Name: Expression, purification et activité antimicrobienne de S100A12 (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 10 s
Description: Découvrez l'expression et la purification de S100A12 pour étudier son activité antimicrobienne contre H. pylori. Ce protocole optimise le rendement du dimère stable et prévient l'oligomérisation.

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Cette recherche a été appuyée par le Prix de développement des carrières du ministère des Anciens Combattants 1IK2BX001701, le prix CTSA UL1TR000445 du Centre national pour l&#39;avancement des sciences translationnelles, les numéros de prix de la National Science Foundation 1547757 et 1400969 et la subvention NIH GM05551. Son contenu relève exclusivement des auteurs et ne représente pas nécessairement les points de vue officiels du Centre national pour l&#39;avancement des sciences de la traduction ou des Instituts nationaux de santé.

1. Expression de S100A12 <ol><li> Transformer les cellules BL21 DE3 compétentes avec un plasmide pGEMEX-S100a12 en utilisant un protocole de choc thermique 18 standard. Ajouter 1 à 5 μL de plasmide à 50 μL de bactéries dans un tube de microcentrifugeuse sur de la glace. Incuber pendant 20 min. </li><li> Choc thermique des cellules à 42 ° C pendant 30 s. </li><li> Incuber les cellules sur de la glace pendant 2 min. </li><li> Ajouter 500 μL de support SOC aux cellules. Incuber à 37 ° C avec agitation à 250 tr / min sur un agitateur orbitaire pendant 1 h. </li><li> Placer 150 μL de la réaction de transformation sur un milieu LB-agar (supplémenté avec 100 μg / mL d&#39;ampicilline). Incuber pendant 12-16 h à 37 ° C. </li><li> Choisissez une colonie. Inoculer 2 mL de LB (supplémenté avec 100 μg / mL d&#39;ampicilline). </li><li> Incuber pendant 4-6 h à 37 ° C sur un agitateur orbitaire (300 tr / min). Le DO 600 devrait lire entre 1 à 3 unités d&#39;absorbance. </li><li> Ajouter 500 μL de culture initiale à 50 mL d&#39;autoindu ZYM-5052Ction media 26 complété par 100 μg / mL d&#39;ampicilline. Pour une meilleure aération et une expression maximale, utilisez une fiole Erlenmeyer bouchée de 250 ml. Agiter (300 tr / min) pendant 24 h, à 37 ° C. </li><li> Transférer la suspension bactérienne dans un tube centrifuge. Pelleter les cellules par centrifugation (4 000 xg, 10 min) à 4 ° C. </li><li> Décrivez les médias, enregistrez l&#39;échantillon et collez la cellule à -80 ° C. L&#39;échantillon est stable depuis des années. </li></ol> 2. Purification de S100A12 en utilisant une Chromatographie à basse pression <ol><li> Remettre en suspension les cellules dans 30 ml de Tris 20 mM, pH 8,0. </li><li> Sonicate la suspension sur glace pour lyse des cellules. Utilisez une sortie de ~ 20 W, 5 s activée et 5 s de cycle d&#39;arrêt pendant 5 min. </li><li> Transférer la solution aux tubes centrifuges à grande vitesse. Clarifier le lysat cellulaire par centrifugation, 20 000 xg pendant 30 min à 4 ° C. </li><li> Décanter le surnageant et transférer à un bêcher de polypropylène propre de 100 ml. Refroidissez la solution en plaçant le bécher sur la glace. Ajouter un agitateurR et ajouter lentement 11,20 g de sulfate d&#39;ammonium. Laisser la solution remuer sur de la glace pendant 1 h supplémentaire. Cela créera une solution à 60% de sulfate d&#39;ammonium et précipitera la plupart des protéines endogènes E. coli . S100A12 restera soluble. </li><li> Centrifuger la solution à 4 ° C, 20 000 xg pendant 20 minutes pour granuler la protéine précipitée. </li><li> Décanter le surnageant et transférer à un tube de dialyse (MWCO 3,500 kDa). Dialyze contre 1 L de Tris 20 mM, pH 8,0 