Name: Un modèle de transfert de tissu libre: Le Rat épigastrique Flap gratuit (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 10 s
Description: Découvrez la technique du lambeau libre épigastrique chez le rat pour la formation en microchirurgie. Cette méthode détaille l'élévation du lambeau, la dissection du pédicule vasculaire et les anastomoses artérielles et veineuses essentielles.

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L&#39;un des auteurs (Diogo Casal) a reçu une subvention du programme pour l&#39;éducation médicale avancée, qui est parrainé par Fundação Calouste Gulbenkian, Fundação Champalimaud, Ministério da Saúde e Fundação para a Ciência e Tecnologia, Portugal. Les auteurs tiennent à remercier l&#39;aide technique de M. Alberto Severino dans le tournage et montage de la vidéo. Les auteurs sont également reconnaissants à M. Octávio Chaveiro, M. Marco Costa et M. Carlos Lopes pour leur aide dans la préparation des spécimens d&#39;animaux présentés dans ce document. Enfin, les auteurs tiennent à remercier Mme Gracinda Menezes pour son aide dans tous les aspects logistiques relatifs à l&#39;acquisition et l&#39;entretien des animaux.

Toutes les procédures impliquant des sujets animaux ont été approuvés par le Comité institutionnel des animaux soin et l&#39;utilisation et le Comité d&#39;éthique à Nova University Medical School, Lisbonne, Portugal (08/2012 / CEFCM). 1. Procédure chirurgicale Set-up Remarques <ol><li> Utiliser des rats Wistar adultes pesant 250-350 g. </li><li> Gardez les rats avec de la nourriture et de l&#39; eau ad libitum avec des cycles de lumière-obscurité de 12 h 7 jours avant l&#39;intervention chirurgicale. </li><li> Peser le rat afin de déterminer la quantité d&#39;anesthésique requise. </li><li> Autoclave tous les instruments chirurgicaux avant la chirurgie. </li><li> Mise en page toutes les fournitures et les instruments chirurgicaux nécessaires pour la procédure (voir le tableau des matériaux). </li><li> Effectuer la chirurgie sous un microscope opératoire en utilisant des instruments classiques et de microchirurgie. </li><li> Placez la couverture homéothermes, sonde rectale, et lampe chauffante. </li><li> Placez un flacon de 20 ml stérilisée contenant 0,9% de solution saline dans un bain d&#39;eau chauffé à37 ºC. </li><li> Porter des gants stérilisés pour désinfecter toutes les surfaces du paramètre de fonctionnement avec une solution alcoolique. Retirer les gants. </li><li> Placer un bouchon de gommage et un masque. </li><li> Désinfecter les mains avec de l&#39;eau et du savon et de porter une autre paire de gants stérilisés. </li><li> Porter une blouse chirurgicale stérile. </li></ol> 2. Anesthésie et préparation de la peau NOTE: Vous avez déjà un aide-adjoint avec les quatre étapes suivantes, comme une blouse stérile et des gants sont portés. <ol><li> Anesthésier le rat avec un mélange de kétamine et de diazepam donné par voie intraperitoneale. La dose est de 5 mg / kg de kétamine et 0,25 mg / kg de diazépam. Juger de la profondeur de l&#39; anesthésie par pincement de l&#39; orteil et par le respect de la fréquence respiratoire pendant toute la procédure 8,14,15,32. </li><li> Appliquer un gel ophtalmique sur la surface antérieure des yeux pour éviter l&#39;abrasion de la cornée. </li><li> Retirez les cheveux sur la surface ventrale de l&#39;abdomen avec une crème dépilatoire. Après remov cheveuxal, enlever la crème dépilatoire avec une solution saline chaude. </li><li> Vaporisez une quantité importante de solution alcoolique sur le site opératoire. Laissez le produit sur le site opératoire et ne pas essuyer. Attendre au moins 15 secondes. Répétez l&#39;application 3 fois. Laisser un temps d&#39;au moins 2 min de contact avant de procéder à la chirurgie. D&#39;autres unités de recherche utilisent d&#39;autres protocoles pour prévenir l&#39;infection du site opératoire. </li><li> Le port de gants stérilisés, placez 2 champs opératoires des deux côtés du rat. </li></ol> 3. Donateur site Procédure chirurgicale <ol><li> Définissez les limites d&#39;un lambeau épigastrique allant d&#39; environ 5 cm de longueur et 3 cm de largeur. <ol><li> L&#39;utilisation d&#39;un marqueur chirurgical de la peau, tracer une ligne du processus xiphoïde du sternum à la symphyse pubienne, afin de marquer la ligne médiane sur la surface ventrale de l&#39;abdomen du rat. </li><li> Sur le côté gauche du rat, en utilisant un marqueur chirurgical de la peau, tracer deux lignes perpendiculaires à la première ligne: lee traversée immédiatement caudale à la cage thoracique et l&#39;autre, parallèlement à celui - ci et juste au crâne du pli de l&#39; aine (figures 3 et 6). </li><li> Marquez l&#39;incision latérale avec un marqueur de la peau chirurgicale avec une ligne parallèle à la ligne médiane et d&#39;environ 3 cm de distance de celle-ci. </li></ol></li><li> Flap récolte <ol><li> Inciser la peau avec une lame numéro 15 de scalpel jusqu&#39;à atteindre la couche de pannicule carnosus. </li><li> Deeper au carnosus plan de pannicule, faire l&#39;incision avec un cautère électrique jusqu&#39;à atteindre le fascia du muscle. </li><li> Soulever le rabat de dedans en dehors et à partir du crâne à caudale, ce qui expose le pédicule du lambeau. </li><li> ligaturer avec précaution et divisent les vaisseaux perforants à venir de la couche musculaire profonde et d&#39;entrer dans la surface profonde du rabat. </li><li> Placer un écarteur dans la partie caudale du volet et de disséquer le pédicule du lambeau prudemment par les taquineries doucementenlever les tissus environnants en vrac (figure 7). </li><li> Ligaturer et de diviser l&#39;artère circonflexe fémorale latérale et de la veine en utilisant 9/0 Nylon pour les ligatures. </li><li> Isoler l&#39;artère et la veine fémorales. Lorsqu&#39;il est présent, ligaturer (en utilisant 9/0 Nylon) et diviser les branches de ces navires aux muscles adjacents. </li><li> Tout d&#39;abord, utiliser une pince à double vasculaire pour serrer la partie proximale de la veine fémorale. Ensuite enserrer son aspect distal. Ensuite, serrer la partie distale de l&#39;artère fémorale, et enfin l&#39;aspect proximal. </li><li> Serrer la partie distale de l&#39;artère fémorale, et enfin l&#39;aspect proximal. </li><li> Placez une pince vasculaire unique dans la veine épigastrique superficielle et l&#39;autre dans l&#39;artère épigastrique superficielle. Utilisez une paire de ciseaux de microchirurgie droites pour