Name: Détermination de la puissance Relative d’un anticorps Monoclonal Anti-TNF (mAb) de neutralisants TNF en utilisant une méthode de Bioanalytical In Vitro (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 7 s
Description: Découvrez comment mesurer la puissance relative des anticorps monoclonaux anti-TNF-alpha en utilisant des cellules WEHI 164. Cette méthode bioanalytique permet d'évaluer l'efficacité de neutralisation pour le développement thérapeutique.

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Ce travail a été soutenu par le Conseil National de la Science et technologie (CONACYT), le Mexique accorde le PEI CONACYT 2015 220333, sans participation à la conception de l’étude.

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Les auteurs n’ont rien à divulguer

Cette caractérisation permet de déterminer a priori le comportement biologique d’une molécule en cours d’élaboration avant et coûteux essais cliniques sont menés. Il est également utile pour la libération de lot d’un médicament approuvé. Il est à noter que ces tests sont utiles pour déterminer si une molécule possède un effet biologique adéquat concernant son mécanisme d’action. La méthode bio-analytique présentée dans ce tutoriel est cruciale à la comparaison de molécules différentes par les anti-TNFα. Malgré l...

Activité biologique est la mesure quantitative de l’activité biologique basée sur les attributs de produit dosé qui sont liés aux propriétés biologiques pertinentes, alors que la quantité (exprimée en masse) est une mesure physico-chimiques de la teneur en protéines. Tests d’activité, ainsi que d’autres méthodes d’analyse, sont effectuées dans le cadre de conformité de produit, la stabilité et des études de comparabilité. En ce sens, les mesures de puissance sont utilisées afin de démontrer que les lots de produit respectent les attributs qualité critiques (CQA) ou les critères d’acceptation pendant toutes les phases des essais cliniques et après approbation du marché.
L’apoptose est mort cellulaire programmée, naturellement lorsque les cellules sont infectées par un virus, ou quand les cellules sont stressées par l’environnement facteur que compromis cellulaires la viabilité et la fonction1,2. Entre autres, l’inhibition de l’apoptose, ou la neutralisation biologique, est l’un des mécanismes thérapeutiques principalement connues du mAbs, particulièrement dans le traitement des maladies chroniques comme les maladies inflammatoires à médiation immunitaire. Molécules anti-TNFα exercent leurs propriétés thérapeutiques en bloquant l’interaction du facteur de nécrose tumorale alpha (TNFα) avec le p55 et p75 cellule récepteurs de surface3, empêchant ainsi les voies de signaux qui conduisent finalement à l’apoptose cellulaire.
TNFα peut produire une inflammation dans certaines maladies chroniques4. TNFα est faussement sécrétée dans le milieu extracellulaire par les macrophages, qui sont les sentinelles du système immunitaire inné et les principaux acteurs dans ce genre de maladie5. Comme un chemin d’accès commun, déréglementation de TNFα est associée à la pathogenèse de ces maladies. Sans contrôle et sous induction constante et stress cellulaire, TNFα induit la dégénérescence des cellules mort et tissus, conduisant finalement à la polyarthrite rhumatoïde, maladie de Crohn et autres profils pathologiques6.
Antagonistes du TNF qui bloquent l’interaction entre TNF et ses récepteurs ont servi plus en plus comme un traitement efficace pour réduire les symptômes et entraver la progression de ces maladies. De nos jours, les médicaments anti-TNFα sont largement utilisés pour contrôler la concentration systémique de cette cytokine, empêchant ainsi davantage de la dégénérescence des tissus impliqués. En ce sens, il est impératif de fournir un bioessai fiable et reproductible pour décrire la capacité spécifique d’un médicament d’atteindre son effet biologique.
Dans ce protocole, critique étapes identifiées lors de l’élaboration d’un test de neutralisation-pour la mesure de succès de l’activité biologique sont mises en évidence, avec un accent particulier sur les compétences nécessaires pour exécuter la méthode bio-analytique. Cette méthode bio-analytique fournit des informations utiles de comparabilité entre les différents lots ou anti-TNFα médicaments par rapport à une substance de référence testé cliniquement.

