Name: Analyse automatisée Gait chez la souris avec la blessure de Constriction chronique (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 49 s
Description: Découvrez l'analyse automatisée de la démarche chez la souris pour évaluer l'allodynie mécanique après lésion de constriction chronique. Cette méthode objective permet d'étudier la fonction sensorielle et de tester l'efficacité des analgésiques comme la gabapentine.

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Cette recherche a été financée par Chungnam National University, Corée Institut de la médecine orientale (KIOM) et une subvention de la Corée Health Technology R &#38; D projet à travers la Corée santé Industrie développement Institut (KHIDI), financé par le ministère de la santé &#38; Bien-être, République de Corée (numéro de licence : HI15C0007).

toutes les expériences ont été menées conformément à l’éthique professionnelle de l’Association internationale pour l’étude de la douleur et ont été approuvés par le Comité de l’emploi et d’animalier institutionnel à l’Université nationale de Chungnam ( Daejeon, Corée du Sud).
 1. induction de la CCI sur le nerf sciatique <ol><li>maison ICR des souris mâles pesant 20-25 g sous un cycle lumière/obscurité de 12 h à température ambiante contrôlée (maintenue à 20-25 ° C) et humidité (40-60 %), avec libre accès à la nourriture et eau. Permettre une période d’acclimatation pour les souris dans la salle de soins aux animaux d’au moins 1 semaine avant la chirurgie.
	<ol><li>Au cours de l’habitation, observer l’apparence et le comportement des souris et n’utilisent pas de souris montrant l’activité locomotrice anormale. 
		Remarque : Un jour avant la chirurgie de la CCI, mesurer la sensibilité mécanique de la patte arrière en appliquant des filaments de von Frey et effectuer l’analyse automatisée de démarche pour obtenir les valeurs de la ligne de base normale. Ensuite, assigner souris au hasard à contrôle et groupes expérimentaux.</li>
	</ol></li> <li>Le jour de la chirurgie, anesthésier les souris en injectant 2,2,2-tribromoethanol (250 mg/kg, voie intrapéritonéale (IP)). 
	NOTE : Porter des équipements de protection individuelle tels que casaque, gants et masque.
	<ol><li>Pèse 2,5 g de 2,2,2-tribromoethanol et ajouter le 2-méthyl-2-buthanol au volume final de 5 mL. Conserver la solution loin de la lumière (par exemple, utiliser un récipient sombre ou envelopper dans du papier).</li>
		<li>Autoriser les réactifs pour dissoudre complètement en chauffant à 40 ° C et en agitant pendant 10 à 30 min.</li>
		<li>Ajouter distillée au volume final de 200 mL et remuer jusqu'à ce que bien mélangés.</li>
		<li>Stocker aliquotes à 4 ° C et maintenir dans l’ignorance. Après deux semaines, l’anesthésie devrait être remplacé par la nouvelles aliquotes.</li>
		<li>Injecter un volume de 20 µL par 1 g de poids corporel. Par exemple, si le poids du corps de la souris est de 25 g, donner 500 µL de solution. La durée typique de cette anesthésie est de 1 h. 
		NOTE : Cette solution va devenir toxique lorsqu’ils sont exposés à la lumière et/ou de chaleur, donc soyez prudent éviter l’exposition à la lumière et de chaleur. Un itinéraire d’injection IP est hautement recommandé.</li>
	</ol></li> <li>Quand la souris tombe dans une anesthésie profonde, placez-le sur la table d’opération avec la face dorsale vers le haut (c.-à-d., décubitus ventral) et stériliser la partie externe de la mi-cuisse de droite avec un tampon imbibé d’alcool à 70 %. 
	NOTE : Confirmer une anesthésie profonde en vérifiant l’absence de réponse de pincer ou de stimulation sur les pattes ou la queue de pression.</li>
	<li>Induisent la CCI sur le nerf sciatique droit de la souris.
	<ol><li>Faire une incision sur la peau autour de la mi-cuisse de 1,0 à 1,5 cm de long avec une lame de bistouri.</li>
		<li>Carrément disséquer les muscles de la cuisse avec du Surgicel micro-moustique pour exposer le nerf sciatique.</li>
		<li>Ligaturer le nerf sciatique exposé 3 fois avec des intervalles de 1,0 à 1,5 mm à l’aide d’une suture catgut chromique de 4-0. 
		Remarque : Assurez-vous des trompes lâches en liant hors du nerf sciatique, jusqu'à ce que doux secouant apparaisse sur la patte arrière ipsilatérale. Le groupe fictif des souris a reçu la même ouverture chirurgicale dans des conditions semblables sauf sans ligature nerf.</li>
	</ol></li> <li>Fermer l’ouverture chirurgicale avec 3-4 simples sutures interrompus à l’aide de soie de 5-0 et stériliser avec la povidone iodée pour la désinfection de la zone externe de la chirurgie.</li>
