Name: Un protocole Purification Tailored HPLC que les rendements de haute pureté amyloïde bêta 42 et bêta-amyloïde 40 Peptides, capable de former Oligomère (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 34 s
Description: Découvrez un protocole HPLC personnalisé pour purifier les peptides bêta-amyloïde 42 et 40 avec une haute pureté. Cette méthode permet d'obtenir des peptides capables de former des oligomères pour la recherche sur la maladie d'Alzheimer.

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Les auteurs tiennent à remercier Agilent pour leur assistance technique. Kate Markham et Rafael Palomino sont crédités pour leur aide initiale dans la synthèse et la purification du peptide Aß et le Dr Hsiau-Wei Lee est remercié pour son aide dans la préparation de la figure 1 du manuscrit.

1. Une CLHP preparative purification du peptide Aß42 Aß40 ou <ol><li> Préparer les tampons suivants pour la purification par HPLC. <ol><li> Préparer un tampon A (20 mM de NH 4 OH) en y ajoutant 1,3 ml de NH4OH (solution à 28%) pour 1 000 ml d&#39;eau ultrapure. </li><li> Préparer un tampon B (80% d&#39; acétonitrile avec 20 mM de NH 4 OH) en y ajoutant 1,3 ml de NH4OH (solution à 28%) à une solution de 800 mL d&#39;acétonitrile de qualité HPLC et 200 ml d&#39;eau ultrapure. </li><li> Préparer un tampon de dissolution de l&#39; échantillon (0,1% de NH4OH) en ajoutant 100 pl de NH4OH (solution à 28%) pour 100 ml d&#39;eau ultrapure. </li></ol></li><li> Configuration de l&#39;instrument HPLC comme le montre la figure 1. <ol><li> Monter les bouteilles de solvant qui contiennent le tampon A et le tampon B aux entrées de la pompe HPLC en utilisant un tube de polymère. Fixer le tube en polymère à la pompe HPLC avec un raccord d&#39;une seule pièce. Veiller à ce que le tube de polymèrechaque tampon est monté sur la soupape d&#39;entrée correcte de l&#39;appareil. Monter la pompe HPLC avec un dégazeur. </li><li> Couple de la pompe HPLC avec l&#39;entrée de la 300 Å 8 pm 25 300 mm colonne préparative х mm (figure 1B, colonne de gauche, voir la liste des matériaux) en utilisant un tube de polymère. <ol><li> Fixez le tube de polymère à la colonne préparative avec une seule pièce doigt ajustement serré. Faire en sorte que la colonne de polymère est orienté de la manière correcte. Remarque: la phase stationnaire de la colonne préparative est composée de poly (styrène-divinylbenzène) des particules. L&#39;orientation correcte de la colonne de polymère est marqué sur l&#39;enveloppe extérieure avec une flèche directionnelle unique. </li></ol></li><li> Connecter la sortie de la colonne du détecteur à double longueur d&#39;onde en utilisant un tube de polymère et régler le détecteur de longueur d&#39;onde de 214 nm et 280 nm. <ol><li> Modifier la longueur d&#39;onde en modifiant les paramètres de détection de longueur d&#39;onde dans le procédé de l&#39;instrument d&#39;installation choix dulogiciel intégré de HPLC. </li></ol></li><li> Fixer le tube de polymère à l&#39;entrée du détecteur de longueur d&#39;onde avec un doigt d&#39;une seule pièce hermétique. Fixer le tube de polymère à la vanne de sortie du détecteur de longueur d&#39;onde. Fixer le tube en polymère à la vanne de sortie du détecteur de HPLC avec un doigt d&#39;une seule pièce hermétique. Ce sera le tube de prélèvement d&#39;échantillon. NOTE: L&#39;absence d&#39;une forte chromophore sur le peptide Aß dicte que 214 nm est utilisée comme longueur d&#39;onde de l&#39;ultraviolet primaire (UV) pour la collecte des pics. </li></ol></li></ol><img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/55482/55482fig1.jpg" /> Figure 1: Configuration expérimentale de l&#39;instrument utilisé pour la purification par HPLC des peptides bêta - amyloïdes. (A) La pompe HPLC quaternaire équipé d&#39;un dégazeur et un détecteur de longueur d&#39; onde variable fixé à 214 nm et 280 nm; Des colonnes (B) HPLC utilisés pour la purification des peptides bêta - amyloïdes, dede gauche à droite, 25 x 300 mm , colonne préparative 2, 7,5 x 300 mm 2 et semi - préparative colonne 4,6 x 250 mm , colonne analytique 2; (C) de l&#39; injecteur manuel avec 20 pi d&#39; acier inoxydable boucle d&#39;injection utilisé pour la HPLC analytique; (D) de l&#39; injecteur manuel avec 10 ml en acier inoxydable boucle d&#39;injection utilisé pour la purification préparative préparative et semi. