Name: Microfractured autologue et purifiée du tissu adipeux pour gestion arthroscopique des lésions cartilagineuses de l’astragale (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 24 s
Description: Apprenez une technique arthroscopique pour traiter les lésions ostéochondrales de l'astragale en utilisant des cellules souches adipocytaires microfracturées et purifiées. Cette méthode favorise la régénération du cartilage avec une récupération accélérée.

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Les procédures sont effectuées en utilisant le système de Lipogems.

Toutes les interventions effectuées dans les études impliquant des participants humains ont été conformément aux normes éthiques de la Commission de recherche institutionnels et/ou national et avec la déclaration d’Helsinki de 1964 et ses amendements ultérieurs ou éthiques comparables normes.
1. anamnèse
<ol><li>Commencer l’examen clinique avec une anamnèse détaillée. Remarque : Un BTA doit toujours être suspectée en cas d’instabilité de la cheville avec des entorses répétées associées d’enflure, la raideur, douleur et blocage mixte. En outre, dans de nombreux cas OLT peut être associée à des antécédents de maladie systémique, comme une maladie inflammatoire ou vasculaire, neuropathie ou une maladie neurologique et le diabète. L’usage de drogues ou des problèmes médicaux qui peuvent influencer la guérison doit être évalué et pris en compte.</li>
</ol>2. clinique examen
<ol><li>Évaluer le patient en position orthostatique pour mettre en évidence la cheville ou la difformité du pied arrière. Évaluer divers musculaires et tendineuses de fonction et de la cheville du mouvement (ROM). Une tendresse diffuse est souvent présente, surtout pendant l’extension et de flexion maximale, et ce n’est pas rare de rencontrer une zone sensible au toucher au niveau de l’articulation articulaire.</li>
	<li>Effectuer un essai de tiroir antérieur et postérieur pour identifier une instabilité de la cheville latérale concomitante.</li>
	<li>Au cours de la consultation préopératoire, enregistrer les scores cliniques et fonctionnels suivants : American orthopédique pied & cheville Society (AOFAS) cheville et le pied arrière scores15, échelle analogique visuelle (VAS) douleur score16et 12 items forme abrégée Health Survey (SF-12)17.</li>
</ol>3. radiological Assessment
<ol><li>Effectuer un poids bilatéraux portant la radiographie du pied et la cheville. Il s’agit de classiques portantes antéro-postérieure (AP) mortaise et vue latérale sur le poids du corps de la cheville. Acquitteront mortaise AP en position neutre et 15 degrés de rotation interne pour une meilleure visualisation de l’astragale. NOTE : Seulement 50 % de l’OLT peut être diagnostiquée avec radiographie ; en cas de grosses lésions, une zone d’os détaché entouré de radioclarté peut être noté18.</li>
	<li>Aucune détection conventionnelle calculée tomographie-(CT-scan) de la cheville. Un CT-scan permet une localisation précise et la taille de la lésion, identifier également des fragments d’os en cas de détachement. Le point faible de la CT est la possibilité d’afficher l’état du cartilage. Une étude antérieure a montré une sensibilité et une spécificité de 0,81 et 0,99, respectivement, pour la détection des liens sur CT19,20.</li>
	<li>Effectuer l’imagerie de résonance magnétique (IRM) de la cheville. L’IRM est fondamentale dans l’évaluation os sous-chondral et de cartilage. En outre, l’IRM n’implique pas de rayonnements ionisants et permet une meilleure visualisation des tissus mous. La littérature rapporte une sensibilité et une spécificité de 96 % dans la détection des liens21,22.</li>
</ol>4. surgical Technique
<ol><li>Récolte et la transformation du tissu adipeux
	<ol>
<li>Préparer la solution de Klein : 1 L de solution saline 9 g/L, 50 mL de lidocaïne à 1 %, 1 mL d’adrénaline 1 : 1000, 10 mL de bicarbonate de sodium de 8,4 % et 0,1 mL de 10 mg/mL de triamcinolone acétonide.</li>
