Name: Élevage Ixodes scapularis, La tique à pattes noires: alimentation sur des souris étapes Immature (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min
Description: Apprenez un protocole d'alimentation des tiques immatures pour améliorer leur survie et réduire le stress des rongeurs hôtes. Cette méthode simplifie l'élevage des colonies de tiques et facilite la collecte efficace des tiques gorgées de sang.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Les auteurs remercient le personnel de Laboratory Animal Medicine, University of Nevada, Reno, pour leur aide. MM a reçu un financement de Nevada INBRE.

Le protocole (numéro-00682) décrit ci-dessous est approuvé par le Comité de protection des animaux institutionnel et utilisation (IACUC) à l&#39;Université du Nevada Reno et suit les directives de l&#39;Université du Nevada, le comité d&#39;éthique de la recherche animale de Reno. En bref, des souris ont été anesthésiées avec de l&#39;isoflurane et un cône de nez a été utilisé pour maintenir les niveaux continus isoflurane pendant 20 min. Une pommade vétérinaire a été utilisé pour éviter le dessèchement des yeux sous anesthésie. pincement de l&#39;orteil a été utilisé pour déterminer le niveau d&#39;anesthésie et le rythme respiratoire a été mesurée tout au long de la procédure. Les souris ont été gardés dans des cages individuelles et surveillés jusqu&#39;à ce que a été repris conscience. Les souris ont été utilisées qu&#39;une seule fois pour l&#39;alimentation et les tiques ont été euthanasiés après récupération de la tique. Euthanasie a été réalisée par le laboratoire du personnel du personnel de médecine animale. CO 2 et luxation cervicale ont été utilisés pour euthanasier les animaux. REMARQUE: Travailler sur les tiques nécessite l&#39;utilisation de l&#39;équation de protection individuelle complèteATION. Pour compter les tiques immatures, porter sarrau blanc, de longs gants en nitrile pour couvrir l&#39;ouverture du manchon du sarrau coiffé avec des bandes en caoutchouc et des chaussures fermées. Pour les souris infester avec les tiques, utilisez un filet de cheveux, vêtements jetables, gants à manches longues sur les manches, et couvre-pieds. Utilisez une combinaison de couleur blanche ou la lumière pour détecter les tiques capricieuses. Vérifiez régulièrement des gants et des manches pour les tiques. 1. Chambre Préparation du logement des animaux <ol><li> Désigner une pièce séparée pour les souris domestiques infestés par les tiques. Placer un tapis collant ou de la bande de tapis double face à l&#39;extérieur et à l&#39;intérieur de la porte pour empêcher la fuite de la tique accidentelle. </li></ol> 2. Compter pour Tiques Souris Infestation <ol><li> Mettre ruban adhésif double face tout autour des bords supérieurs de 7&quot; x 5&quot; x 14&quot; récipient en matière plastique et remplir avec de l&#39;eau à environ 2 cm. </li><li> Placer une autre petite boîte ou boîte de Petri dans le centre du récipient et remplir d&#39;eau de 1 cm et la création d&#39;un# 34; fossé &quot;autour de ce conteneur </li><li> Rangez le flacon contenant des larves ou des nymphes à l&#39;intérieur de la boîte de Petri. </li><li> Utilisez un pinceau fin pour enlever les larves ou nymphes du flacon et compter sous le microscope. Nommer 50 larves ou 25 nymphes dans des flacons de scintillation séparés. Couvrir les flacons immédiatement avec un tissu en maille de nylon ou d&#39;organdie et fermer avec des bandes de caoutchouc. </li></ol> 3. Ingestion de souris avec des tiques immatures <ol><li> Utilisez un banc de travail blanc ou de couleur claire et collez le ruban double face autour du périmètre de la zone de travail. </li><li> Anesthésier la souris avec de l&#39;isoflurane. Vérifiez le niveau d&#39;anesthésie par pincement. Une fois anesthésiés, transférez la souris sur un coussin chauffant recouvert de papier essuie-tout et attachez-le à un cône de nez pour continuer l&#39;alimentation en isoflurane. </li><li> Appliquer une pommade à base de pétrole à base de gelée pour éviter la sécheresse. Notez le mode de respiration de la souris pour ajuster les niveaux d&#39;isoflurane (80 - 230 respirations par minute est normale., Réduisez le niveau d&#39;isoflurane si brtaux eathing est inférieur à 80 respirations par minute pour éviter de tuer l&#39;animal). </li><li> Prendre un flacon de 50 larves ou nymphes 25 et placer les tiques sous la fourrure sur la tête entre les oreilles avec une brosse à peinture (Figure 1). Gardez la souris sous anesthésie pendant 20 minutes après le placement pour donner suffisamment de temps pour les tiques à joindre. </li><li> Déplacer la souris pour une boîte de type fer standard, plastique cage de la souris jetable avec des couvercles statiques et de la literie blanche. Fournir des jouets, l&#39; eau, et ad libitum alimentaire par les soins de la souris normale. </li><li> Stocker la cage de la souris dans une cage d&#39;un rat ou gerbille plus grande bordée de ruban adhésif double-face autour des bords supérieurs. Remplir la cage externe avec 3 cm d&#39;eau (figure 2). </li></ol> 4. Collectionner Tiques de souris <ol><li> tiques immatures se détachent entre les jours 3 et 6 de l&#39;alimentation. Vérifiez les cages et les douves de l&#39;eau pour les tiques engorgées chaque jour après jour 3. </li><li> Recueillir les tiques détaché de la cage entre les jours 4 et 6. A l&#39;aide d&#39;une douleurBrosse à t ou une pince souple pour ramasser les tiques gorgées et stocker dans des flacons de scintillation propres coiffés avec un tissu à mailles en nylon fixé avec des bandes de caoutchouc. </li><li> Anesthésier et vérifiez la souris le jour 7 pour toutes les autres tiques attachées. </li><li> Vérifiez la literie, bac alimentaire, et une bouteille d&#39;eau pour les tiques engorgés le jour 7. souris euthanasier suivant la procédure décrite ci-dessus. Autoclaver les cages à usage unique, de la literie, bouteille d&#39;eau, et le creux de la nourriture afin d&#39;éviter tout fuyant tiques à jeun. </li></ol> 5. Stockage de la Fed Tiques <ol><li> Maintenir les tiques gorgées à 90% d&#39;humidité, 20 ° C, et un 12:12 cycle lumière: obscurité dans un incubateur à humidité contrôlée et la température jusqu&#39;à ce que la mue se produit. Cela peut prendre environ 12 à 18 semaines pour se produire. </li><li> Alors que l&#39;humidité élevée favorise la survie tick, il fait aussi les tiques sujettes à la prolifération fongique. Vérifiez la fed tiques au microscope au moins une fois par semaine pour le moule. Si elle est détectée, laver les survivants dans 70% d&#39;éthanol pour 5Min., Rincer à l&#39;eau, transférer dans un papier filtre pour sécher et transférer sur des flacons nouveaux et propres. </li></ol>