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55482/55482fig1large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <ol start="3"><li> Programmer le logiciel HPLC pour exécuter le procédé de purification tel que montré dans le tableau 1. Entrer dans le procédé de purification en changeant le paramètre d&#39;itinéraire de solvant (dans le procédé de choix de l&#39; instrument d&#39;installation intégré dans le logiciel HPLC). Mettez la pompe HPLC en cliquant sur le bouton &quot;on&quot; sur le logiciel de HPLC. NOTE: La pompe commencera à fournir à partir du rapport du tampon A et le tampon B à travers la préparationarative colonne et l&#39;instrument HPLC. <ol><li> Laissez le système pendant 30 min à équilibrer totalement. </li></ol></li></ol><table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Temps / min </td><td> % De tampon A a </td><td> % De tampon B b </td><td> Débit d / min mL -1 </td></tr><tr><td> 0 </td><td> 80 </td><td> 20 </td><td> 6 </td></tr><tr><td> 45 </td><td> 75,5 </td><td> 24,5 </td><td> 6 </td></tr><tr><td> 45.01 </td><td> 80 </td><td> 20 </td><td> 6 </td></tr><tr><td> 52.01 </td><td> 80 </td><td> 20 </td><td> 6 </td></tr><tr><td> 52.02 </td><td> 73 </td><td> 27 </td><td> 6 </td></tr><tr><td> 85 </td><td> 73 </td><td> 27 </td><td> 6 </td></tr><tr><td> 92 </td><td> 5 </td><td> 95 c </td><td> 6 </td></tr></tbody></table> &lt;strong&gt; Tableau 1: Calendrier pour la purification des peptides Aß42 et Aß40 en utilisant la colonne de 25 x 300 mm de polymère. un tampon A - H 2 O avec 20 mM NH 4 OH; b 80% de MeCN / 20% de H 2 O avec 20 mM de NH 4 OH; c Ran pendant 15 minutes pour laver la colonne avant la prochaine injection de l&#39; échantillon; d Pour exécuter un taux de 6 mL / min sur l&#39;instrumentation de HPLC d&#39;écoulement, la limite de pression doit être réduite à 200 bar. <ol start="4"><li> La purification de l&#39;échantillon de peptide Aß Note: Le peptide brut a été obtenu par une synthèse automatisée des peptides en phase solide. dix <ol><li> Dissoudre 3 mg de brut peptide Aß dans 4 ml de tampon échantillon de dissolution. Soniquer l&#39;échantillon pendant 30-60 s à température ambiante et à une fréquence de 40 kHz pour faciliter la dissolution. </li><li> Injecter la totalité de l&#39;échantillon sur la colonne de HPLC en utilisant une seringue en plastique de 5 ml équipé d&#39;un calibre 16aiguille en acier inoxydable. Exécuter le procédé de purification tel que décrit dans la sous-étape 1.3. Remarque: Le système permet l&#39; injection de l&#39; échantillon se faire par l&#39;utilisation d&#39;un injecteur manuel muni d&#39;un acier inoxydable de 10 mL boucle d&#39;injection (figure 1D). Le peptide Aß désiré éluer entre 72 et 74 min comme un pic aigu résolu (figure 2C). </li><li> Recueillir l&#39;échantillon dans un tube à centrifuger conique de 50 ml. Confirmer l&#39;identité du pic Aß par injection directe par spectrométrie de masse de l&#39;éluant recueilli. 11 Stocker l&#39;éluant jusqu&#39;à 12 h à -20 ° C. NOTE: Le stockage de la solution pour des périodes plus longues que 12 h est pas conseillée en raison du potentiel d&#39;oxydation du peptide. </li><li> Isoler le peptide purifié par congélation instantanée aliquote collectés / aliquotes du peptide Aß dans de l&#39;azote liquide et lyophiliser. Effectuer une lyophilisation par séchage par congélation de l&#39;échantillon à une température comprise entre -60 ° C et une pressionsûre de 20 mTorr pendant une période de 24 heures. </li><li> Exécuter le protocole de HPLC analytique décrit ci-dessous pour déterminer la pureté du peptide Aß. peptides de magasins dans leur forme lyophilisée à -20 ° C pendant une période allant