Name: Lexposition du porc du système nerveux central pour lanalyse anatomopathologique: Un manuel pour Décapitation, Crâne douverture et cerveau suppression (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 38 s
Description: Apprenez l'exposition et le prélèvement du cerveau et de l'hypophyse intacts chez le porc post-mortem. Cette technique respecte les normes éthiques et préserve l'intégrité tissulaire pour l'analyse histologique.

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Les auteurs reconnaissent avec gratitude l&#39;aide habile de Mme Trine W. Mikkelsen, Mme Lise M. Fitting, et le personnel Påskehøjgaard. Le Conseil de recherches médicales du Danemark, la Fondation Lundbeck et la Novo Nordisk Fondation a soutenu financièrement l&#39;étude.

anesthésie animale et euthanesia a été réalisée conformément aux « Principes de protection des animaux de laboratoire » (publication NIH n ° 86-23, révisé 1985) et approuvé par le Conseil danois pour l&#39;éthique de la recherche animale. 1. Instruments <ol><li> Recueillir les instruments présentés dans la vidéo et figurant dans la table des matières. </li></ol> 2. Décapitation NOTE: L&#39;anesthésie a été induite par une injection intramusculaire de 5 mL de midazolam (5 mg / ml) et 5 ml de kétamine (25 mg / ml). 5-10 min plus tard, quand l&#39;animal a été profondément sous sédation, une veine de l&#39;oreille a été canulée et une surdose létale (100 mg / kg de poids corporel) de pentobarbital de sodium (200 mg / ml) a été administré par voie intraveineuse. Pour veiller à ce que l&#39;animal a été complètement euthanasié, le réflexe de la douleur interdigital a été testé comme indiqué par Ettrup et al. (2011) 20. Complète euthanasier a été assurée comme décrit dansla déclaration d&#39;éthique ci - dessus et suivie par une perfusion transcardial avec 5 L d&#39; une solution saline isotonique, tel que démontré par Ettrup et al. (2011) 20. Toutes les procédures démontrées sont effectuées post-mortem, ce qui exclut la nécessité pour les mesures de protection nécessaires à l&#39;anesthésie à long terme et la survie postprocedural. <ol><li> Décapitez le porc par une incision cervicale haute circulaire, à l&#39; aide d&#39; un scalpel chirurgical, juste en dessous de l&#39;angle mandibulaire (figure 1A). </li><li> Toujours avec le scalpel chirurgical, poursuivre l&#39;incision antérieure à travers le tissu mou du cou, y compris le larynx et l&#39;oesophage, jusqu&#39;à ce que la colonne vertébrale osseuse est atteint, à peu près au niveau de la jonction cranio. </li><li> Faire avancer la coupe avec un scalpel chirurgical à partir de la face antérieure de la jonction cranio-cervicale, au-dessus de l&#39;arc antérieur de l&#39;atlas, et à travers la membrane atlanto-occipitale antérieure, exposant ainsi le canal médullaire et la moelle épinière (Figure 1B). Dans le même temps demander à un assistant de tirer le corps de porc loin de la tête de porc pour faciliter l&#39;accès entre la base du crâne et la première vertèbre cervicale. </li><li> Continuer l&#39;incision chirurgicale à travers le sac durai et la moelle épinière (figure 1B). Faites attention à veiller à ce qu&#39;une section transversale complète de la moelle épinière est atteint. REMARQUE: Le défaut d&#39;effectuer l&#39;étape précédente peut entraîner une traction indésirable sur la moelle épinière et le cerveau au cours des étapes suivantes du processus de décapitation. </li><li> Étendre la jonction avec force cranocervical au niveau de la section (Figure 1C). Dans le même temps, utiliser le scalpel chirurgical à la section des ligaments restants atlanto-occipitale pour libérer l&#39;articulation entre les condyles occipitaux et le processus articulé supérieur de l&#39;atlas. Séparer la tête de porc de l&#39;organisme. </li></ol><img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig1.jpg" style="font-size: 14px;" /> Figure 1: Minipig décapitation. (A) incision du cou (flèche, l&#39; angle de la mandibule). (B) à travers l&#39; incision des ligaments atlanto - occipitale et la dure - mère de la moelle épinière, entouré (SC) à la jonction cranio - cervicale (C1, arc antérieur de l&#39; atlas; OC, occipital condyle). (C) La partie postérieure de l&#39;articulation atlanto - occipitale est libéré par une extension forcée (flèches) au niveau de la section. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig1large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.</a> 3. Ouverture de crâne <ol><li> Placez la tête de porc sur une table. </li><li> Faire une incision longitudinale dorsale avec un scalpel chirurgical à travers la peau et les tissus mous sous-jacente à l&#39;arrière du museau, sur le sommet de la tête, et vers le bas par la partie postérieure dela région occipitale. </li><li> Exposer la partie dorsale et postérieure du crâne en enlevant le tissu mou situé latéralement à l&#39;incision initiale avec un scalpel chirurgical. </li><li> Libérer le muscle temporal bilatéral du crâne (figure 2A) avec un scalpel chirurgical. Assurez-vous que l&#39;os occipital postérieur est nettoyé des tissus mous. </li><li> Utilisez l&#39;entrée postérieure du trou occipital pour enlever l&#39;os occipital avec un poinçon os Kerrison et rongeurs os et exposer le cervelet couvert dura-(figure 2B). </li><li> Retour à la face antérieure du crâne exposé et sélectionnez un point d&#39;entrée dans l&#39;os frontal, juste devant les yeux. À ce stade, utiliser un ciseau à os avec un marteau pour pénétrer dans le crâne et entrer dans le sinus frontal (figure 2C). </li><li> Utiliser la mesure du sinus