Name: Préservation des nerfs Obstruction à mi-urétrale (NEMO) chez les femelles petits rongeurs (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 42 s
Description: Découvrez la technique chirurgicale NEMO pour créer une obstruction urétrale partielle chez les petits rongeurs femelles en préservant l'innervation vésicale. Cette méthode fiable minimise la morbidité animale et permet d'étudier le remodelage vésical.

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Le travail a été financé par une subvention de fonctionnement CHIR (DJB).

Le protocole expérimental suivant a été approuvé par le comité de protection des animaux de l&#39;institution. 1. NEMO chez les rats femelles <ol><li> Préparation <ol><li> Placer un rat Sprague-Dawley femelles pesant environ 200 g sous anesthésie à 3% d&#39;isoflurane, peser l&#39;animal, et se raser et désinfecter la zone prépubienne 3 fois en utilisant un lavage chirurgical iode. </li><li> Sur un coussin chauffant, les membres postérieurs de bande et la queue vers le bas et cathétériser la vessie avec un angiocathéter de calibre 20, qui est également enregistré doucement vers le bas pour empêcher le glissement. </li></ol></li><li> Dissection <ol><li> Utilisez un scalpel pour réaliser à partir de la symphyse pubienne palpable vers le méat urétral une incision longitudinale de la peau de 8 mm. Soulevez la peau de chaque côté pour faciliter la fermeture des plaies plus tard. </li><li> On dissèque brusquement pour identifier l&#39;urètre stent par étalement longitudinal avec des ciseaux fins. Placez des crochets fines de la peau autostatiques pour améliorer l&#39;expositionde l&#39;urètre. </li><li> Effectuer une certaine douceur d&#39;étalement longitudinal en utilisant des ciseaux courbes dorsale de l&#39;urètre pour développer le plan entre l&#39;urètre et du vagin. Ensuite, passer carrément une suture de soie 4-0 derrière l&#39;urètre et de préparer la double jet de noeud d&#39;un chirurgien. </li></ol></li><li> Obstruction urétrale partielle <ol><li> Retirer le angiocathéter, placer une tige parallèle de métal de 0,9 mm à l&#39;urètre, puis serrer le noeud autour de la tige de l&#39;urètre et de métal, de sorte que ce dernier glisse encore facilement par la suite. </li><li> Fixer le noeud avec 3 lancers plus douce en utilisant la tension avant de retirer la tige. Couper le fil de suture se termine environ 3 mm de long, ou 4 mm en cas de rejet par la suite de l&#39;obstruction fait partie de l&#39;expérience. </li></ol></li><li> fermeture de la plaie <ol><li> Approximer les glandes para-urétrales en utilisant un seul point de suture enterré tressée résorbable 4-0. </li><li> Fermez la peau avec un point de matelas horizontal enterré en utilisant le même absorbable SUTure. Note: Bien qu&#39;il puisse sembler non conventionnelle d&#39;utiliser un fil résorbable pour un point-pénétrant la peau, nous ne avons rencontré des complications telles que les infections de plaies, et que le retrait de suture peut être évité. </li></ol></li><li> après les soins <ol><li> Injecter buprénorphine 0,1 mg / kg sous-cutanée avant de placer le rat dans une cage de récupération. </li><li> Offrir une alimentation de récupération douce pour les premières 24 h au seul rat Abrité. Après cette période, les animaux domestiques à nouveau dans les mêmes paires que avant la procédure à condition qu&#39;ils se portent bien et appartiennent au même groupe de traitement. </li><li> Vérifiez les rats quotidiens pour la taille de la vessie et le bien-être général; enregistrer leur poids au moins chaque semaine. </li></ol></li></ol> 2. NEMO chez les souris femelles <ol><li> Préparation <ol><li> Placer une souris femelle C57BL / 6 pesant environ 18 g, puis procéder comme détaillé dans l&#39;étape 1.1.1. </li><li> Procédez comme détaillé à l&#39;étape 1.1.2, à l&#39;exception d&#39;utiliser un ang calibre 24iocatheter. </li></ol></li><li> Dissection <ol><li> Utilisez un scalpel pour réaliser une incision longitudinale de la peau de 6 mm à partir de la symphyse pubienne palpable vers le méat