jusqu&#39;à 6 mois. </li></ol></li></ol> 2. Une HPLC analytique d&#39;analyse de la protéine purifiée Aß <ol><li> Préparer les tampons HPLC comme indiqué dans la sous-section 1.1. du protocole ci-dessus. </li><li> Configuration HPLC analytique selon l&#39; étape 1.2.1 et comme cela est représenté sur la figure 1 avec la colonne analytique de 4,6 x 250 mm (figure 1B, colonne de droite) et l&#39;injecteur manuel avec 20 ul d&#39; acier inoxydable boucle d&#39;injection (figure 1C) montée sur la instrument. </li><li> Programmer le logiciel HPLC pour exécuter la méthode d&#39; analyse indiquée dans le tableau 2 suivant les instructions semblables à celles de l&#39; étape 1.3. </li></ol><table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Temps /min </td><td> % De tampon A a </td><td> % De tampon B b </td><td> Débit min Taux / mL -1 </td></tr><tr><td> 0 </td><td> 95 </td><td> 5 </td><td> 1 </td></tr><tr><td> 30 </td><td> 50 </td><td> 50 </td><td> 1 </td></tr></tbody></table> Tableau 2: Calendrier pour l&#39;analyse de la pureté par HPLC du peptide Aß. un tampon A - H 2 O avec 20 mM NH 4 OH; b 80% de MeCN / 20% de H 2 O avec 20 mM de NH 4 OH. <ol start="4"><li> Analyse de pureté du peptide Aß <ol><li> Préparer une solution / ml du peptide purifié à 1 mg par dissolution du peptide dans la solution tampon d&#39;échantillon. NOTE: La recette de la mémoire tampon peut être trouvée dans la sous-section 1.1. La concentration en protéine est déterminée en mesurant l&#39;absorption de protéine à 280 nm (280 nm). 12 m<html> coefficient d&#39;extinction olar (ε) utilisé pour déterminer la concentration est ε = 1,490 dm 3 mol -1 cm -1. 13 </li><li> Injecter 20 ul de la solution à 1 mg / ml (222 uM) sur la colonne de CLHP et exécuter la méthode d&#39;analyse qui a été installé à l&#39;étape 2.3. NOTE: La solution restante non utilisée pour l&#39;analyse peut être éclair congelé dans l&#39;azote liquide et lyophilisée pour récupérer le peptide Aß. Détails de lyophilisation peuvent être trouvés dans la sous-section 1.4.4. Le peptide Aß éluera de la colonne analytique entre 16 et 18 minutes (figure 2D). Utiliser le logiciel d&#39;analyse d&#39;intégration intégrée qui accompagne l&#39;instrument de HPLC pour déterminer la pureté du peptide Aß. La pureté est déterminée par intégration de chacun des pics individuels du spectre et calcul du peptide pic pourcentage de surface. En règle générale, une purification de&gt; 95% doit être établie. </li></ol></li></ol><img alt="&lt;/ Html">&quot;Figure 2&quot; src = &quot;/ files / ftp_upload / 55482 / 55482fig2.jpg&quot; /&gt; Figure 2: traces HPLC représentatifs de Aß42. (A) Caractéristiques C 4 purification de la silice, conditions suivantes : tampon A: H 2 O avec 0,1% d&#39; acide trifluoroacétique (TFA), tampon B: MeCN (acétonitrile) avec 0,1% de TFA, gradient: de 20 à 27% de tampon B pendant 40 min , puis en isocratique 27% de tampon B; (B) la purification préparative en utilisant la colonne de 25 x 300 mm 2 de polymère, conditions suivantes : Tampon A: H 2 O avec 20 mM de NH 4 OH, tampon B: 80% de MeCN / 20% de H 2 O à 20 mM NH4OH, gradient : 20 à 27% de tampon B pendant 70 min suivie par isocratique 27% de tampon B; (C) Optimisé purification préparative en utilisant la colonne de polymère 25 x 300 mm 2, les conditions sont décrites dans le tableau 1 situé dans la sous-section 1.3 du texte de description du protocole; (D) Analyse par HPLC en utilisant la colonne de polymère de 4,6 x 250 mm 2, diritions: Tampon A: H 2 O avec 20 mM de NH 4 OH, tampon B: 80% de MeCN / 20% de H 2 O à 20 mM NH4OH, gradient 5 à 50% de tampon B pendant 30 min. Pour les parties A, B et C du pic correspondant à Aß42 est marquée par un astérisque. Collection du pic Aß42 marquée dans la partie C révèle une pureté de&gt; 95% comme indiqué dans la partie D. La spectrométrie de masse a été utilisé pour déterminer l&#39;identité du pic Aß42. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55482/55482fig2large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a>

