Name: L’essai de Reconstitution organoïde (ORA) pour l’analyse fonctionnelle des souches intestinales et des cellules de Niche (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Découvrez l'essai de reconstitution organoïde pour analyser les cellules souches intestinales Lgr5+ et les cellules de niche Paneth. Cette méthode permet des modifications génétiques et biochimiques spécifiques.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Cette étude a été rendue possible par le financement de la société néerlandaise de Cancer (KWF ; EMCR 2012-5473) et le World Cancer Research Fonds International (WCRF ; projet no 2014-1181)

Toutes les procédures ont été effectuées selon les directives et lois locales de bien-être animal.
1. préparation des Instruments, les milieux de Culture et plats
<ol><li>Ensemble d’autoclave 1 intestinale Ciseaux Ciseaux normaux et pinces dans un flacon stérile.</li>
	<li>Placer un plat de 96 puits (fond plat) dans un incubateur à 37 ° C.</li>
	<li>Préparer 10 mL de milieu de culture complet avec les réactifs énumérés dans la table des matières.</li>
	<li>Incuber le milieu complet à 37 ° C dans un bain d’eau.</li>
	<li>Décongelez les membrane plasmique basale reconstituée en le plaçant dans un seau à glace. La membrane plasmique basale reconstituée deviendra liquide à 4 ° C.</li>
	<li>Remplissez 4 boîtes de Pétri avec une solution saline tamponnée au phosphate froide ou abrégé PBS (4 ° C).</li>
</ol>2. isolement de petites cryptes intestinales
<ol><li>Sacrifier, par inhalation de CO2 , une Lgr5- eGFP-IRES-CreERt2 souris sur fond C57BL6/J. Disséquer le péritoine longitudinalement avec une paire de ciseaux.</li>
	<li>Tenir l’estomac avec la pince et couper transversalement en deux.</li>
	<li>En utilisant les ciseaux intestinales par la suite, retirer l’intestin et placez-le dans une boîte de Pétri contenant du PBS. NOTE : Ciseaux Intestinal ont une forte et une pointe émoussée. L’extrémité arrondie de ces ciseaux est destinée à ne pas endommager l’architecture de la crypte-villosités lors de l’ouverture de l’intestin.</li>
	<li>Commencez par placer la pointe émoussée dans l’estomac et le pousser doucement à travers le pylore. Aller de l’avant en coupant avec des ciseaux et en tirant avec la pince.</li>
	<li>Une fois que l’intestin entier est ouverte longitudinalement, lavez-le dans du PBS froid en le tenant avec la pince et le rincer doucement dans la solution de PBS avec des mouvements en forme de U.</li>
	<li>Une fois que tous les restes de selles sont effacés, procéder pour aplatir l’intestin sur une planche à découper, luminal face vers le haut. La face luminale est facilement reconnaissable par l’absence de vaisseaux sanguins et par son aspect pâle en comparaison avec la partie extérieure.</li>
	<li>Avec une lame de verre, retirez délicatement les villosités en grattant l’intestin aplatie. Effectuez cette étape deux fois sur toute la longueur du tissu.</li>
	<li>Couper l’intestin grêle avec une lame chirurgicale stérile en morceaux de 2 à 5 mm.</li>
	<li>Placer les petits fragments intestinales dans un tube de 50 mL contenant 10 mL de PBS froid de glace.</li>
	<li>Nettoyer les fragments tissulaires, enlever toutes les impuretés restantes en pipettant également, les monter et descendre dans le PBS. Jeter le surnageant et répétez cette étape jusqu'à ce que le PBS est tout à fait clair.</li>
	<li>Ajouter 15 mL de PBS froid, pour porter le volume final total de PBS à 25 mL. Ajouter 2 mM d’acide tétraacétique (EDTA) et incuber pendant 45 min sur un rouleau à 4 ° C.</li>
