Name: Élevage Ixodes scapularis, La tique à pattes noires: alimentation sur des souris étapes Immature (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min
Description: Apprenez un protocole d'alimentation des tiques immatures pour améliorer leur survie et réduire le stress des rongeurs hôtes. Cette méthode simplifie l'élevage des colonies de tiques et facilite la collecte efficace des tiques gorgées de sang.

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Les auteurs remercient le personnel de Laboratory Animal Medicine, University of Nevada, Reno, pour leur aide. MM a reçu un financement de Nevada INBRE.

Le protocole (numéro-00682) décrit ci-dessous est approuvé par le Comité de protection des animaux institutionnel et utilisation (IACUC) à l&#39;Université du Nevada Reno et suit les directives de l&#39;Université du Nevada, le comité d&#39;éthique de la recherche animale de Reno. En bref, des souris ont été anesthésiées avec de l&#39;isoflurane et un cône de nez a été utilisé pour maintenir les niveaux continus isoflurane pendant 20 min. Une pommade vétérinaire a été utilisé pour éviter le dessèchement des yeux sous anesthésie. pincement de l&#39;orteil a été utilisé pour déterminer le niveau d&#39;anesthésie et le rythme respiratoire a été mesurée tout au long de la procédure. Les souris ont été gardés dans des cages individuelles et surveillés jusqu&#39;à ce que a été repris conscience. Les souris ont été utilisées qu&#39;une seule fois pour l&#39;alimentation et les tiques ont été euthanasiés après récupération de la tique. Euthanasie a été réalisée par le laboratoire du personnel du personnel de médecine animale. CO 2 et luxation cervicale ont été utilisés pour euthanasier les animaux. REMARQUE: Travailler sur les tiques nécessite l&#39;utilisation de l&#39;équation de protection individuelle complèteATION. Pour compter les tiques immatures, porter sarrau blanc, de longs gants en nitrile pour couvrir l&#39;ouverture du manchon du sarrau coiffé avec des bandes en caoutchouc et des chaussures fermées. Pour les souris infester avec les tiques, utilisez un filet de cheveux, vêtements jetables, gants à manches longues sur les manches, et couvre-pieds. Utilisez une combinaison de couleur blanche ou la lumière pour détecter les tiques capricieuses. Vérifiez régulièrement des gants et des manches pour les tiques. 1. Chambre Préparation du logement des animaux <ol><li> Désigner une pièce séparée pour les souris domestiques infestés par les tiques. Placer un tapis collant ou de la bande de tapis double face à l&#39;extérieur et à l&#39;intérieur de la porte pour empêcher la fuite de la tique accidentelle. </li></ol> 2. Compter pour Tiques Souris Infestation <ol><li> Mettre ruban adhésif double face tout autour des bords supérieurs de 7&quot; x 5&quot; x 14&quot; récipient en matière plastique et remplir avec de l&#39;eau à environ 2 cm. </li><li> Placer une autre petite boîte ou boîte de Petri dans le centre du récipient et remplir d&#39;eau de 1 cm et la création d&#39;un# 34; fossé &quot;autour de ce conteneur </li><li> Rangez le flacon contenant des larves ou des nymphes à l&#39;intérieur de la boîte de Petri. </li><li> Utilisez un pinceau fin pour enlever les larves ou nymphes du flacon et compter sous le microscope. Nommer 50 larves ou 25 nymphes dans des flacons de scintillation séparés. Couvrir les flacons immédiatement avec un tissu en maille de nylon ou d&#39;organdie et fermer avec des bandes de caoutchouc. </li></ol> 3. Ingestion de souris avec des tiques immatures <ol><li> Utilisez un banc de travail blanc ou de couleur claire et collez le ruban double face autour du périmètre de la zone de travail. </li><li> Anesthésier la souris avec de l&#39;isoflurane. Vérifiez le niveau d&#39;anesthésie par pincement. Une fois anesthésiés, transférez la souris sur un coussin chauffant recouvert de papier essuie-tout et attachez-le à un cône de nez pour continuer l&#39;alimentation en isoflurane. </li><li> Appliquer une pommade à base de pétrole à base de gelée pour éviter la sécheresse. Notez le mode de respiration de la souris pour ajuster les niveaux d&#39;isoflurane (80 - 230 respirations par minute est normale., Réduisez le niveau d&#39;isoflurane si brtaux eathing est inférieur à 80 respirations par minute pour éviter de tuer l&#39;animal). </li><li> Prendre un flacon de 50 larves ou nymphes 25 et placer les tiques sous la fourrure sur la tête entre les oreilles avec une brosse à peinture (Figure 1). Gardez la souris sous anesthésie pendant 20 minutes après le placement pour donner suffisamment de temps pour les tiques à joindre. </li><li> Déplacer la souris pour une boîte de type fer standard, plastique cage de la souris jetable avec des couvercles statiques et de la literie blanche. Fournir des jouets, l&#39; eau, et ad libitum alimentaire par les soins de la souris normale. </li><li> Stocker la cage de la souris dans une cage d&#39;un rat ou gerbille plus grande bordée de ruban adhésif double-face autour des bords supérieurs. Remplir la cage externe avec 3 cm d&#39;eau (figure 2). </li></ol> 4. Collectionner Tiques de souris <ol><li> tiques immatures se détachent entre les jours 3 et 6 de l&#39;alimentation. Vérifiez les cages et les douves de l&#39;eau pour les tiques engorgées chaque jour après jour 3. </li><li> Recueillir les tiques détaché de la cage entre les jours 4 et 6. A l&#39;aide d&#39;une douleurBrosse à t ou une pince souple pour ramasser les tiques gorgées et stocker dans des flacons de scintillation propres coiffés avec un tissu à mailles en nylon fixé avec des bandes de caoutchouc. </li><li> Anesthésier et vérifiez la souris le jour 7 pour toutes les autres tiques attachées. </li><li> Vérifiez la literie, bac alimentaire, et une bouteille d&#39;eau pour les tiques engorgés le jour 7. souris euthanasier suivant la procédure décrite ci-dessus. Autoclaver les cages à usage unique, de la literie, bouteille d&#39;eau, et le creux de la nourriture afin d&#39;éviter tout fuyant tiques à jeun. </li></ol> 5. Stockage de la Fed Tiques <ol><li> Maintenir les tiques gorgées à 90% d&#39;humidité, 20 ° C, et un 12:12 cycle lumière: obscurité dans un incubateur à humidité contrôlée et la température jusqu&#39;à ce que la mue se produit. Cela peut prendre environ 12 à 18 semaines pour se produire. </li><li> Alors que l&#39;humidité élevée favorise la survie tick, il fait aussi les tiques sujettes à la prolifération fongique. Vérifiez la fed tiques au microscope au moins une fois par semaine pour le moule. Si elle est détectée, laver les survivants dans 70% d&#39;éthanol pour 5Min., Rincer à l&#39;eau, transférer dans un papier filtre pour sécher et transférer sur des flacons nouveaux et propres. </li></ol>

