Name: Minimalement invasive Transverse Aortic constriction chez la souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 40 s
Description: Découvrez la constriction aortique transversale minimalement invasive chez la souris pour induire l'hypertrophie ventriculaire gauche sans ventilation artificielle. Cette méthode simplifiée facilite les études à haut débit sur la surcharge ventriculaire.

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Nous tenons à remercier le Fonds pour la recherche universitaire en sciences de la vie (ULS) de l&#39;Université polytechnique de Hong Kong pour la fourniture de Vevo 2100 échographe. Remerciements particuliers à Dr. Chunyi Wen de la Division interdisciplinaire de génie biomédical, Hong Kong Polytechnic University, de formation et de facilitation. Ce travail a été soutenu par le gouvernement HK RGC Grant GRF 17127215, 764812 et HKU6 / CRF / 11G à Billy KC Chow.

Le protocole suit les directives du Comité sur l&#39;utilisation des animaux vivants dans l&#39;enseignement et la recherche (CULATR) à l&#39;Université de Hong Kong. 1. Opération de préparation du site <ol><li> Désinfecter le site de l&#39;opération avec 75% d&#39;alcool isopropylique. Réglez la température du coussin chauffant à 37 ° C pour éviter des changements dans le cœur et la fréquence respiratoire du sujet animal. </li><li> Utiliser des instruments chirurgicaux stérilisés dans un autoclave à déplacement par gravité à 121 ° C pendant 30 minutes, ou par d&#39;autres méthodes appropriées. </li><li> Prendre 2 - 4 aiguilles de calibre 30 et leur courbe avec un porte-aiguille, comme on le voit sur la figure 1, pour fabriquer un outil pour la ligature et le tissu de séparation et destiné à être utilisé en tant que rouleur. Monter l&#39;aiguille maintenant courbe sur un coton pour une utilisation en chirurgie. </li><li> Blunt une aiguille de calibre 27 et de la courbe, il 90º avec le porte-aiguille. Lisser la pointe en frottant une surface dure pour faire un 0,4-mm entretoise à l&#39;étape de ligature. </li></ol><ol><li> Anesthetize à 2 mois, mâle, 22-25 g C57BL / 6N souris avec un kétamine approprié et mélange de xylazine par rapport au poids corporel: 100 mg / kg + 10 mg / kg ip Confirmez le anesthetization avec la queue négative pincée réflexe . </li><li> Retirez les cheveux sur la partie antérieure du cou et de la poitrine avec une application de 2 à 3 min de la crème dépilatoire. Retirer la crème à l&#39;eau tiède et un applicateur de coton. </li><li> Appliquer une pommade ophtalmique ou de gel pour les yeux de l&#39;animal pour éviter le dessèchement de la cornée. </li><li> Placez l&#39;animal sur un coussin chauffant en position couchée et effectuer une surveillance peropératoire, en étant sûr de conserver la documentation appropriée à chaque intervalle de 15 min. </li><li> Utilisez du ruban de papier chirurgical pour fixer les membres au coussin chauffant afin de maintenir l&#39;animal dans la position correcte pendant la chirurgie. </li><li> Désinfecter la peau en alternance avec de l&#39;alcool et la solution de povidone-iode trois fois. </li><li> Utilisez un dr stérilesinge avec un champ d&#39;opération exposée pour éviter la contamination. Utiliser de nouveaux gants stériles pour chaque souris et au besoin. </li></ol> 3. Procédure Ligation <ol><li> Ouvrir la peau de la souris à la position de la ligne médiane du cou et de la poitrine avec un scalpel. </li><li> Tirez la glande thyroïde vers la tête en séparant doucement les tissus conjonctifs avec des ciseaux émoussés. </li><li> Séparer la couche musculaire de la trachée à l&#39;axe médian en direction des deux côtés avec des aiguilles courbes. </li><li> En utilisant les ciseaux émoussés, couper le sternum à la deuxième nervure (environ 5 mm). Ouvrez la coupe avec un écarteur ou pince courbe. </li><li> Séparer les lobes thymus les uns des autres et de la paroi inférieure de la poitrine, en séparant le tissu conjonctif avec l&#39;aiguille