frontal pour favoriser le retrait de la lame dorsoposterior du crâne externe avec une pince-gouge d&#39;os ou l&#39;os poinçon et d&#39;exposer la intérieure mincelamina osseuse du crâne recouvrant le cerveau (figure 2D). </li><li> Ouvrir doucement le crâne osseux interne lame avant avec un marteau et d&#39; un ciseau à os pour exposer le cerveau-mère recouvert (figure 2E). </li><li> Poursuivre le retrait d&#39;os en utilisant latéralement un ciseau à os et une pince - gouge osseuse à travers l&#39;os temporal et pariétal afin de libérer la partie dorsoposterior finale du crâne, situé entre les parties déjà exposées du cerveau-mère recouvert et le cervelet (Figure 2F). NOTE: Il est souvent possible, au cours de la dernière étape de cette procédure, d&#39;utiliser le ciseau pour briser l&#39;os ouvert le crâne postérieur restant d&#39;un côté, comme on ouvre une porte. </li></ol><img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig2.jpg" style="opacity: 0.9; font-size: 14px;" /> Figure 2: ouverture du crâne Minipig. (A) L&#39; exposition de la dorsoposterior surface du crâne, y compris le retrait de l&#39;occipital et les muscles temporaux. (B) enlèvement de l&#39;os occipital (CB, cervelet-mère recouvert; OB, os occipital; OC, condyle occipital, et SC, la moelle épinière). (C) un marteau et d&#39; un ciseau à os sont utilisés pour pénétrer dans le crâne en avant et pour entrer dans le sinus frontal au niveau des yeux. (D) la mesure du sinus frontal (FS) est utilisé pour enlever l&#39;os du crâne épais extérieur (1), l&#39; exposition d&#39; une feuille mince de l&#39; os intérieur (2) recouvrant le cerveau. (E) enlèvement de la lame mince de l&#39; os, ce qui expose le cerveau-mère recouvert (flèche). (F) Enfin, un marteau et d&#39; un ciseau à os sont utilisés pour relier latéralement la partie antérieure et les ouvertures du crâne postérieur. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig2large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.</a> 4. Cerveau RemovAl <ol><li> Utiliser des pinces chirurgicales pour soulever la dure - mère et de créer une légère incision à proximité du sinus veineux sagittal supérieur au moyen d&#39; un fin scalpel chirurgical (Figure 3A). </li><li> Utilisation des micro-ciseaux ou un couteau-mère à ouvrir davantage la dure-mère recouvrant la surface dorsale du cerveau. REMARQUE: Des précautions particulières doivent être prises lors du retrait du correspondant à la dure-mère cérébelleuse tentorium (figure 3B), comme la préservation de cette feuille dural empêchera l&#39;élimination ultérieure du cerveau. </li><li> Positionner la tête de porc verticalement (figure 3C). </li><li> Utiliser le ciseau à os ou un dissecteur pour libérer le cerveau ventroanterior par dissection du bulbe olfactif du sol recouvert de dure-la cavité crânienne (figure 3D). </li><li> Utiliser une amende scalpel chirurgical de section du chiasma optique exposée (Figure 3E). Exposer et section de la tige pituitaire et les nerfs oculomoteurs. </li><li> Relâchez le tronc cérébral ventrale en sectionnant le lonerfs crâniens wer (Figure 3F) avec un fin scalpel chirurgical. Assurez -vous que le tentorium dural cérébelleuse a été complètement incisé (figure 3B), comme cette feuille dural va autrement couper à travers le tronc cérébral au cours du processus de libération. </li></ol><img alt="figure 3" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig3.jpg" style="font-size: 14px;" /> Figure 3: Minipig élimination du cerveau. (A) avec ouverture Dural pince chirurgicale et un couteau-mère. (B) Il faut veiller à inciser complètement la feuille dural (flèche), situé entre le cerveau et le cervelet. (C) La tête de porc est positionné verticalement pour une meilleure visualisation des structures de base du crâne et pour que la gravité pour aider au déplacement voulu du cerveau. (D) un dissecteur ou un ciseau à os est utilisé pour soulager le bulbe olfactif par section émoussée de la dure-remd la base du crâne. (E) La dissection se poursuit dans une direction postérieure le long de la base du crâne pour l&#39; exposition et la coupe du chiasma optique (flèche), tige infundibulaire, et les nerfs oculomoteurs. (F) La libération du cerveau est complétée par la section des nerfs crâniens inférieurs tels qu&#39;ils partent de la surface ventrale du tronc cérébral (III, nerf oculomoteur, IV, nerf trochléaire; V, nerf trijumeau, et VI, abducens nerf). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig3large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.</a> 5. Suppression pituitaire <ol><li> Identifier la tige pituitaire et ses environs feuille dural (la sellae de diapragma) dans le plancher du crâne (figure 4A). </li><li> Inciser la feuille latérale de la dure - mère à la tige pituitaire au moyen d&#39; un fin scalpel chirurgical (figure 4B). </li><li> Utilisez un dissecteur pour libérer la fosseuitary et le sortir de la fosse hypophysaire (Figure 4C). </li></ol><img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig4.jpg" style="opacity: 0.9; font-size: 14px;" /> Figure 4: Minipig élimination de l&#39; hypophyse. (A) La fosse pituitaire (*) est identifié dans le plancher du crâne (1, bulbe olfactif, 2, chiasma optique, et PF, postérieure fosse crânienne). (B) Le revêtement dural (sellar de diagphragm, (flèche)) est incisée latéralement. (C) L&#39;hypophyse (flèche) est libéré avec un dissecteur et sorti de la fosse pituitaire. Barre d&#39;échelle (AC) = 10 mm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig4large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.</a>