<ol><li>Gleim, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+associated+with+tick+bites+and+pathogen+prevalence+in+ticks+parasitizing+humans+in+Georgia%2C+USA%5BTitle%5D)+AND+%22Parasites+%26amp%3B+Vectors%22%5BJournal%5D)">Factors associated with tick bites and pathogen prevalence in ticks parasitizing humans in Georgia, USA.</a> Parasites &amp; Vectors. 9 (125), Available from:
 <a target="_blank" href="http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6">http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6</a> 1-13 (2016).</li>
<li>Krober, T., Guerin, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+feeding+assays+for+hard+ticks%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Parasitol%22%5BJournal%5D)">In vitro feeding assays for hard ticks.</a> Trends Parasitol. 23 (9), 445-449 (2007).</li>
<li>Kuhnert, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeding+of+Hard+Ticks+In+Vitro%3A+New+Perspectives+for+Rearing+and+for+the+Identification+of+Systemic+Acaricides%5BTitle%5D)+AND+%22ALTEX%22%5BJournal%5D)">Feeding of Hard Ticks In Vitro: New Perspectives for Rearing and for the Identification of Systemic Acaricides.</a> ALTEX. 13 (2), 76-87 (1996).</li>
<li>Voigt, W. P., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8233589">In vitro feeding of instars of the ixodid tick Amblyomma variegaturn on skin membranes and its application to the transmission of Theileria mutans and Cowdria ruminantium.</a> Parasitol. 107, 257-263 (1993).</li>
<li>Gregson, J. D. Ticks. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGregson%2C+JD+%22Insect+Colonization+and+Mass+Production%22">Insect Colonization and Mass Production</a>. Smith, C. N. , Academic Press. New York. 49-72 (1966).</li>
<li>Sonenshine, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSonenshine%2C+DE+%22Biology+of+Ticks%22">Biology of Ticks</a>. 2, Oxford University Press. New York. (1993).</li>
<li>Bouchard, K. R., Wikel, S. K. Care, maintenance, and experimental infestation of ticks in the laboratory setting. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBouchard%2C+KR+%22Biology+of+Disease+Vectors%22">Biology of Disease Vectors</a>. Marquaedt, W. C. , Elsevier. New York. 705-711 (2005).</li>
<li>Schumaker, T. S., Barros, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+cycle+of+Ornithodoros+%28Alectorobius%29+talaje.+%28Acari%3AArgasidae%29+in+laboratory%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Entomol%22%5BJournal%5D)">Life cycle of Ornithodoros (Alectorobius) talaje. (Acari:Argasidae) in laboratory.</a> J Med Entomol. 32, 249-254 (1995).</li>
<li>Banks, C. W., Oliver, J. H., Hopla, C. E., Dotson, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+life+cycle+of+Ixodes+woodi+%28Acari%3AIxodidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Laboratory life cycle of Ixodes woodi (Acari:Ixodidae).</a> J. Med. Entomol. 35, 177-179 (1998).</li>
<li>James, A. M., Oliver, J. H. Jr Feeding and host preference of immature Ixodes dammini,I.scapularis,and I.pacificus.(Acari:Ixodidae). <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Feeding+and+host+preference+of+immature+Ixodes+dammini%2CI.scapularis%2Cand+I.pacificus.(Acari%3AIxodidae)">J. Med. Entomol</a>. 27, 324-330 (1990).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Étapes critiques dans le protocole Il est important d&#39;avoir plusieurs niveaux de mesures de sécurité lors de l&#39;élevage des tiques pour éviter une fuite accidentelle. L&#39;utilisation de ruban adhésif et d&#39;un fossé d&#39;eau est essentielle pour assurer la sécurité. Il est important de garder la souris anesthésiée sur un coussin chauffant pour maintenir la température du corps constante. Nous avons également constaté que le rasage de la souris ne fournit aucun bénéfice supplémentair...

