Name: Bâtiment à deux étages pièges pour la détection précoce de l’agrile du frêne (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-04T11:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 7 s
Description: Apprenez à construire et surveiller des pièges à deux étages pour détecter l'agrile du frêne dans les populations à faible densité. Cette méthode s'avère plus efficace que les autres modèles testés sur le terrain.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Plusieurs techniciens et étudiants des cycles supérieurs à la Michigan State University ont contribué à développer, d’affiner et d’évaluer la conception de piège DD au cours des années, y compris Andrea Anulewicz, Robert McDonald et Nathan Siegert. Nous remercions James Wieferich et Jeremy Lowell (MSU) pour leur aide dans l’élaboration des instructions pour l’installation de DD. James Wieferich et Molly Robinett (MSU) ont révisé une version antérieure de ce manuscrit, et nous apprécions leurs suggestions. Joseph Francese et Damon Crook (USDA-APHIS) a généreusement partagent leurs observations sur la réponse de la VAE aux substances volatiles couleur et hôte. Évaluation et développement de piège DD a été financé par des subventions de la forêt du USDA Forest Service, zone du nord-est, Protection de la santé.

1. préparer le vert et le violet panneaux <ol><li>Acquire vert et le violet ondulé panneaux en plastique (120 cm × 60 cm) pour le piégeage de la VAE auprès d’un distributeur commercial de pest management supplies. Utiliser un cutter ou couteau à marquer deux plier les lignes dans chaque panneau en coupant partiellement à travers le plastique le long les ondulations verticales, 40 cm des deux bords courts du panneau. Cela permet au panneau d’être plié dans un prisme de 3 côtés (chaque face sera 40 x 60 cm). Panneaux est habituellement marqués par le distributeur pour faciliter le pliage, donc cette étape n’est peut-être pas nécessaire.</li>
	<li>Perceuse deux paires de trous dans chaque panneau à l’aide d’un ½ pouce (1,3 cm) bits comme indiqué dans la Figure 1. Percer des trous 4 pouces (10 cm) de la partie supérieure du panneau et 4 pouces de chaque côté du pli gauche. La deuxième paire de trous de forage 19 pouces (48 cm) de la partie supérieure du panneau et directement sous les trous supérieurs (p. ex., 4 pouces de chaque côté du pli gauche).</li>
</ol> 2. Préparer le tuyau en PVC <ol><li>obtenir une section de tuyau de polychlorure de vinyle (PVC) Cédule 40, 3 m de long et 10 cm de diamètre, d’une quincaillerie commerciale ou un autre fournisseur pour chaque piège. Percez quatre trous dans le tuyau de PVC, comme illustré à la Figure 2. À l’aide d’un foret de ½ po (1,3 cm), percer deux trous 4 pouces (10 cm) de la partie supérieure du tuyau PVC et 3½ pouces (8,9 cm) de distance. Alignez les trous horizontalement.</li>
	<li>Percer une deuxième paire de trous, 3½ pouces de distance et 52 pouces (1.3 m) au-dessous du sommet de la cheminée, à l’aplomb de la première série de trous.</li>
</ol> 3. Installer un poteau de T- <ol><li>utiliser un post pounder pour installer un poste de t à l’endroit désiré. Conduire le poste assez profond pour que la bride est juste en dessous de la surface du sol, mais il n’y a pas besoin d’aller plus loin. Le t-post fournira beaucoup de soutien pour le piège DD, même par grand vent. Fils de Guy ou supports supplémentaires ne sont pas nécessaires. Bien que le t-post n’a pas à être profondément dans le sol, c’est une bonne idée de vérifier pour les services publics souterrains ou des tuyaux enfouis avant le poste de conduite dans le sol.</li>
</ol> 4. Assembler le piège DD <ol><li>pli un panneau violet dans un prisme. Si les panneaux sont précollé, veillez à ce que le côté collant est à l’extérieur. Nourrir les deux petits rabats à travers les fentes et deux colliers de 8 pouces (20 cm) permet de fixer les extrémités du panneau ensemble. Répéter avec un panneau vert.</li>
	<li>Prend en charge le tuyau PVC horizontalement au-dessus du sol. Faites glisser le prisme pourpre sur le tuyau de PVC et vers le bas pour la série inférieure de trous dans le tuyau de PVC.</li>
	<li>Nourrir un grand, 2 pieds (60 cm) long collier horizontalement dans la partie supérieure gauche trou dans le prisme, puis à travers les deux trous dans le tuyau de PVC et enfin dans le trou adjacent sur le côté droit du prisme. Veillez à ce que le prisme soit contre la partie solide de tuyau en PVC qui se situe entre les deux trous. Fermez et serrez le collier de serrage, veillant à ce que le collier n’est pas tordu.</li>
	<li>Nourrir un deuxième collier grand à travers le trou inférieur dans le prisme, autour du tuyau et dans le trou correspondant du côté adjacent du prisme. Fermer le collier de serrage et serrer, encore une fois, en prenant soin de s’assurer que l’attache vrillent pas avant il est serré.</li>
	<li>Glisser le prisme vert sur le tuyau de PVC et attachez-le à l’ensemble des trous dans le tuyau de PVC avec deux colliers 60 cm, suivant les mêmes étapes comme avant. Il y aura un écart de 21 pouces (54 cm) entre les prismes supérieurs et inférieurs.</li>
</ol> 5. Appliquer la colle de l’insecte et Set Up the Trap colle piégeage insectes <ol><li>appliquer clairement aux panneaux qui ne sont pas pré collés. Les panneaux même précollé nécessitent souvent colle supplémentaire pour capturer des coléoptères de l’agrile du frêne. Pour appliquer la colle de piégeage insectes, donner à la base du tuyau PVC sur le sol et prop la face interne du prisme supérieure sur son poste de t.</li>
	<li>Gants à l’aide de latex (ou similaire), ramasser les deux à trois poignées de colle et frottis il sur toute la surface d’un panneau, en s’assurant que la surface du panneau est bien revêtue. Faites tourner le tuyau PVC pour accéder à toutes les surfaces de trois sur les deux prismes. La colle ne doit pas être appliqué sur le tuyau PVC.</li>
	<li>Ramasser le tuyau de PVC, tenez-la verticalement et glissez l’extrémité inférieure sur le poste de t. Évitez de toucher les panneaux collantes.</li>
</ol> 6. Appât le piège DD <ol><li>comme des prismes précollés arrivent généralement avec un petit trou (4 mm) près du bord inférieur d’un des panneaux du prisme, utiliser une attache de câble de 4 pouces (10 cm) pour fixer un sachet de cis -3-hexenol au bord inférieur du prisme de haut (en vert). Si un trou n’est pas présent, utiliser une perforatrice de poche ou un canif pour découper un petit trou ou la fente dans le plastique, puis utilisez le petit collier de serrage pour fixer le leurre. 
	Remarque : Le cis -3-hexenol, composé dans les leurres est libérée lentement pendant environ 10 semaines. Si les pièges doivent rester efficace pendant plus de 10 semaines, remplacez les appâts au besoin.</li>
</ol> 7. Recherchant les pièges EAB coléoptères <ol><li>cocher pièges à intervalles de 2 à 4 semaines si possible, pour éviter de perdre des coléoptères capturés, qui parfois de déposer les pièges, en particulier en cas de fortes pluies. Examiner tous les trois côtés du prisme inférieur pour les coléoptères de l’agrile du frêne. Puis, à l’aide de gants jetables en latex, relevez le tuyau de PVC et sur le t-poteau et soutenir la face interne du prisme supérieure sur le t-post, exposant un panneau de deux prismes.</li>
	<li>Pinces à utiliser pour supprimer les éléments suspects EAB coléoptères et placez-les dans un sac de spécimen en plastique refermables.</li>
	<li>Tourner le tuyau PVC pour examiner tous les trois panneaux sur les deux prismes pour suspect EAB coléoptères, puis glissez le tuyau revient sur son poste de t. 
	Remarque : Les mouches, les taupins et divers autres insectes seront inévitablement capturées sur les pièges. Il faut un œil vif pour repérer une scarabée de l’agrile du frêne. Porteurs d’une carte de référence photo peut s’avérer utile lors de la vérification des pièges pour la première fois.</li>
	<li>Pour confirmer l’identification des espèces, retourner les coléoptères suspects au laboratoire et trempez-les dans l’agent de compensation histologique non toxique pour un jour ou deux pour enlever la colle de piégeage insectes. Coléoptères peuvent alors être examinés sous un microscope à dissection.</li>
</ol>