urétral. </li><li> On dissèque brusquement pour identifier l&#39;urètre stent par étalement longitudinal avec des ciseaux fins. Soulever le faisceau neuro-vasculaire en cours d&#39;exécution sur l&#39;urètre ventralement par dissection mousse analogue. </li><li> Effectuer une certaine douceur d&#39;étalement longitudinal en utilisant des ciseaux courbes dorsale de l&#39;urètre pour développer le plan entre l&#39;urètre et du vagin. Ensuite, passer carrément une suture tressée non résorbable 5-0 derrière l&#39;urètre et de préparer la double jet de noeud d&#39;un chirurgien. </li></ol></li><li> Obstruction urétrale partielle <ol><li> Connecter le angiocathéter avec une seringue de 1 mL et l&#39;injection de 0,1 ml de solution saline normale dans la vessie. </li><li> Placer une canule de calibre 26 parallèle à l&#39;urètre. Serrer doucement le nœud autour de l&#39;urètre et de la canule tout en tirant le angiocae. </li><li> Fixer le noeud avec 3 lancers plus douce en utilisant la tension avant de retirer la canule. </li><li> Test de l&#39;urine apparaissant au méat sur une légère pression sur la vessie de l&#39;animal; desserrer le lien si incapable d&#39;exprimer l&#39;urine. Dans le cas contraire, couper la suture se termine environ 3 mm de long. </li></ol></li><li> fermeture de la plaie <ol><li> Fermez la peau avec un point de matelas horizontal enterré à l&#39;aide d&#39;une suture absorbable tressé 5-0. </li></ol></li><li> après les soins <ol><li> Injecter 0,1 mg / kg de buprénorphine sous-cutanée avant de placer la souris dans une cage de récupération. </li><li> Offrir une alimentation de récupération souple pour les premières 48 h à la seule souris Abrité. Après cette période, les animaux domestiques à nouveau dans les mêmes groupes que avant la procédure à condition qu&#39;ils se portent bien et appartiennent au même groupe de traitement. REMARQUE: Les souris avec une vessie distendue palpable 24 h après la procédure qui ne supprime pas lorsqu&#39;ils sont manipulés sont sur-obstruée et meurent dans le nposte 1 - 2 jours à moins que repris sous anesthésie pour le retrait du ligatures obstruant. </li><li> Vérifier les souris quotidiennement pour la taille de la vessie et le bien-être général; enregistrer leur poids au moins chaque semaine. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Andersson, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Storage+and+voiding+symptoms%3A+pathophysiologic+aspects%5BTitle%5D)+AND+%22Urology%22%5BJournal%5D)">Storage and voiding symptoms: pathophysiologic aspects.</a> Urology. 62 (5), 3-10 (2003).</li>
<li>Boyle, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+prevalence+of+lower+urinary+tract+symptoms+in+men+and+women+in+four+centres.+The+UrEpik+study%5BTitle%5D)+AND+%22BJU+Int%22%5BJournal%5D)">The prevalence of lower urinary tract symptoms in men and women in four centres. The UrEpik study.</a> BJU Int. 92 (4), 409-414 (2003).</li>
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<li>Schroeder, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effect+of+an+oral+endothelin+converting+enzyme+inhibitor+on+rat+detrusor+function+after+outlet+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Protective effect of an oral endothelin converting enzyme inhibitor on rat detrusor function after outlet obstruction.</a> J Urol. 172 (3), 1171-1174 (2004).</li>
<li>Sidler, M., Aitken, K., Jiang, J., Bijos, D., Bägli, D. <a target="_blank" href="http://www.jurology.com/article/S0022-5347(16)01357-4/abstract">"sometimes a sham is just a sham" - why the rodent model of partial bladder outlet obstruction needs adjustment.</a> J Urol. 195 (4), e379(2016).</li>
<li>Jin, L. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Persistent+detrusor+overactivity+in+rats+after+relief+of+partial+urethral+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Persistent detrusor overactivity in rats after relief of partial urethral obstruction.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301 (4), R896-R904 (2011).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