	<li>Après la chirurgie, placez la souris dans une cage propre sur un coussin chauffant. Lorsque les animaux est récupérés de l’anesthésie, les retourner à leur cage maison. 
	Remarque : Dans cette étude, les antibiotiques n’étaient pas utilisés. La CCI + GBP groupe reçu IP gabapentine (GBP) à une dose de 50 mg/kg une fois par jour comme témoin positif.</li>
</ol> 2. Mesure d’allodynie mécanique (Test de von Frey) Remarque : évaluer la fréquence de la réponse de retrait aux stimuli mécaniques en utilisant 1 g de filaments de von Frey à la surface plantaire de la patte arrière ipsilatérale.
<ol><li>Chaque jour de l’essai, amener la souris à la salle de test comportemental et acclimater les souris dans leur propre maison cage pendant au moins 30 min avant le test. 
	NOTE : Porter des équipements de protection individuelle tels que casaque, gants et masque.</li>
	<li>Placez la souris dans une boîte acrylique transparente sur le sol d’un treillis métallique et s’acclimater à la souris pendant 30 min.</li>
	<li>Appliquer doucement 1 g de filaments de von Frey à la surface plantaire de la patte arrière jusqu'à ce que le filament se penche.</li>
	<li>Appliquer une stimulation à incandescence pour la postérieur homolatérale patte 10 fois au moins 10 intervalles s et noter le résultat. 
	Remarque : Dans cette étude, le nombre de réponses de retrait patte de 10 essais sont indiqués en pourcentage de la fréquence de retrait de patte (PWF, %). Le test de von Frey a été effectué tous les deux jours après l’intervention de la CCI.</li>
</ol> 3. Effectuer des analyses de marche automatique Remarque : le système d’analyse de la démarche visualise chaque impression de patte alors que l’animal se promène et analyse automatiquement différents paramètres de marche, tels que l’empreinte de patte, patte intensité, longueur de foulée, position séquence de pas, balançoire, vitesse d’oscillation, phase, etc. dans cette étude, nous avons montré patte zone d’impression et unique position après avoir converti les données en pourcentage changent entre controlatérale gauche versus patte droite arrière ipsilatéral. Ainsi, un résultat de 50 % indique que la taille de la patte imprimée et la durée du domaine de la patte au contact du sol, entre les côtés gauche et droit sont les mêmes. De plus, les valeurs de données plus faibles près de 0 % indiquent que la taille et la durée de contact sont diminuées dans la patte arrière ipsilatérale contre le côté controlatéral (voir panneau B de la Figure 2 et Figure 3).
<ol><li>D’acclimatation, garder les souris au sein de l’appareil d’analyse de marche pendant 10 min une fois par jour depuis 5 jours avant la chirurgie de la CCI. 
	NOTE : Essai d’analyse de démarche incluant acclimatation doit être effectuée dans l’obscurité.</li>
	<li>Amener les souris à la salle de test pour l’analyse de la démarche et de s’acclimater dans leur cage maison pendant au moins 30 min avant le test.
	<ol><li>Dans l’onglet de configuration du menu programme, définissez le &#34; longueur de la passerelle &#34; 30 cm, et la &#34; exécution durée maximale &#34; à 5 s et le &#34; exécution variation maximale &#34; à 50 %.</li>
		<li>Sélectionnez une caméra enregistrée de le &#39; configuration &#39; onglet de la &#39; programme &#39; menu.</li>
		<li>Sélectionnez &#34; ouvrir acquisition &#34; de la &#39; acquérir &#39; onglet de la &#39; programme &#39; menu.</li>
		<li>En suivant le message d’État, cliquez sur le &#39; snap fond &#39; bouton pour prendre une image de fond de l’allée vide (c'est-à-dire, blank).</li>
	</ol></li> <li>Cliquez le &#39; commencer l’acquisition &#39; bouton et placez la souris sur la passerelle ; l’enregistrement démarre automatiquement selon le mouvement de la souris. 
	Remarque : Lorsque la souris est clairement promenades à travers la passerelle, le programme automatiquement classifie ce mouvement comme &#34; Compliant exécuter &#34; avec une icône verte. Si le logiciel n’a pas détecté l’empreinte, l’expérimentateur verra une icône rouge et doit répéter l’enregistrement. Au moins cinq pistes compatibles avec succès sont nécessaires pour l’analyse.</li>
	<li>Après l’essai, sélectionnez &#39; classer les pistes &#39; dans l’onglet de l’acquisition de la &#39; programme &#39; menu.</li>
	<li>Sélectionner les séries pour analyse, puis cliquez sur le &#39; auto classer &#39; bouton. 
	Remarque : Après classement, tous les paramètres de statistique sont automatiquement enregistrées et l’expérimentateur peut trouver les résultats en cliquant sur &#34; vue exécutée statistiques &#34; dans le menu analyser.</li>
</ol>