		<li>Créer deux para-ombilical incisions d’environ 0,5 cm avec une lame de bistouri. Injecter environ 300 mL de solution de Klein dans le tissu graisseux sous-cutané de l’abdomen à travers les incisions à l’aide de seringues de 60 mL avec une aiguille 18G (Figure 1).</li>
		<li>Récolter 40-45 mL de ADSCs à l’aide d’une canule émoussée 13G attaché à une seringue de 20 mL et introduit dans le kit de transformation (Figure 2). En règle générale, effectuer la récolte dans la zone peri-ombilical.</li>
		<li>Insérer 100-130 mL de lipoaspirate dans le système fermé. Pousser le lipoaspirate dans l’appareil à travers un filtre grand d’obtenir une première réduction de cluster ; dans le même temps, une quantité correspondante d’une solution saline s’arrête vers le sac de gaspiller. Un rôle central est joué par billes inox pour obtenir une émulsion temporaire entre l’huile, du sang et une solution saline. Enlever les résidus d’hydrocarbures et le sang contaminé par un contre-courant de gravité d’une solution saline.</li>
		<li>Après cette étape de lavage (la solution courante apparaît clair et le jaune de lipoaspirate), arrêter le flux de salin et d’inverser le dispositif (cap Gris vers le haut), menant à la deuxième réduction de cluster adipeuse. Obtenir la réduction en poussant les amas adipeux flottants à travers le filtre hexagonal deuxième coupe, poussant le liquide par en dessous avec une seringue de 10 mL. Recueillir le produit final dans une seringue de 10 mL reliée à l’ouverture supérieure de l’appareil. Remarque : Le kit de traitement pour les tissus adipeux améliore la technique de lipofilling standard : en fait, le système se compose d’un système cylindrique fermé, immersion totale, basse pression, afin d’obtenir un produit fluid et homogène contenant un grand nombre des péricytes. Cette procédure permet le traitement des cellules adipeuses exclusivement par l’intermédiaire de forces mécaniques douces et préserver l’intégrité de la niche stroma vasculaire. Le processus est la moins traumatisante possible et rend le produit final disponible en peu de temps (15-20 min), sans traitements enzymatiques ou d’expansion. Bon état vasculostromal niches aident le processus de guérison.</li>
		<li>Une fois que les ADSCs ont été récoltés, appliquer un bandage de compression sur l’abdomen.</li>
	</ol></li>
	<li>Intervention chirurgicale et l’Injection de tissu adipeux
	<ol>
<li>Placer le patient en position couchée sous anesthésie spinale avec un garrot, sous une pression de 250 mmHg, au niveau de la cuisse pour diminuer le saignement et permettre une meilleure arthroscopique visualisation1.</li>
		<li>Marquer les repères anatomiques sur la peau avec un crayon dermographique. Points de repère sont indispensables pour éviter les lésions iatrogènes. Marquer ce qui suit (Figure 3) : les deux malléoles (latérale (LM) et médiale (MM)) la ligne commune antérieure (JL), identifiée avec dorsi - et -flexion plantaire de la cheville le tibialis anterior tendon (TAT) et le tendon d’Achille la grande saphène externe de la veine, qui se déroule juste devant la malléole interne le nerf péronier superficiel (SPN)</li>
		<li>Tout d’abord, effectuez le portail antéro médial juste au tibialis anterior tendon, coïncidant avec une tache molle. Ce portail représente le portail de l’approche. Dans la plupart des cas, une dépression avec la cheville en flexion dorsale est visible et palpable.<ol>
<li>Couper seulement la peau avec une lame et ensuite perforer la capsule par dissection non tranchante. Prendre soin d’éviter le nerf saphène interne et la veine grande saphène. La veine saphène est situé 9 mm latéralement sur le portail, tandis que le nerf est environ 7,4 mm latéral sur le portail. Cela constitue l’un des deux portails Regarde un primaire.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Vérifier la ligne commune, placer le portail anterolateral, médial à la malléole et latérales au tendon extenseur des orteils. Remarque : Lorsque vous effectuez le portail anterolateral, empêche toute blessure au nerf cutané dorsal intermédiaire (la branche latérale du nerf péronier superficiel) ; pour cette raison, après la découpe, la peau doit être suivie par dissection par clivage.</li>