La mortalité des animaux est l&#39; une des principales préoccupations du modèle traditionnel de pBOO à l&#39;urètre proximale, à 15% ou plus dans de nombreux rapports 10, 11, 13. NEMO semble avoir un minimum de mortalité lorsqu&#39;elle est appliquée chez les rats femelles. obstruction de l&#39;urètre proximal chez la souris est techniquement plus difficile que chez les rats et donc encore plus sujettes à des ...

Obstruction partielle de sortie de la vessie (pBOO) a une prévalence élevée et peut conduire à un dysfonctionnement de la vessie sévère 1; le spectre va de malformations congénitales telles que des valves de l&#39;urètre postérieur ou hypospadias, plus de rétrécissement de l&#39;urètre acquises à l&#39;hyperplasie bénigne de la prostate. Celle - ci touche plus de 30% des hommes de soixante ans et plus 2. Grande charge des patients et des coûts énormes de soins de santé associés à pBOO justifient l&#39;effort de recherche considérable mis en étudier le remodelage de la vessie en réponse à la résistance à l&#39;écoulement accrue 3. De 2006 à 2015, plus de 220 PubMed indexé articles ont été publiés sur l&#39;effet de pBOO sur la vessie. Bien que les modèles animaux pour pBOO ont été mis au point dans plusieurs espèces 4, comme le rat 5, le lapin 6, porc 7, et des protocoles d&#39; ententee 8, 9, sans doute le modèle animal le plus couramment utilisés sont des rats femelles subissant toutefois une obstruction partielle de l&#39;urètre proximal; l&#39;accès à l&#39;abdomen des animaux, extériorisant de la vessie, et la dissection autour du col de la vessie sont inévitables avec cette technique d&#39;obstruction urétrale traditionnelle proximale. Variabilité dans le degré d&#39;obstruction et de la mortalité des animaux ne sont quelques - unes des préoccupations liées à cette procédure 10, 11; nous avons montré que dans les animaux opérés de manière fictive, dissection autour de l&#39;urètre proximal entraîne des changements physiologiques qui sont en corrélation avec une perte de fibres nerveuses au niveau du col de la vessie 12. Ce résultat indique que le plus couramment utilisé modèle animal pBOO, qui consiste à accéder à l&#39;urètre proximal chez les rongeurs femelles, conduit à une lésion de la dénervation avec des changements structurels et fonctionnels associés de la vessie, affectanttrompe-l&#39;œil et les animaux obstruées. Par conséquent, une approche alternative en évitant les blessures de dénervation était nécessaire. Notre laboratoire a développé et évalué un nerf épargnant Obstruction mi-urétrale (NEMO) approche, efficace pour induire des changements associés d&#39;obstruction prévu dans la vessie tels que l&#39;augmentation de la masse d&#39;organes et de l&#39;urine résiduelle, tandis que les animaux opérés de manière fictive étaient impossibles à distinguer des animaux témoins non opérés . En outre, le sphincter strié de l&#39;urètre est resté intact car il se trouve à proximité du niveau de dissection. En outre, la variabilité augmentation induite par l&#39;obstruction de la masse de la vessie était significativement plus faible que dans l&#39;obstruction urétrale traditionnelle proximale et la mortalité des animaux a été nulle. Nous avons également appliqué avec succès NEMO chez les souris femelles avec moins de 10% de mortalité chez les animaux obstruées, alors que tous les modèles pBOO pour les souris décrites à ce jour ont été associées à une mortalité d&#39;environ 50%. L&#39;étude de remodelage de la vessie dans le contexte de pBOO chez la souris bénéficiera de APPLICABILlité de l&#39;ensemble du spectre des modifications transgéniques. Dissection autour du milieu de l&#39;urètre chez les rongeurs femelles ne provoque pas les modifications structurelles ou fonctionnelles indésirables et de confusion dans la vessie urinaire observée dans le modèle d&#39;obstruction proximale traditionnelle. Néanmoins, l&#39;induction d&#39;une obstruction partielle au niveau de la mi-urétrale provoque encore l&#39;hypertrophie de la vessie et l&#39;urine résiduelle a augmenté, comme prévu à partir d&#39;un modèle animal pour pBOO. Fait important, l&#39;exécution NEMO chez la souris ouvre une enquête de remodelage de la vessie dans pBOO des procédés transgéniques, qui sont pratiquement indisponible chez les rongeurs plus grandes.