Les tiques sont des ectoparasites hématophages obligés des vertébrés et sont distribués dans le monde entier. Aux États-Unis, au moins 11 espèces de tiques sont des vecteurs d&#39;agents pathogènes d&#39;importance pour la santé publique 1 . Ixodes scapularis est responsable de la transmission de plusieurs agents pathogènes tels que les agents responsables de la fièvre récurrente de la maladie de Lyme ( Borrelia burgdorferi ) ( B. miyamotoi), l&#39;anaplasmose granulocytaire humaine ( Anaplasma phagocytophilum ) et la babésiose (Babesia spp.). Malgré l&#39;importance de I. scapularis en tant que vecteur de maladie, la collecte de ces arachnides en abondance de la nature pour des études au laboratoire n&#39;est pas toujours réalisable. Par conséquent, la production de tiques saines élevées en laboratoire est essentielle pour les études sur la biologie des tiques et les interactions tic-pathogène. Le cycle de vie de toutes les tiques dures (famille Ixodidae), y compris I. scapularis, consiste en l&#39;oeuf et trois activétapes e: larve, nymphe et adulte. Chaque phase active se nourrit d&#39;un hôte vertébré. Les interactions complexes qui ont lieu entre les tiques et leurs hôtes pendant plusieurs jours de fixation et d&#39; alimentation sont presque impossibles à reproduire en utilisant les mangeoires artificielles, et ne sont pas susceptibles de fournir suffisamment de numéros de fed tiques pour l&#39; élevage de masse 2, 3, 4. Par conséquent, des souris vivantes et les lapins sont utilisés le plus souvent comme hôtes pour l&#39;élevage immatures (larves et nymphes), et les stades matures (adultes) de tiques, respectivement. L&#39;exigence de plusieurs hôtes pour l&#39; alimentation du sang au cours de chaque stade de développement complique l&#39; élevage de la tique, et il est long et coûteux 5, 6, 7. La plupart des protocoles d&#39; élevage tiques exigent en gardant les souris dans une cage de plancher en treillis métallique suspendue 7, 8 ou dans un ca cylindriquege de dimensions telles que l&#39;animal ne peut pas se déplacer librement et de se toiletter 6, 9, 10. Ces cages cylindriques sont ensuite transférés dans une cage de boîte à chaussures avec une grille de fil. Engorgés, les tiques individuelles sont ensuite recueillies à partir de l&#39;eau en dessous. Cependant, cette méthode conduit à exposer les tiques nourris à l&#39; eau contaminée par des matières fécales et l&#39; urine qui peuvent augmenter la croissance fongique et les tiques de la mortalité 9. De plus, il augmente la possibilité d&#39;échapper à cocher du bac d&#39;eau, ainsi que causer du stress à des souris. Pour contourner ces problèmes, nous démontrons ici l&#39;alimentation des larves de tiques sur des souris dans des cages en plastique jetables de type boîte à chaussures. Cette méthode permet le comportement normal des souris, des augmentations engorgés récupération des tiques, et diminue la mortalité des tiques en raison de la contamination.