à 4 ° C. Changez le tampon de dialyse deux fois. Attendre 4 h entre les changements. </li><li> Chromatographie d&#39;échange d&#39;anions <ol><li> Effectuer une chromatographie sur un système à basse pression. Le débit typique est de 1 mL / min. </li><li> Equilibrer une colonne de Sepharose 5 ml avec 10 ml de Tris 20 mM, pH 8,0. </li><li> Chargez la solution de ~ 40 ml de S100A12 en utilisant la pompe à échantillon (collectez le débit). </li><li> Laver la colonne avec 10 ml de Tris 20 mM, pH 8. </li><li> Développez la colonne avec un gradient de 0 à 30% (BuFfer B est 20 mM Tris, pH 8,0, 1 M NaCl) sur 19 volumes de colonne (CV, 95 ml). Recueillir des fractions de 5 ml. </li><li> Prenez une aliquote de 10 μL de chaque fraction et analysez l&#39;utilisation de MES SDS PAGE avec une coloration au Coomassie. Faire fonctionner le gel à l&#39;aide d&#39;une tension constante (20 V / cm) pendant 30 min. </li><li> Fractions de piscine contenant S100A12. S100A12 fonctionne avec une protéine de ~ 10 kDa sur un gel dénaturant. </li><li> Concentrer les fractions à 5 mL en utilisant un dispositif d&#39;ultrafiltration (MWCO 10 kDa). Centrifuger à 3 000 xg pendant environ 8 min. Prenez la fraction supérieure. </li></ol></li><li> Chromatographie d&#39;exclusion de taille <ol><li> Equilibrer la colonne S75 avec 1 CV (120 ml) de Tris 20 mM pH 8, NaCl 100 mM. </li><li> Injecter &lt;5 ml de fractions S100A12 concentrées (à partir de la Chromatographie d&#39;échange d&#39;ions). </li><li> Développez la colonne à un débit de 1 mL / m sur 120 mL. Recueillir des fractions de 5 ml. </li><li> Prenez une aliquote de 10 μL de chaque fraction et analysez avec SDS PAGE avec une coloration au Coomassie. Valider l&#39;identité protéique en utilisantWestern blot ou spectrométrie de masse (masse moléculaire calculée de la sous-unité monomère 10,575.0 Da, mesurée 10575.4 Da). </li></ol></li><li> Fractions de piscine <ol><li> Mesurer l&#39;absorbance de la protéine A 280 en utilisant un spectrophotomètre. Utilisez le tampon SEC comme un blanc. Le coefficient d&#39;extinction calculé pour l&#39;homodimère S100A12 est de 5960 M -1 cm -1 . NOTE: Les rendements typiques sont de 35 à 45 mg de S100A12 pour 50 mL de culture. </li><li> Aliquot S100A12 dans des tubes de microcentrifugeuse de 1,5 mL (1 mg / tube), un gel instantané dans l&#39;azote liquide et stocker à -80 ° C. </li></ol></li></ol> 3. Analyses d&#39;activité antimicrobienne <ol><li> Streak H. pylori souche G27 sur des grappes tryptiques de soja complétées par 5% de sang de mouton (plaques d&#39;agar de sang). Cultiver 2-3 jours à 37 ° C dans l&#39;air ambiant additionné de 5% de dioxyde de carbone. </li><li> Inoculer H. pylori dans du bouillon Brucella complété par un cholestérol 1x. Culture surTremblement de nuit (250 tr / min) à 37 ° C dans l&#39;air ambiant additionné de 5% de dioxyde de carbone. </li><li> Diluer H. pylori 1:10 dans 50% de bouillon de Brucella, 50% de tampon de calprotectine plus 1x cholestérol et culture en milieu seul ou additionné de chlorure de zinc 100 uM plus 0, 100 ou 1000 μg / mL de S100A12 purifié. Culture de tremblement de nuit (250 tr / min) à 37 ° C dans l&#39;air ambiant additionné de 5% de dioxyde de carbone. </li><li> Le lendemain, effectuez des dilutions en série et des plaques sur des plaques d&#39;agar de sang. Permettre aux colonies bactériennes de croître pendant 2-3 jours à 37 ° C dans l&#39;air ambiant additionné de 5% de dioxyde de carbone. Énumérer les unités de formation de colonies pour calculer la croissance bactérienne en présence ou en l&#39;absence de S100A12 et / ou de zinc exogène. </li></ol>