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<li>Bjarkam, C. R., Pedersen, M., Sørensen, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+strategies+for+embedding%2C+orientation+and+sectioning+of+small+brain+specimens+enable+direct+correlation+to+MR-images%2C+brain+atlases%2C+or+use+of+unbiased+stereology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">New strategies for embedding, orientation and sectioning of small brain specimens enable direct correlation to MR-images, brain atlases, or use of unbiased stereology.</a> J Neurosci Methods. 108, 153-159 (2001).</li>
<li>Bjarkam, C. R., Sørensen, J. C., Geneser, F. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12625454">Distribution and morphology of serotonin-immunoreactive axons in the hippocampal region of the New Zealand white rabbit. I. Area dentata and hippocampus proper.</a> Hippocampus. 13 (1), 21-37 (2003).</li>
<li>Bjarkam, C. R., Glud, A. N., Orlowski, D., Sørensen, J. C., Palomero-Gallagher, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+telencephalon+of+the+minipig%2C+cytoarchitecture+and+cortical+surface+anatomy%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Struct+Funct%22%5BJournal%5D)">The telencephalon of the minipig, cytoarchitecture and cortical surface anatomy.</a> Brain Struct Funct. , e-pub ahead of print (2016).</li>
<li>Boltze, J., Nitzsche, B., Geiger, K. D., Schoon, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histopathological+investigation+of+different+MCAO+modalities+and+impact+of+autologous+bone+marrow+mononuclear+cell+administration+in+an+ovine+stroke+model%5BTitle%5D)+AND+%22Transl+Stroke+Res%22%5BJournal%5D)">Histopathological investigation of different MCAO modalities and impact of autologous bone marrow mononuclear cell administration in an ovine stroke model.</a> Transl Stroke Res. 2, 279-293 (2011).</li>
<li>Jortner, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+return+of+the+dark+neuron.+A+histological+artifact+complicating+contemporary+neurotoxicologic+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Neurotoxicology%22%5BJournal%5D)">The return of the dark neuron. A histological artifact complicating contemporary neurotoxicologic evaluation.</a> Neurotoxicology. 27, 628-634 (2006).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à dévoiler.