couper l&#39;artère épigastrique superficielle et la veine à leur origine et la terminaison, respectivement. </li><li> Abondamment irriguer la lumière de ces vaisseaux avec une solution saline normale héparinisé 10 UI / ml, Jusqu&#39;à ce qu&#39;aucun sang ou des débris sont visibles à l&#39; intérieur de la lumière des navires 33. </li><li> Tirez et coupez un brassard de adventice à proximité des sites de section vasculaires. </li><li> Transférez le volet épigastrique au cou à l&#39; aide des pinces d&#39;Addison (figure 8). </li><li> Fermez le site donneur avec subcuticulaire interrompu 5/0 points de suture résorbables. </li><li> Fermer la peau avec interrompus 5/0 points de suture en nylon. </li></ol></li></ol> 4. Site bénéficiaire Procédure chirurgicale <ol><li> Exposition des navires du site du bénéficiaire <ol><li> L&#39;utilisation d&#39;un marqueur chirurgical de la peau, tracer une ligne sur le bord interne du muscle sterno gauche (SCM). </li><li> L&#39;utilisation d&#39;un marqueur chirurgical de la peau, dessiner une autre ligne immédiatement crânien et parallèle à la clavicule gauche. Ces deux lignes doivent converger à l&#39;articulation sterno-claviculaire gauche. </li><li> Inciser la peau en utilisant une lame numéro 15 de scalpel. </li><li> Utilisez un cautère électrique pour couper à travers l&#39;subcutaneous tissus. </li><li> Utilisez une paire de ciseaux pour disséquer squelettage la veine jugulaire externe latérale du muscle SCM. </li><li> Isoler et ligaturer les affluents de la jugulaire externe dans ce (Figure 9). </li><li> Ligaturer la veine jugulaire externe juste en dessous de la mâchoire inférieure avec une suture en nylon 9/0. </li><li> Placez une seule pince veineuse sous la dernière ligature et couper la veine jugulaire externe en utilisant une paire de ciseaux de microchirurgie droites. </li><li> Laver la lumière de la veine avec une solution saline normale héparinisée à une concentration de 10 UI / ml. </li><li> Isoler la marge médiale du muscle SCM et se rétracter ce muscle latéralement, exposant ainsi l&#39;artère carotide et le nerf pneumogastrique (Figure 10). </li><li> Faire une incision transversale dans le tiers médian du muscle SCM utilisant le cautère électrique. </li><li> Placer un écarteur entre la face profonde du muscle SCM et les muscles de la sangle. </li><li> Tease loin le nerf vague de la carotideartère, en prenant soin de ne pas endommager ces structures. </li></ol></li><li> anastomoses vasculaires <ol><li> Placez une pince double artérielle dans l&#39;artère carotide. </li><li> Placez un point Nylon 9/0 dans la partie latérale de l&#39;artère carotide, et utiliser ce point pour tirer cette partie de la paroi du vaisseau. </li><li> Utilisez une paire de ciseaux de microchirurgie droites pour produire une ouverture dans cette région de la paroi du vaisseau. </li><li> Utilisation interrompue 10/0 sutures en nylon effectuer une anastomose termino-latérale entre l&#39;artère épigastrique superficielle du volet et l&#39;artère carotide au niveau de l&#39;ouverture de la carotide récemment créée. </li><li> Approchez le moignon proximal de la veine jugulaire externe et la veine épigastrique superficielle et inspecter le calibre de ces deux veines. <ol><li> Si la différence dans la taille est légère à modérée, dilater la lumière de la fin de la veine épigastrique superficielle en utilisant une pince de dilatation de coupe. </li><li> Si la différence de calibre est très prononcés, en plus des pinces de dilatation, biseau l&#39;extrémité de la veine épigastrique superficielle dans un angle de 30 à 45 °. </li><li> Effectuer l&#39;anastomose veineuse, en utilisant interrompu 11/0 sutures en nylon. </li></ol></li><li> Retirer les pinces individuelles placées sur les vaisseaux du rabat. </li><li> Retirer la double pince positionnée dans la veine fémorale. </li><li> Retirer la double pince placé dans l&#39;artère fémorale. </li></ol></li><li> Évaluer la perméabilité et la compétence des anastomoses <ol><li> Vérifier si l&#39;artère et la veine du volet sont complètement dilaté et aucun saignement significatif est observé après 3 min d&#39;enlever les pinces vasculaires (figure 11). <ol><li> En cas de saignement pendant cette période placer une gaze saline humide sur l&#39;anastomose et appliquer une légère pression. </li><li> En cas de saignement anastomoses ne se limite pas au bout de 3 min, ajouter d&#39;autres 11/0 Nylon interrompu sutures, après le placement de pince vasculaire, selon les besoins. </li></ol></li><li> Attendre 10 min avec le rabat relié aux vaisseaux du cou et enveloppé par une gaze imprégné d&#39;une solution saline chaude. </li><li> Évaluer la perfusion et blessure au cou de l&#39;hémostase de rabat. Inspecter les anastomoses pour des signes d&#39;hémorragie, thrombose ou traction excessive. </li><li> Fixer le volet dans le site receveur commençant par 5/0 intradermique sutures interrompues. </li><li> Fermer la peau avec 5/0 Nylon interrompu sutures (Figure 12). </li></ol></li></ol> Soins 5. post-opératoire <ol><li> Laissez le rat pour récupérer l&#39;intérieur de sa cage individuelle en position latérale droite de décubitus. Gardez la cage chaude en plaçant un coussin chauffant électrique fixé sur le bas dessous. Placez un chiffon de lumière entre la cage et le coussin chauffant électrique pour éviter l&#39;hyperthermie. </li><li> Regarder l&#39;animal en continu, il tourne vers le décubitus latéral opposé toutes les 5 min, jusqu&#39;à ce qu&#39;il reprend décubitus sternale et il est capable de déambuler. </li><li> Maison les rats individuellement jusqu&#39;à enlever til a des points de suture chirurgicaux deux semaines après l&#39;intervention chirurgicale. </li><li> Donnez un anti-inflammatoire 1 mg / kg par voie sous cutanée une fois par jour pour les 3 jours suivant la chirurgie, pour l&#39;analgésie postopératoire. </li></ol> 6. Évaluation Flap <ol><li> Présenter une friandise sur la tête du rat et d&#39;évaluer la viabilité de volet par inspection visuelle. </li><li> Si l&#39;exposition est insuffisante à l&#39;aide de l&#39;étape précédente, un assistant appliquant toucher doux sur la région interscapulaire du rat, tout en examinant le volet. </li><li> Utilisez la photographie numérique et le logiciel ImageJ pour évaluer quantitativement les domaines de la déhiscence de la plaie, lambeau épidermolyse, hyperémie, congestion et / ou une nécrose, comme expliqué en détail par Trujillo et al. 15. </li></ol>