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</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à dévoiler.

La purification par HPLC du peptide Aß dépend fortement du choix à la fois la phase stationnaire employée dans la purification et la phase mobile choisi pour éluer le peptide. Le point bas du peptide et la forte propension pour l&#39;agrégation isoélectrique rendent les conditions chromatographiques traditionnelles pour la séparation des protéines hydrophobes (C4 ou phase stationnaire C8 couplé avec un éluant mobiles acide) difficile, avec le peptide Aß élution comme prolongée large, non résolus pic (figure 2A)....

La maladie d&#39;Alzheimer est une maladie neurodégénérative que les effets de plus de 35 millions de personnes dans le monde entier. Impliqué 1 fermement dans l&#39;apparition et le développement de la maladie, est la très prédisposé agrégation, un peptide hydrophobe bêta - amyloïde (Aß). 2 Aß est comprise entre 36 et 43 acides aminés en longueur, cependant, on pense que la variante de l&#39; acide 42-amino, bêta - amyloïde 42 (Aß42), est la forme la plus toxique de la protéine. 3 Cela est dû en grande partie à la capacité de Aß42 pour former facilement diffusables, les espèces oligomériques qui sont considérées comme des entités particulièrement neurotoxiques. 4 Afin d&#39;approfondir notre compréhension du peptide Aß, il est essentiel d&#39;obtenir régulièrement des documents de haute pureté. La présence de traces d&#39;impuretés a été démontré que de modifier considérablement les propriétés d&#39;agrégation de propension du peptide. 5 Traditionnellement, la chromatographie en phase liquide (HPLC) à haute performance de peptides hydrophobes tels que Aß a été accompli par l&#39;utilisation d&#39;une combinaison de C 4 ou C 8 phases stationnaires à base de silice et une phase mobile acide. 6 Cependant, ces conditions peuvent présenter un défi pour la purification du peptide. Le point bas du peptide Aß isoélectrique (pI environ 5,5) 7 signifie que dans des conditions acides, l&#39; agrégation du peptide est augmentée et à la suite de larges pics HPLC non résolus qui sont souvent difficiles à isoler sont produites (figure 2A). En outre, ces larges pics contiennent souvent des impuretés qui peuvent avoir un impact sur le profil de l&#39;agrégation du peptide, et souvent nécessiter des rondes subséquentes de purification qui peuvent influer considérablement la quantité de peptide produit. Le poly (styrène / divinylbenzène) de la phase stationnaire, DPP-S, représente un autre moyen de purifying peptides hydrophobes. La phase stationnaire a été utilisée dans la purification d&#39;un certain nombre de protéines et d&#39;acides ribonucléiques messagers (ARNm). 8, 9 La phase stationnaire PLRP-S ne nécessite aucun ligand alkyle supplémentaire pour la séparation en phase inverse, et plus important encore est chimiquement stable à pH élevé qui conduit à la désagrégation du peptide. 7 Ici, nous rapportons un protocole de purification HPLC sur mesure qui donne une grande pureté bêta - amyloïde 42 (Aß42) et bêta - amyloïde 40 (Aß40) peptides.