courbe; la crosse aortique et deux artères carotides sont bien visibles à ce stade. </li><li> Placer l&#39;aiguille courbée sous la voûte plantaire et perforent entre la paroi du vaisseau et du tissu conjonctif de l&#39;autre côté par le pushing la tête courbée sur. </li><li> Utilisation de l&#39;aiguille courbe, tirer la suture 6-0 monofilament sous la crosse de l&#39;aorte. </li><li> Placez l&#39;entretoise dans la boucle et fixer la suture en place avec un double noeud. Retirer l&#39;entretoise doucement. </li><li> Confirmer une constriction réussie avec la position de noeud et couper les extrémités de la suture. </li><li> Fermez la paroi thoracique en utilisant 6/0 suture de soie avec un motif de suture interrompue simple. Fermer la peau avec une suture mono-filament 6/0 dans un motif de suture continue. </li></ol> Soins 4. post-opératoire <ol><li> Appliquer la solution de povidone-iode au site de suture et placer l&#39;animal dans une cage préchauffée pour la récupération et le suivi post-opératoire. </li><li> Injecter buprénorphine (0,05 à 0,1 mg / kg sc toutes les 12 h) après que l&#39;animal a repris conscience pour soulager la douleur et de fournir la souris avec de la nourriture appropriée et douce. </li><li> Retour de l&#39;animal à un 12 h de lumière / salle de cycle d&#39;obscurité après guérison complète. </li></ol> 5.Échocardiographie: Confirmation de Ligation et mesures réussie <ol><li> Après une semaine, anesthésier la souris préalablement bagué avec 3-5% d&#39;isoflurane, pour l&#39;induction, et de 1 à 1,5%, pour l&#39;entretien, avec un taux de 1 L / min d&#39;oxygène flux. </li><li> Retirez les cheveux de la poitrine à l&#39;aide de la crème dépilatoire. Retirer soigneusement la crème avec de l&#39;eau chaude et un applicateur de coton. </li><li> Fixer la souris dans la position couchée à la plate-forme des animaux de manutention, maintenu à 37 ° C. Appliquer le gel d&#39;électrode sur les pattes et les enregistrer sur le tampon avec des électrodes. </li><li> Appliquer le gel échographique à la poitrine de la souris. Avec une sonde de 40 MHz MS550D et un système d&#39;ultrasons à haute fréquence, effectuer Doppler couleur et Doppler pulsé à balayage d&#39;ondes sur les artères carotides gauche et droite, ainsi que sur la crosse aortique. </li><li> Utilisation de B-Mode, localiser le ventricule gauche. En utilisant M-mode, la tension artérielle systolique et diastolique, l&#39;épaisseur de paroi peuvent être mesurées. Utilisez Cine Store et Cadre Store pour sauvegarder les données et les images selon les besoins. </li><li> Uchanter B-Mode, recherchez la gauche artère carotide commune avant le point de ramification. Utilisez pulsée-ondes et Doppler couleur pour évaluer l&#39;écoulement. Répéter l&#39;opération avec l&#39;artère carotide droite à un point similaire. Enregistrez les images dans Cine Store et modes Cadre de magasins pour analyser plus tard. </li><li> Inclinez la plate-forme des animaux de manutention à l&#39;extrême gauche de sorte que la souris est en position de décubitus gauche. Placer la sonde sur la souris, 30 ° décalés par rapport à une position parallèle à la tête à la position parasternale, et manipuler X et Y pour trouver la crosse de l&#39;aorte. </li><li> Localisez la constriction. Utilisez le mode Doppler couleur pour rendre le site de la constriction plus visible, que le sang sera coule à travers un canal étroit entre le point où les deux artères carotides ramifient de la crosse aortique. </li><li> Utilisez pulsée-ondes et Doppler couleur pour mesurer la vitesse du débit de pointe. Utilisez Cine Store et Cadre Store pour sauvegarder les données et les images selon les besoins. </li><li> Laisser l&#39;animal de récupérer sur un coussin chauffant en position couchée.Retour à l&#39;animal de la cage d&#39;origine dans un / salle de cycle d&#39;obscurité de 12 h de lumière après qu&#39;il a complètement récupéré de l&#39;anesthésie. </li></ol>