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Élevage<em&gt; ixodes scapularis,</em&gt; la tique à pattes noires: alimentation sur des souris étapes immature

Rearing Ixodes scapularis, the Black-legged Tick: Feeding Immature Stages on Mice

Ixodes scapularis , le vecteur de la maladie de Lyme, est l&#39;un des vecteurs de maladies les plus importants dans l&#39;est et le Midwest des États-Unis. Cette espèce est une tumeur de trois hôtes qui nécessite un repas sanguin provenant d&#39;un hôte vertébré pour chaque étape de développement, et les femelles adultes ont besoin d&#39;un repas sanguin pour la reproduction. Les tiques larvaires s&#39;attachent à leur hôte pendant 3 à 5 jours pour nourrir et déposer l&#39;hôte lorsqu&#39;ils sont complètement engorgés. Cette dépendance à l&#39;égard de plusieurs hôtes différents et le temps d&#39;attachement prolongé pour engorgement complique l&#39;élevage de tiques en laboratoire. Cependant, pour comprendre les interactions biologie et tick-pathogène, la production de tiques saines et élevées en laboratoire est essentielle. Ici, nous démontrons un protocole simple et rentable pour l&#39;alimentation des tiques immatures sur les souris. Nous avons modifié les protocoles existants pour une diminution du stress sur les souris et une augmentation de la réussite et de la survie de l&#39;attaque par utilisation de cages jetables sans fond de maille pour éviter le contact des tiques avecL&#39;eau contaminée par les urines et les excréments de souris.

Nous avons modifié les protocoles existants d&#39;élevage de tiques 6 , 10 pour améliorer l&#39;efficacité de l&#39;alimentation et réduire le stress sur l&#39;hôte de la souris. Les résultats démontrent que les cages de souris de style shoebox sont bien adaptées pour l&#39;élevage de tiques. La literie blanche a donné un bon contraste pour une collecte facile des tiques alimentées. La plupart des tiques ont grimpé les murs des r...

La production de tiques élevées élevées en laboratoire est essentielle pour les études sur la biologie des tiques et les interactions tic-pathogène. Ici, nous démontrons un protocole simple pour l&#39;alimentation de tiques immatures qui est rentable et moins stressant pour les souris.

Élevage<em&gt; Ixodes scapularis,</em&gt; La tique à pattes noires: alimentation sur des souris étapes Immature

Ixodes scapularis, the vector of Lyme disease, is one of the most important disease vectors in the eastern and Midwestern United States. This species is a ...