<ol><li>EAB.info. Emerald Ash Borer Information Network. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://emeraldashborer.info/">http://emeraldashborer.info/</a> (2016).</li>
<li>Baranchikov, Y., Mozolevskaya, E., Yurchenko, G., Kenis, M. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1365-2338.2008.01210.x/abstract">Occurrence of the emerald ash borer, Agrilus planipennis in Russia and its potential impact on European forestry.</a> OEPP/EPPO Bulletin. 38, 233-238 (2008).</li>
<li>Orlova-Bienkowskaja, M. J. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/258161566_Ashes_in_Europe_are_in_danger_The_invasive_range_of_Agrilus_planipennis_in_European_Russia_is_expanding">Ashes in Europe are in danger: the invasive range of Agrilus planipennis in European Russia is expanding.</a> Biol. Invasions. 16, 1345-1349 (2014).</li>
<li>Anulewicz, A. C., McCullough, D. G., Cappaert, D. L. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/280015466_Emerald_Ash_Borer_Agrilus_planipennis_Density_and_Canopy_Dieback_in_Three_North_American_Ash_Species">Emerald ash borer (Agrilus planipennis) density and canopy dieback in three North American ash species.</a> Arbor. Urban For. 33, 338-349 (2007).</li>
<li>Chen, Y., Poland, T. M. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/37395">Nutritional and defensive chemistry of three North American ash species: possible roles in host performance and preference by emerald ash borer adults.</a> Grt. Lakes Entomol. 43, 20-33 (2010).</li>
<li>Pureswaran, D. S., Poland, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+selection+and+feeding+preference+of+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+on+ash+%28Fraxinus+spp%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Host selection and feeding preference of Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) on ash (Fraxinus spp).</a> Environ. Entomol. 38, 757-765 (2009).</li>
<li>Rebek, E. J., Herms, D. A., Smitley, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interspecific+variation+in+resistance+to+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+among+North+American+and+Asian+ash+%28Fraxinus+spp%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Interspecific variation in resistance to emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) among North American and Asian ash (Fraxinus spp).</a> Environ. Entomol. 37, 242-246 (2008).</li>
<li>Tanis, S. R., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/x2012-103#.WK3iAjsrLIU">Differential persistence of blue ash and white ash following emerald ash borer invasion.</a> Can. J. For. Res. 42, 1542-1550 (2012).</li>
<li>Tanis, S. R., McCullough, D. G., G, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+resistance+of+five+Fraxinus+species+to+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+and+effects+of+paclobutrazol+and+fertilization%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Host resistance of five Fraxinus species to Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) and effects of paclobutrazol and fertilization.</a> Environ. Entomol. 44, 287-299 (2015).</li>
<li>Burr, S. J., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/cjfr-2013-0415#.WK3iRTsrLIU">Condition of green ash (Fraxinus pennsylvanica) overstory and regeneration at three stages of the emerald ash borer invasion wave.</a> Can. J. For. Res. 44, 768-776 (2014).</li>
<li>Knight, K. S., Brown, J. P., Long, R. P. <a target="_blank" href="https://www.nrs.fs.fed.us/pubs/42821">Factors affecting the survival of ash (Fraxinus spp.) trees infested by emerald ash borer (Agrilus planipennis).</a> Biol. Invasions. 15, 371-383 (2013).</li>
<li>Klooster, W. S. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/271960197_Ash_Fraxinus_spp_mortality_regeneration_and_seed_bank_dynamics_in_mixed_hardwood_forests_following_invasion_by_emerald_ash_borer_Agrilus_planipennis">Ash (Fraxinus spp.) mortality, regeneration, and seed bank dynamics in mixed hardwood forests following invasion by emerald ash borer (Agrilus planipennis).</a> Biol. Invasions. 16, 859-873 (2014).</li>
<li>Flower, C. E. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/47044">Native bark-foraging birds preferentially forage in infected ash (Fraxinus spp.) and prove effective predators of the invasive emerald ash borer (Agrilus planipennis Fairmaire).</a> For. Ecol. Manage. 313, 300-306 (2014).</li>
<li>Gandhi, K. J. K., Herms, D. A. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/225566518_North_American_arthropods_at_risk_due_to_widespread_Fraxinus_mortality_caused_by_the_Alien_Emerald_ash_borer">North American arthropods at risk due to widespread Fraxinus mortality caused by the alien emerald ash borer.</a> Biol. Invasions. 12, 1839-1846 (2010).</li>
<li>Kovacs, K. F. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/34370">Cost of potential emerald ash borer damage in U.S. communities, 2009-2019.</a> Ecol. Econ. 69, 569-578 (2010).</li>
<li>Kovacs, K. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21546148">The influence of satellite populations of emerald ash borer on projected economic damage in U.S. communities, 2010-2020.</a> Environ. Manage. 92, 2170-2181 (2011).</li>
<li>Herms, D. A., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24112110">Emerald ash borer invasion of North America: history, biology, ecology, impact and management.</a> Ann. Rev. Entomol. 59, 13-30 (2014).</li>
<li>Herms, D. A., McCullough, D. G., Smitley, D. R., Sadof, C. S., Cranshaw, W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHerms%2C+DA+%22Insecticide+options+for+protecting+ash+trees+from+emerald+ash+borer%22">Insecticide options for protecting ash trees from emerald ash borer</a>. , 2nd edition, North Central IPM Center Bulletin. 16(2014).</li>
<li>Mercader, R. J., McCullough, D. G., Bedford, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+girdled+ash+detection+trees+and+baited+artificial+traps+for+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+detection%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">A comparison of girdled ash detection trees and baited artificial traps for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) detection.</a> Environ. Entomol. 42, 1027-1039 (2013).</li>
<li>McCullough, D. G., Poland, T. M., Anulewicz, A. C., Emerald Cappaert, D. Emerald ash borer (Agrilus planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) attraction to stressed or baited ash (Fraxinus spp.) trees. Environ. Entomol. 38, 1668-1679 (2009).</li>
<li>McCullough, D. G., Poland, T. M., Cappaert, D., Anulewicz, A. C. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/255580297_Emerald_ash_borer_Agrilus_planipennis_attraction_to_ash_trees_stressed_by_girdling_herbicide_or_wounding">Emerald ash borer (Agrilus planipennis) attraction to ash trees stressed by girdling, herbicide and wounding.</a> Can. J. For. Res. 39, 1331-1345 (2009).</li>
<li>McCullough, D. G., Siegert, N. W., Poland, T. M., Pierce, S. J., Ahn, S. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+trap+type%2C+placement+and+ash+distribution+on+emerald+ash+borer+captures+in+a+low+density+site%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Effects of trap type, placement and ash distribution on emerald ash borer captures in a low density site.</a> Environ. Entomol. 40, 1239-1252 (2011).</li>