<ol><li>Gleim, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+associated+with+tick+bites+and+pathogen+prevalence+in+ticks+parasitizing+humans+in+Georgia%2C+USA%5BTitle%5D)+AND+%22Parasites+%26amp%3B+Vectors%22%5BJournal%5D)">Factors associated with tick bites and pathogen prevalence in ticks parasitizing humans in Georgia, USA.</a> Parasites &amp; Vectors. 9 (125), Available from:
 <a target="_blank" href="http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6">http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6</a> 1-13 (2016).</li>
<li>Krober, T., Guerin, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+feeding+assays+for+hard+ticks%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Parasitol%22%5BJournal%5D)">In vitro feeding assays for hard ticks.</a> Trends Parasitol. 23 (9), 445-449 (2007).</li>
<li>Kuhnert, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeding+of+Hard+Ticks+In+Vitro%3A+New+Perspectives+for+Rearing+and+for+the+Identification+of+Systemic+Acaricides%5BTitle%5D)+AND+%22ALTEX%22%5BJournal%5D)">Feeding of Hard Ticks In Vitro: New Perspectives for Rearing and for the Identification of Systemic Acaricides.</a> ALTEX. 13 (2), 76-87 (1996).</li>
<li>Voigt, W. P., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8233589">In vitro feeding of instars of the ixodid tick Amblyomma variegaturn on skin membranes and its application to the transmission of Theileria mutans and Cowdria ruminantium.</a> Parasitol. 107, 257-263 (1993).</li>
<li>Gregson, J. D. Ticks. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGregson%2C+JD+%22Insect+Colonization+and+Mass+Production%22">Insect Colonization and Mass Production</a>. Smith, C. N. , Academic Press. New York. 49-72 (1966).</li>
<li>Sonenshine, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSonenshine%2C+DE+%22Biology+of+Ticks%22">Biology of Ticks</a>. 2, Oxford University Press. New York. (1993).</li>
<li>Bouchard, K. R., Wikel, S. K. Care, maintenance, and experimental infestation of ticks in the laboratory setting. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBouchard%2C+KR+%22Biology+of+Disease+Vectors%22">Biology of Disease Vectors</a>. Marquaedt, W. C. , Elsevier. New York. 705-711 (2005).</li>
<li>Schumaker, T. S., Barros, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+cycle+of+Ornithodoros+%28Alectorobius%29+talaje.+%28Acari%3AArgasidae%29+in+laboratory%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Entomol%22%5BJournal%5D)">Life cycle of Ornithodoros (Alectorobius) talaje. (Acari:Argasidae) in laboratory.</a> J Med Entomol. 32, 249-254 (1995).</li>
<li>Banks, C. W., Oliver, J. H., Hopla, C. E., Dotson, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+life+cycle+of+Ixodes+woodi+%28Acari%3AIxodidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Laboratory life cycle of Ixodes woodi (Acari:Ixodidae).</a> J. Med. Entomol. 35, 177-179 (1998).</li>
<li>James, A. M., Oliver, J. H. Jr Feeding and host preference of immature Ixodes dammini,I.scapularis,and I.pacificus.(Acari:Ixodidae). <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Feeding+and+host+preference+of+immature+Ixodes+dammini%2CI.scapularis%2Cand+I.pacificus.(Acari%3AIxodidae)">J. Med. Entomol</a>. 27, 324-330 (1990).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Étapes critiques dans le protocole Il est important d&#39;avoir plusieurs niveaux de mesures de sécurité lors de l&#39;élevage des tiques pour éviter une fuite accidentelle. L&#39;utilisation de ruban adhésif et d&#39;un fossé d&#39;eau est essentielle pour assurer la sécurité. Il est important de garder la souris anesthésiée sur un coussin chauffant pour maintenir la température du corps constante. Nous avons également constaté que le rasage de la souris ne fournit aucun bénéfice supplémentair...