<table><tbody><tr><td>Rat femelle&nbsp ;</td><td>Charles-River Canada</td><td>Sprague Dawley Rat (Crl :SD) ; Code de souche : 400</td><td>environ 200 g</td></tr><tr><td>Vaporisateur Isoflorane</td><td>Benson medical industries inc.</td><td>TEC III Isoflurane ; code produit : 53-T3ISO&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Isoflorane</td><td>Fresenius Kabi Santé animale</td><td>Isoflorane ; code produit CP0406V2</td><td>&nbsp ; Flacon de 250 mL</td></tr><tr><td>Scalpel jetable</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>#15 Scalpels stériles en acier inoxydable ; numéro de catalogue 549-9-15S</td><td></td></tr><tr><td>Pince de microscopie</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>Pince de microscopie Aesculap, Finepoint, 115 mm ; numéro de produit 5443</td><td></td></tr><tr><td>Pince Adson</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>Pince de dissection Aesculap Adson, courbée, 120 mm ; numéro de produit 5002-9</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux chirurgicaux incurvés</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>Ciseaux chirurgicaux, courbés, inox 105 mm ; numéro de catalogue 1376</td><td></td></tr><tr><td>Tige métallique en acier inoxydable 0,9 mm</td><td>goodfellow.com</td><td>Acier inoxydable - AISI 316L Diamètre du fil :0,9 mm ; code de commande 911-684-65</td><td></td></tr><tr><td>Crochets pour peau - en acier inoxydable</td><td>goodfellow.com</td><td>Acier inoxydable - AISI 316L Diamètre :0,9 mm ; code de commande 911-684-65</td><td></td></tr><tr><td>4-0 Suture en soie</td><td>esutures.com</td><td>4-0 Sofsilk noir 98" brin ; numéro de produit LS640</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Suture Vicry</td><td>esutures.com</td><td>5-0 Vicryl non teint 27 » RB-1 cône ; numéro de produit J213H</td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguille</td><td>Medsupplier.com</td><td>Integra Miltex Carb-N-Sert Baumgartner Porte-aiguille - 5 1/2 » ; code produit SKU NEE4484-8-40TC SKU NEE4484-8-40TC SKU NEE4484-8-40TC&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Temgesic (Buprénorphine)</td><td>première fourniture vétérinaire</td><td>Buprenex 0,3MG/ml ampères ; article #075701</td><td></td></tr><tr><td>Seringue de 1 mL avec aiguille de 27 G</td><td>Fisher Scientific</td><td>BD&nbsp ; Seringue à tuberculine, BD 309623</td><td></td></tr><tr><td>20 g Angiocath</td><td>Fisher Scientific</td><td>Andwin Scientific&nbsp ; ANGIOCATH 20 GA ; N° de catalogue </td><td></td>NC9561906</tr><tr><td>Régime de récupération</td><td>clearh2o</td><td>DietGel 31M ; 72-08-5022</td><td></td></tr><tr><td>C57Bl/6 souris femelles</td><td>Charles-River Canada</td><td>C57BL/6 souris (C57BL/6NCrI) ; Code de souche : 027</td><td>environ 18 g</td></tr><tr><td>24 G angiocath</td><td>Fisher Scientific</td><td>Hanna Pharmaceutical Supply Co., Inc.&nbsp ;IV CATH ANGIOCATH 24GX3/4IN ; N° de catalogue </td><td></td>NC9814340</tr><tr><td>5-0 Ethibond</td><td>esutures.com</td><td>5-0 Ethibond vert 30" RB-1 cône ; numéro de produit X550H</td><td></td></tr><tr><td>Aiguille de seringue 26 G</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>BD Precisionglide aiguille de seringue, calibre 26 ; z192392</td><td></td></tr><tr><td>Normal Saline</td><td>Baxter</td><td>0,9 % chlorure de sodium injectable, USP, 100 mL MINI-BAG ; code de produit 2B0043</td><td></td></tr></tbody></table>