<li>Hunt, L. Emerald ash borer state update: Ohio. Proceedings of the Emerald Ash Borer and Asian Longhorned Beetle Research and Technology Development Meeting, , U.S. Department of Agriculture, Forest Service Publication FHTET-2007-04. Morgantown, WV. Cincinnati, OH, 29 Oct. - 2 Nov. 2006 (2007).</li>
<li>Mercader, R. J. <a target="_blank" href="https://www.nrs.fs.fed.us/pubs/53037">Estimating local spread of recently established emerald ash borer, Agrilus planipennis, infestations and the potential to influence it with a systemic insecticide and girdled ash trees.</a> For. Ecol. Manage. , (2016).</li>
<li>Rauscher, K. The 2005 Michigan emerald ash borer response: an update. Proceedings of the Emerald Ash Borer Research and Technology Development Meeting, , U.S. Department of Agriculture, Forest Service Publication FHTET-2005-16. Morgantown, WV. Pittsburgh, PA, 26-27 Sept. 2005. (2005).</li>
<li>Ryall, K. <a target="_blank" href="http://cfs.nrcan.gc.ca/publications?id=36130">Detection and sampling of emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) infestations.</a> Can. Entomol. 147, 290-299 (2015).</li>
<li>Silk, P. J., Ryall, K. <a target="_blank" href="https://cfs.nrcan.gc.ca/publications?id=35741">Semiochemistry and chemical ecology of the emerald ash borer Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae).</a> Can. Entomol. 147, 277-289 (2015).</li>
<li>Poland, T. M. Recent development and advances in survey and detection tools for emerald ash borer. Proceedings of the 27th USDA Interagency Research Forum on Invasive Species, , Annapolis, MD. (2016).</li>
<li>Crook, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+host-based+semiochemical+lure+for+trapping+emerald+ash+borer%2C+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Development of a host-based semiochemical lure for trapping emerald ash borer, Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae).</a> Environ. Entomol. 37, 356-365 (2008).</li>
<li>de Groot, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiological+response+and+attraction+of+emerald+ash+borer+to+green+leaf+volatiles+%28GLVs%29+emitted+by+host+foliage%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Electrophysiological response and attraction of emerald ash borer to green leaf volatiles (GLVs) emitted by host foliage.</a> J. Chem. Ecol. 34, 1170-1179 (2008).</li>
<li>Poland, T. M., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+trap+types+and+colors+for+capturing+emerald+ash+borer+adults+at+different+population+densities%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparison of trap types and colors for capturing emerald ash borer adults at different population densities.</a> Environ. Entomol. 43, 157-170 (2014).</li>
<li>Crook, D. J., Mastro, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+ecology+of+the+emerald+ash+borer+Agrilus+planipennis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Chemical ecology of the emerald ash borer Agrilus planipennis.</a> J. Chem. Ecol. 36, 101-112 (2010).</li>
<li>Rodriguez-Saona, C. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/15033">Behavioral and electrophysiological responses of the emerald ash borer, Agrilus planipennis, to induced volatiles of Manchurian ash, Fraxinus mandshurica.</a> Chemoecology. 16, 75-86 (2006).</li>
<li>Crook, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+and+field+response+of+the+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+to+selected+regions+of+the+electromagnetic+spectrum%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Laboratory and field response of the emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) to selected regions of the electromagnetic spectrum.</a> J. Econ. Entomol. 102, 2160-2169 (2009).</li>
<li>Francese, J. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20857732">Optimization of trap color for the emerald ash borer, Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae).</a> J. Econ. Entomol. 103, 1235-1241 (2010).</li>
<li>Crook, D. J., Khrimian, A., Cossé, A., Fraser, I., Mastro, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+trap+color+and+host+volatiles+on+capture+of+the+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Influence of trap color and host volatiles on capture of the emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae).</a> J. Econ. Entomol. 105, 429-437 (2012).</li>
<li>Emerald Ash Borer Survey Guidelines. , (USDA APHIS) United States Department of Agriculture Animal and Plant Health Inspection Service, USDA APHIS PPQ.. Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.aphis.usda.gov/plant_health/plant_pest_info/emerald_ash_b/downloads/survey_guidelines.pdf ">https://www.aphis.usda.gov/plant_health/plant_pest_info/emerald_ash_b/downloads/survey_guidelines.pdf </a> (2013).</li>
<li>Grant, G. G., Poland, T. M., Ciaramitaro, T., Lyons, D. B., Jones, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+male+and+female+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+responses+to+phoebe+oil+and+%28Z%29-3-hexenol+lures+in+light+green+prism+traps%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparison of male and female emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) responses to phoebe oil and (Z)-3-hexenol lures in light green prism traps.</a> J. Econ. Entomol. 104, 173-179 (2011).</li>
<li>Cappaert, D., McCullough, D. G., Poland, T. M., Siegert, N. W. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/13648">Emerald ash borer in North America: a research and regulatory challenge.</a> Am. Entomol. 51, 152-165 (2005).</li>
<li>Taylor, R. A. J., Bauer, L. S., Poland, T. M., Windell, K. <a target="_blank" href="https://www.nrs.fs.fed.us/pubs/34720">Flight performance of Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) on a flight mill and in free flight.</a> J. Insect Behav. 23, 128-148 (2010).</li>
<li>Mercader, R. J. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S037811271500225X">Evaluation of the potential use of a systemic insecticide and girdled trees in area wide management of the emerald ash borer.</a> For. Ecol. Manage. 350, 70-80 (2015).</li>
<li>Mercader, R. J., Siegert, N. W., Liebhold, A. M., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/X10-201#.WK3oTTsrLIU">Simulating the effectiveness of three potential management options to slow the spread of emerald ash borer, (Agrilus planipennis) populations in localized outlier sites.</a> Can. J. For. Res. 41, 254-264 (2011).</li>
<li>Mercader, R. J., Siegert, N. W., Liebhold, A. M., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://link.springer.com/article/10.1007/s10144-010-0233-6">Influence of foraging behavior and host spatial distribution on the localized spread of the emerald ash borer, Agrilus planipennis.</a> Pop. Ecol. 53, 271-285 (2011).</li>
<li>Poland, T. M., McCullough, D. G., Anulewicz, A. C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21510200">Evaluation of an artificial trap for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) incorporating olfactory and visual cues.</a> J. Econ. Entomol. 104, 517-531 (2011).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun intérêt financier concurrentes.