<table><tbody><tr><td>Agilent 1260 Infinity II Pompe quatnaire,</td><td>Agilent</td><td>G7111B</td><td>http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-pumps-vacuum-degassers/1260-infinity-ii-quaternary-pump</td></tr><tr><td>Agilent 1260 Infinity II, Détecteur double à longueur d’onde variable</td>, <td>Agilent</td><td>G7114A</td><td>http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-detectors/1260-infinity-ii-variable-wavelength-detector</td></tr><tr><td>Injecteur manuel Agilent 1260 Infinity II équipé d’une boucle d’échantillonnage en acier inoxydable de 10 ml</td><td>Agilent</td><td>0101-1232</td><td>http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-injection-systems/1260-infinity-ii-manual-injector</td></tr><tr><td>Injecteur manuel Agilent 1260 Infinity II équipé de 20 & micro ; L boucle d’échantillonnage en acier inoxydable</td><td>Agilent</td><td>G1328C</td><td>Support</td></tr> de <tr><td>montage pour http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-injection-systems/1260-infinity-ii-manual-injector anneau</td><td>Agilent</td><td>1400-3166</td><td></td></tr><tr><td>Agilent PLRP-S 300 & Aring ; 5&nbsp ; et micro ; m 4,6 x 250 mm (analytique)</td><td>Agilent</td><td>PL1512-5501</td><td>http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-columns/biomolecule-separations/plrp-s-for-biomolecules#features</td></tr><tr><td>A&beta ; 42 ou A&bêta ; 40 peptides</td><td></td><td></td><td>synthétisés en interne à l’aide d’un synthétiseur de peptides automatisé CEM liberty.</td></tr><tr><td>Hydroxyde d’ammonium (NH4OH, solution à 28 %)</td><td>Fisher Scientific</td><td>A669-500</td><td></td></tr><tr><td>Acétonitrile</td><td>Fisher Scientific</td><td>A998-4</td><td></td></tr><tr><td>Eau de qualité HPLC</td><td>Fisher Scientific</td><td>W5-4</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 50 mL Tube à centrifuger conique</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-954-49A</td><td></td></tr><tr><td>Supelco PEEK Fitting Étanche monobloc, paquet de 5 ch.</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z227250</td><td></td></tr><tr><td>Normject 5&nbsp ; cc seringue stérile</td><td>Fisher Scientific</td><td>1481729</td><td></td></tr><tr><td>16 Gauge SS Needle</td><td>Rheodyne</td><td>3725-086</td><td></td></tr></tbody></table>

un protocole purification tailored hplc que les rendements de haute pureté amyloïde bêta 42 et bêta-amyloïde 40 peptides, capable de former oligomère

A Tailored HPLC Purification Protocol That Yields High-purity Amyloid Beta 42 and Amyloid Beta 40 Peptides, Capable of Oligomer Formation