La plupart des études de neuroscience expérimentales sont réalisées en petites espèces d&#39;animaux, comme les souris et les rats, où l&#39;accès au SNC est facilitée par une fine épaisseur dural et skull-. Cependant, chez les animaux expérimentaux plus grands comme les porcs 1, 4, 8, les moutons 32 et les primates non humains, l&#39;épaisseur considérable de ces structures nécessite l&#39;utilisation d...

<html> Des études en neurosciences translationnelles chez les porcs sont devenus de plus en plus populaires au cours des deux dernières décennies. La grande taille du cerveau de porc permet l&#39;utilisation d&#39;imageurs du cerveau clinique classiques et l&#39;utilisation directe et les tests des procédures neurochirurgicales et de l&#39; équipement de la clinique humaine 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8. Au cours des 20 dernières années, les porcs, en particulier miniporcs (par exemple, Göttingen minipig), ont été utilisées pour examiner les modalités de traitement neuromodulateurs, comme la transplantation de cellules souches; transfection de vecteur viral; et la stimulation cérébrale profonde dirigée vers la maladie de Parkinson, l&#39; obésité, la dépression, la maladie d&#39; Alzheimer et 2, 6,= &quot;xref&quot;&gt; 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17. Cela a été suivi par le développement d&#39;approches chirurgicales stéréotaxiques et de manipuler le système nerveux central minipig 3, 18, 19, 20, 21. Les modifications du SNC instituées ont été évaluées chez des animaux vivants en utilisant l&#39; imagerie du cerveau (PET 10, 13, 22, 24 et 23 MR), cystometry 11, 12, 25, analyse de la marche17, l&#39; évaluation neurologique 9, 17, et examen post - mortem sur la base de l&#39; histologie et analyse stéréologique 14, 15, 17, 26, 27, 31. Cependant, l&#39;analyse post-mortem nécessite l&#39;exposition et l&#39;élimination du cerveau de porc, ce qui est pas une tâche facile, comme un crâne épais, osseux et un dural fibreux couvrant entourent le cerveau de porc. Le but de cet article et vidéo d&#39;instruction est de décrire comment le cerveau de porc post-mortem et hypophyse peuvent être exposés et éliminés dans un état intact 15-20 min à l&#39;aide des outils chirurgicaux non motorisés. La vidéo pédagogique et illustrations photographiques montrent miniporcs mâles (âge: 6 mois, poids vif: 20-25 kg) utilisés pour une étude anatomique sur l&#39;hypophyse minipig.

<table><tbody><tr><td>Manche de scalpel lourd #4</td><td>FST (Fine Science Tools)</td><td>10008-13</td><td>Bon pour l’incision cutanée et l’ablation des tissus mous</td></tr><tr><td>Lames de scalpel non stériles #23</td><td>FST&nbsp ;</td><td>10023-00</td><td></td></tr><tr><td>Manche de scalpel #7</td><td>FST&nbsp ;</td><td>10007-12</td><td>Optimal pour l’incision durale et le travail</td></tr><tr><td>de précision Lames de scalpel non stériles #11</td><td>FST&nbsp ;</td><td>10011-00</td><td></td></tr><tr><td>Pince chirurgicale</td><td>FST&nbsp ;</td><td>11024-18</td><td>L’extrémité de la pince chirurgicale assure une prise ferme&nbsp ;</td></tr><tr><td>Kerrison Bone Punch</td><td>Aesculap Neurosurgery</td><td>FF713R</td><td>Doit être robuste, taille de l’occlusion 3-5 mm</td></tr><tr><td>Rongeur osseux</td><td>Aesculap Neurosurgery</td><td>MD615</td><td>Doit être robuste, taille de l’occlusion 15 x 5 mm</td></tr><tr><td>Bone Rongeur</td><td>Aesculap Neurosurgery</td><td>FO551R</td><td>Doit être robuste, taille de l’occlusion 25 x 15 mm&nbsp ;</td></tr><tr><td>Ciseau à os</td><td>Lawton</td><td>67-0335</td><td>La taille de la tête du ciseau ne doit pas dépasser 20 mm</td></tr><tr><td>Maillet (marteau)</td><td>Millarco</td><td>5624108</td><td>Poids 300 g, longueur 30 cm, taille de la zone de frappe de la tête 2 x 2 cm</td></tr><tr><td>Micro-Scissor</td><td>FST&nbsp ;</td><td>14002-14&nbsp ; &nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Dissector</td><td>Aesculap Neurochirurgie</td><td>OL165R</td><td></td></tr><tr><td>G&ouml ; ttingen minipigs</td><td>Ellegaard G&ouml ; ttingen Minipigs A/S, Danemark</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Euthanimal</td><td></td><td></td><td>pentobarbital</td></tr><tr><td>Kétamine</td><td>Pfizer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Midazolam&nbsp ;</td><td>Hameln Pharmaceuticals</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;exposition du porc du système nerveux central pour l&#39;analyse anatomopathologique: un manuel pour décapitation, crâne d&#39;ouverture et cerveau suppression