		<li>Inspecter le cartilage articulaire afin d’évaluer la taille et la position. Évaluer l’État et la qualité du cartilage avec le palpator. Les lésions cartilagineuses de l’astragale sont généralement situées soit posteromedially soit cristallinienne.<ol>
<li>Effectuer un traitement sous arthroscopie à l’aide d’arthroscopes de 2,7 mm grand angle avec un angle de 30°, mais certains chirurgiens utilisera un arthroscope 4 mm plus grande et conserver l’instrument dans la cavité antérieure de l’articulation. Techniques de distraction conjointe non invasifs et hyper flexion plantaire peuvent servir à accéder à la plupart de la coupole talar.</li>
			<li>Dans le cas d’une lésion postérieure par voie percutanée placer un épandeur Hintermann pour distraire l’articulation et de permettre l’exposition de la lésion. L’épandeur Hintermann a un levier d’ouverture bras appliqué sur les deux K-fils précédemment placés dans le tibia et les os talar médial ou latéral, selon le côté de la lésion. Dans le cas d’une lésion latérale, prendre soin d’insérer le fil K proximal dans l’OS tibial, évitant le péroné, pour atteindre la meilleure distraction de l’articulation.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Préparer la lésion avec une curette, supprimant le cartilage endommagé et instable, la couche calcifié et l’OS nécrotique et sclérosé afin de créer une forme régulière contenaient lésion avec épaules frontières. Pour cette étape, utilisez une curette arthroscopique standard (Figure 4).</li>
		<li>Stimuler les cellules souches de la moelle osseuse de l’os sous-chondral effectuant des microperforations sans ambages de l’extérieur vers l’intérieur de la lésion.<ol>
<li>Accomplissent les perforations avec des intervalles d’environ 3 mm entre eux. Induire des microfractures utilisant un médiator chondrales sur l’os sous-chondral sains sous le défaut (Figure 5). Remarque : Une hémorragie entraîne la formation d’un caillot de fibrine. Produits, via l’activation de la cascade inflammatoire, la coagulation du sang libèrent des médiateurs vasoactifs, facteurs de croissance et cytokines. Ces facteurs ont le pouvoir de stimuler l’invasion vasculaire et la migration des cellules souches mésenchymateuses dans la portion chondrales de la lésion. Ces cellules pluripotentes sont stimulés à se différencier en fibroblastes, chondrocytes et les ostéoblastes et jouent un rôle important dans la stimulation de la réparation de la lésion. Facteurs de croissance paracrine dans l’environnement articulaire favorisent la formation de la matrice extracellulaire et la production de fibrocartilage. Dans le même temps, les cellules de la partie osseuse de la lésion produisent un tissu d’os immature qui est progressivement remplacé par un os mature.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Enlevez l’eau intra-articular utilisation du rasoir à l’aspiration et le liquide restant à l’aide d’une éponge de coton jusqu'à ce que le joint soit complètement sec.</li>
	</ol></li>
	<li>Injection d’adipeux dérivées de cellules souches
	<ol>
<li>Injecter 5-7 mL de cellules souches issues d’adipeux, préalablement préparé à l’étape 4.1.3, dans l’articulation de la cheville à l’aide d’un des deux portails (antéro ou antérolatérale).</li>
		<li>Relâcher le garrot.</li>
	</ol></li>
</ol>5. postopératoire soins
<ol><li>Éviter les mouvements de la cheville pendant 15 jours, avec la branche exploitée libératoire.</li>
	<li>15 jours après la chirurgie, permettent des mouvements actifs et passifs de la cheville, jusqu'à la guérison complète et amplitude de mouvement est atteint.</li>
	<li>Permet la charge 30 jours après la chirurgie.</li>
</ol>6. clinique et radiographique suivi
<ol><li>Évaluer les patients cliniquement et radiologiquement à six et douze mois et, par la suite, chaque année. Le protocole de suivi se compose de cheville AOFAS et pied arrière partitions, score de douleur Eva et SF-12 à chaque virage15,16,17. L’examen radiographique comprend un IRM et scanner de la cheville exploitée.</li>
</ol>