	<li>Jeter le PBS/EDTA.</li>
	<li>Ajouter 10 mL de PBS et détacher les cryptes de pipetage durement les fragments de tissus haut et en bas (au moins trois fois). Recueillir le liquide surnageant.</li>
	<li>Répétez l’étape 2.13 quatre fois. Ajouter le milieu de culture pour atteindre un volume de 50 mL.</li>
	<li>Les cellules de granule par centrifugation (300 x g pendant 5 min).</li>
	<li>Resuspendre le culot dans 10 mL de milieu de culture et les cryptes de granule par centrifugation (80 x g pendant 3 min).</li>
</ol>3. seule cellule préparation
<ol><li>Jeter le surnageant des cryptes granulés et les remettre en suspension dans 1 mL, comme la trypsine-enzymes avec 50 µL DNAse (50 µg/mL).</li>
	<li>Incuber les cellules dans un bain d’eau à 32 ° C pendant 2 min.</li>
	<li>Ajouter 10 mL de milieu de culture. Dissocier les cryptes en cellules individuelles en durement pipetage monte et descend au moins 5 fois.</li>
	<li>Filtrer la solution à travers un tamis de 40 µm (pour éliminer les touffes et autres impuretés) et les cellules individuelles à 300 x g pendant 5 min à pellets.</li>
</ol>4. flow Cytometry et placage
<ol><li>Préparer 50 mL de solution saline tamponnée de 1 x Hank ou une solution de sérum (FCS) HBSS/2% vache foetale et Resuspendre le culot dans 1 mL pour chaque 106 cellules</li>
	<li>Ajouter à la suspension de cellules BV421 Lin– (CD31, CD45, TER119) à une concentration de 1/100 et CD24-APC et CD117-PE les deux à une concentration de 1/250 anticorps pendant 30 min.</li>
	<li>Tri Lgr5+ des cellules souches et des cellules de Paneth en bas séparés lient des tubes. Pour plus d’informations sur le tri des protocoles pour Lgr5+ et des cellules de Paneth, s’il vous plaît voir Roth et al. 7 et Schewe et al. 6<ol>
<li>Centrifuger les cellules triées à 300 g pendant 5 min. remettre en suspension les cellules dans 100 µL de milieu avec les composants décrits comme 1.3 (voir la Table des matières).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Traiter (par exemple, par une modification chimique ou génétique) les cellules de Paneth (n = 2000) ou les cellules souches de Lgr5+ (n = 2000).<ol>
<li>Pour traiter des cellules, utilisez 5 µL de réactif de transfection de liposome-négociée dans un volume total de 100 µL de milieu culture et petits ARN interférents (siARN) à une concentration de 100 nM. Incuber 30 min à 37 ° C pour les siARN ou pour la durée nécessaire à la modification choisie.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Laver les cellules deux fois en 500 µL de milieu de culture.</li>
	<li>Centrifuger à 300 x g pendant 5 minutes et remettre en suspension les cellules de 10 µL de milieu de culture.</li>
	<li>Mettre en commun les deux composants cellulaires (Paneth ou Lgr5+ cellules) dans un 20 µl volume total et centrifuger à 300 x g pendant 5 min à température ambiante.</li>
	<li>Incuber conjointement le Paneth et des cellules de Lgr5+ pendant 10 min à température ambiante.</li>
	<li>Enlever 10 µL du liquide surnageant et laisser un ménisque du liquide bien sûr pour ne pas aspirer le culot cellulaire.</li>
	<li>Ajouter 30 µL de membrane plasmique basale reconstituée dans les cellules pour un volume total de 40 µL, remettre les cellules en suspension et la plaque dans une assiette bien 96 préchauffé. Après 10 min, ajouter 200 µL de milieu complet (voir la Table des matières). Moyen de changer toutes les 48 h.</li>
	<li>Multiplicité de comte organoïde au jour 5.</li>
</ol>

