Intubation endotrachéale de lapins à l’aide d’un cathéter Guide en polypropylène
13 novembre 2017
L’intubation endotrachéale chez le lapin est un défi en raison de leur anatomie inhabituelle. Nous présentons ici une technique pour l’intubation directe de la trachée, à l’aide d’un cathéter en polypropylène comme guide. Cette méthode utilise des fournitures relativement peu coûteux, nécessite une formation minimale et peut être facilement effectuée dans un contexte clinique.
L’objectif global de cette procédure est d’intuber les lapins de manière sûre et efficace afin d’assurer la persistance des voies respiratoires pendant l’anesthésie générale. Cette méthode peut être utilisée pour des projets de recherche nécessitant une anesthésie générale chez le lapin, mais a également une large application pour une variété de contextes cliniques. Les principaux avantages de cette technique sont qu’elle est non invasive, relativement peu coûteuse, facile à apprendre et qu’elle entraîne l’intubation directe de la trachée.
L’intubation endotrachéale chez le lapin peut être difficile en raison de son anatomie inhabituelle. Mais cette approche est une procédure simple et reproductible qui utilise des fournitures peu coûteuses et des points de repère facilement identifiables. Avant de commencer la procédure, coupez l’extrémité non arrondie d’un cathéter en polypropylène français à une longueur totale de huit à 10 pouces et marquez clairement l’extrémité coupée du tube pour indiquer l’extrémité qui ne doit pas être insérée dans la trachée.
Chargez une lame de laryngoscope de taille zéro ou Miller sur le laryngoscope et vérifiez que la lumière du laryngoscope est fonctionnelle. Mesurez une sonde endotrachéale non manchonnée de taille appropriée, des incisives à l’entrée thoracique, afin de déterminer la longueur appropriée pour l’insertion de la sonde endotrachéale, et appliquez un lubrifiant stérile à l’extrémité de la sonde. Après avoir confirmé le niveau approprié de sédation par pincement des orteils, appliquez la pommade sur les yeux d’un lapin blanc de Nouvelle-Zélande âgé de trois à 3,3 kilogrammes.
Placez le lapin à l’arrière sur la table de préparation, la tête légèrement déployée sur le bord de la table et la tête et la colonne vertébrale dans l’alignement droit. En soulevant la tête, utilisez un tampon de gaze pour tirer la langue latéralement vers les incisives inférieures droites du diastème. Et en entrant par le côté gauche de l’animal, utilisez la main droite pour placer le laryngoscope et la lame dans la bouche derrière les incisives.
Suivez le toit de la bouche avec la pointe de la lame jusqu’à ce que la palette douce soit visible. Ensuite, en pliant le poignet et en tenant l’instrument vers le bas, inclinez le laryngoscope vers l’avant tout en étendant la tête de l’animal vers l’arrière et le cou vers l’avant pour maintenir les voies respiratoires ouvertes et voir le larynx. Il est essentiel d’obtenir une visualisation claire du larynx pour s’assurer que le cathéter guide est dirigé vers les voies respiratoires.
En maintenant la vue de la glotte, relâchez la langue et basculez la lame du laryngoscope vers la main gauche. Faites avancer l’extrémité arrondie du cathéter guide à travers l’ouverture au-delà du larynx en visualisant le passage entre les cordes vocales jusqu’à ce que le cathéter s’arrête naturellement à la bifurcation trachéale. Enfilez le tube endotrachéal sur le cathéter et avancez le tube jusqu’à ce qu’il y ait une résistance des cordes vocales.
La partie la plus risquée de la procédure est l’enfilage de la sonde endotrachéale sur le cathéter guide. Si le connecteur du tube endotrachéal s’accroche au cathéter guide, il peut forcer le cathéter plus loin dans les voies respiratoires, provoquant potentiellement un traumatisme. Lorsque le tube est en place, utilisez une seringue d’un millilitre pour instiller 0,25 millilitre de lidocaïne à 2 % dans l’ouverture du tube afin d’anesthésier localement les cordes vocales et de prévenir le laryngospasme.
Après deux minutes, tournez doucement le tube endotrachéal tout en le faisant avancer à travers les cordes vocales. Une fois que le tube a dépassé les cordes vocales, retirez la lame du laryngoscope et le cathéter en prenant soin de ne pas déloger le tube. Vérifiez le bon placement de la sonde endotrachéale en observant le flux d’air et fixez la sonde avec du ruban ombilical attaché autour de la sonde et de la tête.
Ensuite, fixez le circuit d’anesthésie et auscultez les deux côtés du thorax tout en donnant des respirations pour assurer la ventilation des deux côtés du poumon. Après une démonstration par un formateur expérimenté, les stagiaires qui découvrent la technique d’intubation, qui est facile à apprendre et à réaliser, réussissent généralement en une à trois tentatives. Comme pour toute méthode d’intubation, il est important de surveiller de près l’animal pendant les périodes d’anesthésie et de récupération pour toute complication potentielle ou obstruction des voies respiratoires.
Une fois maîtrisée, cette technique peut être exécutée rapidement et de manière fiable par une seule personne dans n’importe quel cadre clinique et peut être facilement enseignée au personnel technique avec peu de temps pour la maîtriser. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’intuber en toute sécurité les lapins pour maintenir une voie respiratoire perméable sous anesthésie générale.
Aperçu
Cet article présente une technique d'intubation endotrachéale directe chez le lapin, qui répond aux défis posés par son anatomie particulière. La méthode utilise un cathéter en polypropylène comme guide, ce qui la rend accessible et facile à réaliser dans divers contextes cliniques.
Composantes clés de l'étude
Domaine scientifique
- Médecine vétérinaire
- Techniques d'anesthésie
- Procédures cliniques
Contexte
- L'intubation endotrachéale chez les lapins est compliquée en raison de leur structure anatomique.