Exposure of the Pig CNS for Histological Analysis: A Manual for Decapitation, Skull Opening, and Brain Removal

Les porcs sont devenus de plus en plus populaire dans la recherche en neurosciences translationnelle grand animal comme sur le plan économique et sur le plan éthique substitut possible aux primates non humains. La grande taille du cerveau du porc permet l&#39;utilisation des imageurs du cerveau clinique classique et l&#39;utilisation directe et le contrôle des procédures et de l&#39;équipement neurochirurgicales de la clinique humaine. Une analyse plus poussée macroscopique et histologique, cependant, exige une exposition post-mortem du système nerveux central de porc (CNS) et l&#39;élimination ultérieure du cerveau. Ce n&#39;est pas une tâche facile, comme le porc du système nerveux central est encapsulé par un crâne épais, osseux et de la colonne vertébrale. Le but de cet article et vidéo d&#39;instruction est de décrire comment exposer et enlever le cerveau de porc post-mortem et l&#39;hypophyse dans un état intact, adapté à l&#39;analyse macroscopique et histologique.

Pour éviter que le matériau de tissu de sécher, il est recommandé de stocker le cerveau enlevé et pituitaire dans un bocal rempli de fixatif ou une solution saline isotonique immédiatement après l&#39;analyse macroscopique a été réalisée. Le matériau de tissu peut être stocké dans le fixatif pendant des années, alors que le stockage dans une solution saline isotonique, même dans un réfrigérateur, conduira à la désintégration du tissu avec le temps. <p class="jove_content" fo:keep-tog...

Le but de cet article et vidéo d&#39;instruction est de décrire comment exposer et enlever le cerveau de porc post-mortem et hypophyse dans un état intact, adapté à l&#39;analyse macroscopique et histologique.

L&#39;exposition du porc du système nerveux central pour l&#39;analyse anatomopathologique: Un manuel pour Décapitation, Crâne d&#39;ouverture et cerveau suppression

Pigs have become increasingly popular in large-animal translational neuroscience research as an economically and ethically feasible substitute to ...

Dans cette vidéo, nous présentons comment exposer et retirer le cerveau entier du porc ainsi que l'hypophyse intacte en ouvrant le crâne et la dure-mère. Déclaration éthique : L'anesthésie et l'euthanasie animales ont été réalisées conformément aux « Principes de soins aux animaux de laboratoire » et approuvées par le Conseil danois pour l'éthique de la recherche animale. L'anesthésie a été induite chez des miniporcs mâles de race Gottingen par injection intramusculaire de midazolam et de kétaamine.Cinq à dix minutes plus tard, lorsque les animaux étaient profondément sédentés, une veine auriculaire a été canulée et une surdose létale de pentobarbital sodique a été administrée par voie intraveineuse. Afin de s'assurer que les animaux avaient été complètement euthanasiés, le réflexe nociceptif interdigital a été testé comme décrit précédemment. Après une euthanasie correctement réalisée, les animaux ont été perfusés transcardialement avec cinq litres de solution saline isotonique.Toutes les procédures démontrées sont par conséquent réalisées en post-mortem, éliminant ainsi la nécessité de précautions liées au bien-être animal requises en cas d'anesthésie prolongée ou de survie post-

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Cet article présente une méthodologie complète pour préparer et...