<ol><li>Barker, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+stem+cells+in+small+intestine+and+colon+by+marker+gene+Lgr5%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Identification of stem cells in small intestine and colon by marker gene Lgr5.</a> Nature. 449, 1003-1007 (2007).</li>
<li>Sato, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paneth+cells+constitute+the+niche+for+Lgr5+stem+cells+in+intestinal+crypts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Paneth cells constitute the niche for Lgr5 stem cells in intestinal crypts.</a> Nature. 469, 415-418 (2011).</li>
<li>Sato, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+Lgr5+stem+cells+build+crypt-villus+structures+in+vitro+without+a+mesenchymal+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche.</a> Nature. 459, 262-265 (2009).</li>
<li>Clevers, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+Development+and+Disease+with+Organoids%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Modeling Development and Disease with Organoids.</a> Cell. 165, 1586-1597 (2016).</li>
<li>Cantrell, M. A., Kuo, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organoid+modeling+for+cancer+precision+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Med%22%5BJournal%5D)">Organoid modeling for cancer precision medicine.</a> Genome Med. 7, 32(2015).</li>
<li>Schewe, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secreted+Phospholipases+A2+Are+Intestinal+Stem+Cell+Niche+Factors+with+Distinct+Roles+in+Homeostasis%2C+Inflammation%2C+and+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Secreted Phospholipases A2 Are Intestinal Stem Cell Niche Factors with Distinct Roles in Homeostasis, Inflammation, and Cancer.</a> Cell Stem Cell. 19, 38-51 (2016).</li>
<li>Roth, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paneth+cells+in+intestinal+homeostasis+and+tissue+injury%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Paneth cells in intestinal homeostasis and tissue injury.</a> PLoS One. 7, e38965(2012).</li>
<li>Rodriguez-Colman, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interplay+between+metabolic+identities+in+the+intestinal+crypt+supports+stem+cell+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Interplay between metabolic identities in the intestinal crypt supports stem cell function.</a> Nature. 543, 424-427 (2017).</li>
<li>Dow, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apc+Restoration+Promotes+Cellular+Differentiation+and+Reestablishes+Crypt+Homeostasis+in+Colorectal+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Apc Restoration Promotes Cellular Differentiation and Reestablishes Crypt Homeostasis in Colorectal Cancer.</a> Cell. 161, 1539-1552 (2015).</li>
<li>Yilmaz, O. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((mTORC1+in+the+Paneth+cell+niche+couples+intestinal+stem-cell+function+to+calorie+intake%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">mTORC1 in the Paneth cell niche couples intestinal stem-cell function to calorie intake.</a> Nature. 486, 490-495 (2012).</li>
<li>Igarashi, M., Guarente, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((mTORC1+and+SIRT1+Cooperate+to+Foster+Expansion+of+Gut+Adult+Stem+Cells+during+Calorie+Restriction%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">mTORC1 and SIRT1 Cooperate to Foster Expansion of Gut Adult Stem Cells during Calorie Restriction.</a> Cell. , 436-450 (2016).</li>
</ol>

Les auteurs ont aucun intérêt financier concurrente ou autres conflits d’intérêts

L’ORA permet l’analyse fonctionnelle raffinée des deux composantes essentielles de la niche de cellules souches intestinales, à savoir Lgr5+ et cellules de Paneth. Cette approche a été utilisée précédemment par nous et d’autres avec de légères modifications6,10,11. Nous présentons ici la procédure ORA comme un protocole de laboratoire standardisée et reproductible. En outre, nous rapportons sur les effets de ...