Les tiques sont des ectoparasites hématophages obligés des vertébrés et sont distribués dans le monde entier. Aux États-Unis, au moins 11 espèces de tiques sont des vecteurs d&#39;agents pathogènes d&#39;importance pour la santé publique 1 . Ixodes scapularis est responsable de la transmission de plusieurs agents pathogènes tels que les agents responsables de la fièvre récurrente de la maladie de Lyme ( Borrelia burgdorferi ) ( B. miyamotoi), l&#39;anaplasmose granulocytaire humaine ( Anaplasma phagocytophilum ) et la babésiose (Babesia spp.). Malgré l&#39;importance de I. scapularis en tant que vecteur de maladie, la collecte de ces arachnides en abondance de la nature pour des études au laboratoire n&#39;est pas toujours réalisable. Par conséquent, la production de tiques saines élevées en laboratoire est essentielle pour les études sur la biologie des tiques et les interactions tic-pathogène. Le cycle de vie de toutes les tiques dures (famille Ixodidae), y compris I. scapularis, consiste en l&#39;oeuf et trois activétapes e: larve, nymphe et adulte. Chaque phase active se nourrit d&#39;un hôte vertébré. Les interactions complexes qui ont lieu entre les tiques et leurs hôtes pendant plusieurs jours de fixation et d&#39; alimentation sont presque impossibles à reproduire en utilisant les mangeoires artificielles, et ne sont pas susceptibles de fournir suffisamment de numéros de fed tiques pour l&#39; élevage de masse 2, 3, 4. Par conséquent, des souris vivantes et les lapins sont utilisés le plus souvent comme hôtes pour l&#39;élevage immatures (larves et nymphes), et les stades matures (adultes) de tiques, respectivement. L&#39;exigence de plusieurs hôtes pour l&#39; alimentation du sang au cours de chaque stade de développement complique l&#39; élevage de la tique, et il est long et coûteux 5, 6, 7. La plupart des protocoles d&#39; élevage tiques exigent en gardant les souris dans une cage de plancher en treillis métallique suspendue 7, 8 ou dans un ca cylindriquege de dimensions telles que l&#39;animal ne peut pas se déplacer librement et de se toiletter 6, 9, 10. Ces cages cylindriques sont ensuite transférés dans une cage de boîte à chaussures avec une grille de fil. Engorgés, les tiques individuelles sont ensuite recueillies à partir de l&#39;eau en dessous. Cependant, cette méthode conduit à exposer les tiques nourris à l&#39; eau contaminée par des matières fécales et l&#39; urine qui peuvent augmenter la croissance fongique et les tiques de la mortalité 9. De plus, il augmente la possibilité d&#39;échapper à cocher du bac d&#39;eau, ainsi que causer du stress à des souris. Pour contourner ces problèmes, nous démontrons ici l&#39;alimentation des larves de tiques sur des souris dans des cages en plastique jetables de type boîte à chaussures. Cette méthode permet le comportement normal des souris, des augmentations engorgés récupération des tiques, et diminue la mortalité des tiques en raison de la contamination.