Les peptides amyloïdogènes tels que la bêta-amyloïde (Aβ) impliquée dans la maladie d’Alzheimer peuvent présenter un défi important lorsqu’il s’agit d’obtenir un matériau de haute pureté. Nous présentons ici un protocole de purification HPLC sur mesure pour produire des peptides amyloïdes bêta-42 (Aβ42) et bêta-amyloïde 40 (Aβ40) de haute pureté. Nous avons constaté que la combinaison de la phase stationnaire hydrophobe poly(styrène/divinylbenzène) disponible dans le commerce, de la phase inverse de laboratoire polymère - styrènedivinylbenzène (PLRP-S) dans des conditions de pH élevé, permet d’atteindre une pureté élevée (>95 %) Aβ42 en une seule série chromatographique. La purification est hautement reproductible et peut être modifiée à la fois dans des conditions semi-préparatives et analytiques en fonction de la quantité de matériau à purifier. Le protocole peut également être appliqué au peptide Aβ40 avec un succès identique et sans qu’il soit nécessaire de modifier la méthode.

La purification du peptide Aß42 en utilisant une combinaison de la phase stationnaire PLRP-S et un pH élevé des résultats de la phase mobile dans la formation d&#39;un pic aigu résolu pour le peptide Aß à un temps de rétention entre 72 et 74 min (figure 2C). Confirmation de l&#39;identité du pic se fait par injection directe par spectrométrie de masse de l&#39;éluant recueilli. L&#39;éluant peut être stocké à -20 ° C en solution pendant jusqu&#39;à 12 heures. de longues ...

Nous rapportons ici un protocole de purification par HPLC sur mesure qui produit de haute pureté bêta-amyloïde 42 (Aß42) et de bêta-amyloïde 40 (Aß40) peptides, capable de former des oligomères. Bêta-amyloïde est un peptide hydrophobe fortement l&#39;agrégation prédisposé impliquée dans la maladie d&#39;Alzheimer. La nature amyloïdogène du peptide rend sa purification un défi.

Un protocole Purification Tailored HPLC que les rendements de haute pureté amyloïde bêta 42 et bêta-amyloïde 40 Peptides, capable de former Oligomère

Amyloidogenic peptides such as the Alzheimer's disease-implicated Amyloid beta (A&#946;), can present a significant challenge when trying to obtain high ...

Le but global de cette procédure est d'utiliser la purification par HPLC pour produire des peptides amyloïde bêta 42 et amyloïde bêta 40 de haute pureté, capables de former des oligomères. Les propriétés biochimiques du peptide amyloïde bêta peuvent souvent rendre sa purification difficile. Par conséquent, l'obtention d'un peptide de haute pureté capable de former des oligomères peut s'avérer difficile. Cette procédure permet de surmonter ce défi. Pour ce protocole HPLC, préparez au préalable des stocks de tampons A et B, ainsi que le tampon destiné à la dissolution de l'échantillon. Pour configurer l'HPLC, fixez d'abord les flacons de tampon A et B aux entrées de la pompe. Utilisez des tubes en polymère et des raccords unifiés, et veillez à ne pas mélanger les vannes. Reliez le tube en polymère de la sortie de la pompe à l'entrée de la colonne préparative. Serrez le raccord unifié à la main, et assurez-vous que la colonne est orientée correctement. Fixez ensuite un autre tube en polymère de la sortie de la colonne au détecteur à double longueur d'onde. Utilisez des raccords unifiés serrés à la main, puis, dans le logiciel de configuration de l'HPLC, réglez le détecteur de longueur

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Une caractéristique de la maladie d'Alzheimer est l'élévation de...

Préparation des oligomères β-amyloïde 1-42 Et induction de la plasticité synaptique Dépréciation sur les coupes d&#39;hippocampe

Les aptamères sont sélectionnés par ribo-/deoxyribo-oligonucleotides...

Sélection d&#39;aptamères pour amyloïde β-protéine, l&#39;agent causal de la maladie d&#39;Alzheimer

Un moyen rapide est décrite afin de mieux connaître la structure des polysaccharides dans une matrice extracellulaire. La méthode tire parti de la spécificité de glycosylhydrolases et la sensibilité de la spectrométrie de masse permettant d'infimes quantités de matériaux à analyser. Cette technique est adaptable pour être utilisé directement sur le tissu lui-même.