<ol><li>Loeser, J. D., Treede, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Kyoto+protocol+of+IASP+Basic+Pain+Terminology%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">The Kyoto protocol of IASP Basic Pain Terminology.</a> Pain. 137 (3), 473-477 (2008).</li>
<li>Colloca, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Dis+Primers%22%5BJournal%5D)">Neuropathic pain.</a> Nat Rev Dis Primers. 3, 17002(2017).</li>
<li>Vranken, J. H. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20021340">Mechanisms and treatment of neuropathic pain.</a> Cent Nerv Syst Agents Med Chem. 9 (1), 71-78 (2009).</li>
<li>DeLeo, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+neuropathic+pain+model%3A+sciatic+cryoneurolysis+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Characterization of a neuropathic pain model: sciatic cryoneurolysis in the rat.</a> Pain. 56 (1), 9-16 (1994).</li>
<li>Kim, S. H., Chung, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+experimental+model+for+peripheral+neuropathy+produced+by+segmental+spinal+nerve+ligation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">An experimental model for peripheral neuropathy produced by segmental spinal nerve ligation in the rat.</a> Pain. 50 (3), 355-363 (1992).</li>
<li>Seltzer, Z., Dubner, R., Shir, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+behavioral+model+of+neuropathic+pain+disorders+produced+in+rats+by+partial+sciatic+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A novel behavioral model of neuropathic pain disorders produced in rats by partial sciatic nerve injury.</a> Pain. 43 (2), 205-218 (1990).</li>
<li>Bennett, G. J., Xie, Y. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+peripheral+mononeuropathy+in+rat+that+produces+disorders+of+pain+sensation+like+those+seen+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A peripheral mononeuropathy in rat that produces disorders of pain sensation like those seen in man.</a> Pain. 33 (1), 87-107 (1988).</li>
<li>Dixon, W. J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7387124">Efficient analysis of experimental observations.</a> Annu Rev Pharmacol Toxicol. 20, 441-462 (1980).</li>
<li>Bonin, R. P., Bories, C., De Koninck, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simplified+up-down+method+%28SUDO%29+for+measuring+mechanical+nociception+in+rodents+using+von+Frey+filaments%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pain%22%5BJournal%5D)">A simplified up-down method (SUDO) for measuring mechanical nociception in rodents using von Frey filaments.</a> Mol Pain. 10, 26(2014).</li>
<li>Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+tactile+allodynia+in+the+rat+paw%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw.</a> J Neurosci Methods. 53 (1), 55-63 (1994).</li>
<li>Chen, H., Du, J., Zhang, Y., Barnes, K., Jia, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+a+Reliable+Gait+Evaluation+Method+for+Rodent+Studies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Establishing a Reliable Gait Evaluation Method for Rodent Studies.</a> J Neurosci Methods. , (2017).</li>
<li>Kang, D. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antinociceptive+Profile+of+Levo-tetrahydropalmatine+in+Acute+and+Chronic+Pain+Mice+Models%3A+Role+of+spinal+sigma-1+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Antinociceptive Profile of Levo-tetrahydropalmatine in Acute and Chronic Pain Mice Models: Role of spinal sigma-1 receptor.</a> Sci Rep. 6, 37850(2016).</li>
<li>Huehnchen, P., Boehmerle, W., Endres, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+paclitaxel+induced+sensory+polyneuropathy+with+%26%2334%3BCatwalk%26%2334%3B+automated+gait+analysis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Assessment of paclitaxel induced sensory polyneuropathy with &#34;Catwalk&#34; automated gait analysis in mice.</a> PLoS One. 8 (10), e76772(2013).</li>
<li>Vrinten, D. H., Hamers, F. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%27CatWalk%27+automated+quantitative+gait+analysis+as+a+novel+method+to+assess+mechanical+allodynia+in+the+rat%3B+a+comparison+with+von+Frey+testing%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">'CatWalk' automated quantitative gait analysis as a novel method to assess mechanical allodynia in the rat; a comparison with von Frey testing.</a> Pain. 102 (1-2), 203-209 (2003).</li>
<li>Martinov, T., Mack, M., Sykes, A., Chatterjea, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+changes+in+tactile+sensitivity+in+the+hind+paw+of+mice+using+an+electronic+von+Frey+apparatus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Measuring changes in tactile sensitivity in the hind paw of mice using an electronic von Frey apparatus.</a> J Vis Exp. (82), e51212(2013).</li>
<li>Ferland, C. E., Laverty, S., Beaudry, F., Vachon, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gait+analysis+and+pain+response+of+two+rodent+models+of+osteoarthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Biochem+Behav%22%5BJournal%5D)">Gait analysis and pain response of two rodent models of osteoarthritis.</a> Pharmacol Biochem Behav. 97 (3), 603-610 (2011).</li>
<li>Mogil, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypolocomotion%2C+asymmetrically+directed+behaviors+%28licking%2C+lifting%2C+flinching%2C+and+shaking%29+and+dynamic+weight+bearing+%28gait%29+changes+are+not+measures+of+neuropathic+pain+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pain%22%5BJournal%5D)">Hypolocomotion, asymmetrically directed behaviors (licking, lifting, flinching, and shaking) and dynamic weight bearing (gait) changes are not measures of neuropathic pain in mice.</a> Mol Pain. 6, 34(2010).</li>
<li>Ferreira-Gomes, J., Adaes, S., Castro-Lopes, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+movement-evoked+pain+in+osteoarthritis+by+the+knee-bend+and+CatWalk+tests%3A+a+clinically+relevant+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pain%22%5BJournal%5D)">Assessment of movement-evoked pain in osteoarthritis by the knee-bend and CatWalk tests: a clinically relevant study.</a> J Pain. 9 (10), 945-954 (2008).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Actuellement, mesure d’allodynie mécanique à l’aide de filaments de von Frey est le plus couramment méthode dans des modèles animaux de douleur pour démontrer une hypersensibilité tactile. Des modèles animaux pour les douleurs neuropathiques ont continué à être développé, la méthodologie d’évaluation de la fonction sensorielle a été également améliorée8,9,10,15. Dans ces rapports, il a été sugg...