L’épithélium intestinal est le tissu autorenouvellement plus rapidement dans l’organisme chez les mammifères et, à ce titre, a fait l’objet d’une pléthore d’études visant à l’identification et la caractérisation fonctionnelle des cellules souches adultes résidant au fond de la crypte de Lieberkühn, affectée par l’expression du gène Lgr5 et fonction canonique Wnt signaux1. Notamment, Lgr5+ des cellules souches sont flanqués et pris en charge par des cellules spécialisées de créneau, c'est-à-dire des cellules de Paneth, qui dépendent aussi de signalisation Wnt pour leur maturation2. Ensemble, ces deux types de cellules sous-tendent l’auto-renouvellement de la muqueuse épithéliale intestinale et préservation de l’équilibre homéostatique quotidienne : Lgr5+ cellules souches rapidement diviser et donner lieu à des progéniteurs et plus spécialisée intestinales épithéliales cellules ; Les cellules de Paneth fournissent des facteurs essentiels de niche (p. ex., Dll1, Wnt3, EGF) à Lgr5+ 2les cellules souches. La capacité des cryptes intestinales lorsque plaqué ex vivo pour former des structures organisées et autorenouvellement appelée organoïdes, ou « mini-tripes », a été exploitée comme un outil expérimental pour donner un aperçu des processus tels que l’auto-renouvellement et différenciation dans des conditions normales et pathologiques, y compris le cancer4. Organoïde cultures ont été établis de plusieurs tissus, y compris l’intestin, le pancréas, le foie et le rein, à la fois des souris et des échantillons humains4. La méthode d’extraction et les facteurs de croissance employés pour développer ces cultures organoïde sont tissu-spécifique et conçues pour conduire la différenciation des lignées multiples et imiter autant que possible la niche de cellules souches original in vivo. Organoïdes peut avoir des applications potentielles, y compris le traitement des maladies génétiques, l’évaluation de l’efficacité thérapeutique dans le cancer, l’analyse de la toxicité des médicaments ou l’étude de l’organogenèse in vitro5.
Dans l’ensemble, la principale limitation des cultures organoïde lorsque établies à partir d’échantillons de tissus est un manque de spécificité cellulaire. Par exemple, organoïdes intestinales, établis à partir des cryptes intestinales ensemble ne permettent pas l’analyse des différents composants cellulaires englobés dans la source de tissu (par exemple, contiennent des cryptes toute Lgr5+, Paneth, et cellules souches).
Nous décrivons ici une nouvelle méthode, dénommée ORA, qui combine les avantages des cultures organoïde intestinale avec l’analyse fonctionnelle de ses éléments plus fondamentaux, à savoir les souches (Lgr5+) et les cellules de la niche (Paneth). Ceci est réalisé grâce à la capacité unique de Paneth et des cellules pour associer physiquement à l’autre lorsque co incubés et donner lieu à organoïdes2,6,10 Lgr5+ . Nous avons pris parti de cette fonctionnalité et prétraités individuellement les deux types cellulaires avant leur permettant de reconstituer organoïdes. Ce faisant, chaque composant de la cellule peut être exposé à n’importe quel médicament, facteur de croissance, inhibiteur biochimique, modification génétique ou traitement chimique avant reconstitution et organoïde formation. Par conséquent, essai sur les ORA permettra à la détermination de la question de savoir si un traitement médicamenteux spécifique ou la modification génétique a un effet spécifique sur les cellules souches ou leur homologue de niche.

<table><tbody><tr><td>Advanced DMEM F12 *</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12634-010</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax *</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>35050061</td><td>Concentration finale : 10 mM</td></tr><tr><td>Pénicilline/streptomycine *</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15140122</td><td>Concentration finale : 1 %</td></tr><tr><td>Hepes *Thermo</td> <td>Fisher Scientific</td><td>15630080</td><td>Concentration finale : 10 mM</td></tr><tr><td>Souris recombinante EGF *</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>PMG8041</td><td>Concentration finale : 50 ng/ml</td></tr><tr><td>Souris recombinante Noggin *</td><td>Peprotech</td><td>250-38</td><td>Concentration finale : 100 ng/ml</td></tr><tr><td>y27632 *</td><td>Sigma</td><td>Y0503</td><td>Concentration finale : 10 &micro ; M</td></tr><tr><td>Jagged-1 *</td><td>Anaspec Bio</td><td>AS-61298</td><td>Concentration finale : 1 &micro ; M</td></tr><tr><td>R-spondine murine recombinante *</td><td>R& D systems</td><td>3474-RS-050</td><td>Concentration finale : 1 mg/ml</td></tr><tr><td>Flexitube Gene solution siRNA APC</td><td>Qiagen</td><td>GS11789</td><td>Concentration finale : 100 nM</td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000 Thermo</td><td>Fisher Scientific</td><td>11668019</td><td></td></tr><tr><td>CD24 APC</td><td>Biolegend</td><td>101814</td><td></td></tr><tr><td>c-kit PE</td><td>Biolegend</td><td>105808</td><td></td></tr><tr><td>BV 421 CD31</td><td>Biolegend</td><td></td><td></td>102424</tr><tr><td>BV 421 CD45</td><td>Biolegend</td><td>103134</td><td></td></tr><tr><td>BV421 TER119</td><td>Biolegend</td><td>116234</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14180046</td><td></td></tr><tr><td>B6.129P2-Lgr5tm1(cre/ERT2)Cle/J</td><td>Jackson Laboratories</td><td>008875</td><td></td></tr><tr><td>Tubes à faible liaison</td><td>Eppendorf</td><td>Z666548-250EA</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>Corning</td><td>356230</td><td></td></tr><tr><td>* La combinaison de ces réactifs constitue le milieu</td><td></td><td></td><td></td> de culture complet</tr></tbody></table>