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</ol>

Federico Giuseppe Usuelli, MD, rapports de droits personnels par Integra et Geistlich et de subventions et les personnels de Zimmer, en dehors de la proposition.

Ces dernières années, les essais cliniques et précliniques ont concentré leurs efforts sur l’effet de ADSCs pour traiter différentes pathologies musculo-squelettiques. Le but de cet article est de décrire le protocole pour le traitement des lésions cartilagineuses de l’astragale à l’aide de microfractured et le tissu adipeux purifié en liaison avec microperforations sous arthroscopiques. Le protocole implique plusieurs étapes critiques à hauts risques de complications. Pendant la récolte de matière grasse, les complicati...

Arthroscopie est l’étalon-or pour le traitement des lésions cartilagineuses de l’astragale (liens) dans le but de soulager la douleur, rétablir la fonctionnalité et améliorer la qualité de vie, particulièrement chez les patients jeunes et actifs.
Actuellement, les techniques arthroscopiques peuvent être classés en trois façons. La technique réparatrice stimule les cellules de la moelle osseuse à travers un débridement et microperforations au niveau de la lésion. La technique reconstructive remplace la lésion à l’aide d’un greffon autologue ou hétérologue ostechondral. La technique régénérative exploite la capacité des cellules multipotentes à différencier et à reproduire pour reconstruire le tissu endommagé1,2,3,4,5,6 .
Ces dernières années, les techniques de régénération ont fait l’objet de nombreuses études in vitro et in vivo pour le traitement des liens et des cellules souches mésenchymateuses en particulier dérivées du tissu adipeux (ADSCs)7,8 , 9. ces cellules souches mésenchymateuses présentent des caractéristiques morphologiques et fonctionnelles similaires à d’autres cellules multipotentes, isolés des autres tissus ; ils ont également la capacité à se différencier en plusieurs et cellulaires différentes lignes fois in vitro et in vivo10,11,12,13. L’accent mis sur la recherche au sujet de ces cellules est principalement en raison de leur localisation, en fait elles représentent entre 10 % et 30 % du poids corporel normal avec une concentration de 5 000 cellules par gramme de tissu13,14. En revanche, un facteur qui limite l’utilisation de ces cellules est lié à leur manipulation au cours de procédures de laboratoire. Le lipoaspirate contenant des agrégats des adipocytes, les fibres de collagène et composants vasculaires normales est enzymatiquement transformé avec le collagène de type I A et soumis à l’hémolyse avant la culture. Le but ici est de décrire le protocole pour le traitement des lésions cartilagineuses de l’astragale en utilisant microfractured et purifiée du tissu adipeux.

<table><tbody><tr><td>PROCESS KIT - KIT DE TRAITEMENT POUR LIPOGEMS DE TISSU ADIPEUX</td><td></td><td>LG PK 60</td><td>Lipogems Kit pour obtenir des ADSC microfracturés et purifiés</td></tr><tr><td>HINTERMANN SPREADER</td><td>INTEGRA</td><td></td> 119654 <td>L’écarteur permet d’accéder à la majeure partie du dôme talaire, en particulier en cas de lésion postérieure</td></tr><tr><td>CUPULE CURETTE</td><td>ARTHREX</td><td>AR-8655-02</td><td>Pour enlever le cartilage endommagé et l’os</td></tr> <tr><td>nécrotique et scléroséPIC CHONDRAL 30&deg ; POURBOIRE / 60&deg ; ASTUCE</td><td>ARTHREX</td><td>AR-8655-05 AR-8655-06</td><td>Pour percer la microperforation au niveau de la lésion, en stimulant le saignement de l’os sous-chondral</td></tr><tr><td>SHAVER</td><td>ARTHREX</td><td>AR-7300SR</td><td>Pour nettoyer l’articulation et aspirer l’eau</td></tr></tbody></table>

microfractured autologue et purifiée du tissu adipeux pour gestion arthroscopique des lésions cartilagineuses de l’astragale

Autologous Microfractured and Purified Adipose Tissue for Arthroscopic Management of Osteochondral Lesions of the Talus