Profilage de masse Oligo (OLIMP) de polysaccharides extracellulaires

Cette vidéo démontre le protocole d’isolement des fibrilles amyloïdes à partir d’extraits de tissu cérébral de souris en utilisant la centrifugation à gradient de densité et la digestion de protéines non amyloïdes.

Isolement des fibrilles amyloïdes à partir d’un extrait de tissu cérébral

Les protéines peuvent soit adopter une structure native, soit se replier en amyloïde insoluble. Les conditions qui favorisent la voie de mauvais repliement conduisent à la formation de différents types de fibrilles amyloïdes. Les méthodes décrites ici permettent une conversion rapide des protéines natives en amyloïde in vitro.

Génération rapide d’amyloïde à partir de protéines natives in vitro

Nous présentons une méthode modulaire automatisée à haut débit pour l’identification et la caractérisation d’exopolysaccharides microbiens à petite échelle. Cette méthode combine une présélection rapide pour analyser la quantité totale de polysaccharides sécrétés avec une empreinte glucidique détaillée pour permettre le criblage rapide de souches bactériennes nouvellement isolées ou de collections entières de souches.

Automated Modular High Throughput exopolysaccharide plateforme de criblage Couplé avec très sensible Analyse Glucides d&#39;empreintes digitales

Un protocole à haut débit a été développé pour la purification combinée de la protéomique et de la glycomique et la quantification LC-MS/MS dans le plasma. L’analyse par désamidation des motifs de glycosylation liés à l’azote était spécifique aux sites déglycosylés. Une quantification précise des N-glycanes a été obtenue en couplant la séparation des N-glycanes assistée par filtre à la normalisation de l’individualité lors du marquage avec la stratégie de marquage avec des marqueurs d’hydrazide...

A Quantitative Glycomics et protéomique Stratégie Purification Combined

Une approche modulaire de la synthèse des N- glycans à fixer sur un verre recouvert d’oxyde d’aluminium glisser (slide NOC) comme un microréseau glycane a été mis au point et son utilisation pour la détermination des caractéristiques d’un VIH largement anticorps neutralisant a été démontrée.

Synthèse de chimio-enzymatique des N- glycans pour le développement de la baie et anticorps anti-VIH de profilage

Ce protocole décrit comment préparer des oligomères bêta-amyloïdes d’un peptide synthétique in vitro et d’évaluer les quantités relatives des oligomères bêta-amyloïdes par une dot blot analyse.

A11-positif β-amyloïde oligomère préparation et évaluation à l’aide de Dot Blot Analysis

Cette méthode de purification biochimique avec analyse protéomique basée sur la spectrométrie de masse facilite la caractérisation robuste des noyaux de fibrilles amyloïdes, ce qui peut accélérer l’identification de cibles pour la prévention de la maladie d’Alzheimer.

Purification biochimique et caractérisation protéomique des noyaux de fibrilles amyloïdes du cerveau

Le présent protocole décrit les étapes de purification et les études ultérieures de quatre β-glucanes fongiques différents en tant que molécules immunomodulatrices potentielles qui améliorent les propriétés antitumorales de la microglie contre les cellules de glioblastome.

Isolement et purification du β-glucane fongique comme stratégie d’immunothérapie pour le glioblastome

Découvrez un protocole HPLC personnalisé pour purifier les peptides bêta-amyloïde 42 et 40 avec une haute pureté. Cette méthode permet d'obtenir des peptides capables de former des oligomères pour la recherche sur la maladie d'Alzheimer.

Un protocole Purification Tailored HPLC que les rendements de haute pureté amyloïde bêta 42 et bêta-amyloïde 40 Peptides, capable de former Oligomère (Vidéo) | JoVE Journal

Un protocole Purification Tailored HPLC que les rendements de haute pureté amyloïde bêta 42 et bêta-amyloïde 40 Peptides, capable de former Oligomère

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