Les changements pathologiques du système nerveux induite par un dysfonctionnement métabolique, inflammation, infection, traumatisme, ischémie, ou maladie auto-immune occasionnellement entraîner des douleurs neuropathiques, qui sont définie comme une douleur résultant en conséquence directe d’une lésion ou maladie affectant le système somatosensoriel1. La douleur neuropathique est souvent insupportable, et malheureusement, analgésiques classiques ne produisent généralement pas suffisamment la douleur soulagement2. Une caractéristique importante de la douleur neuropathique contient spontanées et induite par la stimulation des douleurs (c.-à-d., allodynie et hyperalgésie). Allodynie est une réponse nociceptive qui se produit à des stimuli normalement non douloureuse, comme toucher léger ou stimulation chaude. Hyperalgésie indique une réponse de douleur accrue à des stimuli nociceptifs mécaniques et/ou thermiques3. Bien que ces deux symptômes menacerait gravement la qualité de vie des patients, allodynie mécanique évoqué par stimulation tactile légère est le symptôme le plus exaspérant car contact doux est difficile d’éviter dans la vie quotidienne.
Pour étudier le mécanisme sous-jacent et nouveaux analgésiques pour le traitement des douleurs neuropathiques, la mesure précise de la réponse de la douleur est indispensable. Nombreux modèles de douleur neuropathique animaux ont développé des réponses nociceptives sur la postérieur patte zone en raison de sa grande accessibilité4,5,6,7. Ainsi, la plupart des évaluations réponse de douleur ont été réalisées sur la surface plantaire ou dorsale de la patte arrière en appliquant des stimuli mécaniques à l’aide d’instruments spéciaux, tels que les filaments de von Frey. Une des méthodes plus fréquemment utilisées est le haut et vers le bas de la méthode décrite par Dixon8 et les versions ultérieures modifié les versions9,10. Cependant, très habiles et expérimentés expérimentateurs sont nécessaires pour effectuer le test de von Frey et les résultats peuvent être subjectifs.
Le système d’analyse automatisé démarche peut enquêter sur les troubles neurologiques et neuromusculaires en mesurant différents paramètres de la marche en se déplaçant librement des rongeurs. Dans une variété de modèles animaux de lésion du nerf, le degré de la nociception et l’effet antinociceptif de plusieurs traitements peuvent être évaluées sans ajouter une douleur stimulation11,12,13, 14. ce système d’analyse peut détecter les paramètres de la démarche statiques et dynamiques, tels que : patte imprimée (la zone de l’empreinte de patte complète que les contacts avec le sol), patte d’intensité (l’intensité moyenne de la zone contact de patte), "Stridez" de longueur (le position de la distance entre les placements successifs du même pied), phase (la durée de contact avec le sol pour une seule patte arrière), séquence (l’ordre dans lequel les quatre pattes sont placés sur le plancher), swing (la durée de la phase pendulaire) et vitesse (calculée d’oscillation de "Stridez" longueur et swing durée et exprimée en pixels par seconde). Cet article illustre l’utilisation d’un système d’analyse et fournit une brève comparaison des données avec le critère de von Frey constriction chronique blessures (CCI) neuropathique chez des souris.

