15 mars 2017
Transférables expériences de résidus de pesticides dans les systèmes gazons font partie intégrante des évaluations de l'exposition des risques humains. Les approches expérimentales pour mesurer les résidus transférables doivent être ajustées à l'interaction humaine d'intérêt et le système de gazons dynamique. Trois protocoles transférables de résidus de pesticides sont présentés et la pertinence à travers trois systèmes gazons est discutée.
L’objectif général de ces protocoles est de quantifier les résidus de pesticides transférables de l’arbre à la végétation de gazon. Ces approches peuvent aider à répondre à des questions clés concernant la sécurité publique contre les pesticides ainsi que les décisions réglementaires et les pratiques des utilisateurs dans le domaine de l’agrochimie. Les protocoles ont des attributs uniques qui les rendent plus ou moins adaptés à tous les systèmes de gazon.
Et les chercheurs devraient comprendre cela avant l’expérimentation afin de prédire le plus précisément possible l’exposition humaine aux pesticides. Le choix du protocole de résidus de pesticides transférables doit englober la voie d’exposition et les systèmes de gazon d’intérêt afin de mieux quantifier l’exposition humaine potentielle. Ce faisant, il est possible de prendre des décisions éclairées fondées sur des recherches solides sur l’utilisation des pesticides dans les systèmes de gazon.
Pour ces protocoles, les parcelles de terrain doivent inclure des allées d’un demi-mètre à un mètre le long de la bordure de la parcelle pour permettre la circulation piétonnière et la collecte d’échantillons. Pour prélever des échantillons de résidus sur les plantes à l’aide de lingettes pour les mains, normalisez d’abord la zone essuyée à l’aide d’une surface d’essai. Préparez une solution de colorant alimentaire 10 % vert et une solution tensioactif non ionique 1 %.
Vaporisez ensuite la solution sur une surface non poreuse. Maintenant, avec des gants en coton, appuyez les doigts sur la surface non poreuse. Ensuite, prenez une photo numérique et utilisez un programme d’imagerie pour calculer la zone contactée en fonction de l’absence de colorant alimentaire vert dans cette zone.
En fonction de la zone de contact entre la main et la surface, calculez la quantité de pression nécessaire pour essuyer la même zone à l’aide de deux kilopascals. Calibrez ensuite la pression d’essuyage à l’aide d’une balance numérique. Fixez le gazon à la balance et appuyez avec la force requise, qui est généralement comprise entre 150 et 300 grammes.
Ensuite, calibrez la vitesse d’essuyage. Mesurez 30 centimètres de gazon et ajustez la vitesse d’essuyage jusqu’à ce qu’il faille environ une seconde pour essuyer la distance. Ainsi, la technique d’essuyage est standardisée.
Avant de prélever un échantillon, définissez la zone d’échantillonnage en marquant son périmètre avec de la peinture pour gazon. Essuyez maintenant la zone d’échantillonnage avec un gant en coton porté par-dessus un gant en nitrile. Essuyez pendant 30 secondes, en effectuant des mouvements de va-et-vient, en changeant de direction perpendiculairement.
Répétez maintenant le processus sur la même zone avec un deuxième gant en coton. Une fois les lingettes terminées, congelez le gant d’échantillonnage dans les trois heures. Rangez ensuite les gants en coton dans un bocal en verre sur de la glace ou de la neige carbonique.
Deux gants d’échantillonnage ont été jugés nécessaires à la suite des efforts préliminaires visant à échantillonner une zone de 420 centimètres carrés. Si une plus grande zone doit être échantillonnée, des gants supplémentaires peuvent être nécessaires. Cette procédure nécessite trois personnes.
Un rouleau mesure 10 centimètres de diamètre, 61 mètres de long et pèse 14,5 kilogrammes. Une mousse de polyuréthane de 1,2 centimètre d’épaisseur entoure le rouleau. Avant utilisation, enveloppez la mousse dans du plastique.
Le rouleau est roulé avec un cadre mesurant 62 centimètres de large et 91 centimètres de long. Sur le cadre, utilisez des pinces pour fixer un drap de coton de 70 x 99 centimètres et dont le nombre de fils est d’au moins 200 fils par pouce. Maintenant, le drap de coton est en contact avec la zone d’échantillonnage du gazon.
Le cadre est ensuite fixé au sol à l’aide de clous métalliques. Ensuite, roulez doucement le rouleau sur le chiffon d’avant en arrière cinq fois. Utilisez une vitesse de roulis de 1,6 kilomètre à l’heure.
Une fois qu’une personne a fini de rouler, deux autres retirent le cadre du sol. Pendant que la feuille est fixée au cadre, une troisième personne doit délicatement retirer tous les débris du coton. Retirez ensuite la feuille du cadre et pliez-la vers l’intérieur pour que la zone de contact de l’échantillon se touche.
Conservez la feuille sur de la glace. Celui-ci doit être congelé dans les trois heures. Après avoir prélevé l’échantillon, retirez le plastique du rouleau.
