mm&nbsp ;</td></tr><tr><td>Aiguilles biseautées régulières BD, 30 g</td><td>Becton Dickinson & Co. Ltd.</td><td>305106</td><td>Canule d’injection 30 G</td></tr><tr><td>RTA-0011 vaporisateur d’isoflurane</td><td>Vetland Medical Sales and Services</td> <td>LLC-Artagain</td><td></td></tr> <tr><td>papier à dessin</td><td>Strathmore Artist Paper</td><td>446-8</td><td>noir charbon</td></tr><tr><td>IVIS Spectrum</td><td>Perkin Elmer</td><td>124262</td><td>Système d’imagerie optique</td></tr><tr><td>BD Regular Bevel Needles, 25 G</td><td>Becton Dickinson and Company</td><td>305122</td><td></td></tr><tr><td>2-Chloro-1,3,5-trinitrobenzène</td><td>Sigma Aldrich GmbH</td><td>7987456F</td><td>TNCB</td></tr><tr><td>MMPSense 680</td><td>Perkin Elmer&nbsp ;</td><td>NEV10126</td><td>colorant d’imagerie fluorescent</td></tr><tr><td>Oditest&nbsp ;</td><td>Koreplin GmbH</td><td>C1X018</td><td>mesure mécanique</td></tr><tr><td>Miglyol 812</td><td>SASOL-Oil</td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp ; BALB/C, C57BL/6</td><td>Laboratoires Charles River&nbsp ;</td><td>-</td><td>Souris utilisées pour les expériences</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma Aldrich GmbH</td><td></td><td>Pour la dilution du sérum RA</td></tr><tr><td>Pipette (100 &micro ; L)</td><td>Eppendorf&nbsp ;</td><td></td><td>Utilisé pour l’application TNCB</td></tr><tr><td>rasoir&nbsp ;</td><td>Wahl&nbsp ;</td><td>9962</td><td>Tondeuse à poils d’animaux</td></tr><tr><td>Living Image&nbsp ;</td><td>Perkin Elmer&nbsp ;</td><td></td><td>Logiciel d’imagerie pour mesurer l’OI</td></tr></tbody></table>

non invasif<em&gt; in vivo</em&gt; imagerie optique à fluorescence d&#39;une activité mmp inflammatoire à l&#39;aide d&#39;un agent d&#39;imagerie fluorescente activable

Non-invasive In Vivo Fluorescence Optical Imaging of Inflammatory MMP Activity Using an Activatable Fluorescent Imaging Agent

Cet article décrit une méthode non invasive pour imager l&#39;activité de la métalloproteinases matricielles (MMP) par une sonde fluorescente activable, via l&#39; imagerie optique fluorescente in vivo (OI), dans deux modèles d&#39;inflammation de souris: une polyarthrite rhumatoïde (RA) et un contact Modèle de réaction d&#39;hypersensibilité (CHR). La lumière avec une longueur d&#39;onde dans la fenêtre infrarouge proche (NIR) (650 - 950 nm) permet une pénétration plus profonde des tissus et une absorption minimale du signal par rapport aux longueurs d&#39;onde inférieures à 650 nm. Les principaux avantages de l&#39;OI de fluorescence sont qu&#39;il est bon marché, rapide et facile à mettre en œuvre dans différents modèles animaux. Les sondes fluorescentes activables sont silencieuses optiquement dans leurs états inactivés, mais deviennent très fluorescentes lorsqu&#39;elles sont activées par une protéase. Les MMP activées conduisent à la destruction des tissus et jouent un rôle important pour la progression de la maladie dans des réactions d&#39;hypersensibilité à retard de type (DTHR) telles que la PR et la CHR. En outre, les MMP sontles protéases essentielles pour le cartilage et la dégradation des os et sont induites par les macrophages, les fibroblastes et les chondrocytes en réponse à des cytokines pro-inflammatoires. Ici, nous utilisons une sonde qui est activé par les MMPs clés comme la MMP-2, -3, -9 et -13 et décrivons un protocole d&#39;imagerie à fluorescence infrarouge proche OI de l&#39;activité de MMP dans la polyarthrite rhumatoïde et les souris témoins 6 jours après l&#39;induction de la maladie ainsi comme chez la souris avec aiguë (1x challenge) et chroniques (5x challenge) CHR sur l&#39;oreille droite par rapport à l&#39;oreille en bonne santé.