<ol><li>Rockman, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+atrial-specific+and+inducible+expression+of+an+atrial+natriuretic+factor+transgene+in+an+in+vivo+murine+model+of+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 88 (18), 8277-8281 (1991).</li>
<li>de Almeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20410870">Transverse aortic constriction in mice.</a> J Vis Exp. (38), (2010).</li>
<li>Hu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimally+invasive+aortic+banding+in+mice%3A+effects+of+altered+cardiomyocyte+insulin+signaling+during+pressure+overload%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Minimally invasive aortic banding in mice: effects of altered cardiomyocyte insulin signaling during pressure overload.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 285 (3), H1261-H1269 (2003).</li>
<li>Shimizu, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excessive+cardiac+insulin+signaling+exacerbates+systolic+dysfunction+induced+by+pressure+overload+in+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Excessive cardiac insulin signaling exacerbates systolic dysfunction induced by pressure overload in rodents.</a> J Clin Invest. 120 (5), 1506-1514 (2010).</li>
<li>Tarnavski, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+surgical+models+in+cardiovascular+research%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Mouse surgical models in cardiovascular research.</a> Methods Mol Biol. 573, 115-137 (2009).</li>
<li>Zhang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+murine+model+for+the+study+of+reverse+cardiac+remodelling%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Cardiol%22%5BJournal%5D)">A modified murine model for the study of reverse cardiac remodelling.</a> Exp Clin Cardiol. 18 (2), e115-e117 (2013).</li>
<li>Hartley, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+estimation+of+reduced+coronary+flow+reserve+in+mice+with+pressure+overload+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Doppler estimation of reduced coronary flow reserve in mice with pressure overload cardiac hypertrophy.</a> Ultrasound Med Biol. 34 (6), 892-901 (2008).</li>
<li>Scherrer-Crosbie, M., Thibault, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiography+in+translational+research%3A+of+mice+and+men%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">Echocardiography in translational research: of mice and men.</a> J Am Soc Echocardiogr. 21 (10), 1083-1092 (2008).</li>
<li>Faerber, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+heart+failure+by+minimally+invasive+aortic+constriction+in+mice%3A+reduced+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma+coactivator+levels+and+mitochondrial+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Induction of heart failure by minimally invasive aortic constriction in mice: reduced peroxisome proliferator-activated receptor gamma coactivator levels and mitochondrial dysfunction.</a> J Thorac Cardiovasc Surg. 141 (2), 492-500 (2011).</li>
<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+Cardiac+Morphological+and+Functional+Changes+in+Mouse+Model+of+Transverse+Aortic+Constriction+by+Echocardiographic+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Assessment of Cardiac Morphological and Functional Changes in Mouse Model of Transverse Aortic Constriction by Echocardiographic Imaging.</a> J Vis Exp. (112), (2016).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Rockman et ses collègues ont conçu la première méthode pour cerclage aortique comme une méthode pour étudier une surcharge de pression dans le cœur. Cette recherche a permis de commencer à découvrir les conséquences cellulaires et moléculaires de l&#39; hypertension et l&#39; insuffisance cardiaque 1. Un procédé amélioré, minimalement invasive constriction aortique transverse (MTAC), fournit une méthode souple, en fonction du temps pour l&#39;induction d&#39; une surcharge de pression ventriculai...