<table><tbody><tr><td>0,9 % Saline</td><td>JW Pharmaceutique</td><td>N/A</td><td>Véhicule pour médicaments</td></tr><tr><td>Seringue 1ml</td><td>BD Plastipak</td><td>300013</td><td>Dispositif d’injection</td></tr><tr><td>2, 2, 2-tribromoéthanol (pureté de 97 %)</td><td>Sigma</td><td>T48402</td><td>Anesthésique</td></tr><tr><td>2-méthyl-2-buthanol (pureté de 99 %)</td><td>Sigma</td><td>152463</td><td>Solvant pour 2, 2, 2-tribromoéthanol</td></tr><tr><td>Catwalk Système automatisé d’analyse de la marche</td><td>Noldus</td><td>N/A</td><td>Logiciel d’analyse automatique de la démarche aniaml</td></tr><tr><td>Catgut chromique (épaisseur 4-0)</td><td>AILEE</td><td>C442</td><td>Ligature pour faire une lésion de constriction chronique sur le nerf sciatique</td></tr><tr><td>Gabapentine</td><td>Sigma</td><td>Y0001280</td><td>Analgeisc, Utilisé comme médicament de contrôle positif dans cette étude</td></tr><tr><td>Graefe Forceps</td><td>F.S.T</td><td>11051-10</td><td>Instrument chirurgical</td></tr><tr><td>Coussin chauffant</td><td>DAESHIN ELECTRONICS</td><td>M-303AT</td><td>Régulation de la température corporelle</td></tr><tr><td>ICR Souris</td><td>Samtaco</td><td>N/A</td><td>Animal de laboratoire</td></tr><tr><td>Mersilk (épaisseur 3-0)</td><td>ETHICON</td><td>W598H</td><td>Matériau de suture pour la fermeture chirurgicale de la peau</td></tr><tr><td>Micro-Mosquito</td><td>F.S.T</td><td>13010-12</td><td>Instrument chirurgical</td></tr><tr><td>Micro-ciseaux</td><td>F.S.T</td><td>14090-09</td><td>Chirurgical instrument</td></tr><tr><td>Porte-aiguille</td><td>F.S.T</td><td>12002-12</td><td>Instrument chirurgical</td></tr><tr><td>Povidone Iodine</td><td>Firson</td><td>N/A</td><td>Désinfectant pour prévenir les infections après une intervention chirurgicale</td></tr><tr><td>Lame de scalpel</td><td>F.S.T</td><td>10010-00 (#10)</td><td>Instrument chirurgical pour faire une incision</td></tr><tr><td>Manche de scalpel</td><td>F.S.T</td><td>10003-12 (#3)</td><td>Instrument chirurgical pour faire une incision</td></tr><tr><td>Filaments Von-Frey</td><td>North Coast</td><td>NC12775-99</td><td>Appareil de mesure pour tester la fonction sensorielle pour la stimulation mécanique</td></tr></tbody></table>

