1 décembre 2017
Les protocoles présentés décrivent comment effectuer un test d’inhibition hémagglutination afin de quantifier les titres d’anticorps spécifiques à la grippe d’échantillons de sérum des destinataires de vaccin contre la grippe. Le premier dosage détermine la concentration optimale d’antigène viral par hémagglutination. Le deuxième essai quantifie les titres d’anticorps spécifiques à la grippe par l’inhibition de l’hémagglutination.
L'objectif général de ce test d'inhibition de l'hémagglutination est de mesurer les titres d'anticorps dirigés contre des virus spécifiques d'intérêt. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la vaccinologie concernant l'immunité et la protection induites par les vaccins au sein de différentes populations et chez divers groupes d'âge ou de patients. Les principaux avantages de cette technique sont sa précision et sa capacité à permettre une détermination rapide du titre des anticorps neutralisants présents.
Bien que cette méthode puisse fournir des informations sur les titres d'anticorps humains, elle peut également être appliquée à d'autres systèmes, comme les titres d'anticorps présents dans le sérum de souris ou encore les surnageants de culture. Commencez par étiqueter des plaques microtitration de 96 puits avec les informations expérimentales appropriées. Ensuite, placez la plaque en orientation verticale et utilisez une pipette multicanal pour ajouter 25 microlitres de PBS dans chaque puits, à l'exception du premier puits de la rangée de titration arrière inférieure.
Ajouter 50 microlitres de la solution d’antigène fraîchement préparée d’intérêt dans le premier puits de la rangée de rétrotitrage, puis ajouter 25 microlitres d’échantillons de sérum traités par RDE dans les premiers puits des dix rangées supérieures. Ajouter 25 microlitres de l’antisérum approprié dans le premier puits de la 11e rangée comme témoin positif. Transférer ensuite 25 microlitres du premier puits de chaque rangée vers les puits suivants afin d’effectuer des dilutions sérielles par deux.
Pipeter de haut en bas 10 à 15 fois pour chaque étape de dilution, en rejetant les 25 microlitres finaux des derniers puits. Ensuite, ajouter 25 microlitres de la solution d'antigène dans chaque puit des lignes 1 à 11 et 25 microlitres de PBS uniquement dans chaque puit de la ligne de titrage arrière. Tapoter délicatement la plaque 10 fois sur chacun des quatre côtés pour mélanger.
Ensuite, couvrez la plaque pendant 30 minutes à température ambiante. À la fin de l'incubation, ajoutez 50 microlitres de solution de globules rouges dans chaque puits et mélangez la plaque en tapotant davantage. Recouvrez ensuite à nouveau la plaque et incubez les globules rouges selon l'espèce utilisée, comme indiqué dans le tableau.
Après avoir ajouté les globules rouges dans la plaque, respecter le temps d'incubation approprié en fonction du type de sang utilisé dans le test. Une incubation trop courte ou trop longue conduira à une interprétation incorrecte des résultats. À la fin de l'incubation, évaluer l'hémagglutination en inclinant la plaque de 90 degrés pendant 25 secondes et noter les résultats pour chaque puits, pendant que la plaque est encore inclinée, sur un schéma imprimé de la plaque à 96 puits.
Dans cette expérience, la réponse anticorps induite par le vaccin a été évaluée chez 26 volontaires sains ayant reçu un vaccin antigrippal trivalent inactivé contenant les souches A/H1N1/California/2009, A/H3N2/Texas/2012 et B/Massachusetts/O2/2012 avant la saison grippale 2015. Une réponse immunitaire croisée contre les souches virales A/H3N2/Switzerland/2013 et A/H3N2/Texas/2012 a été observée, avec des titres géométriques moyens d'inhibition de l'hémagglutination significativement plus faibles et une séroprotection induite moindre contre la souche A/H3N2/Switzerland/2013 par rapport à la souche A/H3N2/Texas/2012. Après la vaccination, les titres d'anticorps dirigés contre les deux souches ont augmenté, bien que la souche A/H3N2/Switzerland/2013 ne soit pas présente dans le vaccin.
L'hémagglutinine virale présente un potentiel d'hémagglutination des érythrocytes dépendant de l'espèce. Il est intéressant de noter que le sang de cobaye n'hémagglutine pas correctement avec l'influenza B, tandis que le sang de dinde possède un potentiel d'hémagglutination élevé avec des titres élevés et une faible réactivité croisée. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en trois heures si elle est effectuée correctement.
Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se rappeler de traiter le sérum avec la RDE afin d'inactiver les inhibiteurs non spécifiques et les liaisons non spécifiques durant l'hémagglutination du virus. Après cette procédure, d'autres méthodes comme le test ELISA peuvent être réalisées pour répondre à des questions supplémentaires sur le rôle des immunoglobulines spécifiques à un agent pathogène. Depuis son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de l'immunologie virale pour approfondir notre compréhension de l'immunité liée aux vaccins chez des patients sains et immunodéprimés appartenant à différents groupes d'âge.
Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'effectuer un test d'inhibition de l'hémagglutination pour quantifier à grande échelle les titres d'anticorps spécifiques aux souches de grippe. N'oubliez pas que le travail avec des antigènes viraux, du sang animal et des échantillons de sérum humain peut être extrêmement dangereux, et que des précautions telles que le travail en laboratoire de niveau de sécurité biologique 2 (BSL2) doivent toujours être prises lors de l'exécution de cette procédure.
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Cet article présente des protocoles pour réaliser un test d'inhibition de l'hémagglutination afin de quantifier les titres d'anticorps spécifiques contre la grippe à partir d'échantillons sériques. Cette méthode est essentielle pour comprendre l'immunité induite par le vaccin au sein de différentes populations.
La quantification précise des taux d'anticorps spécifiques contre la grippe est essentielle pour évaluer l'immunité induite par le vaccin et orienter les évaluations de l'immunogénicité lors du développement préclinique et clinique. Le dosage d'inhibition de l'hémagglutination (HI) offre une méthode normalisée et rapide pour mesurer les réponses en anticorps neutralisants au sein de populations diverses, soutenant ainsi des décisions fondées sur des données probantes concernant la poursuite ou l'abandon de projets dans le développement de vaccins. En permettant l'analyse de la réactivité croisée et l'optimisation des érythrocytes selon l'espèce, ce dosage renforce la fiabilité prédictive des études en immunologie translationnelle.
Le test de HI s'intègre dans le flux de travail d'immunogénicité, depuis la découverte précoce jusqu'à la validation préclinique, en fournissant des données quantitatives sur les anticorps qui orientent le choix de l'antigène, l'optimisation de l'adjuvant et les études de détermination des doses.