<html> L&#39;objectif général de cet article est de montrer comment une constriction aortique transverse (TAC) chez la souris peut être modifié pour produire une opération plus simple et plus avantageux. TAC a été introduit en 1991 1 et a permis à des biologistes moléculaires pour étudier les voies cellulaires et moléculaires qui conduisent à une hypertrophie du ventricule gauche et à l&#39; insuffisance cardiaque, en particulier chez les petits animaux avec des génomes manipulés 2, 3, 4, 5, 6. En dépit de son efficacité à produire une surcharge de pression désirée, cette technique est finalement limitée par la difficulté à exécuter la procédure et par son faible taux de survie. Un chirurgien conduite TAC doivent être en mesure d&#39;effectuer une intubation trachéale, thoracotomie, et utiliser une ventilation artificielle, afin d&#39;éviter l&#39; effondrement du poumon 1. content &quot;&gt; Souvent, une méthode simple et moins invasive est souhaitée. En conséquence, peu invasive constriction aortique transverse (MTAC) a été conçu 3. Bien que les résultats ( en particulier, l&#39; hypertrophie ventriculaire gauche) est le même, la procédure implique beaucoup moins d&#39; appareils et moins de dommages à l&#39;animal. MTAC se révèle être un procédé souhaitable, qui a un taux de survie plus élevé, supérieur à 90% et possède un temps de fonctionnement de seulement 15 à 25 min. les rares cas de décès après une opération réussie peut être due à une trop constriction -tight de la crosse aortique, ce qui entraîne une surcharge ventriculaire gauche énorme et la réduction fatale de l&#39;approvisionnement en sang vers les organes critiques tels que les reins. Après la procédure est terminée, l&#39;échocardiographie peut être utilisé pour évaluer le succès de baguage et la morphologie cardiaque et la fonction. Un système à ultrasons à haute fréquence peut être utilisée pour mesurer le diamètre et le débit des changements dans la gauche et à droiteartères carotides, pour visualiser l&#39;étranglement de l&#39; arc aortique pour mesurer la vitesse d&#39;écoulement de pointe, et de déterminer l&#39;épaisseur de la paroi du ventricule gauche et les paramètres fonctionnels 7, 8. Après l&#39;euthanasie, les organes peuvent aussi être collectées pour des études histopathologiques avec hématoxyline et éosine et picrosirius collagène coloration, ce dernier étant particulièrement utile pour l&#39;observation de la fibrose.

<table><tbody><tr><td>Aiguilles de calibre <>1 pouce 30</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ 07417, États-Unis.</td><td>305128</td><td>Courbée comme dans la procédure et Figure 1<</td></tr><tr><td>strong>27 Gauge Needle</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ 07417, USA.&nbsp ;</td><td>301629</td><td>Rendre émoussé et lisse pour spacer</td></tr><tr><td>6/0 Dafilon</td><td>B. Braun, 34212 Melsungen, Hesse, Allemagne.</td><td>C0933066</td><td></td></tr><tr><td>6/0 Silkam</td><td>B. Braun, 34212 Melsungen, Hesse, Allemagne.</td><td>C0762067</td><td></td></tr><tr><td>Sterile gloves</td><td>A.R. Medicom, Inc (Asie), Hong Kong.</td><td></td><td></td></tr><tr><td><applicateur de coton >strong</td><td>Mannings, Quarry Bay, Hong Kong.</td><td></td><td>Local Shopping Center</td></tr><tr><td>Depilatory Cream</td><td>Veet (Hong Kong), Kwun Tong, Kowloon, Hong Kong</td><td></td><td>Local Shopping Center</td></tr><tr><td>Lexer-Baby Scissor</td><td>FST, Colombie-Britannique V7H 0A6, Canada.</td><td>14078-10</td><td></td></tr><tr><td>Pince à iris incurvée</td><td>FST, Colombie-Britannique V7H 0A6, Canada.</td><td>11065-07</td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguille Micro Olsen-Hegar</td><td>WPI, Sarasota, FL 34240, États-Unis.&nbsp ;</td><td>501989</td><td></td></tr><tr><td>Stereo Micrioscope</td><td>WPI, Sarasota, FL 34240, États-Unis.&nbsp ;</td><td>PZMIII-BS</td><td></td></tr><<tr><td>strong>GenTeal Eye Gel</td><td>Novartis, East Hanover, NJ 07936, États-Unis.&nbsp ;</td><td></td><td>Local Pharmacy</td></tr><tr><td>Heating Pad</td><td>Kent Scientific Corporation, Torrington, CT 06790, États-Unis.</td><td>DCT-20</td><td></td></tr><tr><td>Ruban chirurgical</td><td>Laboratory Animal Unit</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kétamine and Xylazine</td><td>Laboratory Animal Unit</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Laboratory Animal Unit</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphine</td><td>Laboratory Animal Unit</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