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</ol>

Les auteurs déclarent qu&#39;ils n&#39;ont pas d&#39;intérêts financiers concurrents.

Un protocole efficace pour l&#39;expression et la purification du S100A12 humain est présenté. Le système d&#39;expression de E. coli est l&#39;outil le plus commun utilisé pour la production de protéines recombinantes, en particulier lorsque des quantités de mg sont requises pour des études biochimiques et biophysiques. Une amélioration clé de la procédure décrite ici est l&#39;utilisation de moyens d&#39;induction automatique 26 qui augmentent le rendement de la protéine purifiée d&#39...

Les protéines S100 sont une classe de la famille EF de protéines de liaison au calcium avec un éventail varié de fonctions 1 . Ils sont exprimés de manière spécifique aux tissus et aux cellules et régulent un large éventail de fonctions cellulaires 2 , 3 . Les protéines S100 sont exclusives aux protéines de liaison au calcium et présentent des fonctions intracellulaires et extracellulaires 4 , 5 . Dans la cellule, la liaison au Ca 2+ induit un changement de conformation qui expose une surface hydrophobe qui cible spécifiquement les partenaires de liaison aux protéines 6 . Ce mécanisme intracellulaire regroupe des processus importants tels que la prolifération cellulaire, la différenciation et le métabolisme énergétique. Dans le milieu extracellulaire, les protéines S100 présentent deux fonctions 7 . Dans un, ils agissent comme des protéines associées à un motif moléculaire associé (DAMP) et initient un pro-inflammatoireRéponse immunitaire de l&#39;administration par l&#39;interaction avec les récepteurs de reconnaissance de formes 8 , 9 . De plus, plusieurs membres de la classe de protéines S100 séquestrent des métaux de transition, une fonction qui sert à affamer les agents pathogènes microbiens dans un processus appelé immunité nutritionnelle 10 , 11 . S100A12 (également connu sous le nom de calgranuline C et EN-RAGE) est fortement exprimé dans les macrophages et les neutrophiles et a été identifié comme un biomarqueur potentiel pour les maladies inflammatoires 12 , 13 . En plus de la liaison du calcium sur ses sites EF-Hand, S100A12 comporte deux sites de liaison de métal de transition à haute affinité situés aux extrémités opposées de l&#39;interface dimère 14 , 15 . Chaque site de liaison est composé de trois résidus d&#39;histidine et d&#39;un résidu d&#39;acide aspartique et peut chélater le zinc ou le cuivre &lt;Sup class = &quot;xref&quot;&gt; 16 , 17 . Récemment, nous avons signalé que la famine de zinc dépendante de S100A12 est importante pour réguler la croissance de Helicobacter pylori et l&#39;activité de facteurs de virulence pro-inflammatoires 18 . H. pylori infecte l&#39;estomac d&#39;environ la moitié de la population humaine mondiale; Ce qui fait sans doute l&#39;un des agents pathogènes bactériens les plus réussis 19 . L&#39;infection par H. pylori peut conduire à des résultats significatifs de la maladie gastrique, y compris la gastrite, l&#39;ulcère peptique et duodénal, le lymphome du tissu lymphoïde associé à la muqueuse (MALT) et l&#39;adénocarcinome gastrique invasif (cancer de l&#39;estomac). Le cancer de l&#39;estomac est la principale cause de décès par cancer non cardiaque dans le monde et le plus grand facteur de risque associé au cancer de l&#39;estomac est une infection par H. pylori . H. pylori persiste dans la niche gastrique malgré un robouSt réponse immunitaire à l&#39;agent pathogène, soulignant la nécessité d&#39;une meilleure compréhension des mécanismes immunitaires de lutte contre cette infection bactérienne 20 , 21 , 22 , 23 . L&#39; inflammation associée à H. pylori est caractérisée par une infiltration profonde des cellules polymorphonucléaires, ou des neutrophiles, qui déposent un répertoire de protéines antimicrobiennes, y compris S100A12, au site d&#39;infection 18 , 24 , 25 . Dans le but de comprendre le dialogue complexe entre l&#39;hôte et l&#39;agent pathogène, nous avons cherché à affiner la technique pour purifier le S100A12 et l&#39;utiliser pour étudier l&#39;effet antimicrobien qu&#39;il exerce sur ce pathogène médicalement pertinent. Le protocole ci-dessous décrit une technique améliorée pour la purification de S100A12 dans son état biologiquement actif; Capable de lier des métaux nutritifs avec des affini élevésEt les chélage des microorganismes