<table><tbody><tr><td>Pommade vétérinaire Puralube</td><td>Amazon</td><td></td><td>Disponible dans n’importe quelle animalerie ou boutique en ligne</td></tr><tr><td>Cage à souris jetable&</td><td>nbsp ; Innovive, San Diego, Californie</td><td>MV 2</td><td>Ensemble de fond et couvercle</td></tr><tr><td>Blanc Alpha dri literie&nbsp ;</td><td>Fournitures de laboratoire, Fort Worth, Texas</td><td> ALPHA-Dri&trade ;</td><td></td></tr></tbody></table>

Élevage<em&gt; ixodes scapularis,</em&gt; la tique à pattes noires: alimentation sur des souris étapes immature

Rearing Ixodes scapularis, the Black-legged Tick: Feeding Immature Stages on Mice

Ixodes scapularis , le vecteur de la maladie de Lyme, est l&#39;un des vecteurs de maladies les plus importants dans l&#39;est et le Midwest des États-Unis. Cette espèce est une tumeur de trois hôtes qui nécessite un repas sanguin provenant d&#39;un hôte vertébré pour chaque étape de développement, et les femelles adultes ont besoin d&#39;un repas sanguin pour la reproduction. Les tiques larvaires s&#39;attachent à leur hôte pendant 3 à 5 jours pour nourrir et déposer l&#39;hôte lorsqu&#39;ils sont complètement engorgés. Cette dépendance à l&#39;égard de plusieurs hôtes différents et le temps d&#39;attachement prolongé pour engorgement complique l&#39;élevage de tiques en laboratoire. Cependant, pour comprendre les interactions biologie et tick-pathogène, la production de tiques saines et élevées en laboratoire est essentielle. Ici, nous démontrons un protocole simple et rentable pour l&#39;alimentation des tiques immatures sur les souris. Nous avons modifié les protocoles existants pour une diminution du stress sur les souris et une augmentation de la réussite et de la survie de l&#39;attaque par utilisation de cages jetables sans fond de maille pour éviter le contact des tiques avecL&#39;eau contaminée par les urines et les excréments de souris.

Nous avons modifié les protocoles existants d&#39;élevage de tiques 6 , 10 pour améliorer l&#39;efficacité de l&#39;alimentation et réduire le stress sur l&#39;hôte de la souris. Les résultats démontrent que les cages de souris de style shoebox sont bien adaptées pour l&#39;élevage de tiques. La literie blanche a donné un bon contraste pour une collecte facile des tiques alimentées. La plupart des tiques ont grimpé les murs des r...

La production de tiques élevées élevées en laboratoire est essentielle pour les études sur la biologie des tiques et les interactions tic-pathogène. Ici, nous démontrons un protocole simple pour l&#39;alimentation de tiques immatures qui est rentable et moins stressant pour les souris.

Élevage<em&gt; Ixodes scapularis,</em&gt; La tique à pattes noires: alimentation sur des souris étapes Immature

Ixodes scapularis, the vector of Lyme disease, is one of the most important disease vectors in the eastern and Midwestern United States. This species is a ...

L'objectif général de ce protocole d'alimentation des tiques est d'améliorer les normes existantes en augmentant la survie des tiques ayant ingéré du sang, tout en réduisant le stress subi par l'hôte rongeur. En plus de simplifier l'élevage de colonies de tiques, cette méthode offre un moyen plus aisé de recueillir un grand nombre de tiques alimentées en sang lors d'une seule journée de collecte, ce qui est essentiel pour répondre à des questions biologiques fondamentales dans les domaines de la macrobiologie. Le principal avantage de cette technique est que les tiques ne sont pas exposées à de l'eau contenant des excrétas de souris, réduisant ainsi la mortalité des tiques.En outre, les tiques peuvent être collectées en une seule journée, ce qui réduit le stress pour la souris. Pour ranger les tubes à tiques avant le comptage, fabriquez un récipient qui limite au maximum les échappatoires. Appliquez du ruban adhésif double face tout autour des bords supérieurs d'un récipient en plastique.Ensuite, remplir le récipient avec environ deux centimètres d'eau. Puis, placer une autre petite boîte ou un autre récipient au centre du récipient, et le remplir avec environ un centimètre d'eau,

rearing-ixodes-scapularis-black-legged-tick-feeding-immature-stages

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

La collection de l 'hémolymphe tique infectée, des glandes salivaires et la salive est important d'étudier comment les tiques agents pathogènes causent la maladie. Dans ce protocole, nous montrer comment recueillir les glandes salivaires et l'hémolymphe de se...