Pour induire la polyarthrite rhumatoïde (RA) chez des souris naïves BALB / c, les animaux ont été injectés ip avec des auto-anticorps (dilution 1: 1 avec 1x PBS) contre GPI au jour 0. L&#39;inflammation maximale (gonflement de la cheville) dans ce Sérum GPI induit Le modèle RA est le jour 6 après injection 11 . Par conséquent, 2 nmol du colorant OI activable ont été préparés et injectés iv dans la veine de la queue de souris arthritiques et des a...

Cet article explique l&#39;application de l&#39;imagerie fluorescente à l&#39;aide d&#39;une sonde d&#39;imagerie optique activable pour visualiser l&#39;activité in vivo des métalloprotéinases matricielles clés dans deux modèles expérimentaux différents d&#39;inflammation.

Non invasif<em&gt; In Vivo</em&gt; Imagerie optique à fluorescence d&#39;une activité MMP inflammatoire à l&#39;aide d&#39;un agent d&#39;imagerie fluorescente activable

This paper describes a non-invasive method for imaging matrix metalloproteinases (MMP)-activity by an activatable fluorescent probe, via in vivo ...

L'objectif général de cette procédure est d'utiliser l'imagerie optique pour visualiser une sonde activable permettant d'évaluer l'activité in vivo de métalloprotéases matricielles clés, ou MMP, dans des modèles expérimentaux d'inflammation. Cette méthode peut aider à répondre à des questions essentielles concernant les mécanismes biologiques sous-jacents aux maladies inflammatoires. Les principaux avantages de cette technique sont sa rapidité, son faible coût et sa facilité d'apprentissage.De plus, une grande variété de sondes ciblant différents processus biologiques est disponible. Pour l'induction de l'arthrite rhumatoïde, mesurez d'abord à l'aide d'un micromètre les diamètres des chevilles de chaque animal. Ensuite, soulevez délicatement la première souris par la queue et injectez-lui par voie intrapéritonéale 200 microlitres de sérum de souris KBN dilué contenant des anticorps dirigés contre la glucose six phosphate isomérase ou GPI.Ensuite, remettez l'animal dans sa cage et mesurez quotidiennement le gonflement de la cheville jusqu'au sixième jour. Pour la sensibilisation à l'hypersensibilité de contact, utilisez un tondeur pour petit animal afin de raser soigneusement une zone de deux centimètres sur deux centimètres de l'abdomen d'une souris anesthésiée, puis appliquez 80 microlitres d'une solution fraîchement préparée de TNCB à 5 % sur la peau exposée à l’aide d’une pipette de 100 microlitres. Il est très important d'éviter de blesser la peau à n'importe quel moment de la procédure, car cela pourrait entraîner des signaux fluorescents non spécifiques chez l'animal et compromettre les résultats de l'étude.Remettez délicatement l'animal dans sa cage, en évitant les basses températures corporelles pendant la phase de récupération. Six jours plus tard, utilisez une pipette pour appliquer 20 microlitres de solution de TNCB à 1 % sur les deux faces de l'oreille droite, puis appliquez 100 microlitres de TNCB à 1 % tous les deux jours pendant une durée maximale de 10 jours, et mesurez quotidiennement l'épaisseur de l'oreille. Pour mesurer l'activité des MMP in vivo, vortexez délicatement d'abord le colorant d'imagerie optique activable, puis chargez une seringue à insuline de 0,5 millilitre avec deux nanomoles de colorant par souris.Ensuite, équiper une autre seringue avec une aiguille de calibre 30 reliée à un cathéter en polyéthylène et placer la queue de la première souris dans de l'eau tiède. Lorsque les veines se sont dilatées, insérer le cathéter avec le bord tranchant de l'aiguille à un angle de 20 degrés du côté distal de la queue dans une veine caudale dilatée, puis rebrancher la seringue pour vérifier le positionnement correct du cathéter. Si le cathéter est bien positionné, remplacer la seringue et injecter deux nanomoles de la sonde.Ensuite, remplacez la seringue du dispositif d'imagerie optique par une seringue contenant une solution saline à 0,9 % et injectez 25 microlitres de solution saline dans la veine de la queue afin d'éliminer complètement le volume mort du tube en polyéthylène. Puis, réglez la boîte du scanner d'imagerie optique à 37 degrés Celsius et placez jusqu'à cinq souris dans la boîte du scanner, au centre du champ de vision. Vingt-quatre heures après l'injection, ouvrez le logiciel d'imagerie et initialisez le système, en laissant la caméra CCD refroidir jusqu'à sa température de fonctionnement.Lorsque le système est prêt, réglez les longueurs d'onde et les paramètres d'imagerie appropriés en fonction de la fluorescence de la sonde d'imagerie. Le panneau de contrôle d'acquisition du système d'imagerie in vivo s'affichera alors. Cliquez ensuite sur acquérir une séquence pour démarrer la mesure.Pour enregistrer les images acquises, sélectionnez l'emplacement de sauvegarde souhaité. En outre, des informations supplémentaires peuvent être ajoutées dans la fenêtre d'édition des légendes des images. Ici, notre signal fluorescent clairement renforcé peut être observé dans les pattes avant et les chevilles de souris atteintes d'arthrite rhumatoïde au jour six après l'induction de la maladie, par rapport au signal minimal observé chez les animaux témoins.L'analyse de la biodistribution de l'activité des MMP dans les organes des animaux expérimentaux et témoins révèle un signal fortement accru au niveau des chevilles et des pattes antérieures, uniquement dans les articulations des souris atteintes d'arthrite rhumatoïde. Fait intéressant, un signal accru des MMP a également été observé dans les deux reins des souris atteintes d'arthrite rhumatoïde, tandis que le foie et les intestins présentent un signal robuste des MMP indépendamment de la présence d'arthrite rhumatoïde. Lors d'une réaction d'hypersensibilité cutanée chronique induite par cinq applications de TNCB sur l'oreille droite, une activité des MMP fortement augmentée est observée dans l'oreille droite enflammée par rapport à l'oreille gauche, qui sert de témoin sain.L’analyse semi-quantitative de l’intensité du signal dans les chevilles ou pattes arthritiques et saines montre une intensité de signal MMP accrue de sept fois dans les chevilles arthritiques, avec une intensité de signal MMP trois fois plus élevée détectée dans les pattes antérieures par rapport à celle des animaux sains. Les oreilles présentant des réactions d’hypersensibilité de contact aiguës et chroniques montrent également une augmentation significative du signal MMP, même après un seul défi, et ce signal reste élevé jusqu’au cinquième défi. Cette méthode peut être facilement mise en œuvre dans différents modèles animaux expérimentaux et permet un suivi à long terme des processus biologiques sous-jacents et des thérapies in vivo.Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de garder à l'esprit que chaque sonde d'imagerie optique possède un protocole d'injection et un temps d'absorption différents. Par conséquent, des études longitudinales doivent être réalisées pour chaque nouveau colorant fluorescent et chaque sonde d'imagerie optique. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée sur jusqu'à cinq animaux en moins de 10 minutes, si elle est effectuée correctement.Cette méthode permet d'obtenir des informations sur les mécanismes de l'inflammation in vivo, mais elle peut également être utilisée pour étudier d'autres maladies telles que le cancer ou la neurodégénérescence. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'utiliser l'imagerie optique in vivo avec une sonde d'imagerie activable dans des modèles de maladies inflammatoires.