envahissants. En outre, les méthodes ci-dessous mettent en évidence l&#39;utilité de cette protéine en tant que réactif critique pour étudier le mécanisme par lequel les molécules antimicrobiennes innées limitent la croissance des agents pathogènes bactériens. Les protéines de la famille S100A se sont accrues en tant que groupe important de molécules du système immunitaire inné qui participent à la signalisation immunitaire ainsi qu&#39;à la défense de l&#39;hôte 27 . Le plus bien étudié est la calprotectine (MRP-8/14, calgranuline A / B, S100A8 / A9) 28 , 29 , 30 . La calprotéctine est une protéine associée aux neutrophiles qui forme un hétérodimère des sous-unités S100A8 et S100A9 qui se lient aux métaux de transition à l&#39;interface dimère 31 . On a montré que la calprotéctine possède deux sites de liaison métallique: le site 1 peut lier Zn 2+ , Mn 2+ ou Fe 2+ , et le site 2 peut<html> Liez Zn 2+ 31 , 32 . De nombreux rapports ont démontré que la calprotectine a des activités antimicrobiennes contre divers agents pathogènes, y compris Staphylococcus aureus , Candida albicans , Acinetobacter baumannii , Klebsiella pneumoniae , Escherichia coli et H. pylori , et que les effets inhibiteurs sont dus à l&#39;activité de chélation du métal de la calprotectine 25 , 28 , 29 . Les travaux antérieurs démontrent que la calprotectine exerce de nombreuses activités sur H. pylori, y compris la modification de la structure de lipide A dans la membrane externe, la rétention du système de sécrétion de type IV (qui est un facteur de virulence proinflammatoire majeur au sein de H. pylori ), induisant une formation de biofilm et réprimant La croissance et la viabilité de H. pylori de manière dose-dépendanteClass = &quot;xref&quot;&gt; 25 , 33 . De plus, les études génétiques et biochimiques révèlent que l&#39;activité antibactérienne de la calprotectine contre H. pylori découle en grande partie de sa capacité à lier le zinc nutritif 25 . H. pylori requiert du zinc, comme l&#39;ont déterminé les recherches précédentes, qui utilisaient un milieu chimiquement défini pour déterminer les besoins en micronutriments pour que ce pathogène se développe et prolifère 34 . En outre, la calprotectine était très abondante dans les tissus infectés par H. pylori et associée à des infiltrats neutrophiles, ce qui indique que l&#39;hôte peut utiliser la calprotectine comme stratégie antimicrobienne pendant l&#39;infection et une inflammation subséquente 25 , 35 . Des preuves récentes provenant de techniques de dépistage protéomiques impartiales suggèrent que, dans des conditions où les espèces réactives d&#39;oxygène sont nombreuses, CalprotecL&#39;étain subit des modifications post-traductionnelles qui modifient le site de liaison de l&#39;hexa-histidine, inhibant ainsi l&#39;activité de liaison de métal de la protéine 36 . En tant que tel, nous avons émis l&#39;hypothèse que d&#39;autres protéines de la famille S100A parmi le large répertoire de ces molécules pourraient potentiellement agir comme des chélateurs métalliques auxiliaires. Nous avons sélectionné S100A12 pour une étude approfondie car il n&#39;a pas été identifié dans l&#39;écran précité pour la modification post-traductionnelle, il a la capacité de lier le zinc et il est très abondant dans les tissus humains dérivés des individus infectés par H. pylori . Notre travail indique que S100A12 peut inhiber la croissance et la viabilité de H. pylori de manière dose-dépendante dans la souche G27 de H. pylori et que l&#39;activité antimicrobienne de cette protéine peut être inversée par l&#39;ajout d&#39;excès de nutriment au zinc. Ce travail complète notre travail précédent indiquant que S100A12 a exercé une activité antimicrobienne contre PMSS1 et 7.13 souches de H. pylori , démontrant sa large activité antibactérienne contre de nombreux isolats cliniques et souches adaptées au laboratoire de H. pylori 18 . Ensemble, ces résultats confirment l&#39;importance du S100A12 comme mécanisme de lutte contre la prolifération et la prolifération des bactéries par immunité nutritionnelle. Des études futures de cette importante interaction hôte-bactérienne pourraient inclure l&#39;exploitation de l&#39;activité de S100A12 pour réduire le fardeau bactérien dans les tissus de l&#39;hôte ou déterminer la contribution de cette protéine à la signalisation immunitaire dans le contexte de l&#39; infection par H. pylori .