minimalement invasive transverse aortic constriction chez la souris

Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice

Minimalement invasive constriction aortique transverse (MTAC) est une méthode plus souhaitable pour le rétrécissement de l&#39;aorte transverse chez la souris que thorax ouvert constriction aortique transverse standard (TAC). Bien que la constriction aortique transverse est un procédé hautement fonctionnel pour l&#39;induction de la haute pression dans le ventricule gauche, il est une procédure plus longue et difficile en raison de son utilisation de la ventilation artificielle avec intubation trachéale. TAC est souvent aussi moins survivable, comme la méthode plus récente, MTAC, ne requiert pas le découpage des côtes et les muscles intercostaux ni intubation trachéale avec une installation de ventilation. Dans MTAC, par opposition à une thoracotomie pour avoir accès à la cavité thoracique, la crosse aortique est atteint par une incision médiane dans la partie antérieure du cou. La thyroïde est tirée en arrière pour révéler l&#39;encoche sternale. Le sternum est ensuite coupé au niveau de la seconde nervure et la crosse aortique est atteint simplement en séparant les tissus conjonctifs et le thymus. Delà, une suture peut être enroulé autour de l&#39;arc et à égalité avec une entretoise, puis la coupe sternal et de la peau peut être fermé. MTAC est une manière beaucoup plus rapide et moins invasive pour induire gauche hypertension ventriculaire et permet la possibilité pour les études à haut débit. Le succès de l&#39;étranglement peut être vérifiée à l&#39;aide à haute fréquence échocardiographie trans-thoracique, en particulier Doppler couleur et pulsé onde Doppler, afin de déterminer les vitesses d&#39;écoulement de l&#39;arc aortique et à gauche et les artères carotides droite, la dimension des vaisseaux sanguins, et la fonction ventriculaire gauche et la morphologie. Une constriction réussie sera également déclencher des changements histopathologiques importants, tels que l&#39;hypertrophie cardiaque des cellules musculaires avec une fibrose interstitielle et périvasculaire. Ici, la procédure de MTAC est décrit, ce qui démontre comment les changements de flux résultant dans les artères carotides peuvent être examinées avec l&#39;échocardiographie, la morphologie générale, et des changements histopathologiques dans le cœur.

MTAC permet l&#39;induction d&#39;une hypertension importante dans le ventricule gauche en temps voulu. Comme on le voit sur la figure 1, la préparation des principaux outils pour la procédure est simple et minimal, ne nécessitant que 2 - 4 aiguilles de calibre 30 à cintrer et maintenu en place avec un tube de polyuréthane. La procédure chirurgicale elle-même est également moins compliqué, par rapport au TAC, ...

Minimalement invasive constriction aortique transverse (MTAC) conserve l&#39;essentiel de constriction aortique transverse régulière (TAC), tout en éliminant l&#39;utilisation d&#39;un ventilateur avec intubation trachéale. Il se révèle être une méthode hautement souhaitable pour les études à haut débit sur la surcharge ventriculaire gauche, en particulier dans les études translationnelles.

Minimalement invasive Transverse Aortic constriction chez la souris

Minimally invasive transverse aortic constriction (MTAC) is a more desirable method for the constriction of the transverse aorta in mice than standard ...

L'objectif général de cette procédure est d'induire une hypertrophie du ventricule gauche en comprimant l'arc aortique transverse à l'aide d'une intervention chirurgicale simple qui ne nécessite pas de ventilation artificielle. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la cardiologie concernant le remodelage myocardique, l'hypertrophie cardiaque, l'apoptose et la fibrose, ainsi que les conditions de surcharge de pression du ventricule gauche. Le principal avantage de cette technique est qu'elle conserve les éléments essentiels de la constriction aortique transverse classique tout en éliminant la nécessité d'utiliser un ventilateur et d'effectuer une intubation trachéale.Avant de commencer la procédure, utilisez un porte-aiguille pour courber les extrémités de deux à quatre aiguilles de calibre 30, puis fixez les aiguilles sur des applicateurs en coton individuels. Ensuite, émousser une aiguille de calibre 27 et utilisez le porte-aiguille pour plier l'extrémité à 90 degrés. Puis, lissez l'extrémité sur une surface dure afin d'obtenir un espaceur de 0,4 millimètre.Après avoir confirmé le niveau approprié de sédation par l'absence de réaction à une pr

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Constriction aortique transverse (TAC) chez la souris est un modèle couramment utilisé expérimental pour étudier les mécanismes qui sous-tendent l'hypertrophie cardiaque et le développement d'insuffisance cardiaque. Ici, nous décrivons les procédures de la constriction de l'aorte afin de créer un diplôme reproductible de l'hypertrophie cardiaque chez la souris.