non-invasive-vivo-fluorescence-optical-imaging-inflammatory-mmp

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

Cette vidéo présente une technique d’évaluation de l’infiltration de macrophages intestinaux dans un modèle murin de colite à l’aide de la tomographie médiée par fluorescence (FMT). Après avoir induit une colite chez une souris via du sulfate de sodium de dextran (DSS), l’animal reçoit une injection d’anticorps qui reconnaissent le marqueur de glycoprotéine F4/80 sur les macrophages infiltrés dans le côlon. La souris est ensuite imagée dans un dispositif FMT où les signaux de fluorescence et de...

Utilisation de la tomographie médiée par fluorescence pour évaluer l’inflammation intestinale murine

Nous décrivons une méthode d'imagerie non-invasive permettant de distinguer les stades inflammatoires. Administration systémique de luminol révèle des zones d'inflammation aiguë dépendent activité MPO dans les neutrophiles. En revanche, l'injection de lucigénine permet de visualiser l'inflammation chronique dépend de l'activité Phox dans les macrophages.

In vivo méthode d&#39;imagerie à distinguer inflammation aiguë et chronique

Nous décrivons un multi-angle de rotation du système optique d'imagerie (Maroi) pour la quantification in vivo d'un marqueur fluorescent émis par la saposine C (SAPC), dioléoylphosphatidylsérine (DOPS) nanovésicules. En utilisant des modèles murins de cancer et l'arthrite, nous montrons comment la Maroi analyse de la courbe du signal peut être utilisé pour la cartographie et la caractérisation biologique précis des processus pathologiques.