préservation des nerfs obstruction à mi-urétrale (nemo) chez les femelles petits rongeurs

Nerve-sparing Mid-urethral Obstruction (NeMO) in Female Small Rodents

obstruction partielle de sortie de la vessie (pBOO) a une prévalence élevée, provoque la charge des patients importants et des coûts énormes de soins de santé. Le modèle animal le plus commun pour étudier le remodelage de la vessie chez les rongeurs femelles pBOO sont soumis à une obstruction partielle à l&#39;urètre proximal. Variabilité dans le degré d&#39;obstruction et de la mortalité des animaux sont des préoccupations majeures avec obstruction proximale. En outre, la dissection autour du col de la vessie et l&#39;urètre proximal met en danger l&#39;innervation de la vessie. Nous avons développé un modèle avec préservation nerveuse obstruction à mi-urétrale (NEMO) pour pBOO éviter les inconvénients du modèle traditionnel. Nous avons approché l&#39;urètre juste inférieur à la symphyse pubienne, ce qui rend inutile pour laparotomie, ainsi que pour la dissection dans ce domaine; En outre, le sphincter urétral striée est restée intacte. Nous avons effectué NEMO chez des rats Sprague-Dawley femelles (12 obstructions, 6 animaux fictifs), ainsi que chez les souris C57 / BL6 femelles (20 obstructions, 18 animaux sham). Au bout de deux semaines, nous avons évalué la fonction de la vessie, de la masse de la vessie, et la masse corporelle. Nous avons eu aucune mortalité chez les rats femelles obstructed- ou une opération fictive; comme décrit pour la partie proximale traditionnelle pBOO-méthode, on a attaché le fil de suture autour de l&#39;urètre proximal et placé temporairement tige métallique de 0,9 mm. NEMO induit une masse de la vessie en augmentation de 85% au bout de deux semaines, le volume d&#39;urine résiduelle moyenne est de 0,4 mL chez le rat partiellement obstrués tandis que seulement 0,03 mL chez les animaux fictifs. Chez les souris, nous avons testé 3 tailles de canules que nous avons placé le long de l&#39;urètre lors de l&#39;amarrage de la suture. Nous avons constaté que l&#39;aide d&#39;une canule de calibre 27 a donné lieu à plus de 50% la mortalité des animaux; placer la canule de calibre 25 n&#39;a donné la réponse souhaitée en augmentant la masse de la vessie; en utilisant une canule de calibre 26 a donné des résultats favorables avec la mortalité animale minimale (08/01) encore une importante augmentation de 2 fois la masse de la vessie.

Préservation des nerfs Obstruction à mi-urétrale (NEMO) chez les rats femelles Mortalité Nous avons effectué une obstruction mi-urétrale sur plus de 40 rats femelles jusqu&#39;à présent et n&#39;a pas de mortalités. Masse de la vessie <p class="jove_cont...

modélisation classique de l&#39;obstruction partielle de la vessie chez les rongeurs se heurte à la mortalité des animaux. Une blessure à la dénervation de dissection autour de l&#39;urètre proximale et col de la vessie est également une préoccupation majeure. Nous avons développé et évalué un modèle d&#39;obstruction à mi-urétrale sûre et fiable, en évitant les lacunes du modèle traditionnel.