La salive, les glandes salivaires, et Collection hémolymphe de tiques Ixodes scapularis

La maladie de Lyme est la maladie à vecteur la plus couramment rapportés en Amérique du Nord. L'agent causal, Borrelia burgdorferi est une bactérie spirochète transmise par les tiques Ixodid. Transmission et détection de l'infection dans des modèles animaux est optimisé par l'utilisation de nourrissage des tiques, que nous décrivons ici.

Alimentation des tiques sur les animaux pour la transmission et Xénodiagnostic dans la recherche la maladie de Lyme

Dans cette étude, un système d’alimentation pour les stades nymphaux et larvaires de la tique dure a été développé à l’aide d’une capsule attachée à la souris de laboratoire. La capsule d’alimentation est faite à partir de matériaux flexibles et reste fermement attachée à la souris pendant au moins une semaine et permet une surveillance confortable de l’alimentation des tiques.

Un modèle à base de capsules pour l’infestation immature des stades de tiques dures sur des souris de laboratoire

Le présent protocole décrit une méthode d’injection d’embryons de tiques. L’injection d’embryons est la technique préférée de manipulation génétique pour générer des lignées transgéniques.

Technique d’injection d’embryons pour l’édition de gènes chez la tique à pattes noires, Ixodes scapularis

Présenté ici est une méthode pour nourrir les tiques en sang in vitro via un système de membrane artificielle pour permettre l’engorgement partiel ou complet d’une variété de stades de vie des tiques.

Alimentation par membrane artificielle de tiques pour Ixodes scapularis

Cet article présente la méthodologie d’exposition de l’homme à la larve d’Ixodes scapularis pour la recherche clinique. La technique est relativement simple, tolérable par les volontaires de la recherche, et peut être modifiée en fonction des besoins expérimentaux. De telles recherches impliquant des sujets humains doivent être menées selon des protocoles d’étude clinique approuvés par les autorités réglementaires compétentes.

Un modèle d’exposition expérimentale des humains aux tiques larvaires Ixodes scapularis

Cette méthode décrit le développement d’un système d’alimentation sanguine in vitro pour tiques intégrant une chambre imprimée en 3D et une membrane en silicone fabriquée en laboratoire. Le système permet l’alimentation artificielle des tiques, permettant un échantillonnage facile à différents stades d’alimentation et utilisant de faibles volumes de sang, fournissant un outil inestimable pour étudier les tiques ixodidés.

Sang de tiques passant par une membrane artificielle sur une chambre imprimée en 3D dans la recherche sur les tiques ixodides

Des études de Lyme recherche sur les maladies nécessitent souvent de génération de tiques infectées par l'agent pathogène Borrelia burgdorferi, un processus qui prend généralement plusieurs semaines. Ici nous démontrons une procédure basée sur la microinjection tic infection qui peut être accompli en quelques heures. Nous démontrons également une méthode d'immunofluorescence pour la localisation in situ de B. burgdorferi dans les tiques.

Méthodes de transfert rapide et la localisation des agents pathogènes dans l&#39;intestin de Lyme Tick

La méthode décrite ici utilise l'injection directe de bactéries entomopathogènes dans le hémocèle...

L&#39;élevage et de l&#39;injection de<em&gt; Manduca sexta</emLes larves&gt; pour évaluer la virulence bactérienne

Les réponses allergiques, caractérisé par l'activation des mastocytes et des basophiles, sont entraînés par la reticulation d'IgE et la libération de médiateurs pro-inflammatoires. Une évaluation quantitative de réactions allergiques peut être obtenue en utilisant le colorant bleu d'Evans pour suivre l'évolution de la perméabilité vasculaire après provocation allergénique.

Mesure de l&#39;anaphylaxie locaux chez la souris

Apprenez un protocole d'alimentation des tiques immatures pour améliorer leur survie et réduire le stress des rongeurs hôtes. Cette méthode simplifie l'élevage des colonies de tiques et facilite la collecte efficace des tiques gorgées de sang.

Élevage

Explorer plus de vidéos