Constriction aortique transverse chez la souris

Dans cette vidéo, nous démontrons un protocole expérimental de constriction aortique transverse mini-invasive chez la souris pour examiner l’insuffisance cardiaque induite par une surcharge de pression.

Bande transversale de l’arc aortique dans un modèle murin : une technique peu invasive chez la souris pour l’induction d’une pression élevée dans le ventricule gauche

L'objectif de ce protocole est d'évaluer de manière non invasive des changements structurels et fonctionnels cardiaques dans un modèle murin de maladie cardiaque créée par constriction aortique transverse, en utilisant B et M-Mode échocardiographie et la couleur / impulsion Doppler imagerie.

Évaluation des cardiaques morphologiques et fonctionnelles changements dans le modèle de souris de Transverse Aortic Constriction par échocardiographie Imaging

Le but du présent protocole est de décrire étape par étape la technique de constriction aortique transversale peu invasive (TAC) chez la souris. Par élimination d’intubation et ventilation obligatoires pour la procédure standard couramment utilisée, TAC minimalement invasive simplifie l’intervention chirurgicale et réduit l’exercée sur l’animal.

Technique mini-Invasive transversal constriction aortique chez les souris pour l’Induction de l’hypertrophie ventriculaire gauche

Nous présentons ici un protocole de constriction transversal aortique (TAC) par une thoracotomie latérale. Cette technique est une intervention chirurgicale thoracique minimalement invasive, fermé visant à simuler une surcharge de pression et l’insuffisance cardiaque chez les souris en utilisant des paramètres standard de laboratoire de TAC.

Un modèle à thorax fermé pour induire la Constriction de l’aorte transversale chez les souris

Ce protocole présente une méthode améliorée pour obtenir l’hypertrophie myocardique passagère avec la suture absorbable, simulant la diminution ventriculaire gauche d’hypertrophie après avoir enlevé la surcharge de pression. Il pourrait être utile pour les études sur le préconditionnement hypertrophique myocardique.

Exploitation de la constriction aortique transversale avec suture absorbable pour obtenir une hypertrophie myocardique transitoire

Le présent protocole décrit une technique modifiée et simplifiée avec une procédure de constriction aortique transverse (TAC) mini-invasive utilisant un rétracteur fabriqué par vous-même. Cette procédure peut être effectuée sans ventilateur ni microscope et introduit une surcharge de pression, conduisant éventuellement à une hypertrophie cardiaque ou à une insuffisance cardiaque.

Une technique modifiée pour la constriction aortique transversale chez la souris

Les souris transgéniques ont été extrêmement utiles en attribuant la fonction physiologique des gènes. En tant que tel, la recherche en général, et les études fonctionnelles des voies respiratoires, en particulier, ont subi un changement remarquable vers des modèles murins. Ici, nous fournir des protocoles...

Les mesures in vitro de constriction trachéale l&#39;aide de souris

La technique établie pour inoculer des xénogreffes invasifs primaires de cancer de la vessie orthotopique nécessite une laparotomie et de mobilisation de la vessie. Cette procédure inflige une morbidité importante sur les souris, est techniquement difficile et de longue haleine. Nous avons donc développé une haute précision, approche percutanée utilisant un guidage échographique.

Minimalement invasive Création d&#39;murin orthotopique de la vessie xénogreffes

Ce protocole décrit une technique d’ostéosynthèse mini-invasive utilisant une vis intramédullaire pour stabilisation normalisée des fractures du fémur, qui peut être utilisé pour analyser des os endochondral guérison chez les souris.

Un modèle mini-Invasive pour analyser Endochondral Fracture de guérison chez des souris dans des Conditions biomécaniques

Découvrez la constriction aortique transversale minimalement invasive chez la souris pour induire l'hypertrophie ventriculaire gauche sans ventilation artificielle. Cette méthode simplifiée facilite les études à haut débit sur la surcharge ventriculaire.

Minimalement invasive Transverse Aortic constriction chez la souris

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