<table><tbody><tr><td>Cellules d’expression S100A12 Expression</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Expression cells</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BL 21 (DE3) cellules compétentes</td><td>New England Biolabs</td><td>C25271</td><td></td></tr><tr><td>Composants</td><td></td><td></td><td></td>du milieu d’autoinduction</tr><tr><td>Yeast Extract</td><td>Research Products International</td><td>Y20020-250.0</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Research Products International</td><td>S23020-500.0</td><td></td></tr><tr><td>Tryptone</td><td>Research Products International</td><td>T60060-250.0</td><td></td></tr><tr><td>FeCl3</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2877</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4</td><td>Research Products International</td><td>M65240-100.0</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Research Products International</td><td>S23100-500.0</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Research Products International</td><td>P41200-500.0</td><td></td></tr><tr><td>NH4Cl</td><td>Research Products International</td><td>A20424-500.0</td><td></td></tr><tr><td>Na2SO4</td><td>Research Products International</td><td>S25150-500.0</td><td></td></tr><tr><td>Glycérol</td><td>Research Products International</td><td>G22020-1.0</td><td></td></tr><tr><td>D-glucose</td><td>Research Products International</td><td>G32040-500.0</td><td></td></tr><tr><td>lactose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2643</td><td></td></tr><tr><td>Agent de sélection</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ampicilline</td><td>Research Products International</td><td>A40040-5.0</td><td></td></tr><tr><td>S100A12 Purification</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>AKTA Système de chromatographie Start</td><td>GE</td><td>29-220-94</td><td></td></tr><tr><td>HiTrap Q Sepharaose Fast Flow</td><td>GE</td><td>17-5156-01</td><td></td></tr><tr><td>HiPrep 16/60 S-200 HR</td><td>GE</td><td>17-1166-01</td><td></td></tr><tr><td>Spectrophotomètre Nanodrop lite</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>ND-LITE</td><td></td></tr><tr><td>Tris Base</td><td>Research Products International</td><td>T60040-1000.0</td><td></td></tr><tr><td>H. pylori Culture</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plaques de gélose au sang Laboratoire</td><td>d’approvisionnement BBL221261</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Brucella bouillon</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B3051</td><td></td></tr><tr><td>Cholestérol (250x)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12531018</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>793566</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4901</td><td></td></tr><tr><td>&beta ;-mercaptoéthanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6250</td><td></td></tr><tr><td>Tris Base</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1503</td><td></td></tr><tr><td>Chlorure de zinc</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>229997</td><td></td></tr></tbody></table>