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

L’aspect le plus important pour obtenir une survie constante du lambeau est de prêter attention aux détails dans les différentes étapes de la technique microchirurgicale. Par exemple, pour obtenir une bonne visualisation des vaisseaux, des instruments chirurgicaux et des fines lignes de suture, il est très utile de placer sous les vaisseaux, un fond plastique coloré stérilisé. Comme de nombreux chercheurs, nous préférons utiliser des fragments stérilisés de ballons jaunes ou verts (Figures 7 et 11). Ce contexte offre l’avantage supplémentaire de minimiser l’adhérence des lignes de suture aux structures adjacentes, ce qui conduit parfois à la nécessité de tirer la ligne de suture avec trop de tension, ce qui peut à son tour entraîner une déchirure vasculaire. Enfin, l’utilisation d’un arrière-plan présente l’avantage supplémentaire de réduire la probabilité de traîner par inadvertance des débris tissulaires thrombogènes potentiels vers le site d’anastomose.
Étant donné que les vaisseaux du lambeau sont très fins et fragiles, il est important de ne pas pincer toute la largeur des vaisseaux, afin d’éviter une lésion intimale qui, à son tour, entraînera une thrombose intravasculaire et une défaillance du lambeau. Pour éviter de blesser par inadvertance les vaisseaux du volet et les vaisseaux du site récepteur, il est plus sûr de ligaturer et de diviser généreusement les affluents voisins, ce qui permettra une manipulation plus facile de ces vaisseaux.
Avant de commencer les anastomoses, il est essentiel de placer les vaisseaux dans leur position définitive, en s’efforçant d’éviter le pliage vasculaire ou la torsion du pédicule du lambeau. Compte tenu du petit calibre et de la consistance délicate des vaisseaux, il est souvent difficile de les exclure sans équivoque. Une astuce utile consiste à fixer le rabat dans sa position finale avec 3 points de suture placés loin du site des anastomoses. Ensuite, en cas de doute, ouvrez temporairement les pinces vasculaires placées au pédicule du lambeau et remplissez la lumière des vaisseaux avec une solution saline normale héparinée à une concentration de 10 UI/mL jusqu’à ce qu’ils soient engorgés. Cela conduit les vaisseaux à prendre la configuration qu’ils présenteront après avoir été perfusés par le sang, comme lorsque les pinces sont retirées après la fin de l’anastomose.
De plus, il est d’une importance primordiale de détecter toute bulle d’air, même petite, à l’intérieur des vaisseaux pendant toute la procédure et en particulier avant de faire les derniers points de suture. Si ces bulles sont éloignées de la section vasculaire, les vaisseaux peuvent être traites doucement à l’aide d’une pince microchirurgicale. Si elles sont situées à proximité des sites anastomotiques, une simple irrigation permet d’expulser facilement les bulles les moins denses de la lumière vasculaire. Le fait de ne pas reconnaître la présence de bulles d’air peut provoquer une ischémie et une nécrose irréversibles du lambeau, sans doute en raison du calibre fin des vaisseaux du lambeau. 
De plus, on ne saurait trop insister sur la nécessité d’un soin méticuleux lors du passage et du nouage des mailles, afin de : inclure les trois couches des récipients (intima, media et adventitia) ; obtenir une bonne éversion des vaisseaux pour assurer un contact intial adéquat, ce qui est essentiel à l’étanchéité de l’anastomose et à la repousse endothéliale ; éviter tout contact vasculaire lâche, qui entraînera une incompétence anastomotique, c’est-à-dire des saignements ; Et évitez de saisir trop de tissu vasculaire, ce qui entraînerait une anastomose, une sténose et une propension à la thrombose, ce qui entraînera à son tour une congestion veineuse ou une mauvaise perfusion du lambeau, si la veine ou l’artère sont impliquées, respectivement.
Enfin, il est essentiel d’assurer une hémostase parfaite, pendant toute la procédure, notamment lors de la remontée du lambeau dans sa surface profonde. Sinon, la formation d’un hématome et la mort du rat sont susceptibles de s’ensuivre.
Modifications et dépannage de la technique
Les auteurs ont observé que faire une incision transversale dans la partie médiane de la SCM à l’aide d’un cautère électrique permet non seulement une meilleure exposition de l’artère carotide, mais minimise également le risque de tension excessive lors de la future anastomose artérielle.
Un autre conseil technique important consiste à commencer l’anastomose à partir de la paroi arrière des vaisseaux, afin de minimiser le risque d’attraper involontairement cette paroi lors de la mise en place des points de suture dans la paroi avant plus facilement exposée. Si la paroi arrière est suturée à la face antérieure de l’anastomose, un manque de perméabilité vasculaire se produira presque invariablement, soit immédiatement pour des raisons mécaniques, soit après seulement quelques heures à la suite d’une thrombose8. 
Si les anastomoses des vaisseaux épigastriques du rat sont considérées comme trop difficiles techniquement en raison du petit calibre de ces vaisseaux, les vaisseaux fémoraux peuvent être ligaturés distalement à l’origine des vaisseaux épigastriques et utilisés comme pédicule vasculaire du lambeau épigastrique. De cette façon, des vaisseaux plus gros seront utilisés (l’artère fémorale a un calibre de 1,0 à 1,2 mm et la veine fémorale a un calibre de 1,2 à 1,5 mm). De plus, en disséquant et en ligaturant les autres affluents des vaisseaux fémoraux, on peut obtenir une longueur de pédicule vasculaire de plus de 2 cm, ce qui facilitera l’incrustation du lambeau18,34,35. 
Reproductibilité
Notre expérience de plus de dix ans d’utilisation de ce lambeau à des fins d’enseignement et de recherche suggère fortement que le lambeau épigastrique de rat est un modèle reproductible de transfert de tissu libre11,13,17,18,26. Il peut être facilement incorporé dans les cours de microchirurgie, car il s’agit d’un bon modèle d’enseignement et de formation pour les stagiaires en microchirurgie11,13,17,18,26. D’après notre expérience, bien que techniquement difficile au début pour le novice en microchirurgie, après une certaine formation, le lambeau épigastrique libre peut être transféré avec succès au cou du rat avec une nécrose ultérieure minime ou nulle dans 70 à 80 % des cas. Ces résultats concordent avec ceux généralement rapportés dans la littérature13,18,36. 
Importance par rapport aux méthodes existantes
De nombreux battements libres ont été décrits chez le rat10, 16, 18, 37-39. Les plus couramment utilisés à des fins d’enseignement et de recherche ont été le lambeau myocutané transverse droit de l’abdomen , le lambeau musculaire du grand dorsal et du dentelé antérieur , le modèle de réimplantation des membres postérieurs et le lambeau épigastrique (aine)18,35. Ces lambeaux ont été favorisés, en raison de leur anatomie cohérente et de leur pédicule vasculaire important. Le lambeau épigastrique est sans doute celui associé à une morbidité moindre du site donneur, car il est disséqué au-dessus du fascia musculaire18. De plus, le lambeau épigastrique, décrit en 1967, a été le premier lambeau à être décrit chez le rat34,35. Cela s’est produit seulement 4 ans après la première description d’un lambeau expérimental chez un animal par Goldwyn. Il est intéressant de noter que ce lambeau était un lambeau de l’aine chez le chien34. 
Limites de la technique
Les deux principales limites de ce modèle sont la nécessité de compétences microchirurgicales afin de réaliser la chirurgie, et la présence d’une nécrose importante dans 20 à 25 % des cas, selon différents auteurs13,18,36. Une autre limitation potentielle du modèle présenté ici est le cannibalisme automatique du volet. Cependant, comme les auteurs ci-dessus, il s’agit d’une constatation peu fréquente qui ne se produit presque que dans les cas de nécrose totale du lambeau.
Applications futures de la technique
Le lambeau épigastrique libre de rat peut être utilisé dans des études expérimentales de perfusion tissulaire, de réparation tissulaire et d’infection des plaies chirurgicales40,41. Ses vaisseaux nutritifs sont particulièrement adaptés à l’injection intravasculaire de solutions contenant des substances d’intérêt, à savoir des médicaments, des vecteurs viraux ou des liposomes, qui produiront principalement un effet local ou régional30,31. De plus, sous le lambeau, des agents pathogènes, des corps étrangers, des grains radioactifs ou des produits chimiques peuvent également être placés, imitant plusieurs processus pathologiques et traitements potentiels30,31.