Ces dernières années, des techniques de régénération ont été plus en plus étudiés et utilisés pour traiter les lésions cartilagineuses de l’astragale. En particulier, plusieurs études ont porté leur attention sur les cellules souches mésenchymateuses dérivées du tissu adipeux. Cellules souches dérivées d’adipeux (ADSCs) présentent des caractéristiques morphologiques et des propriétés similaires aux autres cellules mésenchymateuses et sont capables de se différencier en plusieurs lignées cellulaires. En outre, ces cellules sont également largement disponibles dans le tissu sous-cutané, ce qui représente de 10 à 30 % du poids corporel normal, avec une concentration de 5 000 cellules par gramme de tissu.
Dans la technique présentée, la première étape consiste à récolter des ADSCs de l’abdomen et un processus de microfractures et purification ; Ensuite, l’intervention chirurgicale est effectuée entièrement arthroscopie, avec moins dissection des tissus mous, la meilleure visualisation conjointe et une récupération plus rapide par rapport aux standards. Arthroscopie se caractérise par une première phase où la lésion est identifiée, isolée et préparée avec microperforations ; la deuxième étape, réalisée sèche, consiste en l’injection de tissu adipeux au niveau de la lésion.
De janvier 2016 à septembre 2016, quatre patients ont subi un traitement arthroscopique des lésions cartilagineuses de l’astragale avec microfractured et purifiée du tissu adipeux. Tous les patients ont rapporté une amélioration clinique, six mois après la chirurgie, avec aucune complication signalée. Les scores fonctionnels au dernier suivi sont encourageants et confirment que la technique offre fiable de douleur et améliorations chez les patients atteints de lésions cartilagineuses de l’astragale.

De janvier 2016 à septembre 2016, quatre patients ont subi un traitement arthroscopique des lésions cartilagineuses de l’astragale avec microfractured et purifiée du tissu adipeux. Tous les patients ont rapporté une amélioration clinique six mois après la chirurgie. Les résultats cliniques préliminaires sont présentés au tableau 1. Pas de complications ont été signalées.
Ces dernières années, l’utilisation de AD...

Le but de cette étude est de déclarer un protocole pour le traitement arthroscopique des lésions cartilagineuses de l’astragale en utilisant microfractured et purifiées cellules souches dérivées d’adipeux.

Microfractured autologue et purifiée du tissu adipeux pour gestion arthroscopique des lésions cartilagineuses de l’astragale

In recent years, regenerative techniques have been increasingly studied and used to treat osteochondral lesions of the talus. In particular, several ...