expression, purification et activité antimicrobienne de s100a12

Expression, Purification, and Antimicrobial Activity of S100A12

Les protéines de calgranuline sont des médiateurs importants de l&#39;immunité innée et sont membres de la classe S100 de la famille EF de protéines de liaison au calcium. Certaines protéines S100 ont la capacité de lier les métaux de transition avec une affinité élevée et les séquestrer efficacement des pathogènes microbiens envahissants dans un processus appelé «immunité nutritionnelle». S100A12 (EN-RAGE) lie le zinc et le cuivre et est très abondant dans les cellules immunitaires innées telles que les macrophages et les neutrophiles. Nous rapportons une méthode raffinée pour l&#39;expression, l&#39;enrichissement et la purification de S100A12 dans sa configuration active et métallique. L&#39;utilisation de cette protéine dans les analyses de croissance et de viabilité bactérienne révèle que S100A12 a une activité antimicrobienne contre le pathogène bactérien, Helicobacter pylori . L&#39;activité antimicrobienne repose sur l&#39;activité de liaison au zinc de S100A12, qui chélate le zinc nutritif, affamant H. pylori qui nécessite du zinc pour la croissance et pRolifération.

S100A12 expression et purification Une purification en trois étapes a produit ~ 40 mg de S100A12 recombinant à partir de 50 ml de culture bactérienne. La première étape était une précipitation au sulfate d&#39;ammonium de protéines endogènes de E. coli . Cette étape a été suivie d&#39;une Chromatographie d&#39;échange d&#39;anions ( figure 1A ). La protéine est suivie par une SDS-PAGE co...

Ici, nous présentons une méthode pour exprimer et purifier S100A12 (calgranuline C). Nous décrivons un protocole pour mesurer son activité antimicrobienne contre le pathogène humain H. pylori .

Expression, purification et activité antimicrobienne de S100A12

Calgranulin proteins are important mediators of innate immunity and are members of the S100 class of the EF-hand family of calcium binding proteins. Some ...