Transfert de tissu libre a été de plus en plus utilisé dans la pratique clinique pour la reconstruction de tissus manquants depuis les années 1970 1-5. Cela a permis la reconstruction de défauts complexes et autrement incurables résultant de extirpation de la tumeur, les traumatismes, les infections, malformations ou des brûlures 1-7. Lambeaux libres de ce type sont particulièrement utiles pour la reconstruction des régions anatomiques très complexes, comme ceux de la tête et du cou, la main, le pied, et le périnée 1,4. Cependant, aujourd&#39;hui encore les stagiaires chirurgicales sont souvent découragés par la complexité de plusieurs étapes de soulever, transférer et encartage un lambeau libre avec l&#39;utilisation de techniques et d&#39; instruments de microchirurgie 8,9. En outre, il est largement admis que , pour devenir un microsurgeon compétent, une vaste pratique expérimentale dans un modèle animal est obligatoire 4,8-13. la recherche ailleurs, fondamentale et translationnelledans le domaine du transfert de tissu libre est d&#39; une grande 8,14-16 potentiel clinique. Nonobstant, les chercheurs sont souvent dissuadés d&#39;utiliser des modèles de microchirurgie de transfert de tissu en raison du manque d&#39;informations concernant les aspects techniques impliqués dans les procédures opératoires 4,8-14. Le rat est un bon modèle animal pour la recherche et la formation de microchirurgie, car il est relativement peu coûteux, facile à maintenir, et se prêtent à la manipulation fréquente 8,11,13,14,17,18. Bien que plusieurs os libre, les muscles et la peau volets ont été décrits chez le rat 18-24, le lambeau fascio épigastrique libre est le plus largement utilisé à des fins d&#39;enseignement 9,12,13,18,25. Ce lambeau libre a été décrite en 1967 par Strauch et Murray et a acquis une popularité croissante depuis, en raison de plusieurs facteurs, l&#39;anatomie à savoir constante vasculaire, la facilité relative de dissection, vaisseaux nourriciers importants, et la redondance de la peau dans la zone donneuse, which permet la fermeture primaire du défaut résultant de l&#39;élévation de lambeau 4,9-11,13,17,18,25-28. Flap anatomie et histologie Le volet épigastrique est fourni par l&#39;artère épigastrique superficielle et la veine (Figure 1). Ces navires proviennent et se déversent dans l&#39;artère et la veine fémorales, respectivement. En moyenne , le calibre de la veine épigastrique superficielle est de 0,6 à 0,8 mm, ce qui contraste avec les 0,3 à 0,5 mm de l&#39;artère épigastrique superficielle (figure 2) 17,18. L&#39;artère épigastrique superficielle dégage deux branches principales: une latérale et une branche médiane qui, à son tour diviser plusieurs fois, en provenance des réseaux capillaires qui alimentent la plupart des téguments de la région épigastrique. Ces capillaires se déversent dans les affluents des veines épigastriques superficielles qui ont un cours parallèle à l&#39;arbre artériel (Figure 2) 13,17,18. Le diagramme de la figure 3 représente la région de la paroi abdominale ventrolatérale fournie par les vaisseaux épigastriques superficiels qui peuvent être mobilisées dans le rabat épigastrique. Ce volet peut être jusqu&#39;à 5 cm de long et 3 cm de largeur 13,17,18. Sur le plan histologique, le clapet se compose de tégument qui recouvre les muscles abdominaux ventrolatérales de paroi (figure 4) 13,17,18. Il contient une couche superficielle de la peau, formée par le derme et l&#39;épiderme. Sous la peau il y a une couche de tissu adipeux nommé pannicule adiposus. En dessous de cette couche il y a une autre couche de muscle strié connu sous le nom pannicule carnosus 18,28,29. Ci - dessous l&#39;carnosus pannicule il est tissu cellulaire lâche qui est superficielle au fascia profond qui couvre les muscles abdominaux plus importants. Par conséquent, le volet est un bloc composite de tissus, contenant toutes les couches, à l&#39; exception de l&#39;aponévrose du muscle profond (figure 5) 13,17,18,27-31.