<table><tbody><tr><td>WEHI 164</td><td>ATCC</td><td>CRL-1751</td><td>Cellules de fibrosarcome de Mus musculus</td></tr><tr><td>RPMI-1640 Medium</td><td>ATCC</td><td>30-2001</td><td>Stocker le milieu à 2 &deg ; C à 8 &deg ; C</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Medium, sans rouge de phénol</td><td>GIBCO</td><td>11835-030</td><td>Stocker le medium à 2 &deg ; C à 8 &deg ; C</td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA(0,25 %),rouge de phénol</td><td>GIBCO</td><td>25200-056</td><td>Stocker le milieu à -10 &deg ; C à -20 &deg ; C</td></tr><tr><td>DPBS, sans calcium, sans magnésium</td><td>GIBCO</td><td>14190-136</td><td>Stocker le milieu à 2 &deg ; C à 8 &deg ; C</td></tr><tr><td>Protéine TNF-alpha humaine recombinante</td><td>R& D Systems</td><td>210-TA-020</td><td>Magasin à -20 &deg ; C à -70 &deg ; C</td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin (États-Unis), HyClone à très faible taux</td><td></td><td>d’IgG SH3089803</td><td>Se conserver à -10 &deg ; C à -20 &deg ; c</td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin (États-Unis), HyClone caractérisé</td><td></td><td>SH3007103</td><td>stocker à -10 &deg ; C à -20 &deg ; C</td></tr><tr><td>Caspase-Glo 3/7 Kit de dosage</td><td>Promega</td><td>G8093</td><td>Stockez le substrat Caspase-Glo. 3/7 et le tampon Caspase-Glo. 3/7 à &ndash ; 20 &ordm ; C protégé contre l’EDTA léger</td></tr><tr><td>, le sel disodique, le dihydraté, le cristal, le réactif A.C.S.</td><td>J.T.Baker</td><td>8993-01</td><td>--</td></tr><tr><td>Échantillon mAb Adalimumab</td><td>Probiomed</td><td>NA</td><td>Les concentrations finales dans la microplaque sont les suivantes :&nbsp ; 0,666, 0,333, 0,167, 0,111, 0,083, 0,056, 0,042, 0,028, 0,014 et 0,004 &mu ; g/mL</td></tr><tr><td>Anticorps monoclonal de référence et de contrôle Adalimumab</td><td>Abbvie</td><td>NA</td><td>Les concentrations finales dans la microplaque sont les suivantes : 0,666, 0,333, 0,167, 0,111, 0,083, 0,056, 0,042, 0,028, 0,014 et 0,004 Lecteur de microplaques g/mL</td></tr><tr><td></td><td>Molecular Devices</td><td>89429-536</td><td>SpectraMax M3</td></tr><tr><td>Logiciel de lecteur de microplaques multimode&nbsp ;</td><td>Dispositifs moléculaires</td><td>--</td><td>Incubateur SoftMax Pro 6.3 GxP</td></tr><tr><td>&nbsp ;</td><td>Revco&nbsp ;</td><td>30482</td> Revco RNW3000TABB Hotte à flux laminaire <td>CO2 à air pulsé</td></tr><tr><td>&nbsp ;</td><td>La Baker Company&nbsp ; &nbsp ;</td><td>200256</td><td>Boulanger SG603A-HE | Haute efficacité, Classe II Type A2&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ;</td></tr></tbody></table>

détermination de la puissance relative d’un anticorps monoclonal anti-tnf (mab) de neutralisants tnf en utilisant une méthode de bioanalytical in vitro

Determination of the Relative Potency of an Anti-TNF Monoclonal Antibody (mAb) by Neutralizing TNF Using an In Vitro Bioanalytical Method

Ce protocole indique la mesure de la neutralisation de l’activité apoptotique de TNFα dans un modèle murin de cellulaire des fibroblastes (WEHI 164) à l’aide d’un ACM anti-TNFα. En outre, ce protocole peut être utilisé pour évaluer les autres molécules anti-TNFα, telles que les protéines de fusion. Le modèle cellulaire utilisé ici est sensible à l’apoptose induite par le TNFα lorsqu’un facteur de stress supplémentaire est induit dans des conditions de culture cellulaire (p. ex., privation de sérum). Cette procédure illustre comment exécuter cet essai analytique, mettant en évidence les opérations clées concernant la préparation des échantillons, dilution de la cellule, induction de l’apoptose et des mesures spectrophotométriques qui sont essentielles pour assurer des résultats positifs. Ce protocole révèle les conditions de meilleur performances relatives à l’induction de l’apoptose et efficace signal enregistrement, conduisant à des valeurs d’incertitude faible.