La conception et la mise en place de pièges DD exploitent l’attraction des insectes adultes de EAB à nuances spécifiques de couleur et à la lumière. Le prisme vert sur le dessus de la pipe de PVC est plus attrayant pour les coléoptères mâles, qui passent leur durée de vie, se nourrissant de feuilles de frêne, ainsi que l’accouplement de32,36,38,39. Le prisme pourpre inférieur assure les pièges ...

L’agrile du frêne (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire) (Coleoptera : Buprestidae) a tué des centaines de millions de frênes (Fraxinus spp.), puisqu’il a été identifié en 2002 dans la grande région métropolitaine de Detroit (Michigan) et en Windsor, Ontario, Canada à proximité. Propagation involontaire de frênes infestés, bûches et bois de chauffage, ainsi que la dispersion naturelle des coléoptères, ont abouti à la création d’agrile du frêne dans au moins 27 États et deux provinces canadiennes à ce jour1. Des rapports récents indiquent que l’agrile du frêne a également envahi Moscou, en Russie, où il est mort paysage cendre arbres2,3, générant une préoccupation supplémentaire sur son potentiel de propagation en Europe. La variation interspécifique dans préférence hôte EAB et résistance chez les cendres nord-américain espèces a été documentée4,5,6,7,8,9, mais pratiquement toutes les espèces de cendres en Amérique du Nord sont susceptibles d’être des hôtes appropriés. Des niveaux catastrophiques de la mortalité de cendres ont été enregistrées dans les zones de Michigan et Ohio10,11,12, avec des impacts écologiques et économiques associés13,14, 15,16.
Des méthodes efficaces pour détecter de nouvelles infestations de l’agrile du frêne et de surveiller les populations de faible densité sont des aspects cruciaux de la gestion de ce ravageur envahissant en milieu urbain, résidentiel ou boisées. Une détection précoce donne le temps d’élaborer une stratégie, assurer le financement et mettre en place des activités visant à réduire les impacts de l’agrile du frêne. Par exemple, propriétaires d’une maison et des élus municipaux peuvent commencer à traiter les cendres précieuses dans les paysages avec des insecticides systémiques avant les dommages causés en augmentant la densité larvaire limite l’efficacité de ces produits17,18. De même, identification d’une nouvelle infestation et des informations fiables sur la distribution locale de VAE donne des aménagistes forestiers et propriétaires la possibilité de mettre en place des ventes de bois, de conversion de l’espèce ou d’autres activités visant à réduire les coûts économiques ou écologiques effets de la mortalité de cendres.
Détection précoce, la délimitation et la surveillance efficace des populations de faible densitées EAB, toutefois, restent difficiles. Les relevés visuels pour identifier les frênes nouvellement infestées ne sont pas fiables parce que les cendres présentent rarement signes extérieurs ou des symptômes d’infestation de l’agrile du frêne jusqu'à ce que la densité larvaire construire à niveau modéré ou élevé même4,19. Le moyen le plus efficace de détecter de très faibles densités de l’AGRILE du implique l’utilisation de cendres ceinturé détection arbres19,20,21,22. Les frênes sont annelés au printemps ou début de l’été en enlevant une bande d’écorce externe et phloème autour de la circonférence du tronc, qui insiste sur les arbres, augmentant leur attirance pour adulte EAB coléoptères. Ceinturé d’arbres peuvent être débarque en automne ou en hiver pour identifier la densité et la présence de larves EAB. Bien qu’annelé cendre arbres ont été utilisés sur le plan opérationnel pour EAB détection19,23,24,25, ils posent des problèmes. Écorçage des arbres annelés peuvent être beaucoup de travail et localisation d’arbres appropriés pour l’incision annulaire peut être difficile, surtout dans les zones urbaines ou résidentielles ou lorsque des enquêtes doivent être menées pour plusieurs années19.
Artificiels pièges appâtés avec attractants EAB éliminent beaucoup d’inquiétudes liés à l’utilisation des frênes ceinturé de détection. Contrairement aux autres ravageurs des forêts importantes comme la spongieuse (Lymantria dispar L) et certains scolytes Scolytinae qui produisent des phéromones d’agrégation ou de sexe longue distance, à ce jour, sans compter les phéromones sur de longues distances ont été trouvés pour VAE. Une phéromone sexuelle de courte portée, le cis-lactone, peut faciliter l’accouplement26,27, mais dans les essais sur le terrain, cis-lactone leurres n’ont pas systématiquement augmenté attraction EAB à pièges artificiels28. Les coléoptères adultes s’appuient sur des composés volatils émis par les feuilles de frêne, écorce et le bois pour identifier leur hôte arbres29,30,31 et rencontrer des partenaires potentiels. Plusieurs composés volatils ont été évalués pour une utilisation dans des appâts pour attirer les adultes VAE à pièges artificiels27,32. Actuellement, pièges, utilisés de façon opérationnelle pour les enquêtes de détection EAB aux États-Unis sont appâtés avec leurres contenant cis-3-hexenol, un volatile de feuille verte commune produite par cendres feuillage30,33. Dans les années précédentes, pièges EAB utilisés pour les enquêtes réalisées aux États-Unis ont également été appâtés avec de l’huile de Manuka, qui est extraite de l’arbre de thé de Nouvelle-Zélande (Leptospermum scoparium Forst et Forst) ou huile de Phoebe, un extrait de l’arbre de la noix brésilienne (porosa Phoebe Mez.) ; les deux contiennent plusieurs sesquiterpènes qui sont également présents dans l' écorce de frêne29. Problèmes avec des fournitures incompatibles de ces huiles naturelles, cependant, ont restreint leur utilisation.
En plus de substances volatiles produites par hôte, scarabées adultes de VAE répondent à des stimuli visuels, y compris la couleur et lumière20,32,34,35. Les premières études ont montré adultes EAB, qui sont relativement agiles fliers, sont rarement capturés par noir pièges appâtés avec diverses substances volatiles de cendres (DGM et TMP, données inédites). Autres modèles de piège, comme les pièges de la Croix-vane, ont été évalués mais l’aversion de l’AGRILE du coléoptères aux espaces sombres et ombres limité l’efficacité de ces pièges.
Développement d’un prisme à trois lobes, qui peut être recouvert avec clear piégeage insecte colle35 pour capturer des insectes, a été une amélioration substantielle dans la conception du piège. Attraction des adultes VAE à la couleur a également été largement évaluée dans les essais sur le terrain et en laboratoire avec un retinograph34. Les résultats montrent EAB coléoptères sont constamment attirés par des nuances de vert et violet32,36. Pièges de prisme fabriqués à partir de plastique ondulé couleur sont maintenant largement utilisés dans les activités d’enquête EAB aux États-Unis et au Canada.
Parce que les adultes de l’agrile du frêne sont fortement attirés vers la lumière, les coléoptères sont beaucoup plus susceptibles à coloniser les arbres cultivéess que l’ombre des arbres de20,21. Directives pour les enquêtes de détection EAB aux États-Unis requis individuels Prisme pièges pour être suspendu à une branche de milieu couvert dans un frêne qui poussent le long d’une route ou au bord d’une zone boisée à37. En théorie, cela devrait veiller à ce qu’au moins un panneau du prisme est exposée au soleil. Dans la pratique, toutefois, prisme pièges peuvent être partiellement occultées par branches pendantes adjacents ou à proximité d’arbres. Surfaces collantes panneau sont fréquemment soufflés dans le feuillage, résultant en feuilles adhérant à et occultant au moins une partie d’un ou plusieurs panneaux.
Pièges à deux étages (DD) ont été développées afin d’intégrer de multiples signaux visuels et olfactifs pour améliorer l’attraction des insectes de l’agrile du frêne. Chaque piège DD est composé d’un vert et un prisme en plastique ondulé violet attaché à un tuyau de 40 polychlorure de vinyle (PVC) d’annexe 3 m de haut (10 cm de diamètre), qui est pris en charge en faisant glisser le tuyau PVC sur un t-post. À l’aide de prismes verts et violets est conçue pour attirer les deux sexes de l’agrile du frêne coléoptères32,36,38,39. En outre, plutôt que d’être suspendu à une branche dans la canopée d’un frêne, les pièges DD sont placés en plein soleil, 5 à 10 mètres de frênes le long du bord d’une zone boisée ou au milieu des dispersés, les frênes cultivées.