<table><tbody><tr><td>Skin Skribe Marqueur cutané chirurgical</td><td>Moore Medical</td><td>31456</td><td>https://www.mooremedical.com/index.cfm?/Skin-Skribe-Surgical-Skin-Marker/ & PG=CTL&CS= HOM& FN=DétaillProduit& PID=1740& spx=1</td></tr><tr><td>Micro-écarteur</td><td>Fine Science Tools</td><td>RS-6540</td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Pince Graeffe 0,8 mm pointes incurvées</td><td>Fine Science Tools</td><td>11052-10</td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Acland clamps</td><td>Fine Science Tools</td><td>00398 V</td><td>http://www.merciansurgical.com/aclandclamps.pdf</td></tr><tr><td>Applicateur de pince</td><td>Fine Science Tools</td><td>CAF-4</td><td>http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</td></tr><tr><td>Outils de Cautérisation Haute Température</td><td>pour les Sciences Fines</td><td>AA03</td><td>http://www.boviemedical.com/products_aaroncauteries_high.asp</td></tr><tr><td>Dilatateurs pour micro-récipients 11 cm Pointes de 0,3 mm 00124</td><td>Outils pour les sciences fines</td><td>D-5a.2</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Bijoutiers Pince 11cm angulée 00109</td><td>Outils pour les sciences fines</td><td>JFA-5b</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Bijouterie Pince 11 cm droite 00108</td><td>Fine Science Tools</td><td>JF-5</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Acland Single Clamps B-1V (Paire)</td><td>Fine Science Tools</td><td>396</td><td>&nbsp ; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Ciseaux Manches Ronds 15 cm Droit</td><td>Outils Scientifiques</td><td>Fins 67</td><td>&nbsp ; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Ciseaux à iris 11,5 cm Courbes EASY-CUT</td><td>Outils scientifiques fins</td><td>EA7613-11</td><td>&nbsp ; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Ciseaux Mayo 14 cm Lames droites chanfreinées EASY-CUT</td><td>Fine Science Tools</td><td>EA7652-14</td><td>&nbsp ; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Derf Porte-Aiguilles 12 cm TC</td><td>Fine Science Tools</td><td>703DE12</td><td>&nbsp ; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Monosyn 5-0</td><td>B.Braun</td><td>15423BR</td><td>http://www.mcfarlanemedical.com.au/ 15423BR/ SUTURE-MONOSYN-5_or_0-16MM-70CM-(C0023423)-BOX_or_36/.php</td></tr><tr><td>Ethilon 5-0</td><td>Ethicon</td><td>W1618</td><td>http://www.farlamedical.co.uk/category_Ethilon-Suture-1917/Ethilon-Sutures/</td></tr> <tr><td>Dafilon 10-0</td><td>B.Braun</td><td>G1118099</td><td>http://www.bbraun.com/cps/rde/xchg/bbraun-com/hs.xsl/products.html?prid=PRID00000816</td></tr><tr><td>Veet Peau Sensible Crème Dépilatoire Aloe Vera et Vitamine E 100 ml</td><td>Veet</td><td></td><td>http://www.veet.co.uk/products/creams/creams/veet-hair-removal-cream-sensitive-skin/</td></tr> <tr><td>Instrapac - Adson Pince à dents (Extra Fine)</td><td>Fine Science Tools</td><td>7973</td><td>http://www.millermedicalsupplies.com</td></tr><tr><td>Aiguille Castroviejo supports</td><td>Fine Science Tools</td><td>12565-14</td><td>http://s-and-t.ne</td></tr><tr><td>Pince à moustiques droite</td><td>Fine Science Tools</td><td>91308-12</td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Cutasept F désinfectant pour la peau</td><td>Bode Chemie</td><td></td><td>http://www.productcatalogue.bode-chemie.com/products/skin/cutasept_f.php</td></tr><tr><td>Lacri-lube Eye Ointment 5g</td><td>Express Chemist</td><td>LAC101F</td><td>http://www.expresschemist.co.uk/lacri-lube-eye-ointment-5g.html</td></tr><tr><td>Saline normale pour l’irrigation</td><td>Hospira, Inc.</td><td>0409-6138-22</td><td>http://www.hospira.com/en/search?q=sodium+chloride+irrigation%2C+usp&fq=contentType%3AProducts</td></tr><tr><td>Solution d’héparine sodique (5 000 UI/ml)</td><td>B.Braun</td><td></td><td>http://www.bbraunusa.com/products.html?prid=PRID00006982</td></tr><tr><td>Meloxicam Metacam</td><td>Boehringer Ingelheim</td><td></td><td></td></tr><tr><td>http://www.bi-vetmedica.com/species/pet/products.html Lampe chauffante HL-1</td><td>Harvard Appareillage</td><td>727562</td><td>https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/ haisku3_10001_11051_39108_-1_ HAI_ProductDetail_N_ 37610_37611_37613</td></tr><tr><td>Système de couverture homéothermique avec sonde flexible</td><td>Appareil Harvard</td><td>507220F</td><td>https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/ haisku3_10001_11051_39108_-1_ HAI_ProductDetail_N_ 37610_ 37611_37613</td></tr><tr><td>Stérilisateur à chaleur sèche</td><td>Quirumed</td><td>2432</td><td>http://www.quirumed.com/pt/material-de-esterilizac-o/esterilizadores</td></tr><tr><td>Champs chirurgicaux</td><td>Barrier</td><td>800430</td><td></td></tr> <tr><td>Gants chirurgicaux http://www.molnlycke.com/surgical-drapes/ Biogel</td><td>Medex Supply</td><td>30465</td><td>https://www.medexsupply.com</td></tr><tr><td>Microscope opératoire</td><td>Leica Surgical Microsystems</td><td>10445319</td><td>http://www.leica-microsystems.com/products/surgical-microscopes/</td></tr></tbody></table>