- Une gestion sécuritaire des voies respiratoires est cruciale pendant l'anesthésie générale.
- Cette technique est conçue pour être non invasive et rentable.
- Elle peut être appliquée tant en milieu de recherche qu'en milieu clinique.
Objectif de l'étude
- Fournir une méthode fiable pour l'intubation des lapins.
- Garantir une voie aérienne perméable pendant l'anesthésie.
- Faciliter la formation du personnel vétérinaire aux techniques d'intubation.
Méthodes utilisées
- Préparation d'un cathéter en polypropylène comme guide.
- Utilisation d'un laryngoscope de Miller pour la visualisation.
- Application d'un anesthésique local sur les cordes vocales.
- Surveillance de l'animal pendant la procédure et la récupération.
Résultats principaux
- La technique permet une visualisation directe du larynx.
- Les taux de réussite s'améliorent avec une formation minimale.
- Elle est reproductible et peut être réalisée rapidement.
- Une surveillance étroite est essentielle pour prévenir les complications.
Conclusions
- Cette méthode d'intubation est efficace et facile à apprendre.
- Elle peut être réalisée dans divers contextes cliniques.
- Une fois maîtrisée, elle améliore la sécurité de l'anesthésie chez les lapins.
Questions fréquemment posées
Pertinence stratégique pour l'industrie
Cette technique répond à un défi clé dans la recherche préclinique : réaliser une intubation endotrachéale fiable chez les lapins, un modèle courant dans les études de pharmacologie et de toxicologie. En permettant un accès trachéal direct avec un équipement minimal et une formation restreinte, elle soutient une gestion anesthésique cohérente, essentielle à l'intégrité des données dans les évaluations de sécurité et d'efficacité. La méthode améliore la reproductibilité entre laboratoires, réduisant la variabilité introduite par les complications des voies respiratoires durant l'anesthésie.
Applications stratégiques en recherche et développement en biopharmaceutique
Début de la découverte et validation de la cible
- Valeur scientifique : Assure des plans anesthésiques stables, minimisant les facteurs de confusion physiologiques susceptibles d'occulter les signaux d'engagement de la cible ou de modulation de la voie.
- Valeur opérationnelle : Réduit le nombre de tentatives infructueuses d'intubation, diminuant la perte animale et préservant la taille des cohortes nécessaire à la puissance statistique lors du criblage précoce.
Développement de criblages et de tests
- Valeur scientifique : Fournit un protocole standardisé d'intubation qui permet une administration cohérente d'anesthésiques inhalés ou d'une assistance ventilatoire pendant des procédures prolongées.
- Valeur opérationnelle : Permet une réalisation par un seul opérateur, augmentant ainsi le débit dans les flux de travail de criblage à haut débit où la disponibilité des techniciens peut être limitée.
Recherche translationnelle et préclinique
- Valeur scientifique : Permet une récupération et une surveillance fiables après la procédure, soutenant les études longitudinales nécessitant des séances répétées d'anesthésie.
- Valeur opérationnelle : Réduit les coûts des procédures et la charge liée à la formation, rendant la technique accessible pour des programmes précliniques multisites exigeant des protocoles opératoires standardisés.
Intégration du pipeline et du flux de travail
La méthode s'inscrit dans le continuum de la découverte en assurant une cohérence procédurale depuis le criblage initial des composés jusqu'à la validation préclinique, où la stabilité de l'anesthésique influence directement la qualité des données physiologiques.
- Découverte en biologie : Soutient la vérification d'hypothèses en maintenant une profondeur d'anesthésie constante, réduisant ainsi le bruit dans les mesures de réponse pharmacologique.
- Écrantage : Améliore la préparation des tests en assurant une préparation fiable des animaux, essentielle pour les études impliquant des paramètres respiratoires ou cardiovasculaires.
- Analytique : Améliore la qualité des données en minimisant les artefacts induits par l'hypoxie ou l'hypercapnie, qui pourraient fausser les mesures quantitatives.
- Recherche translationnelle : Favorise la continuité entre les phases d'étude en permettant une gestion reproductible de l'anesthésie, tant dans les régimes de dosage aigus que chroniques.
- Réutilisation institutionnelle : Constitue une capacité peu coûteuse et évolutible, pouvant être déployée dans différents départements et auprès de partenaires externes CRO sans équipement spécialisé.
Impact opérationnel et organisationnel
- Valeur scientifique : Accroît la confiance prédictive en réduisant la variabilité liée aux anesthésiques dans les paramètres physiologiques et comportementaux.
- Valeur opérationnelle : Assure une reproductibilité et une standardisation entre sites, en minimisant la dérive de protocole dans les études multicentriques.
- Valeur stratégique : Améliore la fiabilité des décisions d'avancement ou d'arrêt en garantissant que les effets observés sont attribuables au composé testé et non à des artefacts procéduraux.
- Impact sur le portefeuille : Favorise un développement ajusté au risque en préservant l'intégrité des données dans les études pivot de pharmacologie de sécurité et de toxicologie.
Considérations relatives à la mise en œuvre
- Nécessite une formation de base à l'utilisation du laryngoscope et à l'identification des repères anatomiques chez le lapin.
- Dépend de l'accès à un laryngoscope de type Miller, à un cathéter en polypropylène et à des tubes endotrachéens non ballonnés.
- Exige une standardisation de la mesure de la longueur du tube et de l'application du lubrifiant entre les utilisateurs.
- Implique des adaptations selon les souches ou les groupes d'âge des lapins, lorsque les dimensions de la trachée peuvent varier.
- Est limité par la nécessité d'une visualisation directe, qui peut s'avérer difficile chez les animaux présentant une obésité ou des anomalies anatomiques.