L’objectif global de cette intervention chirurgicale est de traiter les lésions ostéochondrales du talus par la régénération induite du cartilage talaire à l’aide de tissu adipeux autologue microfracturé et purifié en conjonction avec des microperforations. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la médecine régénérative sur la façon d’améliorer la qualité des tissus néoformés. Le principal avantage de cette technique est qu’elle est entièrement arthroscopique, avec peu de dissection des tissus mous, une meilleure visualisation des articulations et une récupération plus rapide du patient.Les implications de cette technique s’étendent au-delà de la cheville au traitement des lésions sur toute autre articulation du corps. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle, car le positionnement de l’écarteur Hintermann est difficile à apprendre sans observation de la position ouverte du traitement des lésions postérieures. Pour récolter le tissu adipeux, utilisez d’abord un scalpel pour faire deux incisions périombilicales de 0,5 centimètre.Ensuite, utilisez une seringue de 60 millilitres équipée d’une aiguille de calibre 18 pour injecter environ 300 millilitres de solution Klein à travers les incisions dans le tissu adipeux sous-cutané de l’abdomen. Lorsque toute la solution a été administrée, utilisez un cathéter émoussé de calibre 13 attaché à une seringue de 20 millilitres pour prélever 40 à 45 millilitres de cellules souches dérivées du tissu adipeux, ou ADSC, dans la zone périombilicale, et appliquez un bandage compressif sur l’incision. Ajoutez la suspension cellulaire dans le grand filtre d’un kit de traitement et appuyez sur 100 à 300 millilitres de lipoaspiration à travers le filtre dans le dispositif du kit pour obtenir la première réduction de cluster.Un volume correspondant de solution saline sortira du kit dans le sac à déchets. Ensuite, ajoutez des billes d’acier inoxydable au kit pour obtenir une émulsion temporaire entre l’huile, le sang et la solution saline dans l’aspiration, et utilisez un contre-courant par gravité de solution saline pour éliminer les résidus d’huile et de sang contaminants de l’échantillon. Lorsque l’éluat est clair et que le lipoaspirant est jaune, arrêtez le flux salin et inversez le dispositif de sorte que le capuchon gris soit vers le haut.Ensuite, connectez une seringue de 10 millilitres à l’ouverture supérieure de l’appareil et utilisez une deuxième seringue de 10 millilitres pour pousser les grappes adipeuses flottantes par le bas à travers le deuxième filtre hexagonal coupant dans la première seringue pour obtenir la deuxième réduction de la grappe adipeuse. Pour préparer la lésion à l’injection de cellules souches dérivées du tissu adipeux, placez le patient en position couchée sous rachianesthésie avec un garrot au niveau de la cuisse pour diminuer le saignement et permettre une meilleure visualisation arthroscopique. À l’aide d’un stylo dermographique, marquez les malléoles latérales et médiales, la ligne articulaire antérieure, les tendons tibiaux antérieurs et d’Achille, la grande veine saphène et le nerf péronier superficiel.Lorsque tous les points de repère ont été notés, utilisez un scalpel pour faire une incision cutanée peu profonde juste médialement au tendon tibial antérieur, et perforez la capsule par dissection émoussée, en prenant soin d’éviter le nerf saphène et la grande veine saphène. Pour le traitement arthroscopique du cartilage, placez un arthroscope grand angle de 2,7 millimètres avec un angle de vision de 30 degrés dans le renfoncement antérieur de l’articulation. Après avoir vérifié la ligne articulaire, créez le portail antérolatéral, médial à la malléole latérale et latéral au tendon extenseur numérique, comme cela vient d’être démontré pour le portail d’approche.Évaluer la taille et la position du cartilage articulaire à l’intérieur de la porte à l’aide d’un palpateur pour évaluer l’état et la qualité du tissu. Dans le cas d’une lésion postérieure, placez un fil K sur le tibia et un fil K sur l’os talaire, et appliquez par voie percutanée le bras d’ouverture d’un écarteur Hintermann sur les fils K pour distraire l’articulation et permettre l’exposition de la lésion. À l’aide d’une curette arthroscopique standard, on enlève le cartilage endommagé et instable, la couche calcifiée et tout os nécrotique ou sclérotique, ce qui entraîne une lésion de forme régulière, contenue et avec des bords épaulés.Ensuite, utilisez un pic chondral pour créer des microperforations d’environ trois millimètres de l’extérieur vers l’intérieur de la lésion afin de stimuler les cellules souches de la moelle osseuse de l’os sous-chondral et d’induire des microfractures sur l’os sous-chondral sain sous le défaut. Ensuite, utilisez un rasoir pour éliminer toute eau intra-articulaire, suivi d’un écouvillonnage avec une éponge en coton propre. Lorsque l’articulation est complètement sèche, injectez cinq à sept millilitres de cellules souches dérivées du tissu adipeux dans l’articulation de la cheville par l’une des deux portes et relâchez le garrot.Entre janvier et septembre 2016, quatre patients ont subi un traitement arthroscopique de lésions ostéochondrales du talus avec microfractures induites et tissu adipeux purifié, comme nous venons de le démontrer. Tous les patients ont signalé une amélioration clinique six mois après la chirurgie, sans complications. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en 30 minutes si elle est correctement exécutée.Suite à cette procédure, d’autres interventions chirurgicales telles que la reconstruction du ligament latéral peuvent être effectuées pour améliorer la stabilité de la cheville. Après son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de la médecine régénérative pour explorer la cicatrisation du cartilage dans les pathologies orthopédiques. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’utiliser l’arthroscopie pour administrer des cellules souches autologues dérivées du tissu adipeux microfracturé dans l’articulation de la cheville.Bien que les thérapies à base de cellules souches mésenchymateuses soient de plus en plus courantes en clinique, il est important de se rappeler de prendre des précautions de sécurité supplémentaires lors de l’utilisation d’ADSC dans les méthodes/protocoles de médecine régénérative.