un modèle de transfert de tissu libre: le rat épigastrique flap gratuit

A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap

Le transfert de tissus libres est de plus en plus utilisé dans la pratique clinique depuis les années 1970, permettant la reconstruction d’anomalies complexes et autrement incurables résultant de l’extirpation d’une tumeur, d’un traumatisme, d’infections, de malformations ou de brûlures. Les lambeaux libres sont particulièrement utiles pour reconstruire des régions anatomiques très complexes, comme celles de la tête et du cou, de la main, du pied et du périnée. De plus, la recherche fondamentale et translationnelle dans le domaine du transfert libre de tissus présente un grand potentiel clinique. Néanmoins, les stagiaires et les chercheurs en chirurgie sont souvent dissuadés d’utiliser des modèles microchirurgicaux de transfert de tissus, en raison du manque d’informations sur les aspects techniques impliqués dans les procédures opératoires. L’objectif de cet article est de présenter les étapes nécessaires au transfert d’un lambeau libre épigastrique fasciocutané vers le cou chez le rat.
Ce lambeau est basé sur l’artère et la veine épigastriques superficielles, qui proviennent de l’artère et de la veine fémorales et s’écoulent dans celles-ci, respectivement. En moyenne, le calibre de la veine épigastrique superficielle est de 0,6 à 0,8 mm, contrastant avec les 0,3 à 0,5 mm de l’artère épigastrique superficielle. Histologiquement, le lambeau est un bloc composite de tissus, contenant de la peau (épiderme et derme), une couche de tissu adipeux (panniculus adiposus), une couche de muscle strié (panniculus carnosus) et une couche de tissu aréolaire lâche.
 Succinctement, le lambeau épigastrique est soulevé sur ses vaisseaux pédiculaires qui sont ensuite anastomosés à la veine jugulaire externe et à l’artère carotide sur la surface ventrale du cou du rat. D’après notre expérience, ce modèle garantit la survie complète d’environ 70 à 80 % des lambeaux épigastriques transférés dans la région du cou. Le volet peut être évalué à tout moment par une inspection visuelle. Par conséquent, les auteurs pensent qu’il s’agit d’un bon modèle expérimental pour la recherche et la formation en microchirurgie.