Nettoyez ensuite l’appareil d’échantillonnage avec 50 % d’ammoniac dans de l’eau, puis rincez-le à l’eau. Laissez sécher les outils avant de les réutiliser. Cette procédure peut être effectuée en solo et nécessite un cadre de ballon de football, fabriqué à partir d’un tuyau en PVC.
Pour faire rouler le ballon, gonflez le ballon de football à 24 kilopascals, ce qui est relativement plat. Montez ensuite la bille sur le rouleau en la fixant à l’aide de tire-fonds sur les côtés opposés. La balle doit tourner symétriquement et ne pas être délogée par une légère pression.
Une fois qu’il est déterminé qu’il est bien sécurisé, enveloppez la balle avec une bande absorbante de cinq centimètres de large et 130 centimètres de long. La zone enveloppée doit être alignée avec la poignée du rouleau. Fixez la bande à la boule avec des morceaux de ruban adhésif d’environ deux centimètres carrés et demi.
Pour prélever l’échantillon, faites rouler la balle sur 3,7 mètres d’herbe à vitesse constante, en prenant soin de ne pas marcher sur une zone d’échantillonnage non échantillonnée. En fonction des dimensions de la parcelle, plusieurs rouleaux côte à côte peuvent être nécessaires. Des recherches préliminaires devraient déterminer une distance de roulement de balle appropriée pour éviter de dépasser la capacité d’absorption de la bande.
Après avoir roulé la bille, retirez la bande de sorbant et pliez-la vers l’intérieur, de sorte que le côté de l’échantillon entre en contact avec lui-même. Ensuite, transférez-le dans un bocal en verre sur de la glace et congelez-le dans les trois heures suivant la collecte. Récoltez une carotte de gazon pour le contrôle de la qualité de l’échantillonnage.
Définissez d’abord la zone à carotter à l’aide d’un coupe-gobelet de terrain de golf et creusez de cinq à sept centimètres et demi dans le sol. Ensuite, dirigez un long couteau dans le sol et retirez le noyau du sol. Essayez d’éviter tout contact avec la végétation échantillonnée, même à l’aide du couteau utilisé pour la collecter.
Maintenant, retirez soigneusement la terre du fond de l’échantillon de carotte à l’aide de ciseaux. Placez ensuite délicatement le bouchon dans le récipient d’échantillon, de sorte que les brins d’herbe n’entrent pas en contact avec le récipient. Les gouttelettes d’humidité du couvert forestier peuvent contenir des résidus de pesticides qui se transportent de la végétation vers le sol si le noyau est bousculé, surtout le matin.
C’est pourquoi les chercheurs doivent prendre des précautions particulières lors du prélèvement et de la manipulation subséquente des échantillons. Les parcelles de gazon ont été traitées avec l’herbicide à feuilles larges 2,4-D à raison d’un kilogramme de matière active par hectare. Trois espèces de gazon ont été traitées, et pour chaque espèce, les trois méthodes d’échantillonnage décrites ont été utilisées.
L’échantillonnage a été effectué à quatre moments après l’application de l’herbicide et comparé à la masse d’herbicide appliquée. Les premiers points d’échantillonnage ont été effectués immédiatement après l’application et une heure après l’application. L’échantillonnage a ensuite été effectué un jour après l’application de l’herbicide, et enfin, trois jours après l’application de l’herbicide.
Il a été constaté que l’essuyage à la main délogeait la plus grande proportion du 2,4-D appliqué. À l’inverse, l’échantillonnage avec le rouleau de bille délogeait généralement le moins d’herbicide. Comme la dynamique du couvert varie d’un ton variable, les graminées à gazon ont transféré différentes quantités d’herbicide.
Plus précisément, avec les méthodes d’échantillonnage au rouleau, les deux espèces de graminées les plus grossières ont délogé moins d’herbicide. Cela peut être dû en partie à la réduction du contact entre le matériau absorbant et l’herbe, en raison de la position des brins d’herbe. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon de mettre en œuvre divers protocoles pour les résidus de pesticides transférables quantifiés dans les systèmes de gazon.
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Cet article présente des protocoles pour mesurer les résidus de pesticides transférables dans les systèmes de gazon, ce qui est essentiel pour évaluer l'exposition des humains aux risques. Les méthodes décrites visent à améliorer la compréhension des pratiques de sécurité et de réglementation relatives aux pesticides.
La quantification des résidus de pesticides transférables dans les systèmes de gazon soutient l'évaluation des risques pour la santé humaine et la conformité réglementaire des produits agrochimiques. Ces protocoles permettent une évaluation normalisée des voies d'exposition pertinentes pour la sécurité publique et une prise de décision éclairée concernant l'utilisation des pesticides. Les méthodes proposées offrent une réduction systématique des risques en reliant les pratiques d'application aux voies potentielles d'exposition non alimentaires.
Les protocoles s'intègrent aux flux de travail d'évaluation de l'exposition en fournissant une quantification normalisée des résidus, de la découverte jusqu'à l'évaluation préclinique de la sécurité.