Amélioration de la préparation et la conservation de l&#39;hippocampe Tranches de souris pour un enregistrement très stable et reproductible de potentialisation à long terme

L’encéphalopathie hypoxique-ischémique suite à une asphyxie périnatale peut être étudiée à l’aide de modèles animaux. Nous démontrons les procédures nécessaires à l’établissement d’un modèle porcelet d’encéphalopathie hypoxique-ischémique néonatale.

Un modèle de Porcinet néonatale encéphalopathie hypoxique-ischémique

La recherche sur la neurotoxicité du développement induite par l'anesthésie (AIDN) s'est concentrée sur les rongeurs, qui ne sont pas largement applicables aux humains. Les modèles de primates non humains sont plus pertinents, mais ils sont coûteux et difficiles à utiliser pour l'expérimentation. Le porcelet, en revanche, est un modèle animal cliniquement pertinent, idéal pour l'étude de la neurotoxicité anesthésiante.

Utilisation d&#39;un modèle Piglet pour l&#39;étude de la neurotoxicité du développement induite par l&#39;anesthésie (AIDN): une approche de la neurologie translationnelle

Cette étude explore la nouvelle utilisation de la technologie de baies (MEA) de microélectrodes à base d’enzymes pour surveiller l’activité du neurotransmetteur in vivo chez les porcelets. L’hypothèse était que ce dérèglement du glutamate contribue au mécanisme de neurotoxicité anesthésique. Nous présentons ici un protocole visant à adapter la technologie de la MEA pour étudier le mécanisme de la neurotoxicité induite par l’anesthésie.

Adaptation de la microélectrode Array technologie pour l’étude de la neurotoxicité induite par l’anesthésie dans le cerveau Intact Porcinet

Ce protocole détaille la technique d’ablation du cerveau porcin dans son intégralité et la dissection de plusieurs régions du cerveau couramment étudiées en neurosciences.

Extraction et dissection du cerveau de porc domestiqué

Cet article présente un protocole étape par étape pour l’implantation directe de canules dans la cisterna magna des porcs.<br...

Implantation directe de canules dans la Cisterna Magna des porcs

Une méthode pratique de perfusion par gravité pour l’analyse histologique du système nerveux central de la souris est présentée. La détection immunofluorescente de la α-synucléine phosphorylée est démontrée dans un modèle murin de la maladie de Parkinson. Ce travail décrit également de manière exhaustive les étapes de perfusion transcardique, de dissection, de congélation /intégration des tissus et de sectionnement congelé.

Une méthode de perfusion transcardique alimentée par gravité pour l’analyse histologique du système nerveux central de la souris

Ce protocole présente une méthode robuste et détaillée pour obtenir des synaptosomes très purs, des vésicules synaptiques et d’autres fractions synaptiques du cerveau de la souris. Cette méthode permet l’évaluation des processus synaptiques, y compris l’analyse biochimique de la localisation et de la fonction des protéines avec une résolution compartimentale.

Fractionnement subcellulaire pour l’isolement des composants synaptiques du cerveau murin

Ici, nous présentons une méthode pour l’évaluation à long terme de la performance et de la sécurité des réseaux d’électrodes sous-durales souples dans un modèle mini-porc, décrivant la méthode et les outils chirurgicaux, l’imagerie par résonance magnétique postopératoire, l’électrophysiologie du cortex auditif, les propriétés électrochimiques de l’implant et l’immunochimie post-mortem.

Implantation d’un réseau d’électrocorticographie molle sous-durale (ECoG) et enregistrement cortical à long terme chez les miniporcs

Ce protocole décrit la réalisation d’une craniectomie à l’aide d’une perceuse pneumatique à grande vitesse sur un porc Landrace danois âgé de 3 mois. L’accès se fait par l’os frontal et révèle la dure-mère ventrale et les hémisphères cérébraux sous-jacents. Cette procédure permet d’accéder à une grande partie du cerveau du porc.

Accès au cerveau porcin par forage pneumatique à grande vitesse

Apprenez l'exposition et le prélèvement du cerveau et de l'hypophyse intacts chez le porc post-mortem. Cette technique respecte les normes éthiques et préserve l'intégrité tissulaire pour l'analyse histologique.

Lexposition du porc du système nerveux central pour lanalyse anatomopathologique: Un manuel pour Décapitation, Crâne douverture et cerveau suppression (Vidéo) | JoVE Journal

L'exposition du porc du système nerveux central pour l'analyse anatomopathologique: Un manuel pour Décapitation, Crâne d'ouverture et cerveau suppression

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