analyse automatisée gait chez la souris avec la blessure de constriction chronique

Automated Gait Analysis in Mice with Chronic Constriction Injury

Le critère de von Frey est une méthode classique qui a été largement utilisée pour examiner la fonction sensorielle des animaux de la douleur neuropathique. Toutefois, il a quelques inconvénients tels que les données subjectives et l’exigence d’un expérimentateur habile et expérimenté. A ce jour, diverses modifications ont amélioré la méthode de von Frey, mais il a encore quelques limitations. Des rapports récents ont suggéré que l’analyse de la démarche produit des données plus précises et objectives des animaux neuropathiques. Ce protocole montre comment effectuer l’analyse automatisée de démarche pour déterminer le degré de la douleur neuropathique chez la souris. Après plusieurs jours d’acclimatation, les souris étaient autorisés à circuler librement sur le plancher de verre pour éclairer les empreintes. Puis, quantification de l’empreinte et la démarche ont été effectuées par le biais de clips vidéo avec analyse automatique des différents paramètres de marche, tels que la zone de temps patte pour l’impression, swing, angle de patte, etc.
L’objectif principal de cette étude est de décrire la méthodologie de l’analyse de la démarche automatisée et brièvement le comparer avec les données de l’essai sensoriel classique à l’aide de filaments de von Frey.

Nous avons effectué le test de von Frey et automatisée d’analyse de la démarche chez les souris de la CCI jusqu'à 10 jours après l’intervention de la CCI. Pour l’analyse statistique, les mesures répétées des deux voies analyse de variance (ANOVA) détermine les effets globaux, et analyse post-hoc de Dunnett a été réalisée pour déterminer la valeur de p parmi les groupes expérimentaux.
Les résultats présentés dans la <str...

L’évaluation précise de la réponse de la douleur chez un modèle animal neuropathique est critique pour étudier la physiopathologie des maladies de douleur et élaborer de nouveaux analgésiques. Nous présentons une méthode sensible et objective pour déterminer la fonction sensorielle du rongeur hind patte par un système d’analyse automatisée de démarche.

Analyse automatisée Gait chez la souris avec la blessure de Constriction chronique

The von Frey test is a classical method that has been widely used to examine the sensory function of neuropathic pain animals. However, it has some ...