l’essai de reconstitution organoïde (ora) pour l’analyse fonctionnelle des souches intestinales et des cellules de niche

The Organoid Reconstitution Assay (ORA) for the Functional Analysis of Intestinal Stem and Niche Cells

L’épithélium intestinal se caractérise par un taux de rotation extrêmement rapide. Chez les mammifères, le revêtement épithélial entière est renouvelé dans les 4-5 jours. Les cellules souches adultes intestinaux se trouvent au fond des cryptes de Lieberkühn, sont affectés par l’expression du gène Lgr5 et préserver l’homéostasie grâce à leur caractéristique fort taux proliférative1. Tout au long de l’intestin grêle, Lgr5+ cellules souches s’entremêlent avec les cellules sécrétrices spécialisées appelées cellules de Paneth. Les cellules de Paneth sécrètent des composés antibactériens (c.-à-d., lysozyme et cryptdins/défensines) et exercent un rôle dominant sur la flore intestinale. Plus récemment, une nouvelle fonction a été découvert pour les cellules de Paneth, à savoir leur capacité à fournir un soutien de niche de cellules souches Lgr5+ à travers plusieurs ligands principaux au Wnt3, EGF et Dll12.
Lorsque isolés ex vivo et cultivées en présence de facteurs de croissance spécifiques et des constituants de la matrice extracellulaire, des cryptes intestinales ensemble donnent lieu à longue durée de vie et renouvellement des structures 3D appelé organoïdes qui ressemblent fortement à la crypte-villosités architecture épithéliale de l' intestin grêle adulte3. Organoïde cultures, lors de toute cryptes, permettent l’étude de l’auto-renouvellement et la différenciation de la niche de cellules souches intestinales, sans toutefois aborder la contribution de ses composants, à savoir le Lgr5+ et Cellules de Paneth.
Ici, les auteurs décrivent une nouvelle approche à l’analyse d’organoïde qui tire parti de la capacité de Paneth et des cellules de Lgr5+ pour associer et former les organoïdes lorsque conjointement mis en culture. Cette approche, ici dénommée « essai de reconstitution organoïde » (ORA), permet la modification génétique et biochimique de Paneth ou Lgr5+ des cellules souches, suivis de la reconstitution dans organoïdes. À ce titre, elle permet l’analyse fonctionnelle des deux principales composantes de la niche de cellules souches intestinales.

L’essai de reconstitution organoïde permet l’analyse fonctionnelle séparée des composants essentiels de niche et de cellules souches de l’épithélium intestinal, témoigne ici de petits ARN interférents (siARN) du gène Apc .
Pour atteindre cet objectif, nous avons utilisé tout d’abord fluorescent cellulaire activé triant (FACS) pour séparer les cellules Lgr5+ 8000 et 6000 cellules de Paneth consanguine...

Les cultures organoïde intestinale sont établis de cryptes ensemble et ne permettent pas l’analyse de l’auto-renouvellement et différenciation de façon spécifique des cellules. Ce protocole décrit la reconstitution de tige triée (Lgr5+) et les cellules (Paneth), donnant lieu à organoïdes, tout en permettant leur préalable modifications biochimiques et génétiques et l’analyse fonctionnelle de niche.

L’essai de Reconstitution organoïde (ORA) pour l’analyse fonctionnelle des souches intestinales et des cellules de Niche

The intestinal epithelium is characterized by an extremely rapid turnover rate. In mammals, the entire epithelial lining is renewed within 4 - 5 days. ...