<table><tbody><tr><td>Panneau en plastique ondulé vert pâle : 120 cm x 60 cm</td><td>LAI des Grands Lacs ; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB GR</td><td>Les trois surfaces de chaque prisme doivent être recouvertes d’une colle transparente pour piéger les insectes, même si les panneaux sont précollés. Les panneaux précollés ne sont souvent pas assez collants pour capturer ou retenir constamment les coléoptères de l’agrile du frêne. D’autres produits de colle transparente pour piéger les insectes sont disponibles, mais sont considérablement plus difficiles à appliquer. &nbsp ; &nbsp ;</td></tr><tr><td>Panneau en plastique ondulé violet pâle : 120 cm x 60 cm</td><td>LAI des Grands Lacs ; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EABSP ; </td><td></td>LP</tr><tr><td>Grand serre-câbles (4) : 60 cm avec une capacité de 79 kg</td><td>Cabletiesandmore.com ; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT-24-NU-100PK</td><td></td></tr><tr><td>Colliers de serrage moyens (4) : 20 cm avec une capacité de 22,7 kg</td><td>Cabletiesandmore.com ; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT261</td><td></td></tr><tr><td>Petit collier de serrage : 10 cm avec une capacité de 8,2 kg</td><td>Cabletiesandmore.com ; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT204</td><td></td></tr><tr><td>sachet de cis-3-hexanol</td><td>Synergy Semiochemicals ; http://www.semiochemical.com/html/buprestids.html)</td><td>3136</td><td>Les leurres utilisés pour appâter les pièges DD sont constitués de sachets contenant du cis-3-hexénol, un composé non toxique présent dans les feuilles de frêne. Une poche est fixée au bord inférieur du prisme supérieur à l’aide d’un petit serre-câble. Chaque sachet de cis-3-hexénol a un taux de libération d’environ 50 mg/jour. Notez que le cis-3-hexénol s’écrit parfois Z-3-hexenol.&nbsp ;</td></tr><tr><td>Aphinity Hexenol</td><td>Sylvar Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lure GLV4 agrile du frêne</td><td>Chemtica, Heredia, Costa Rica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cis-3-hexanol pouch</td><td>WestGreen Global Technologies ; http://www.westgreenglobaltechnologies.com/</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Colle transparente pour piéger les insectes&nbsp ;</td><td>Hummert International ; http://www.hummert.com/product-details/8196/pestick</td><td>01-3522-1&nbsp ; &nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Histoclear II agent d’élimination histologique</td><td>National Diagnostics ; www.nationaldiagnostics.com</td><td>HS-202</td><td>Histoclear II sera nécessaire pour enlever la colle collante des coléoptères suspects. D’autres agents d’élimination histologique sont disponibles, mais peuvent ne pas enlever la colle et certains produits dissolvent le plastique, une considération importante si des récipients en plastique sont utilisés pour tremper les coléoptères.</td></tr><tr><td>Histoclear II agent d’élimination histologique</td><td>des Grands Lacs ; www.greatlakesipm.com</td><td>10011</td><td>Histoclear II sera nécessaire pour enlever la colle collante des insectes suspects. D’autres agents d’élimination histologique sont disponibles, mais peuvent ne pas enlever la colle et certains produits dissolvent le plastique, une considération importante si des récipients en plastique sont utilisés pour tremper les coléoptères.</td></tr><tr><td>poteau en T : 1,5 m</td><td>sources multiples</td><td></td><td>Un poteau en T (5 pieds de haut) (1,5 m) est utilisé pour soutenir le tuyau en PVC. &nbsp ;</td></tr><tr><td>piquet de poteau</td><td>plusieurs sources</td><td></td><td>Utilisez un piquet pour planter des poteaux en T dans le sol. Aucune assistance supplémentaire n’est nécessaire.</td></tr><tr><td>Tuyau PVC PEHD (polyéthylène haute densité) : 3 m x 10 cm de diamètre</td><td>sources multiples</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinces (rigides)</td><td>sources multiples</td><td></td><td>Des pinces (pinces à épiler) seront nécessaires pour retirer les coléoptères suspects des pièges. Les pinces rigides fonctionnent mieux que les pinces flexibles.</td></tr><tr><td>Gants en latex</td><td>de sources</td><td></td> multiples <td>Les gants en latex sont nécessaires pour appliquer la colle de piégeage des insectes sur les prismes et pour vérifier les pièges afin de collecter les coléoptères de l’agrile du frêne. &nbsp ; &nbsp ;</td></tr><tr><td>Huile pour bébé ou lingettes pour bébé&nbsp ;</td><td>Sources</td><td></td> multiples <td>L’huile pour bébé ou les lingettes pour bébé sont utiles pour enlever la colle de piégeage des mains et de l’équipement.</td></tr><tr><td>Sacs d’échantillons en plastique refermables : 5 cm x 8 cm&nbsp ;</td><td>Sources</td><td></td> multiples <td>Les petits sacs d’échantillons en plastique refermables sont utiles pour collecter les coléoptères dans les pièges. Chaque sac doit être étiqueté, soit avec des étiquettes adhésives préfabriquées, soit avec des feutres souples. &nbsp ; &nbsp ;</td></tr><tr><td>Des guides pour aider à distinguer l’agrile du frêne des coléoptères indigènes d’Amérique du Nord sont disponibles sur le site Web national de l’agrile du frêne à l’adresse www.emeraldashborer.info.</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