Selon l&#39;expérience des auteurs de plus de dix ans en utilisant le lambeau libre épigastrique comme un modèle de transfert de tissu libre aussi bien dans le cadre des cours de microchirurgie et à des fins de recherche, le taux de survie lambeau dépend quelque peu de la dextérité et l&#39;expérience du chirurgien . D&#39;une manière générale, si les aspects techniques décrits ci-dessus sont pris en compte, un taux de survie presque complète (&lt;10% de nécrose du lambeau) d&#39;environ 70% des volets est à prévoir. Environ 10% des rabats présentent une nécrose partielle (10 à 50%). Environ 20% des volets souffrent nécrose complète. Un taux de survie presque complète de 80% a été obtenu au cours des 20 dernières procédures effectuées par le premier auteur (DC) (Figure 13). Pendant les deux premiers jours postopératoires, le lambeau épigastrique libre est souvent oedémateux et présente un certain degré de congestion veineuse. Elles sont généralement both disparaissent progressivement entre 3 et 5 jours après la chirurgie. En règle générale, au cours de la première semaine, le rat supprime la plupart des points externes et une partie des sutures intradermique, entraînant souvent des zones éparses de faible déhiscence de la plaie (figure 14). 10 jours après, les cheveux commencent lentement à se développer sur la surface du volet. A la fin du premier mois après la chirurgie, le volet est habituellement recouverte de poils légèrement plus courte que la peau adjacente. Deux mois après l&#39; opération, la présence du volet est annoncée par une légère bosse, et par une cicatrice relativement discrète autour des marges du rabat (figure 14). cannibalisme automatique du volet est une découverte rare que, dans l&#39;expérience des auteurs, se produit presque exclusivement dans les cas de nécrose lambeau totale. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig1.jpg" /> Figure 1: Anatomie vasculaire de l&#39;fla libre épigastriquep. Cette photographie montre la épigastre gauche d&#39;un rat préalablement injecté avec une solution de latex rouge dans le système artériel et avec une solution de latex bleu dans le système veineux. Il est possible d&#39;observer que la région épigastrique reçoit un approvisionnement en sang axial de l&#39;artère épigastrique superficielle et la veine. Ces navires proviennent et se déversent dans l&#39;artère et la veine fémorales, respectivement. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig1large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig2.jpg" /> Figure 2: Numérisation image de microscopie électronique d&#39;une fonte à la corrosion des vaisseaux épigastriques superficiels montrant l&#39;approvisionnement en sang vasculaire microscopique au lambeau libre épigastrique. Cette image de microscopie électronique à balayage d&#39;une fonte à la corrosion du SuperFivaisseaux épigastriques cielles du rat montre que la veine a un plus gros calibre que l&#39;artère. En moyenne, le calibre de la veine épigastrique superficielle est de 0,6 à 0,8 mm, par rapport aux 0,3 à 0,5 mm de l&#39;artère épigastrique superficielle. Cette image montre également que l&#39;artère épigastrique superficielle provient de deux branches principales: une latérale et une branche médiane qui, à son tour diviser plusieurs fois, en provenance des réseaux capillaires qui fournissent la majeure partie de la région épigastrique. Ces capillaires se déversent dans les affluents de la veine épigastrique superficielle qui ont un cours parallèle à l&#39;arbre artériel. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig2large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig3.jpg" /> Figure 3: zone potentielle d&#39;un lambeau libre épigastrique gauche chez le rat. Ce repré diagrammeSENTS la région de la paroi abdominale fournie par les vaisseaux épigastriques superficielles et qui peuvent être mobilisés dans le rabat épigastrique. Ce volet peut être jusqu&#39;à 5 cm de long et 3 cm de largeur. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig3large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig4.jpg" /> Figure 4: Photographie d&#39;une section tachée hématoxyline-éosine du volet épigastrique. Cette section tachée hématoxyline-éosine de la région épigastrique montre que le volet est composé épigastrique du tégument de cette région qui recouvre les muscles de la paroi abdominale. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig4large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> Figure 5: composition histologique du volet épigastrique. La photo sur le côté gauche représente une section tachée hématoxyline-éosine d&#39;un volet épigastrique, alors que la photo sur le côté droit a été obtenu à partir de la section de trichrome de Masson a de ce volet. Ces deux images montrent que le volet épigastrique du rat est un bloc composite de tissus. Il contient une couche superficielle de la peau, formée par le derme et l&#39;épiderme. Sous la peau il y a une couche de tissu adipeux nommé pannicule adiposus. En dessous de cette couche il y a couche de muscle strié connu sous le nom pannicule carnosus. Ci - dessous l&#39;carnosus pannicule il y a un fascia profond qui couvre les muscles abdominaux plus larges et plus profondes. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig5large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure</a>. <img alt="Figure 6" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig6.jpg" /> Figure 6. Les marquages pré-opératoires de la peau sur la surface ventrale du rat , avant l&#39;intervention chirurgicale. Cette photographie montre les marquages ​​de la peau pour les incisions utilisées pour soulever le volet épigastrique gauche et ensuite pour insérer ce volet dans la face ventrale de la région cervicale gauche. <img alt="Figure 7" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig7.jpg" /> Figure 7. Anatomie chirurgicale des éléments nutritifs des vaisseaux du lambeau épigastrique sous le microscope opératoire (10X grossissement). Cette photographie montre l&#39;artère épigastrique superficielle et la veine provenant et de drainage dans l&#39;artère et la veine fémorales, respectivement. Le latéral fémorale artère circonflexe découle habituellement de la partie caudale de l&#39;epi superficielleartère gastrique. Le latéral fémoral circonflexe veine a un parcours similaire et se termine dans la veine épigastrique superficielle habituellement. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig7large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 8" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig8.jpg" /> Figure 8. Le lambeau épigastrique ex vivo pédiculé sur ses vaisseaux nourriciers (l&#39;artère épigastrique superficielle et la veine - A, V, respectivement). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig8large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 9" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig9.jpg" /> Figure 9. Vue de l&#39;exploitationdissection de la veine du destinataire, à savoir la veine jugulaire externe, sur le côté gauche du cou (6x). Il est possible d&#39;observer le courant sous-cutanée de la partie latérale de la veine jugulaire externe au muscle sterno. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig9large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 10" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig10.jpg" /> Figure 10. Vue de la dissection de l&#39;artère des donateurs, à savoir, la carotide commune d&#39; exploitation, sur le côté gauche du cou (grossissement 10x). L&#39;artère et le nerf pneumogastrique d&#39;accompagnement sont exposés après la rétraction de la sternocléidomastoïdien et les muscles hyoïdiens, comme le montre. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig10large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de t</a>sa figure. <img alt="Figure 11" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig11.jpg" /> Figure 11. Photographie des anastomoses vasculaires entre les vaisseaux du rabat et les vaisseaux receveurs dans le cou, comme on le voit sous le microscope opératoire (10x de grossissement). Cette photographie montre l&#39;anastomose termino-latérale entre la carotide commune et les artères épigastriques superficielles. Il est également possible d&#39;observer l&#39;anastomose termino-terminale entre la épigastrique superficielle et les veines jugulaires externes. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig11large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 12" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig12.jpg" /> Figure 12. Photographie de face ventrale de l&#39;immé de rat<html> diatement après la chirurgie. Notez que la zone donneuse est facilement fermé principalement. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig12large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 13" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig13.jpg" /> Figure 13. épigastrique lambeau libre survie dans 20 rats consécutifs opérés par le premier auteur (DC). Cinq rats (20%) présentaient une nécrose complète rabat (cas 1, 4, 8, 13 et 15, représentés par des points rouges). Les zones de nécrose volet ont été déterminées à l&#39;aide du ImageJ du logiciel libre, comme expliqué en détail par Trujillo et al. 15. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig13large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> 14 &quot;src =&quot; / files / ftp_upload / 55281 / 55281fig14.jpg &quot;/&gt; Figure 14. Photographies du volet épigastrique placé sur la face ventrale du cou 4, 14 et 60 jours après l&#39; opération. Quatre jours après la chirurgie, il y a généralement une certaine déhiscence de la plaie, comme le rat supprime les points de suture. Toutefois, le volet reste généralement en place. Il est possible d&#39;examiner le volet quotidiennement par simple inspection visuelle. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig14large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a>

Cet article décrit les étapes nécessaires pour lever un lambeau libre épigastrique fasciocutané et le transférer vers le cou chez le rat.

Un modèle de transfert de tissu libre: Le Rat épigastrique Flap gratuit

Free tissue transfer has been increasingly used in clinical practice since the 1970s, allowing reconstruction of complex and otherwise untreatable defects ...