L’objectif global de l’essai de reconstitution organoïde est l’analyse fonctionnelle des deux principaux composants de la niche des cellules souches intestinales Lgr5 positifs dans les cellules de Paneth par leur modification génétique ou biochimique, suivie d’une reconstitution en organoïdes auto-renouvelables. Cette méthode permet d’aborder des questions spécifiques clés dans le domaine des cellules souches intestinales, telles que la modification génétique ou biochimique dans les cellules souches et de niche. Le principal avantage de cette technique est que, contrairement à d’autres tests qui utilisent des cryptes entières, elle utilise des cellules souches et de niche triées, permettant ainsi une analyse spécifique au type de cellule.La démonstration vidéo de cette méthode est essentielle, en particulier lorsqu’il s’agit des étapes de dissociation des tissus et de manipulation des cellules. Si elles ne sont pas correctement exécutées, ces étapes entraîneront une mauvaise viabilité cellulaire, en particulier après le tri des faits. Commencez cette procédure par la préparation des matériaux et le sacrifice d’une souris Lgr5 sur un fond C57BL/6J comme décrit dans le protocole texte.Disséquez le péritoine longitudinalement avec une paire de ciseaux. Tenez l’estomac avec la pince et coupez-le transversalement en deux à l’aide de ciseaux intestinaux à partir de ce point. Retirez l’intestin et placez-le dans une boîte de Pétri contenant du PBS.Commencez par placer l’embout émoussé dans l’estomac et poussez-le doucement à travers le pylore. Procédez en coupant avec les ciseaux et en tirant avec la pince. Une fois que tout l’intestin grêle est ouvert longitudinalement, lavez-le dans du PBS froid en le tenant avec la pince et en le rinçant doucement dans la solution de PBS avec des mouvements en forme de U.Une fois que tous les restes de selles sont éliminés, procédez à l’aplatissement de l’intestin sur une planche à découper, côté lumière vers le haut. La face lumineuse est facilement reconnaissable par l’absence de vaisseaux sanguins et par son aspect pâle par rapport à la partie externe. À l’aide d’une lame de verre, retirez délicatement les villosités en grattant l’intestin aplati.Effectuez l’étape deux fois sur toute la longueur du tissu. Ensuite, coupez l’intestin grêle avec une lame chirurgicale stérile en morceaux de deux à cinq millimètres. Placez les fragments de l’intestin grêle dans un tube de 50 millilitres contenant 10 millilitres de PBS glacé.Nettoyez les fragments de tissu en éliminant toutes les impuretés restantes en les pipetant de haut en bas dans le PBS. Jetez le surnageant et répétez l’étape jusqu’à ce que le PBS soit complètement clair. Ensuite, ajoutez 15 millilitres de PBS froid pour porter le volume final total de PBS à 25 millilitres.Ajouter deux millimolaires d’EDTA et incuber pendant 45 minutes sur un rouleau à quatre degrés Celsius. Après avoir jeté l’EDTA PBS, ajoutez 10 millilitres de PBS et détachez les cryptes en pipetant durement les fragments de tissu de haut en bas. Ensuite, récupérez le surnageant.Répétez cette étape quatre fois. Ajouter le milieu de culture pour atteindre un volume final de 50 millilitres. Granuler les cellules par centrifugation.Enfin, remettre la pastille en suspension dans 10 millilitres de milieu de culture avant de granuler les cryptes par centrifugation. Pour la préparation d’une cellule unique, jetez d’abord le surnageant des cryptes granulées et mettez-les en suspension dans un millilitre d’enzymes de type trypsine avec 50 microlitres de DNase. Incuber les cellules dans un bain-marie à 32 degrés Celsius pendant deux minutes.Après avoir ajouté 10 millilitres de milieu de culture, dissociez les cryptes en cellules uniques en pipetant durement de haut en bas au moins cinq fois. Filtrez la solution à travers une passoire de 40 microns pour éliminer les grumeaux et autres impuretés. Ensuite, granulez les cellules individuelles à 300 fois la