bâtiment à deux étages pièges pour la détection précoce de l’agrile du frêne

Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Agrile du frêne (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), le plus destructeur insectes à ont envahi l’Amérique du Nord, a tué des centaines de millions de forêt et paysage frêne (Fraxinus spp.). Plusieurs modèles de piège artificiel pour attirer et capturer EAB coléoptères ont été développés pour détecter, délimiter et surveiller les infestations. Pièges à deux étages (DD) se composent de deux ondulé prismes en plastique, un vert et un mauve, attaché à un tuyau de polychlorure de vinyle (PVC) de 3 m de haut pris en charge par un poste de t. Le prisme vert en haut de la pipe de PVC est appâté avec cis-3-hexenol, un composé produit par le feuillage de frêne. Les deux prismes sont étanchées avec colle insecte collante pour capturer des insectes adultes de VAE. Pièges à deux étages doivent être placés près des frênes, mais dans des zones ouvertes, exposé au soleil. Placement et construction de piège à deux étages sont présentés ici, accompagné d’un résumé des expériences démontrant l’efficacité des pièges DD en capturant des coléoptères de l’agrile du frêne. Dans une étude récente dans les sites relativement faibles densités de l’agrile du frêne, pièges à deux étages capturèrent EAB significativement plus que les pièges à prisme vert ou violet ou vert pièges, qui sont conçus pour être suspendu à une branche dans la canopée de frênes. Un pourcentage plus élevé de deux étages pièges étaient positifs, c'est-à-dire, capturé au moins un VAE, que le prisme pièges ou les pièges qui ont été suspendues dans les couverts forestiers de cendres.