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Ce protocole décrit l'isolement de tissu adipeux dérivé des cellules stromales de lipoaspirate et la création d'une 4 mm de taille critique défaut crânienne pour évaluer la régénération osseuse.

Réparation d&#39;un modèle de critique des défauts de taille crânienne Utilisation adipeuses cellules stromales prélevés sur des Lipoaspirate

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Assistée par matrice transplantation de chondrocytes autologues pour la rénovation et la réparation des vices chondrales dans un modèle de lapin

Une technique expérimentale pour le traitement de défauts ostéochondraux dans l'articulation du genou du lapin est décrite. L'implantation de cellules souches mésenchymateuses allogéniques dans des défauts ostéochondraux offre un développement prometteur dans le domaine de l'ingénierie tissulaire. La préparation de la fibrine cellule...

Traitement des défauts ostéochondraux à genou la commune du lapin par implantation de cellules allogéniques souches mésenchymateuses dans caillots de fibrine

Nous présentons nos protocoles préopératoires, opératoires et postopératoires pour le traitement de l’arthrose de la cheville avec remplacement total de cheville par approche latérale transfibular.

Traitement de l’arthrose de la cheville avec remplacement Total de cheville grâce à une approche latérale de la Transfibular

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Protocole clinique de produire des dérivés du tissu adipeux stroma vasculaire Fraction pour la régénération du Cartilage potentiels

Ici, nous présentons la micro-fragmentation sans enzyme s'adipeux humain à l'aide d'un dispositif système fermé. Cette nouvelle méthode permet l'obtention de grappes de tissus adipeux sous-millimétriques adaptées à la transplantation in vivo, à la culture in vitro et à l'isolement et à la caractérisation des cellules.

Micro-fragmentation humaine des tissus adipeux pour le phénotypage cellulaire et la caractérisation du secretome

Les tissus primaires obtenus chez les patients après une arthroplastie totale du genou fournissent un modèle expérimental pour la recherche sur l’arthrose avec une translatabilité clinique maximale. Ce protocole décrit comment identifier, traiter et isoler l’ARN de sept tissus uniques du genou pour soutenir la recherche mécaniste dans l’arthrose humaine.

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Ce protocole détaille l’isolement des chondrocytes, des chondroprogéniteurs dérivés du test d’adhésion à la fibronectine (FAA-CP) et des chondroprogéniteurs migrateurs (MCP) du cartilage articulaire humain. Il couvre la digestion enzymatique, l’adhésion de la fibronectine et les tests basés sur la migration pour isoler et caractériser ces cellules.

Isolement de chondrocytes et de chondroprogéniteurs à l’aide de l’adhésion de la fibronectine et du dosage migratoire

Le protocole proposé implique une approche globale pour évaluer la formation osseuse dans le contexte de la régénération osseuse à l’aide d’analyses multimodales. Il vise à fournir des informations qualitatives et quantitatives sur la formation de nouveaux os, en améliorant la rigueur et la validité des investigations fondamentales et précliniques.

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Nous présentons ici un protocole intégré pour générer des lésions ostéochondrales contrôlées dans les genoux de mouton afin d’établir un modèle expérimental adapté aux études de régénération des tissus osseux et cartilagineux. Le protocole décrit une méthode pour induire un défaut ostéochondral d’épaisseur complète dans le condyle fémoral, en utilisant des techniques minimisant les impacts sur le bien-être animal et la variabilité des résultats.

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Apprenez une technique arthroscopique pour traiter les lésions ostéochondrales de l'astragale en utilisant des cellules souches adipocytaires microfracturées et purifiées. Cette méthode favorise la régénération du cartilage avec une récupération accélérée.

Microfractured autologue et purifiée du tissu adipeux pour gestion arthroscopique des lésions cartilagineuses de l’astragale

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