gravité pendant cinq minutes.Pour la cytométrie en flux, remettre la pastille en suspension dans un millilitre d’une solution saline tamponnée de X Hank avec 2 % de sérum de vache fœtale pour chaque million de cellules. À la suspension cellulaire, ajoutez des anticorps marqués Brilliant Violet 421 pour les marqueurs de lignée CD31, CD45 et Ter119 à une concentration de un à 100. Ajoutez également de l’APC anti-CD24 et de l’EP anti-CD117 à une concentration de un à 250.Après 30 minutes, triez les cellules souches positives à Lgr5 et les cellules de Paneth dans des tubes séparés à faible liaison. Centrifugez les cellules triées à 300 fois la gravité pendant cinq minutes. Ensuite, mettez les cellules en suspension dans 100 microlitres de milieu avec les composants décrits dans le protocole texte.Pour traiter les cellules, utilisez cinq microlitres de réactif de transfection médié par les liposomes dans un volume total de 100 microlitres de milieu de culture et de petits ARN interférents à une concentration de 100 nanomolaires. Incuber les cellules pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius pour les petits ARN interférents, ou pendant le temps nécessaire à la modification choisie. Lavez les cellules deux fois dans 500 microlitres de milieu de culture.Après avoir centrifuger les cellules à 300 fois la gravité pendant cinq minutes, mettez-les en suspension dans 10 microlitres de milieu de culture. Ensuite, regroupez les deux composants cellulaires dans un volume total de 20 microlitres avant de centrifuger à 300 fois la gravité pendant cinq minutes à température ambiante. Co-incubez les cellules positives Paneth et Lgr5 pendant 10 minutes à température ambiante.Prélever 10 microlitres de surnageant et les laisser dans un sas de liquide afin d’éviter l’aspiration de la pastille cellulaire. Ensuite, ajoutez 30 microlitres de membrane basale reconstituée dans les cellules pour un volume total de 40 microlitres. Remettez les cellules en suspension et placez-les dans une plaque préchauffée à 96 puits.Après 10 minutes, ajoutez 200 microlitres de milieu complet. Changez de milieu toutes les 48 heures. Enfin, comptez la multiplicité des organoïdes au cinquième jour.L’inhibition médiée par de petits ARN interférents du gène APC murin dans les cellules souches positives Lgr5 et l’activation résultante de la voie de signalisation canonique Wnt/bêta-caténine affectent positivement la multiplicité des organoïdes par rapport à leurs homologues non traités ou au contrôle de la séquence brouillée. La constitution de l’activation de Wnt sauve également la nécessité de cellules Paneth comme indiqué précédemment. De plus, ces organoïdes apparaissent sous forme de sphères creuses, un phénotype bien décrit pour les organoïdes mutants APC ou stimulés par Wnt par rapport à la morphologie de ceux obtenus à partir de doublets de cellules Paneth-Lgr5.Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en cinq heures si elle est correctement exécutée. Lorsque vous essayez cette technique, il est important de suivre toutes les étapes et les temps d’incubation. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’extraire la crypte intestinale, de préparer une digestion de cellule unique et de reconstituer des cellules de niche et souches pour générer des organoïdes.Cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine des cellules souches intestinales pour disséquer les effets spécifiques des cellules souches ou de niche dans l’intestin grêle ou le gros intestin de la souris. Bien que cette méthode ait été établie pour l’analyse fonctionnelle de la niche des cellules souches intestinales, elle peut également être appliquée à d’autres niches de cellules souches somatiques comme la glande mammaire ou le follicule pileux. À la suite de cette procédure, des expériences supplémentaires peuvent être réalisées pour analyser l’expression des protéines du génome dans les organoïdes, comme la QPCR ou le Western blot.