L'objectif général de ce protocole est de faciliter l'isolement et la purification de la S100A12 sous sa forme active afin qu'elle puisse être utilisée dans des tests antimicrobiens. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la microbiologie, notamment quel est le rôle de la S100A12, un peptide antimicrobien produit en réponse à une infection par des bactéries pathogènes. Le principal avantage de cette technique est que notre protocole optimisé permet d'obtenir de forts rendements de dimère de S100A12 pur et stable, capable de se lier aux métaux nutritifs et de les séquestrer.En général, les personnes novices dans cette méthode éprouveront des difficultés car la protéine S100A12 forme des oligomères de tailles variables dans certaines conditions, et ces oligomères présentent une activité antimicrobienne réduite in vitro. Nous avons eu l'idée de cette méthode lorsque nous avons commencé à purifier et à étudier l'activité antimicrobienne d'une protéine apparentée de la famille S100A appelée calprotectine. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle pour les étapes finales de purification par chromatographie et pour l'évaluation de la taille.Et les tests antimicrobiens sont importants pour la réussite de ce processus. Pour commencer cette procédure, transformez des cellules compétentes BL21 DE3 comme décrit dans le protocole écrit. Ensuite, ajoutez de un à cinq microlitres de plasmide à 50 microlitres de bactéries dans un tube de microcentrifugeuse placé sur de la glace.Incuber pendant 20 minutes. Ensuite, soumettre les cellules à un choc thermique à 42 degrés Celsius pendant 30 secondes. Incuber sur de la glace pendant deux minutes.Ensuite, ajoutez 500 microlitres de milieu SOC. Incubez à 37 degrés Celsius sur un agitateur orbital à 250 tr/min pendant une heure. Ensuite, déposez 150 microlitres de la réaction de transformation sur un milieu LB arga supplémenté avec 100 microgrammes par millilitre d'ampicilline.Incuber pendant 12 à 16 heures à 37 degrés Celsius. Après l'incubation, prélever une colonie unique et ensemencer deux millilitres de milieu LB supplémenté en ampicilline. Incuber à 37 degrés Celsius dans un agitateur orbital, à 300 tr/min, pendant quatre à six heures.Ensuite, ajoutez 500 microlitres de culture initiale à 50 millilitres de milieu d'auto-induction ZYM 5052 supplémenté en ampicilline. Agitez à 300 tr/min pendant 24 heures à 37 degrés Celsius. Puis, transférez la suspension bactérienne dans un tube de centrifugation.Centrifuger à 4 000 ×g et à 4 degrés Celsius pendant 10 minutes. Après la centrifugation, décantez le milieu, enregistrez l'échantillon et conservez la pâte cellulaire à −80 degrés Celsius. Pour commencer, resuspendez la pâte cellulaire dans 30 millilitres de Tris 20 millimolaire, à pH 8,0. Ensuite, soniquez la suspension sur glace à 20 watts en utilisant un cycle de cinq secondes allumé et cinq secondes éteint pendant cinq minutes afin de lyser les cellules.Transférez la solution soniquée dans des tubes de centrifugation haute performance. Centrifugez à 20 000 fois G à quatre degrés Celsius pendant 30 minutes afin de clarifier le lysat cellulaire. Ensuite, versez délicatement le surnageant dans un bécher propre en polypropylène de 100 millilitres.Placer le bécher sur de la glace pour refroidir la solution. Ajouter une barre d'agitation et ajouter lentement 11,20 grammes de sulfate d'ammonium. Agiter la solution sur glace pendant une heure.Ensuite, transférez la solution dans des tubes de centrifugation et centrifugez à 20 000 × g à quatre degrés Celsius pendant 20 minutes afin de former un culot avec les protéines précipitées. Versez délicatement le surnageant dans un tube de dialyse. Effectuez la dialyse contre un litre de tris 20 millimolaire à quatre degrés Celsius et pH 8,0. Renouvelez deux fois la solution de dialyse, avec un intervalle de quatre heures entre chaque changement.Après cela, équilibrez une colonne de sépharose de cinq millilitres avec 10 millilitres de tris 20 millimolaire. À l’aide de la pompe d’échantillonnage, chargez environ 40 millilitres de solution de S100A12. Récupérez l’écoulement sortant.Ensuite, lavez la colonne avec du tris 20 millimolaire. Éluiez la colonne en utilisant un gradient de 0 à 30 % sur 19 volumes de colonne. Récupérez des fractions de cinq millilitres.Utilisez une électrophorèse SDS-PAGE en tampon MES avec coloration au coomassie pour analyser un aliquot de 10 microlitres de chaque fraction. Ensuite, récupérez les fractions contenant la S100A12. À l’aide d’un dispositif de filtration ultrafine, concentrez les fractions jusqu’à cinq millilitres.Après cela, équilibrez une colonne