Dans une grande échelle étude, trois dessins de piège artificiels ainsi que ceinturé de frênes ont été systématiquement déployés, 10-20 m de distance, traversant un 16 nouvellement infestées ha boisés de superficie avec une très faible densité de l’agrile du frêne25. Conceptions piège artificiels testés inclus prismes purple appâtés avec de l’huile de Manuka et suspendu &#62; arbres de 3 m de haut d’une branche dans la canopée des cendres, pièges DD 3 m de haut ave...

Des pièges efficaces pour attirer et capturer l’agrile du frêne (EAB) sont un élément clé de la détection et la gestion de cet organisme nuisible envahissant. Les pièges à deux étages, placés en plein soleil, près de frênes, incorporent des signaux visuels et olfactifs et étaient plus susceptibles de capter l’agrile du frêne que d’autres modèles de piège en essais sur le terrain.

Bâtiment à deux étages pièges pour la détection précoce de l’agrile du frêne

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions ...

Notre objectif est de montrer comment construire, installer et surveiller des pièges doubles étages afin de détecter ou de suivre les faibles densités du Bupreste du frêne. Les pièges doubles étages appâtés, s'ils sont correctement assemblés et positionnés, s'avèrent systématiquement plus efficaces que tout autre piège artificiel pour capturer les adultes du Bupreste du frêne dans les populations de faible densité. Nous avons mené des études de piégeage du Bupreste du frêne dans plus de 50 emplacements au cours des 8 dernières années.Et ceci reste la conception de piège artificiel la plus efficace que nous ayons testée. La procédure sera démontrée aujourd'hui par James Wieferich et Andrew Tluczek, tous deux techniciens de recherche dans mon laboratoire. Pour commencer, à l’aide d’un foret de demi-pouce, percez une paire de trous dans chaque panneau en plastique marqué, à quatre pouces du haut du panneau et à quatre pouces de chaque côté du pli gauche.Préparez ensuite un tube en PVC de trois mètres de long et de dix centimètres de diamètre. À l'aide d'un foret de demi-pouce, percez deux trous situés à quatre pouces du sommet du tube en PVC et espacés de 3,5 pouces. Alignez les trous horizontalement.Ensuite, percez une deuxième paire de trous, espacés de 3,5 pouces, situés à 52 pouces sous le sommet du tuyau et alignés exactement avec le premier ensemble de trous. Installez maintenant un poteau en forme de T à l'emplacement souhaité à l'aide d'un enfonce-poteau. Enfoncez le poteau suffisamment profondément pour que la bride se trouve juste sous la surface du sol, mais il n'est pas nécessaire d'aller plus profondément.Les fils guides ou les supports supplémentaires ne sont pas nécessaires. Ensuite, pliez les panneaux en plastique en trois parties égales. Puis faites passer les deux petites languettes à travers les fentes.Et utilisez deux attaches de huit pouces pour fixer ensemble les bords du panneau, formant ainsi un prisme à trois côtés. Ensuite, faites glisser le prisme sur le tuyau en PVC et abaissez-le jusqu'au jeu inférieur de trous. Puis passez une attache de deux pieds de long à travers le trou supérieur gauche du prisme, à travers les trous du tuyau en PVC, et ressortez par le trou du côté droit du prisme.Ensuite, fermez et serrez la bride, en veillant à ce qu'elle ne soit pas tordue. Avant de poursuivre, assurez-vous que le prisme est bien serré contre le tuyau entre les trous. Passez maintenant une autre longue bride à travers le trou inférieur du prisme, autour du tuyau, puis par le trou correspondant sur le côté adjacent du prisme.Serrer cette sangle comme l'autre. L'étape suivante consiste à fixer le prisme vert au tuyau au niveau du jeu supérieur de trous, en utilisant la même technique que celle utilisée pour fixer le prisme violet. Pour appliquer la colle piégeant les insectes sur un piège, poser la base du tuyau en PVC au sol et appuyer la face interne du prisme supérieur sur le piquet en forme de T.Pour appâter le piège avec l'attractif, repérez un petit trou près du bord inférieur d'un panneau du prisme vert. Ensuite, à l'aide d'une sangle de fixation de 10 cm, fixez une pochette de 3-hexanol SIS au bord inférieur du prisme vert. Cet appât doit durer 10 semaines ou plus.En portant des gants jetables, prenez deux à trois poignées de colle et étalez-les sur la surface du panneau. Recouvrez complètement le panneau sur ses trois côtés ; même les panneaux préenduits de colle nécessitent souvent une application supplémentaire afin de capturer les coléoptères du PSB. Vérifiez les pièges toutes les deux à quatre semaines, si possible, afin d'éviter de perdre les coléoptères capturés, qui peuvent parfois tomber des pièges, notamment en cas de fortes pluies.Examinez les trois faces du prisme inférieur à la recherche de coléoptères du PSB. Ensuite, à l’aide de gants en latex jetables, soulevez le tube en PVC verticalement et retirez-le du piquet en T, puis appuyez la face intérieure du prisme contre le piquet en T afin d’exposer un panneau des deux prismes. Retirez ensuite le piège du piquet en T, appuyez-le contre ce dernier et examinez le prisme vert supérieur.Utilisez une pince pour retirer les éventuels coléoptères du Démestide émeraude suspects des prismes et placez-les dans un sac en plastique refermable pour échantillons. Des mouches, des coléoptères clic-clac et divers autres insectes seront inévitablement capturés par les pièges. Il faut un œil attentif pour repérer un coléoptère du Démestide émeraude.Faites pivoter le tuyau pour examiner les autres panneaux. Une fois que le piège a été entièrement vérifié, faites glisser le tuyau de nouveau sur le poteau en T. Par la suite, faites tremper les éventuels coléoptères du psylle du frêne dans un agent de clarification histologique non toxique pendant un ou deux jours afin d’éliminer la colle piégeant les insectes.Ensuite, confirmez leur identité au microscope stéréoscopique. Dans l'ensemble, les pièges à deux niveaux se sont révélés les plus efficaces pour capturer les coléoptères du psylle du frêne. Dans des expériences complémentaires, la combinaison verte et violette s'est avérée plus efficace que la combinaison violette et violette.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment installer et vérifier des pièges doubles superposés afin de détecter et surveiller les populations à faible densité du scolyte émeraude. Ces pièges constituent un aspect important de la gestion du scolyte émeraude. Une détection précoce permet de disposer du temps nécessaire pour élaborer et mettre en œuvre des stratégies efficaces de lutte et de gestion contre ce ravageur invasif.