Graphique de la relation dose-effet (avec contrôles) 
La figure 1 représente la réponse de luminescence versus la concentration du mAb. Cette fonction sigmoïde exemplifie la caspase 3 et 7 rejets dans le milieu de culture de dosage en raison de la lyse cellulaire. La mort cellulaire est renforcée par la privation de sérum ainsi TNFα induction de signalisation. Par conséquent, la molécule anti-TNFα (mAb) interagit avec la cytokine, inhibant...

Un protocole pour la détermination de l’activité anti-apoptotique relative d’un anti-TNFα mAb en utilisant un mécanisme de neutralisation avec cellules WEHI 164 est présenté ici. Ce protocole est utile pour comparer la force de la neutralisation des molécules différentes avec les mêmes fonctionnalités biologiques.

Détermination de la puissance Relative d’un anticorps Monoclonal Anti-TNF (mAb) de neutralisants TNF en utilisant une méthode de Bioanalytical In Vitro

This protocol shows the measurement of the apoptotic activity neutralization of TNF&#945; in a mouse fibroblast cell model (WEHI 164) using an ...

L'objectif général de cette procédure est de mesurer la puissance relative de molécules anti-TNF-alpha. Dans cet exemple, nous comparons deux anticorps monoclonaux anti-TNF-alpha afin de déterminer l'efficacité de neutralisation d'un anticorps monoclonal de référence par rapport à un anticorps monoclonal à l'étude. Ce tutoriel présente les étapes détaillées permettant de déterminer la puissance de neutralisation du TNF-alpha, étapes qui ne figurent pas dans la littérature.Les cellules peuvent être soumises à différents facteurs environnementaux de stress, par exemple la privation de nutriments. Chaque cellule possède à sa surface différents protéines appelées récepteurs. Certains d'entre eux sont spécifiques de la cytokine TNF-alpha.Lorsque cette molécule interagit avec son récepteur et qu'un signal spécifique est émis, cette voie de signalisation combinée à un facteur de stress environnemental entraîne une mort cellulaire programmée appelée apoptose. Toutefois, en présence d'une molécule anti-TNF-alpha, qui peut être un anticorps monoclonal, la cytokine peut être titrée par l'AcM, subissant ainsi un processus de neutralisation qui favorise la survie cellulaire. Ainsi, selon une méthodologie normalisée, l'efficacité de neutralisation d'une molécule peut être mesurée.Le protocole est actuellement réalisé sur cinq jours. Le premier jour, les solutions pour la culture cellulaire doivent être préparées. En outre, les cellules WEHI 164 seront décongelées et sous-cultivées.Le deuxième et le troisième jour, la confluence des cellules doit être vérifiée. Après cette étape, les cellules doivent être détachées, comptées, la densité cellulaire ajustée, puis finalement, les cellules doivent être remises en culture. Toutes ces étapes doivent être réalisées chaque jour.Au quatrième jour, la concentration de l'anticorps monoclonal doit être déterminée par absorption UV et des dilutions d'anticorps doivent être effectuées. Des solutions d'induction de l'apoptose seront préparées. Enfin, la densité cellulaire des cellules WEHI 164 doit être ajustée à un demi-million de cellules par mL.Le cinquième jour, la solution substrat pour la détection des cellules apoptotiques sera préparée, et l'analyse spectrophotométrique sera réalisée. Enfin, l'analyse in silico des résultats sera discutée. Toutes les solutions utilisées dans ce protocole sont représentées sur cette diapositive.Le premier jour, cette solution doit être préparée préalablement à l'exécution du protocole, à l'exception des solutions d'induction de l'apoptose et du substrat, qui doivent être utilisées immédiatement après reconstitution. Au début de ce protocole, les cellules congelées doivent être retirées du contenant d'azote liquide. Le flacon contenant les cellules WEHI congelées doit être conservé sur de la glace jusqu'à utilisation.Gardez votre lieu de travail propre et désinfecté au préalable afin d'éviter toute contamination croisée. Transférez le bloc chauffant à isotherme dans la hotte à flux laminaire et ajoutez neuf mL de milieu de culture préchauffé dans un tube stérile de 15 millilitres. À l’aide d’un mL de milieu