Les protocoles de quantification des résidus de pesticides transférables dans les systèmes gazons

L'objectif général de ces protocoles est de quantifier les résidus de pesticides transférables des arbres aux végétaux enherbés. Ces approches peuvent aider à répondre à des questions essentielles concernant la sécurité publique face aux pesticides, ainsi qu’aux décisions réglementaires et aux pratiques des utilisateurs dans le domaine des produits agrochimiques. Les protocoles possèdent des caractéristiques uniques qui les rendent plus ou moins adaptés selon les systèmes de gazon.

Les chercheurs devraient comprendre cela avant toute expérimentation afin de prédire le plus précisément possible l'exposition humaine aux pesticides. Le choix d'un protocole de résidus de pesticides transférables doit englober la voie d'exposition et les systèmes de gazon d'intérêt afin de quantifier au mieux l'exposition humaine potentielle. Ce faisant, des décisions éclairées fondées sur des recherches solides peuvent être prises concernant l'utilisation de pesticides dans les systèmes de gazon.

Pour ces protocoles, les parcelles sur le terrain doivent comporter des allées d’un demi-mètre à un mètre le long de leur bordure afin de permettre la circulation à pied et le prélèvement d’échantillons. Pour prélever des échantillons de résidus sur les plantes à l’aide de lingettes manuelles, commencez par standardiser la surface à essuyer en utilisant une surface témoin. Préparez une solution de colorant alimentaire vert à 10 % et une solution de surfactant non ionique à 1 %.

Ensuite, vaporisez la solution sur une surface non poreuse. Maintenant, à l’aide de gants en coton, appuyez les doigts sur la surface non poreuse. Puis prenez une photographie numérique et utilisez un logiciel d’imagerie pour calculer la surface en contact, en vous basant sur l’absence de colorant alimentaire vert dans cette zone.

En fonction de la surface de contact main-surface, calculez la quantité de pression nécessaire pour essuyer la même zone en utilisant deux kilopascals. Étalonnez ensuite la pression d'essuyage à l’aide d’une balance numérique. Fixez la pelouse sur la balance et appliquez la force requise, généralement comprise entre 150 et 300 grammes.

Ensuite, étalonnez la vitesse de nettoyage. Mesurez 30 centimètres de gazon et réglez la vitesse de nettoyage jusqu'à ce qu'il faille environ une seconde pour parcourir cette distance. Ainsi, la technique de nettoyage est standardisée.

Avant de prélever un échantillon, délimitez la zone d'échantillonnage en marquant son périmètre avec de la peinture pour pelouse. Essuyez ensuite la zone d'échantillonnage avec un gant en coton porté par-dessus un gant en nitrile. Effectuez l'essuyage pendant 30 secondes, en effectuant des mouvements d'avant en arrière, en changeant de direction perpendiculairement.

Recommencez maintenant le processus sur la même zone avec un deuxième gant en coton. Après avoir terminé les prélèvements, congélez le gant d'échantillonnage dans les trois heures. Ensuite, conservez les gants en coton dans un bocal en verre sur de la glace ou de la glace sèche.

Deux gants d'échantillonnage ont été jugés nécessaires à la suite des essais préliminaires pour prélever un échantillon sur une surface de 420 centimètres carrés. Si une surface plus grande doit être échantillonnée, des gants supplémentaires peuvent être nécessaires. Cette procédure requiert trois personnes.

Un rouleau a un diamètre de 10 centimètres, une longueur de 61 mètres et pèse 14,5 kilogrammes. Une mousse de polyuréthane de 1,2 centimètre d'épaisseur entoure le rouleau. Avant utilisation, enveloppez la mousse dans du plastique.

Le rouleau mesure 62 centimètres de large et 91 centimètres de long. Sur le cadre, utilisez des pinces pour fixer une feuille de coton de 70 sur 99 centimètres ayant un nombre de fils d'au moins 200 fils par pouce. À présent, la feuille de coton est en contact avec la zone d'échantillonnage de la pelouse.

Le cadre est ensuite fixé au sol à l'aide de clous métalliques. Ensuite, faites rouler doucement le rouleau sur le tissu, en avant et en arrière, cinq fois. Utilisez une vitesse de roulement de 1,6 kilomètre par heure.

Une fois qu'une personne a terminé le roulement, deux autres retirent le cadre du sol. Pendant que la feuille est fixée au cadre, une troisième personne doit délicatement éliminer tous les débris présents sur le coton. Ensuite, retirez la feuille du cadre et pliez-la vers l'intérieur de manière à ce que la zone de contact avec l'échantillon entre en contact avec elle-même.