Préservation des nerfs Obstruction à mi-urétrale (NEMO) chez les femelles petits rongeurs

Partial bladder outlet obstruction (pBOO) has a high prevalence, causes significant patient burden, and immense health care costs. The most common animal ...

L'objectif général de cette technique est de créer chirurgicalement une obstruction partielle du décolletage vésical chez de petits rongeurs femelles en préservant l'innervation du décolletage vésical, avec une faible morbidité animale, pratiquement aucune mortalité et peu de variabilité du degré d'obstruction. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés concernant le remodelage vésical induit par l'obstruction, telles que : quelles sont les profils d'expression génique et les modifications épigénétiques associées à l'obstruction du décolletage ? Les principaux avantages de cette technique sont sa fiabilité et le fait qu'elle évite la nécessité d'une dissection autour du col vésical, préservant ainsi l'innervation du décolletage vésical.L'implication de cette technique s'étend à la thérapie de l'obstruction vésicale, car la phase suivant le soulagement et la récupération peut être évaluée de manière reproductible. La récupération après une obstruction vésicale est imprévisible chez l'humain. Grâce à cette technique, l'obstruction peut être supprimée, permettant d'évaluer les réponses cellulaires et tissulaires associées à la récupération après l'obstruction.Nous avons élaboré cette méthode lorsque nous avons constaté que l'obstruction traditionnelle, plus proximale, était associée à des troubles vésicaux indésirables importants ainsi qu'à une dysmorphie, après des dissections factices sans obstruction chirurgicale réelle. Commencez par placer un rat femelle de 200 grammes sur un tapis chauffant, puis fixez les membres et la queue avec du ruban adhésif. Ensuite, effectuez la désinfection et placez des serviettes stériles sans couvrir le bas de l'abdomen.Ensuite, utilisez un angiocathéter de 20 g pour cathétériser la vessie, et fixez le cathéter avec du ruban adhésif. Puis, sous un microscope stéréoscopique, utilisez un scalpel pour pratiquer une incision cutanée longitudinale de huit millimètres, partant de la symphyse pubienne palpable en direction du méat urétral. Relevez la peau de chaque côté de l'incision afin d'en faciliter la fermeture ultérieure, et utilisez des ciseaux fins pour effectuer une dissection émoussée par écartement longitudinal afin d'identifier l'urètre raccourci.Placer des crochets cutanés fins auto-rétentifs pour améliorer l'exposition de l'urètre, et utiliser une dissection émoussée analogue pour soulever le faisceau neurovasculaire situé en avant. À l’aide de ciseaux courbes et d’une légère écartement longitudinal, développer le plan entre l’urètre et le vagin, en arrière de l’urètre. Passer ensuite émoussément une suture en soie 4-0 derrière l’urètre, et préparer le double nœud du nœud chirurgical.Ensuite, retirez l'angiocathéter et placez une tige métallique de 0,9 millimètre parallèlement à l'urètre. Serrez le nœud autour de l'urètre et de la tige métallique de manière à ce que la tige puisse encore glisser facilement, puis fixez le nœud avec trois tours supplémentaires doux. Après le dernier tour, retirez la tige et coupez les extrémités du fil chirurgical à environ trois à quatre millimètres de longueur, en utilisant un point simple variable de fil 4-0 tressé résorbable, afin de rapprocher les glandes paraurétrales.Ensuite, fermer la peau à l’aide d’un point de suture horizontal en surjet variable, en utilisant le même fil résorbable, et injecter l’analgésique approprié. Pour l’obstruction urétrale moyenne respectant les nerfs, ou NeMO chez la souris, placer une souris femelle C-57 black-6 de 18 grammes sur un tapis chauffant en position dorsale, et immobiliser les membres à l’aide de ruban adhésif. Puis désinfecter la zone et disposer des champs stériles sans couvrir le bas de l’abdomen.Ensuite, sous un microscope stéréoscopique, cathétériser la vessie à l’aide d’un cathéter angiocath de 