de culture préchauffé, lavez les cellules WEHI 164 par des pipetages doux ascendants et descendants jusqu’à ce que les cellules congelées se détachent du microtube.Mélanger par retournements successifs cinq fois jusqu'à ce que les cellules congelées dégèlent complètement. Ensuite, centrifuger les cellules à 125 g pendant trois minutes. Éliminer le surnageant et disloquer le culot cellulaire.Ajoutez cinq mL de milieu de culture préalablement réchauffé dans le tube et mélangez la suspension jusqu'à ce que les cellules soient complètement resuspendues. Récupérez les cellules dans un flacon de culture T. Incubez toute la nuit à 37 °C avec 5 % de dioxyde de carbone. Chaque jour avant le détachement et le comptage des cellules en culture, il est obligatoire de vérifier l'état de santé de la culture au microscope.Le chercheur doit vérifier l'état de santé des cellules, leur viabilité et leur densité pour la repiquage. Cette vérification doit également être effectuée pour le dosage biologique. Premièrement, il faut s'assurer de l'absence de contamination biologique, par exemple, bactérienne.Deuxièmement, la santé cellulaire peut être vérifiée par la confluence. Une confluence supérieure à 90 % est suffisante pour obtenir de bons résultats. Toutefois, si les cellules n'ont pas atteint la densité cellulaire souhaitée, le flacon doit être replacé dans l'incubateur et on doit attendre que les cellules atteignent la densité et la confluence souhaitées.Le milieu de culture vieilli doit être éliminé du flacon T. Laver les cellules attachées sur les parois du flacon T avec cinq mL de la solution de lavage des cellules. Veiller à ne pas détacher les cellules adhérentes.Mélanger manuellement pour éliminer les résidus de milieu de culture et les débris cellulaires. Cette étape doit être effectuée deux fois. Éliminer les solutions de lavage résiduelles à l’aide d’un vide et ajouter trois mL de la solution de détachement des cellules.Agiter et incuber pendant trois minutes. Une fois l'incubation terminée, ajouter du milieu de culture préchauffé dans le flacon de culture T afin d'inactiver l'enzyme. Puis récupérer les cellules.Transférez la suspension cellulaire dans un tube de 15 mL et centrifugez. Identifiez le culot cellulaire et jetez le surnageant. L’élimination du milieu de culture usagé est essentielle pour la culture de cellules saines.Dissocier le culot cellulaire et reconstituer les cellules avec cinq mL de milieu de culture préchauffé. Transférer 50 microlitres de la suspension cellulaire dans un microtube. Compter les cellules à l’aide de la méthode d’exclusion au bleu de trypan. Compter les cellules et déterminer la viabilité cellulaire. Une fois le nombre de cellules viables obtenu, ajuster 15 mL de milieu de culture à une densité cellulaire de cinq cent mille cellules par mL à l'aide de la formule suivante. Transférer 15 mL de la suspension cellulaire ajustée dans un flacon de culture en forme de T et incuber toute la nuit.Ce processus de culture global doit être répété au moins une fois supplémentaire, pour un total de trois passages cellulaires, avant de commencer le test de neutralisation. Au quatrième jour, mesurez la densité optique de la substance de référence, de l'échantillon analytique et de l'échantillon témoin par absorption UV à 280 nanomètres. Effectuez une dilution initiale à deux milligrammes par mL dans le milieu de culture du test pour chacun des échantillons, en triples indépendants.Effectuez une deuxième dilution jusqu’à deux microgrammes par mL pour chaque échantillon d’AcM. Distribuez 75 microlitres du milieu de culture d’essai dans les 60 puits situés au centre d’une microplaque en polystyrène. Ajoutez 230 microlitres de substance de référence dans les puits 2B et 2C.