In Vivo L&#39;imagerie optique de tumeurs cérébrales et l&#39;arthrite Utilisation fluorescent SAPC-DOPS nanovésicules

La matrice extracellulaire subit un remodelage important lors de la cicatrisation des plaies, l'inflammation et la tumorigenèse. Nous présentons une nouvelle approche de microscopie par immunofluorescence intravitale de visualiser la dynamique des fibrillaire ainsi que maille-comme composants de la matrice avec une résolution spatiale et temporelle en utilisant épifluorescence ou la microscopie à deux photons.

À long terme intravitale immunofluorescence imagerie de tissus composants matriciels avec épifluorescence et deux microscopie biphotonique

L’utilisation des fluorophores pour l’imagerie in vivo peut être considérablement limitée par l’opsonisation, la clairance rapide, la faible sensibilité de détection et les effets cytotoxiques sur l’hôte. L’encapsulation des fluorophores dans les liposomes par hydratation et extrusion du film conduit à l’extinction et à la protection de la fluorescence, ce qui permet une imagerie in vivo avec une sensibilité de détection élevée.

Fluorescence-trempe d'un proche infrarouge fluorophore encapsulée dans des liposomes comme outil de In Vivo Imagerie optique

Nous détaillons un protocole pour surveiller le comportement des neutrophiles et des monocytes dans les veines mésentériques à l’état d’équilibre et dans des conditions inflammatoires en utilisant la microscopie confocale intravitale sur des souris anesthésiées.

Imagerie neutrophiles et des monocytes dans les veines mésentérique par Microscopie intravitale sur des souris anesthésiées en temps réel

Les mécanismes qui régissent la motilité interstitielle des cellules CD4 T effecteurs aux sites d'inflammation sont relativement peu connus. Nous présentons une approche non invasive pour visualiser et manipuler dans des cellules in vitro -primed T CD4 dans le derme de l' oreille enflammée, ce qui permet pour l' étude du comportement dynamique de ces cellules in situ.

Imagerie CD4 T Cellule interstitielle Migration dans les Derme Enflammé

Nous montrons une technique de bioluminescence direct in vivo et l' imagerie dans l'infrarouge proche de la névrite optique et l' encéphalite dans le modèle expérimental d' encéphalomyélite auto - immune (EAE) pour la sclérose en plaques chez les souris SJL / J.

Bioluminescence et proche infrarouge Imaging de névrite optique et inflammation du cerveau dans le modèle EAE de la sclérose en plaques chez des souris

Spécifique à la cible sondes représentent un outil innovant pour l’analyse des mécanismes moléculaires, comme expression de la protéine dans divers types de maladie (p. ex., inflammation, infection et tumorigenèse). Dans cette étude, les auteurs décrivent une évaluation quantitative de tomographie tridimensionnelle d’infiltration de macrophages intestinaux dans un modèle murin de colite en utilisant la tomographie de F4/80-spécifique induite par fluorescence.

Tomographie médiée par fluorescence pour la détection et la Quantification de l’Inflammation intestinale Murine axés sur les macrophages

Les changements morphologiques se produisent dans les cellules de fibroblaste sensibles au système immunitaire après l'activation et favorisent des changements dans le recrutement cellulaire. Utilisation de l'imagerie à 2 photons en conjonction avec une protéine génétiquement modifiée spécifique au fibroblaste 1 (FSP1)-cre; tdTomato floxed-stop-floxed (TB/TB) ligne de souris et vert fluorescent marqué lipopolysaccharide-FITC, nous pouvons illustrer l'apport très spécifique de lipopolysaccharide...

In Vivo Deux-Couleur 2-Photon Imagerie des cellules de reporter génétiquement marqués dans la peau

Découvrez l'imagerie optique à fluorescence non invasive pour visualiser l'activité des MMPs dans des modèles d'inflammation in vivo. Cette méthode rapide et économique facilite l'étude des mécanismes inflammatoires.

Non invasif In Vivo Imagerie optique à fluorescence dune activité MMP inflammatoire à laide dun agent dimagerie fluorescente activable (Vidéo) | JoVE Journal

Non invasif

Explorer plus de vidéos