the-organoid-reconstitution-assay-ora-for-functional-analysis

Research

Recherche

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingénierie

Dans ce protocole vidéo, nous expliquons étape par étape la transduction lentivirale dans les organoïdes de l’épithélium intestinal primaire et le traitement et l’analyse en aval de ces cultures par RT-PCR quantitative, ARN-microarray et immunohistochimie.

Un protocole pour Lentiviral transduction et analyse aval de intestinale organoïdes

Ici, un protocole pour récolter, conserver et traiter les souris petits organites intestinaux avec des motifs de pathogènes associés moléculaires (PAMP) et Listeria monocytogenes est décrit, ainsi que l' accent sur ​​l' expression des gènes et des techniques de normalisation appropriées pour la protéine.

le<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Culture et Pattern Recognition Receptor Stimulation de la souris Intestinal organites

Ici, nous décrivons une technique pour quantifier l’intégrité barrière des petits organoïdes intestinaux. Le fait que la méthode est basée sur des organoïdes vivants permet l’étude séquentielle de différentes substances modulant l’intégrité de barrière ou des combinaisons de celui-ci d’une manière résolue dans le temps.

Enquêter sur la dégradation des barrières intestinales chez les organoïdes vivants

Ce protocole permet de différencier les cellules pluripotentes humaines en organoïdes intestinaux. Le protocole imite le développement humain normal en différenciant les cellules en une population d’endoderme définitif, d’endoderme de l’intestin postérieur, puis d’épithélium intestinal. Cela rend le protocole adapté à la fois à l’étude du développement intestinal et aux applications de modélisation des maladies.

Génération d’organoïdes intestinaux dérivés de hiPSC pour des applications de modélisation du développement et des maladies

Ici, nous décrivons la préparation de monocouches épithéliales intestinales dérivées d’organoïdes humains pour étudier la fonction de barrière intestinale, la perméabilité et le transport. Comme les organoïdes représentent la réponse originale du tissu épithélial aux stimuli externes, ces modèles combinent les avantages de l’extensibilité des lignées cellulaires et la pertinence et la complexité des tissus primaires.

Monocouche épithéliale dérivée d’organoïdes : un modèle in vitro cliniquement pertinent pour la fonction de barrière intestinale

Les organoïdes intestinaux dérivés de la biopsie et les technologies d’organes sur puce sont combinés dans une plate-forme microphysiologique pour récapituler la fonctionnalité intestinale spécifique à la région.

Combinaison d’organoïdes humains et de la technologie Organ-on-a-Chip pour modéliser des fonctionnalités spécifiques à la région intestinale

Le présent protocole décrit l’établissement d’un système organoïde du côlon murin pour étudier l’activité et le fonctionnement des cellules souches du côlon dans un modèle knockout claudin-7.

Culture tridimensionnelle de cryptes coliques murines pour étudier la fonction des cellules souches intestinales ex vivo

Nous décrivons un protocole pour isoler les cryptes de l’intestin grêle murin et cultiver des organoïdes intestinaux 3D à partir des cryptes. De plus, nous décrivons une méthode pour générer des organoïdes à partir d’une seule cellule souche intestinale en l’absence d’une niche cellulaire sous-épithéliale.

La culture 3D d’organoïdes à partir de cryptes intestinales murines et d’une seule cellule souche pour la recherche organoïde

Nous présentons ici un protocole permettant de générer des organoïdes intestinaux de rat et de les utiliser dans plusieurs applications en aval. Les rats sont souvent un modèle préclinique privilégié, et le système organoïde intestinal robuste répond au besoin d’un système in vitro pour accompagner les études in vivo .

Génération et manipulation d’organoïdes intestinaux de rat

Les cellules souches périvasculaires (CSP) sont une classe de cellules souches roman pour la régénération tissulaire du squelette similaire aux cellules souches mésenchymateuses (CSM). CSP peuvent être isolés par FACS (fluorescence tri cellulaire activé) à partir de tissu adipeux prélevés lors des procédures de liposuccion standard, puis combiné avec un ostéoinducteur échafaudage pour atteindre la formation...

L&#39;utilisation de cellules souches humaines périvasculaires pour la régénération osseuse

Découvrez l'essai de reconstitution organoïde pour analyser les cellules souches intestinales Lgr5+ et les cellules de niche Paneth. Cette méthode permet des modifications génétiques et biochimiques spécifiques.

L’essai de Reconstitution organoïde (ORA) pour l’analyse fonctionnelle des souches intestinales et des cellules de Niche

Explorer plus de vidéos