L'objectif de cet article est de présenter les étapes nécessaires pour réaliser un lambeau libre épigastrique chez le rat. Le transfert de tissu libre est de plus en plus utilisé en pratique chirurgicale pour reconstruire des tissus manquants depuis les années 1970. Cependant, même aujourd'hui, les chirurgiens en formation sont souvent impressionnés par la complexité des nombreuses étapes impliquées dans la préparation, le transfert et la mise en place d'un lambeau libre.En effet, pour devenir un chirurgien microchirurgien compétent, une pratique expérimentale approfondie sur un modèle animal est considérée comme obligatoire. Le rat est le modèle le plus couramment utilisé pour la recherche et la formation en microchirurgie, car il est relativement peu coûteux, facile à maintenir et présente une mandibule fréquemment manipulée. Cette photographie montre la région épigastrique gauche d'un rat, préalablement injectée avec une solution de latex rouge dans le système artériel et avec une solution de latex bleu dans le système veineux.On peut observer que la région épigastrique reçoit un apport sanguin axial provenant de l'artère et de la veine épigastriques superficielles. Ces vaisseaux prennent leur origine dans l'artère fémorale et se jettent dans la veine fémorale, respectivement. Cette région cutanée correspond à une partie de la paroi abdominale, vascularisée par les vaisseaux épigastriques superficiels, qui peut être mobilisée dans un lambeau épigastrique.Cet épi peut mesurer jusqu'à cinq centimètres de longueur et trois centimètres de largeur. Cette coupe colorée à l'hématoxyline-éosine de la région épigastrique montre que l'épi épigastrique est constitué de l'intégument de cette région, qui recouvre les muscles de la paroi abdominale. Ainsi, cet épi constitue un ensemble tissulaire composé.Il contient une couche superficielle de peau formée par le derme et l'épiderme ; sous la peau, se trouve une couche de tissu adipeux appelée pannicule adipeux. En dessous de cette couche, il existe une couche de muscle strié, appelée pannicule charnu ; sous le pannicule charnu, se trouve une fascia profond qui recouvre les grands muscles abdominaux. En ce qui concerne la préparation préopératoire, le rat est anesthésié à l’aide d’un mélange de kétamine et de diazépam, la dose utilisée étant de cinq milligrammes par kilogramme de kétamine et de zéro virgule vingt-cinq milligrammes par kilogramme de diazépam.Les poils recouvrant la surface ventrale de l'abdomen sont retirés à l'aide d'une crème dépilatoire. La peau est désinfectée avec une solution alcoolique. Le lambeau est dessiné à la surface de l'abdomen à l'aide d'un marqueur chirurgical pour peau, de même que les incisions au niveau du cou.Tout d'abord, les marges du lambeau sont soulevées. Le lambeau est relevé de la partie médiale vers la partie latérale à l’aide d’une électrocoagulation. Le vaisseau perforant destiné à la surface profonde du lambeau est ligaturé.Ensuite, le pédicule du lambeau est soigneusement disséqué. Un rétracteur est placé à l'aspect caudal de la plaie, afin de faciliter la dissection vasculaire. Le pédicule vasculaire est soigneusement disséqué en écartant les tissus lâches et en décomposition.On peut observer l'artère fémorale, la veine fémorale, l'artère et la veine épigastriques superficielles, et enfin, l'artère et la veine circonflexes latérales. L'origine de ces derniers vaisseaux est variable. Toutefois, dans la plupart des cas, ils prennent naissance à partir des vaisseaux épigastriques superficiels.Les vaisseaux fémoraux sont ensuite clampés temporairement. Une dernière résection du tissu nécrosé et la préparation du site de pose des anastomoses sont réalisées. Puis, l'artère et la veine épigastriques superficielles sont sectionnées.Ensuite, on effectue les incisions au niveau du cou. On expose d'abord la veine jugulaire externe et on la dissèque. Plusieurs de ses branches collatérales sont ligaturées, ce qui permet une mobilité ultérieure de la veine afin de réaliser les anastomoses.Ensuite, dans un plan plus profond, la surface latérale du muscle sterno-cléido-mastoïdien est exposée. Suit la surface profonde de ce muscle, mettant ainsi à nu l'artère carotide et le nerf vague.L'artère carotide est disséquée par arrachement du nerf vague. Cette image montre l'artère carotide et le nerf vague. Ensuite, l'artère carotide est séparée du nerf vague et un morceau de ballonnet stérile est placé sous l'artère carotide.Nous avons remarqué que pratiquer une incision dans la partie médiane du muscle sterno-cléido-mastoïdien facilite non seulement l'exposition, mais évite également une tension excessive sur l'artère et les anastomoses, ce qui pourrait entraîner une perte du lambeau. Le lambeau est ensuite amené jusqu'à l'incision cervicale. Nous réalisons une incision latérale sur la paroi latérale de l'artère carotide après avoir placé un point de suture en nylon 9/0.Après avoir sectionné les vaisseaux et avant de réaliser les anastomoses, la lumière du vaisseau est lavée avec une solution contenant de l'héparine. Une suture en nylon 9/0 ou 10/0 est utilisée pour effectuer les anastomoses selon une technique de points séparés. L'anastomose veineuse est réalisée de la même manière.Parfois, il est nécessaire de dilater la veine épigastrique superficielle afin de rendre son calibre similaire à celui de la veine jugulaire externe, plus volumineuse. Après la réalisation des anastomoses, les pinces sont retirées, en commençant par les pinces veineuses puis celles des vaisseaux du lambeau. L'artère épigastrique superficielle peut être déplacée afin de soulager un éventuel spasme vasculaire.Il est possible d'observer l'aspect typique d'anastomoses artérielles perméables et fonctionnelles ainsi que d'un système veineux correctement alimenté. Cette image montre l'architecture vasculaire finale après mise en place du lambeau. L'artère épigastrique superficielle est raccordée de façon termino-latérale à l'artère carotide.Enfin, la veine épigastrique superficielle est anastomosée de façon termino-terminale à la veine jugulaire externe. Le lambeau est ensuite suturé au niveau de la peau adjacente à l’aide de points séparés en nylon 5/0. La zone donneuse est fermée de manière similaire, en utilisant la peau abdominale lâche pour fermer le défaut abdominal.Typiquement, cinq jours après l'intervention chirurgicale, le rat a déjà retiré tous les points de suture, comme illustré chez cet animal anesthésié. Habituellement, à ce stade, il est possible d'observer que tout le lambeau est viable. Quatorze jours après l'intervention, les poils ont déjà commencé à repousser à la surface du lambeau, comme on peut le voir ici.Deux mois après l'opération, seule la cicatrice au niveau du cou montre les limites initiales du lambeau. Le lambeau peut être évalué à tout moment par simple inspection visuelle. Pour faciliter l'exposition de l'aspect éventuel du cou et du lambeau, une friandise peut être présentée au-dessus de la tête du rat.Alternativement, une légère pression peut être appliquée dans la région interscapulaire. Pendant qu'un assistant, placé devant le rat, observe et photographie le lambeau. Un taux de survie quasi complet de 80 pour cent a été obtenu lors des 20 dernières procédures réalisées par le premier auteur, comme on peut le voir sur ce graphique.Le taux de survie du lambeau dépend, dans une certaine mesure, de l'expérience du chirurgien. D'une manière générale, si les aspects techniques décrits ci-dessus sont pris en compte, un taux de survie quasi complet d'environ 70 pour cent des lambeaux peut être attendu. Environ 10 pour cent des lambeaux présentent une nécrose partielle.Et environ 20 pour cent des lambeaux subissent une nécrose complète. Notre expérience, accumulée sur plus de 10 ans d'utilisation de ce lambeau à des fins d'enseignement et de recherche, suggère que le lambeau épigastrique du rat constitue un modèle respectable de transfert de tissu libre. En outre, il représente également un bon modèle pédagogique et d'entraînement pour les chirurgiens en formation en microchirurgie.De plus, ce modèle peut être utilisé dans des études sur la perfusion tissulaire, la réparation tissulaire et l'infection chirurgicale.

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