building-double-decker-traps-for-early-detection-of-emerald-ash-borer

Research

Recherche

JoVE Journal

Environment

Environnement

Quantitative PCR en temps réel (qRT-PCR) est un outil efficace pour diagnostiquer les niveaux d'ARNm dans les tissus des insectes et des stades de développement. Dans ce rapport, nous montrons l'utilisation de qRT-PCR pour déterminer les niveaux d'ARNm dans différents tissus des larves et les stades de développement de l'espèce d'insecte invasif, l'agrile du frêne.

Analyse de l&#39;expression génique dans l&#39;agrile du frêne ( Agrilus planipennis) En utilisant quantitative en temps réel-PCR

Maladie corticale du hêtre est initiée par l'alimentation des activités de la cochenille du hêtre qui créent des points d'entrée fongiques dans l'écorce. Les arbres qui sont résistantes à l'insecte d'échelle sont également résistantes aux maladies. Ici, nous présentons le protocole que nous avons développé pour dépister hêtres individuels pour la résistance à la cochenille.

Une technique à l&#39;écran hêtre américain pour la résistance à la cochenille Hêtre (<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Prévention de la colonisation de nichoirs d'oiseaux par les abeilles africanisées invasives est important pour les efforts de conservation des sites de nidification des oiseaux limitées. Nous fournissons une approche de gestion intégrée des ravageurs pour les abeilles "push" loin de nichoirs avec un insecticide répulsif, perméthrine, et «tirer» les vers pièges à phéromone essaim.

Un protocole push-pull pour réduire Colonisation des oiseaux Nichoirs par les abeilles

Suivi complet du scolyte des café et de la dynamique de plante hôte est essentiel pour l’agrégation des données au niveau des paysages pour améliorer la gestion de cet organisme nuisible envahissante. Nous présentons ici un protocole pour la surveillance scientifique de mouvement de pyrale du berry café, infestation, mortalité, phénologie de plante de café, la météo et gestion agricole via une application enregistreurs électroniques mobiles.

Le protocole de Hawaï pour un suivi scientifique de café térébrant : un modèle pour les agroécosystèmes cafés dans le monde entier

Nous présentons ici un protocole afin d’étudier la préférence de nymphose des larves matures de Ectropis grisescens en réponse aux facteurs de sol (p. ex., contenu de l’humidité et du type de substrat) à l’aide de tests biologiques de choix. Nous présentons également un protocole d’essais biologiques sans choix de déterminer les facteurs qui influent sur les comportements de nymphose et la survie des E. grisescens.

Choix et sans choix bioessais pour étudier la préférence de nymphose et succès à l’émergence de Ectropis grisescens

Mesure des patrons d’émergence insectes requiert de la précision. Les systèmes existants sont seulement semi-automatique et l’échantillon de taille est limitée. Nous avons abordé ces questions en créant un système à l’aide de microcontrôleurs de mesurer avec précision le moment de l’émergence d’un grand nombre d’insectes émergents.

Un système précis et autonome pour la détection des patrons d’émergence insectes

Nous décrivons comment quantifier les arthropodes d'habitation de feuille en scellant les feuilles et l'extrémité des branches dans un sac, coupant et congelant le matériel ensaché, et en rinçant le matériel précédemment congelé dans l'eau pour séparer des arthropodes du substrat pour la quantification.

Une méthode pour quantifier les arthropodes foliage-dwelling

Nous décrivons une approche semi-quantitative de mesurer des caractéristiques des communautés d'arthropodes de corticolous (écorce-habitant). Nous avons placé des pièges collants fabriqués commercialement sur des boulons d'arbres pour estimer l'abondance, la longueur totale (un substitut à la biomasse), la richesse et la diversité de Shannon pour la comparaison entre les espèces d'arbres.

Quantifier les arthropodes corticolous à l'aide de pièges collants

Pour étudier les impacts de la lumière artificielle la nuit (ALAN) sur les insectes volants nocturnes, l’échantillonnage doit être limité à la nuit. Le protocole décrit un piège d’interception de vol automatisé à faible coût qui permet aux chercheurs d’échantillonner à des périodes définies par l’utilisateur avec une réplication accrue.

Piège d’interception de vol automatisé à faible coût pour le sous-échantillonnage temporel d’insectes volants attirés par la lumière artificielle la nuit

Une méthode utilisant des fruits de café vert (GF) a été développée pour tester la toxicité des insecticides contre l’agrile du café (CBB). Des insecticides ou des substances toxiques ont été appliqués sur des GF désinfectés avant ou après l’infestation de CBB. La mortalité, la répulsion et la capacité de reproduction des insectes, en plus d’autres paramètres, ont été évaluées.

Méthodologie pour tester les agents de contrôle et les insecticides contre l’agrile du café Hypothenemus hampei

Nous présentons ici un protocole pour obtenir des champignons entomopathogènes à partir d’un foreur de bois forestier et une manière substitutive d’évaluer leurs activités entomopathogènes à l’aide d’un insecte modèle coléoptère. Cette méthode est efficace et pratique pour explorer les ressources fongiques entomopathogènes des insectes xylophages ravageurs dans les forêts naturelles.

Isolement, identification comportementale et évaluation de la pathogénicité des champignons entomopathogènes d’un xylophage forestier

Apprenez à construire et surveiller des pièges à deux étages pour détecter l'agrile du frêne dans les populations à faible densité. Cette méthode s'avère plus efficace que les autres modèles testés sur le terrain.

Bâtiment à deux étages pièges pour la détection précoce de l’agrile du frêne

Explorer plus de vidéos