Échantillons analytiques dans les puits 2D et 2E. Et enfin, l'échantillon témoin dans les puits 2F et 2G. Un échantillon témoin est une molécule dont la puissance relative est connue.Ensuite, réalisez des dilutions sériées dans la microplaque. Un exemple est illustré dans les diapositives suivantes. N'oubliez pas d'homogénéiser les solutions avant de les distribuer dans les puits.Cette opération est essentielle pour la réussite de ce protocole. Ajuster préalablement à un demi-million de cellules par mL dans un distributeur. Ajouter 50 microlitres de suspension cellulaire aux 60 puits internes de la plaque d'essai, en commençant par la colonne deux jusqu'à la onzième.Mélanger la suspension cellulaire avant d'ajouter le liquide à la microplaque. Transférer immédiatement 50 microlitres des dilutions d'AcM dans la plaque d'essai. Pour les puits appariés, distribuer les dilutions en faisant pivoter la micropipette.Les dilutions d'AcM peuvent être dispensées dans les puits dans l'ordre suivant, les témoins étant dispensés dans les puits périphériques. Diluer le TNF-alpha avec 500 microlitres d'eau ultrapure. Mélanger au vortex à 2200 tr/min.Transférez dans un tube de 15 mL et diluez enfin à 40 nanogrammes par mL avec le milieu de culture pour le dosage. Distribuez 50 microlitres de la solution d'induction de l'apoptose dans les 60 puits internes du dosage. Distribuez 50 microlitres de la solution d'induction de l'apoptose dans les 60 puits internes du dosage.Enfin, incuber pendant 16 heures. Le cinquième jour, reconstituer le substrat avec cette solution tampon conformément aux instructions du fabricant. Mélanger en retournant cinq fois.Distribuez la solution de substrat. Ajoutez également 50 microlitres de la solution de substrat dans chaque puits d'échantillon de la plaque d'analyse. Ajoutez aussi du substrat aux témoins.Agiter la plaque de dosage dans un mélangeur vortex à 400 tr/min pendant trois minutes. Retirer la plaque de dosage du mélangeur et l'incuber à température ambiante. Allumer un lecteur de plaques-spectrophotomètre.Ouvrez le logiciel SoftMax Pro ou tout programme équivalent. Chargez la microplaque dans le spectrophotomètre et réglez les paramètres suivants. Activez la fonction de luminescence et le type de lecture en mode point final.Réglez la zone de lecture en excluant les colonnes 1 et 12. Sélectionnez le type de plaque : microplaque standard à 96 puits avec fond transparent. Modifiez le temps d'intégration jusqu'à 1250 millisecondes.Régler la durée d'agitation de la microplaque à 10 secondes. Sélectionner le puits dans lequel seront placés la Substance de référence, la Substance analytique et l'Échantillon témoin. Commencer la lecture.Les résultats de ce test sont des courbes de réponse exprimées en luminescence par rapport aux échelles logarithmiques de la concentration d'AcM. Les points d'inflexion de ces courbes correspondent aux concentrations efficaces, EC50 pour chaque AcM. C ou EC50 est exprimé en nanogrammes par mL.Cependant, cette valeur n'a aucune signification en soi si elle n'est pas comparée à l'échantillon de référence. Ainsi, la puissance d'un échantillon analytique est exprimée en pourcentage et appelée puissance relative. La puissance relative est la moyenne de trois résultats indépendants de microplaques, provenant respectivement de la valeur d'EC50 de chaque plaque.La comparaison entre les échantillons témoins et les échantillons de référence permet de déterminer toute déviation ou biais dans le dosage en cours. La comparaison de l'échantillon de référence avec un échantillon analytique permet de déterminer la puissance relative. Ce tableau indique la puissance relative des AcM et son intervalle de confiance à 95 % ; il affiche également l'écart-type relatif de chaque échantillon par rapport à la puissance de la substance de référence.Un écart-type relatif supérieur à 15 % est considéré comme inacceptable. Cette caractérisation permet de déterminer a priori le comportement biologique d'une molécule en cours de développement, avant la réalisation d'essais cliniques coûteux et longs. Elle est également utile pour la libération de lot à lot d'un produit approuvé.Il est de notre détermination que ces tests sont utiles pour déterminer si une molécule possède un effet biologique adéquat en lien avec son mécanisme d'action. En tant que partie des méthodes biophysiques, cette méthodologie est capable de déterminer par des moyens biologiques la puissance et l'efficacité de la qualité et des caractéristiques d'un médicament, mettant ainsi en évidence la signification complète et totale de ses fonctions effectrices.