24, et fixer le cathéter avec du ruban adhésif. Sous un microscope stéréoscopique, utiliser un scalpel pour pratiquer une incision cutanée longitudinale de six millimètres, depuis la symphyse pubienne palpable jusqu’au méat urétral. Puis disséquer par voie émoussée à l’aide de fines ciseaux afin d’identifier l’urètre raccourci.En utilisant une extension longitudinale douce, en direction dorsale par rapport à l'urètre, dégagez le plan entre l'urètre et le vagin. Puis passez émoussément une suture non résorbable tressée 5-0 derrière l'urètre, et préparez le double nœud du nœud chirurgical. Connectez maintenant une seringue d'un millilitre à l'angiocathéter, et injectez 0,1 millilitre de sérum physiologique dans la vessie.Lorsque toute la solution saline a été administrée, utilisez le nœud pour ancrer délicatement une canule de calibre 26, parallèlement à l'urètre, tout en retirant l'angiocathéter. Fixez le nœud avec trois tours supplémentaires doux, puis retirez la canule et appliquez une pression douce sur la vessie pour vérifier l'apparition d'urine au méat. Coupez les extrémités du fil chirurgical à environ trois millimètres.Ensuite, utilisez un fil de suture résorbable tressé 5-0 pour fermer la peau à l’aide d’un point de suture horizontal variable, puis injectez l’analgésie appropriée avant de placer la souris dans une cage de récupération. Le rapport moyen de la masse vésicale relative par rapport à la masse corporelle chez les rats NeMO ayant subi une opération témoin est de 0,33 % deux semaines après l’intervention, tandis que chez les rats obstructifs, il est de 0,6 %, soit une augmentation de 85 % de la masse vésicale relative chez ces animaux. Les rats NeMO ayant subi une opération témoin présentent pratiquement aucune urine résiduelle pouvant être aspirée par ponction vésicale au moment de la récolte de l’organe.Les animaux obstrués présentent, en revanche, un volume moyen d'urine résiduelle significativement plus élevé, de 0,42 millilitre. Dans l'ensemble, la mortalité des souris augmente chez les animaux soumis à une intervention factice et chez ceux opérés selon la méthode NeMO, à mesure que la taille de la canule d'occupation diminue. En outre, l'utilisation d'une canule de calibre 25 n'augmente pas efficacement le rapport masse de la vessie/masse corporelle chez la souris, tandis que l'utilisation d'une canule de calibre 26 entraîne une augmentation de plus de deux fois la masse relative de la vessie.Lorsqu'un espaceur de calibre 27 est appliqué, une augmentation de plus de 60 % de la masse vésicale relative est observée deux semaines après l'intervention. En outre, une obstruction partielle du débit vésical à l'aide d'une canule de calibre 25 ou 26 le long de l'urètre ne modifie pas le volume résiduel d'urine au cours de la période expérimentale de deux semaines. Bien que les animaux porteurs d'un espaceur de calibre 27 présentent une augmentation moyenne du volume urinaire résiduel trois fois supérieure par rapport à leurs témoins soumis à une intervention factice.Après un certain entraînement, les procédures NeMO et NeMO placebo peuvent être réalisées en 10 à 15 minutes. Lors de la réalisation de NeMO chez la souris, il est important de s'assurer qu'il n'existe pas d'obstruction complète, en exprimant doucement une petite quantité d'urine avant de refermer l'animal. Après cette procédure, d'autres méthodes, comme l'inclusion d'animaux sham proximaux, peuvent être mises en œuvre pour répondre à des questions supplémentaires concernant la contribution relative ou l'association de stimuli neurogènes locaux au niveau du col vésical entraînant une dysfonction vésicale, une dysmorphie et une régulation anormale des gènes.On s'attend à ce que cette technique ouvre la voie aux chercheurs dans le domaine de la myopathie vésicale obstructive pour explorer comment les perturbations anatomiques et neurogènes de la sortie vésicale contribuent à l'apparition et à la récupération de l'obstruction des voies urinaires.

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