S75 avec une solution de 120 millilitres de tris 20 millimolaire et de chlorure de sodium 100 millimolaire. Injectez l'échantillon de cinq millilitres constitué des fractions concentrées. Ensuite, éluiez la colonne à un débit d'un millilitre par minute sur un volume de 120 millilitres.Collecter des fractions de cinq millilitres. À l'aide d'une électrophorèse SDS-PAGE avec coloration au bleu de Coomassie, analyser un aliquot de 20 microlitres de chaque échantillon. Ensuite, valider l'identité de la protéine et rassembler les fractions conformément au protocole décrit dans le texte.Pour commencer, ensemencer H.pylori dans du bouillon de brucella supplémenté avec 1X du cholestérol. Faire croître la culture toute la nuit à 37 degrés Celsius sous agitation à 250 tr/min, avec de l'air enrichi en 5 % de dioxyde de carbone. Diluer H.pylori au dixième dans un mélange composé de 50 % de bouillon de brucella et de 50 % de tampon calprotectine, additionné de 1X du cholestérol.Ajouter la protéine S100A12 et/ou des métaux exogènes selon les besoins. Les tests antimicrobiens constituent un point essentiel. Il est important d'utiliser un tampon de calprotectine pour assurer la stabilité des dimères de S100A12, ainsi qu'un milieu minéral déficient en métaux pour les tests de croissance bactériologique, afin que la protéine ne soit pas submergée par un excès de micronutriments, couramment présents dans les milieux bactériologiques complexes riches.Le jour suivant, diluez les échantillons en série. Ensuite, étalez-les sur des boîtes de gélose au sang. Laissez les colonies bactériennes croître pendant deux à trois jours à 37 degrés Celsius dans de l'air enrichi en 5 % de dioxyde de carbone.Après cela, calculez la croissance bactérienne comme décrit dans le protocole écrit. Dans cette étude, une méthode affinée est présentée pour exprimer et purifier la S100A12 dans sa configuration active de liaison aux métaux. Le processus de purification en trois étapes commence par une précipitation au sulfate d'ammonium des protéines endogènes d’E.coli, suivie d'une chromatographie d'échange d'anions.Après avoir suivi la protéine par électrophorèse sur gel SDS-PAGE coloré au bleu de Coomassie. Les fractions contenant la S100A12 sont récupérées pour une chromatographie d'exclusion stérique. La S100A12 est un homodimère composé de 92 acides aminés par sous-unité et possède une masse moléculaire totale d'environ 21 kilodaltons.L'activité antimicrobienne de la S100A12 est ensuite étudiée par des techniques de culture microbiologique quantitative. Le dénombrement des cellules bactériennes révèle que l'exposition à 100 microgrammes par millilitre de S100A12, en présence ou en absence d'une source exogène de nutriments en zinc, n'inhibe pas significativement la viabilité bactérienne. Toutefois, l'exposition à 1 000 microgrammes par millilitre de S100A12 dans le milieu seul entraîne une diminution de 69 fois de la viabilité bactérienne.L'ajout d'une source exogène de zinc nutritif inverse ce résultat, ce qui démontre que l'activité antimicrobienne de la protéine S100A12 dépend de son activité de séquestration du zinc. Une fois maîtrisée, l'expression et la purification de la protéine peuvent être réalisées en trois à quatre jours, si la procédure est correctement effectuée. Après cette étape, d'autres méthodes, comme la spectrométrie de masse à couplage inductif, peuvent être utilisées afin de répondre à des questions supplémentaires.Comment la séquestration des métaux limite-t-elle la croissance microbienne ? Après son développement, cette technique a permis aux chercheurs dans le domaine de la microbiologie d'explorer l'immunité nutritionnelle de H. pylori. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'exprimer, de purifier et de quantifier l'activité de la protéine antimicrobienne S100A12.N'oubliez pas que le travail avec H.pylori peut être extrêmement dangereux. Des précautions, telles que travailler dans un espace certifié BS2, doivent toujours être prises lors de la réalisation de cette procédure. Les implications de cette technique s'étendent aux maladies gastriques, notamment l'ulcère, la gastrite et le carcinome adnexial invasif.En comprenant ces processus, nous serons mieux préparés à concevoir de nouvelles molécules antimicrobiennes ciblant ces mécanismes. Bien que cette méthode permette d'approfondir la biochimie des protéines de la famille S100A, elle peut également être appliquée à l'étude de leur rôle dans la signalisation immunitaire et dans de nombreux processus pathologiques tels que le cancer, l'arthrite et les maladies infectieuses.

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