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Cette vidéo montre des tests de microneutralisation pour mesurer les anticorps neutralisants à l’aide de cellules rénales canines de Madin-Darby surexprimant l’acide sialique lié à l’α2,6 dans le sérum humain. Ce test est souvent utilisé pour la sérologie humaine de la...

Un test de microneutralisation pour mesurer les titres d’anticorps neutralisants dans le sérum humain

Cette vidéo présente une technique d’évaluation de l’efficacité des anticorps contre le facteur de nécrose tumorale alpha (TNFα), une cytokine inflammatoire, grâce à une approche bioanalytique in vitro. Le TNFα, lorsqu’il est introduit dans les cellules stressées, déclenche l’apoptose. Cependant, la liaison aux anticorps confine le TNFα, évitant ainsi l’apoptose. Le degré d’apoptose est quantifié à l’aide d’un test de bioluminescence.

Méthode in vitro pour déterminer l’activité anti-apoptotique d’anticorps contre le TNFα

L'adhésion des neutrophiles à l'endothélium activé sur les sites d'infection est une partie intégrante de la réponse inflammatoire de l'hôte. Décrite dans le présent rapport est une analyse de liaison des neutrophiles qui permet...

Quantitative<em&gt; In vitro</em&gt; Test pour mesurer l&#39;adhésion des neutrophiles à Activé cellules endothéliales microvasculaires humaines primaires dans des conditions statiques

Ici, nous présentons un protocole complet d’électrophorèse de la zone capillaire pour l’évaluation de l’hétérogénéité physicochimique intrinsèque des anticorps monoclonaux en tant qu’attribut de qualité.

Electrophorèse Capillaire séparation de l&#39;anticorps monoclonal isoformes Utilisation d&#39;un Capillaire Neutre

Ce protocole décrit la comparaison in vitro de deux caractéristiques fonctionnelles principales du rituximab: liant cible et l'induction de cytotoxicité dépendante du complément (CDC). Les méthodes ont été utilisées pour une comparaison côte-à-côte entre le rituximab de référence et un rituximab biosimilaire. Ces tests peuvent être utilisés pendant le développement biosimilaire ou comme un contrôle de qualité dans leur production.

Méthodes in vitro pour la comparaison de liaison cible et CDC induction entre les anticorps thérapeutiques: Applications dans l&#39; analyse biosimilarité

Les auteurs décrivent une méthode pour mesurer l’activation des fonctions effectrices Fc-médiée par les anticorps qui ciblent l’hémagglutinine du virus influenza. Ce test peut également être adapté afin d’évaluer la capacité des anticorps monoclonaux ou polyclonaux sérums ciblant d’autres glycoprotéines de surface virales à provoquer l’immunité induite par le Fc.

Une méthode pour évaluer les fonctions effectrices induite par le Fc induites par les anticorps spécifiques d’hémagglutinine de grippe

Nous présentons ici une méthode de cytométrie de flux basé sur la cellule afin de détecter les anticorps neutralisants ou autres facteurs qui interfèrent avec l’absorption cellulaire des thérapies de remplacement enzymatique dans une matrice humaine, comme le liquide céphalo-rachidien (LCR) ou de sérum humain.

Détection des anticorps qui neutralisent l’assimilation de thérapies de remplacement de Enzyme avec un Cell-based Assay

Dans cet article, nous décrivons un protocole afin de caractériser les T-dépendants et indépendants de T les réponses isotype immunoglobuline (Ig) chez la souris à l’aide d’ELISA. Cette méthode utilisée seule ou en combinaison avec écoulement cytometry permettra aux chercheurs d’identifier les différences dans les réponses d’isotype Ig médiée par les lymphocytes B chez les souris après vaccination antigène T-dépendants et indépendants de T.

Caractérisation des Thymus-dépendants et indépendants de Thymus immunoglobuline Isotype réponses chez la souris à l’aide d’Enzyme-linked Immunosorbent Assay

MALT1 régule l’immunité innée, mais comment dans ce cas reste mal défini. Nous avons utilisé l’inhibiteur sélectif du paracaspase MALT1 MLT-827 à démêler la contribution de MALT1 innée de signalisation en aval des récepteurs Toll-like ou type C de type lectine, démontrant que la MALT1 régule la production de cytokines myéloïde et en aval des récepteurs de type lectine de type C, sélectivement.

Règlement de voie signalisation innée myéloïde par MALT1 Paracaspase activité

Découvrez comment mesurer la puissance relative des anticorps monoclonaux anti-TNF-alpha en utilisant des cellules WEHI 164. Cette méthode bioanalytique permet d'évaluer l'efficacité de neutralisation pour le développement thérapeutique.

Détermination de la puissance Relative d’un anticorps Monoclonal Anti-TNF (mAb) de neutralisants TNF en utilisant une méthode de Bioanalytical In Vitro (Vidéo) | JoVE Journal

Détermination de la puissance Relative d’un anticorps Monoclonal Anti-TNF (mAb) de neutralisants TNF en utilisant une méthode de Bioanalytical In Vitro

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