L'objectif général de ce protocole d'alimentation des tiques est d'améliorer les normes existantes en augmentant la survie des tiques ayant ingéré du sang, tout en réduisant le stress subi par l'hôte rongeur. En plus de simplifier l'élevage de colonies de tiques, cette méthode offre un moyen plus aisé de recueillir un grand nombre de tiques alimentées en sang lors d'une seule journée de collecte, ce qui est essentiel pour répondre à des questions biologiques fondamentales dans les domaines de la macrobiologie. Le principal avantage de cette technique est que les tiques ne sont pas exposées à de l'eau contenant des excrétas de souris, réduisant ainsi la mortalité des tiques.En outre, les tiques peuvent être collectées en une seule journée, ce qui réduit le stress pour la souris. Pour ranger les tubes à tiques avant le comptage, fabriquez un récipient qui limite au maximum les échappatoires. Appliquez du ruban adhésif double face tout autour des bords supérieurs d'un récipient en plastique.Ensuite, remplir le récipient avec environ deux centimètres d'eau. Puis, placer une autre petite boîte ou un autre récipient au centre du récipient, et le remplir avec environ un centimètre d'eau, afin qu'il coule et reste en place. Conserver les flacons contenant les larves ou nymphes de tiques à l'intérieur de cette boîte ou de ce récipient.Pour compter les tiques présentes lors d'une infestation, utilisez un microscope et un pinceau fin pour retirer les larves ou les nymphes du flacon. Transférez 50 larves ou 25 nymphes dans un flacon de scintillation. Dès qu'un flacon est complètement rempli, recouvrez-le d'un tamis en nylon ou d'un tissu d'organdi, et fixez le couvercle à l'aide de bandes élastiques bien serrées.Désignez une pièce séparée pour héberger les souris infestées par les tiques. Pour éviter toute évasion accidentelle de tiques, placez un tapis adhésif ou un ruban adhésif double face à l'extérieur de la pièce, et un autre tapis à l'intérieur de la porte de la pièce. Préparez d'abord une zone pour manipuler les tiques près des souris.Utilisez un plan de travail blanc ou de couleur claire. Créez une bordure en ruban adhésif double face autour du périmètre de la zone de travail sur le plan de travail. Anesthésiez maintenant une souris avec de l'isoflurane.Lorsque prêt, transférez la souris sur un tapis chauffant recouvert de serviettes en papier, et fixez un cône nasal pour délivrer de l'isoflurane en continu. Vérifiez le niveau d'anesthésie à l'aide d'une pincée sur l'orteil. Ajustez l'anesthésique en fonction du rythme respiratoire.Une fréquence de 80 à 230 respirations par minute est normale. Réduisez l'isoflurane si la respiration est plus lente. Appliquez également une pommade ophtalmique à base de vaseline sur les yeux.Maintenant, prenez un flacon contenant 50 larves ou 25 nymphes et, à l’aide d’un pinceau, transférez les tiques sur la souris. Placez les tiques sous le pelage, sur la tête entre les oreilles. Après avoir placé la dernière tique, maintenez la souris anesthésiée pendant 20 minutes afin que les tiques puissent s’attacher avant que la souris n’essaie de les retirer.Après 20 minutes, remettez la souris dans une nouvelle cage d'élevage avec de la litière blanche pour améliorer la visibilité des tiques. Ajoutez quelques jouets et assurez un accès ad libitum à l'eau et à la nourriture. Utilisez des boîtes jetables avec des couvercles hermétiques.Ensuite, placez la cage d'origine à l'intérieur d'une cage plus grande destinée à un rat ou un gerbille, dont le bord supérieur interne des parois est recouvert d'un ruban adhésif double face. Puis, remplissez l'espace entre les deux cages avec environ trois centimètres d'eau. Les tiques immatures se détacheront après trois à six jours d'alimentation.À partir du troisième jour et par la suite, vérifiez quotidiennement les cages et l'eau environnante à la recherche de tiques gorgées de sang. Ramassez les tiques détachées à l'aide d'un pinceau ou de pinces douces, puis transférez-les dans des vials de scintillation propres fermés avec des tissus en nylon maintenus par des élastiques. Au septième jour, anesthésiez la souris comme précédemment, puis vérifiez la présence de tiques encore attachées.Vérifiez également soigneusement la litière, l'auge à nourriture et l'eau. Ensuite, euthanasiez la souris et stérilisez au autoclave les cages jetables, la litière, la bouteille d'eau et l'auge à nourriture afin d'éliminer toute tique résiduelle. Conservez les tiques engorgées dans un incubateur contrôlé.Entre 12 et 18 semaines, les tiques doivent muer. Au moins une fois par semaine, vérifiez les tiques au microscope pour détecter la présence de moisissure. Si de la moisissure est détectée, lavez les tiques survivantes avec de l’éthanol à 70 % pendant cinq minutes.Ensuite, rincez les survivants à l'eau et transférez-les sur du papier filtre pour les faire sécher. Une fois propres et secs, transférez les tiques dans de nouveaux tubes propres et poursuivez leur cycle de vie. La plupart des tiques grimpaient sur les parois des récipients après leur repas sanguin et étaient faciles à collecter.Les tiques s'échappaient rarement des cages à souris. La litière blanche offrait un bon contraste pour détecter les tiques gorgées de sang. Lors des prélèvements, la plupart des tiques se détachaient d'elles-mêmes d'ici le quatrième jour.Quelques-uns ont attendu jusqu'au cinquième jour pour se détacher, et au septième jour, aucune souris ne portait plus aucune tique. Environ les deux tiers des tiques ont pu s'attacher et se nourrir jusqu'à l'engorgement. Toutes les souris sont restées en bonne santé et n'ont montré aucun signe de gêne.Une fois maîtrisée, cette méthode peut fournir des centaines de tiques gorgées de sang en une seule journée de collecte. Lors de l'exécution de cette procédure, il est important de se rappeler de porter des EPI complets afin d'éviter toute fixation accidentelle de tiques.

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La maladie de Lyme est la maladie à vecteur la plus couramment rapportés en Amérique du Nord. L'agent causal, Borrelia burgdorferi est une bactérie spirochète transmise par les tiques Ixodid. Transmission et détection de l'infection dans des modèles animaux est optimisé par l'utilisation de nourrissage des tiques, que nous décrivons ici.

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