L’objectif global de cette procédure est d’analyser l’allodynie mécanique de souris atteintes d’une lésion de constriction chronique à l’aide d’un système automatisé d’analyse de la marche. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la recherche sur la douleur en mesurant la fonction sensorielle après une lésion des nerfs périphériques chez les rongeurs. Le principal avantage de cette technique est que le système d’analyse est rapide et facile à utiliser et qu’il note également automatiquement divers paramètres de marche.Pour cette étude, abritez des souris ICR mâles pesant de 20 à 25 grammes dans des conditions standard pendant au moins une semaine. Sélectionnez les souris en fonction de leur apparence et de leur comportement. N’utilisez pas de souris qui présentent des apparences ou des comportements anormaux tels que la perte de cheveux, des cicatrices et moins de mouvement.À l’aide des souris sélectionnées, à partir de cinq jours avant la chirurgie, collectez quotidiennement des données de marche automatisées pour avoir une mesure de base. Un jour avant l’opération, effectuez le test de Von Frey avec un filament d’un gramme sur une patte arrière pour obtenir une réponse de base. Équilibrez les réponses entre le groupe blessé et le groupe fictif.Chaque jour de test, amenez les souris dans la salle de test comportemental et acclimatez-les dans leur propre cage pendant au moins 30 minutes avant le test. Tous les deux jours après la chirurgie, mesurez l’allodynie mécanique à l’aide d’un test de Von Frey. Mettez la souris dans une boîte en acrylique transparente propre sur un sol en treillis métallique et laissez-la s’acclimater à la boîte pendant 30 minutes.Ensuite, appliquez doucement un filament Von Frey d’un gramme sur la surface plantaire de la patte arrière ipsilatérale jusqu’à ce que le filament se plie. Répétez ce schéma de stimulation 10 fois en observant les retraits de pattes. Attendez au moins 10 secondes entre les stimulations.Notez le nombre de retraits et notez leur fréquence pour l’analyse. Tous les deux jours, effectuez également le test d’analyse de la marche qui doit être effectué dans l’obscurité. Encore une fois, acclimatez les souris à la salle d’essai dans leur cage domestique pendant au moins 30 minutes.Pour configurer l’appareil d’analyse de la démarche, rendez-vous dans la commande logicielle. Sous l’onglet Configuration, réglez la longueur de la passerelle sur 30 centimètres, réglez la durée maximale de la course sur cinq secondes et réglez la variation maximale de la course sur 50 %Ensuite, sélectionnez une caméra enregistrée dans l’onglet de configuration du menu du programme, puis sélectionnez Ouvrir l’acquisition dans l’onglet Acquérir. Après le message d’état, cliquez sur le bouton d’arrière-plan pour prendre une photo d’arrière-plan de la passerelle vide.Placez maintenant une souris sur la passerelle et laissez-la s’acclimater à l’appareil pendant 10 minutes. L’appareil doit toujours être lavé avec de l’alcool entre les souris. Une fois que la souris s’est acclimatée à l’appareil, cliquez sur le bouton Démarrer l’acquisition.L’enregistrement démarre automatiquement en fonction du mouvement de la souris. Lorsque la souris traverse clairement l’allée, le programme classifie automatiquement les parcours conformes avec une icône verte. Si le logiciel ne parvient pas à détecter les empreintes, une icône rouge s’allume.Après avoir collecté au moins cinq exécutions conformes, sélectionnez l’option Classifier les exécutions dans l’onglet Acquérir du menu du programme. Sélectionnez l’exécution à analyser et cliquez sur le bouton de classification automatique. Les résultats sont automatiquement enregistrés.Pour afficher les résultats, cliquez sur afficher les statistiques d’exécution dans le menu d’analyse. Le test de Von Frey et l’analyse automatisée de la marche ont été utilisés pour évaluer les souris qui ont subi la chirurgie CCI pendant 10 jours consécutifs après l’opération. La fréquence du retrait de la patte a augmenté deux jours après l’opération et s’est maintenue pendant 10 jours.Cet effet pourrait être considérablement réduit par des injections postopératoires quotidiennes de gabapentine. À l’aide du logiciel d’analyse de la démarche, la taille des empreintes de pattes arrière gauche et droite a pu être comparée. Normalement, les surfaces sont les mêmes, ce qui est indiqué par une valeur de 50 %.La chirurgie CCI a eu un effet significatif sur l’empreinte de la patte et cet effet a pu être considérablement réduit en utilisant la gabapentine. Le logiciel d’analyse de la marche est également capable de détecter le changement de durée d’une seule position lorsque la souris porte son poids sur une seule patte arrière. Ceci est calculé et affiché sous forme de variation en pourcentage.Cette mesure montre le même effet pour la chirurgie CCI et les traitements à la gabapentine. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon de faire fonctionner et d’analyser les systèmes d’analyse automatisée de la marche pour étudier la physiopathologie de la douleur neuropathique dans des modèles animaux tels que les lésions de constriction chronique.

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