Conserver la feuille sur de la glace. Celle-ci doit être congelée dans les trois heures. Après avoir prélevé l'échantillon, retirer le plastique du rouleau.

Ensuite, nettoyer l'équipement d'échantillonnage avec une solution d'ammoniaque à 50 % dans l'eau, puis rincer à l'eau. Laisser les outils sécher avant de les réutiliser. Cette procédure peut être réalisée seul et nécessite un cadre de rouleau de terrain de football, fabriqué à partir d'un tube en PVC.

Pour fabriquer le rouleau à balle, gonflez le ballon de football à 24 kilopascals, ce qui correspond à une pression relativement faible. Ensuite, fixez le ballon sur le rouleau en le serrant avec des goujons aux deux côtés opposés. Le ballon doit tourner de manière symétrique et ne pas se déloger sous une pression légère.

Une fois qu’il est déterminé que la fixation est sécurisée, enveloppez la balle avec une bande sorbante large de cinq centimètres et longue de 130 centimètres. La zone enveloppée doit être alignée avec le manche du rouleau. Fixez la bande à la balle à l’aide de morceaux de ruban adhésif d’environ deux centimètres et demi carrés.

Pour prélever l'échantillon, faites rouler la balle sur 3,7 mètres d'herbe à vitesse constante, en prenant soin de ne pas marcher sur une zone non échantillonnée. Selon les dimensions de la parcelle, plusieurs passages côte à côte peuvent être nécessaires. Des recherches préliminaires doivent déterminer une distance de roulement appropriée afin de ne pas dépasser la capacité d'absorption du ruban.

Après avoir roulé la bille, retirez la bande de sorbant et pliez-la vers l'intérieur, de sorte que la face échantillonnée entre en contact avec elle-même. Transférez-la ensuite dans un bocal en verre placé sur de la glace et congélez-la dans les trois heures suivant le prélèvement. Prélèvez un échantillon de gazon pour le contrôle de qualité de l'échantillonnage.

Définissez d'abord la zone à carotter à l'aide d'un carottier de golf, puis enfoncez-vous de cinq à sept centimètres et demi dans le sol. Ensuite, insérez un couteau long en biais dans le sol et retirez le carotte du sol. Essayez d'éviter tout contact avec la végétation échantillonnée, même avec le couteau utilisé pour sa collecte.

Retirez maintenant soigneusement le sol du fond de l'échantillon carotté à l'aide de ciseaux. Placez ensuite délicatement le prélèvement dans le récipient, de sorte que les feuilles de gazon n'entrent pas en contact avec le récipient. Les gouttelettes d'humidité présentes dans la canopée peuvent contenir des résidus de pesticides qui se transmettent de la végétation au sol si la carotte est secouée, particulièrement le matin.

Pour cette raison, les chercheurs doivent prendre des précautions particulières lors du prélèvement des échantillons et de leur manipulation ultérieure. Des parcelles de gazon ont été traitées avec l'herbicide à large spectre 2,4-D à raison d'un kilogramme de matière active par hectare. Trois espèces de gazon ont été traitées, et pour chaque espèce, les trois méthodes de prélèvement décrites ont été utilisées.

L'échantillonnage a été effectué à quatre moments différents après l'application de l'herbicide, puis comparé à la masse d'herbicide appliquée. Les premiers prélèvements ont eu lieu immédiatement après l'application et une heure après l'application. Des prélèvements ont ensuite été réalisés un jour après l'application de l'herbicide, et enfin, trois jours après l'application de l'herbicide.

Il a été constaté que l'essuyage manuel délogeait la plus grande proportion du 2,4-D appliqué. En revanche, l'échantillonnage à l'aide du rouleau à bille délogeait généralement la plus faible quantité d'herbicide. En raison de la variabilité des dynamiques du couvert végétal, les graminées transféraient des quantités différentes d'herbicide.

Plus précisément, avec les méthodes d'échantillonnage basées sur des rouleaux, les deux espèces de graminées plus grossières ont libéré moins d'herbicide. Cela peut être dû en partie à un contact réduit entre le matériau sorbant et les graminées, en raison de l'aplatissement des feuilles. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'effectuer divers protocoles permettant de quantifier les résidus de pesticides transférables dans les systèmes de gazon.