Une introduction à l'endocytose et à l'exocytose

JoVE Science Education
Cell Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Cell Biology
An Introduction to Endocytosis and Exocytosis

71,818 Views

09:27 min
April 30, 2023

Overview

Les cellules peuvent prendre de substances dans l’environnement extracellulaire par endocytose et libérer activement les molécules dedans par exocytose. Ces processus impliquent des sacs membranaires lipidiques appelées vésicules. Connaissance de l’architecture moléculaire et mécanismes des deux sont essentielle pour comprendre la physiologie des cellules normales, ainsi que les états pathologiques qui se posent lorsqu’ils deviennent défectueux.

Cette vidéo sera tout d’abord brièvement en revue quelques découvertes pivotales dans l’histoire de la recherche endo – et exocytose. Ensuite, quelques clés questions seront examinées, suivie d’une discussion des méthodes importants utilisés pour étudier ces problèmes, y compris la cellule d’étiquetage, des essais de fusion et imagerie de fluorescence. Enfin, il explorera les recherches en cours menées par des scientifiques dans le domaine aujourd’hui.

Procedure

Voies d’endocytose et sécrétion sont critiques pour l’homéostasie cellulaire, tissulaire fonction et la survie cellulaire globale. Bref, l’endocytose est le processus utilisé par une cellule pour prendre dans les molécules de l’espace extracellulaire en pliant sa membrane autour d’elle et en formant une vésicule. L’exocytose est le processus inverse, qui utilise des vésicules pour libérer des substances à l’espace extracellulaire. Ces processus ont été suggérées à jouer un rôle essentiel dans la sécrétion de l’hormone, internalisation des récepteurs membranaires, d’une durée de pathogène et la communication neuronale.

Aujourd’hui, nous retrace quelques-unes des découvertes de point de repère dans le domaine de l’endocytose et l’exocytose, mettre en évidence certaines questions sans réponse, caractéristique notable méthodes qui sont utilisées aujourd’hui, et enfin, découvrir quelques expériences spécifiques réalisées pour mieux comprendre ces processus.

Nous allons revenir sur certaines des découvertes très importantes qui a conduit à la compréhension actuelle de l’endocytose et l’exocytose.

La première documentation associée à endocytose peut être mappée vers 1882, quand Ilya Metchnikov, à l’aide d’un microscope optique, a observé que les cellules spécifiques englouti les pathogènes envahisseurs. Il appelle ce processus « la phagocytose, » où les cellules engloutissent pathogène via la formation de vésicules. Presque un demi-siècle plus tard, en 1931, Warren Lewis fait observer un processus similaire de la formation de vésicules quand les cellules ont pris dans le liquide. Il a nommé ce comportement « pinocytose. »

Plus tard en 1953, George Palade, tout en examinant l’organisation structurale et fonctionnelle de la cellule, découvert « grotte-like » invaginations de la membrane et appelées cavéoles. Il déduit que ceux-ci doivent être requis pour la cellule d’entrée. Peu après, en 1955, lauréat de prix Nobel Christian de Duve a inventé l’endocytose du terme, qui comprend « la phagocytose » et « pinocytose. » Cependant, l’histoire d’endocytose n’était pas encore terminée.

En 1975, Michael Brown et Joseph Goldstein, expert de microscopie électronique Richard Anderson, a fait observer que, lorsque des lipoprotéines de basse densité ou LDL, se lie à son récepteur de surface cellulaire, il conduit à la formation de « puits recouverts. » Ces fosses sont ensuite intériorisées et des récepteurs de LDL d’endocytose. Ce fut la découverte de la troisième catégorie, appelée « endocytose médiée par les récepteurs. » La même année, Barbara Pearse isolé la protéine de capside majeure, une molécule triskelion et baptisa comme clathrine. Par conséquent, ce processus s’appelle également « clathrine endocytose. »

Qui concernait tout l’endocytose. Maintenant nous allons discuter de comment nous avons appris l’exocytose. En 1980, groupe de Randy Schekman a généré des mutants de levure sécrétion déficiente, et révèlent la présence de gènes critiques qui code pour des protéines nécessaires à l’exocytose.

1993, James Rothman identifié certaines de ces protéines, en fonction de leur nature chimique on les appelait les collets. Dans son séminal, « Hypothèse de SNARE », il a proposé que ces structures hélicoïdales crochet sur l’autre, provoquant des membranes de s’approcher avec suffisamment de force pour les fusibles et générer l’exocytose.

Vers la même époque, Thomas Südhof a établi que ce processus était aussi étroitement contrôlé dans les neurones par des protéines calcium-sensing, appelées synaptotagmins, ce qui a favorisé et précisément minutée de la fusion des vésicules pour la libération des neurotransmetteurs. Ensemble, ces scientifiques ont reçu le prix Nobel en 2013.

Malgré l’ampleur de ces découvertes, demeurent nombreuses énigmes intrigantes. Nous allons jeter un oeil à quelques-unes des questions à l’étude aujourd’hui.

Les scientifiques commencent à se demander comment les fonctions d’endocytose et exocytose vont au-delà de l’acquisition et qui sécrètent des substances. Par exemple, comment sont continuellement libérées par les vésicules de neurotransmetteurs fusionner à la membrane cellulaire sans une expansion catastrophique de la taille des cellules ? Ils tentent d’identifier les signaux qui causent des cellules d’intérioriser la membrane, afin de compenser l’expansion et à recycler les ressources.

Est un autre sujet intéressant : quels éléments composent la machinerie moléculaire sophistiquée qui anime ces processus ? Par exemple, phagocytose nécessite des déformations de la membrane large pour entourer les pathogènes envahisseurs. Les scientifiques étudient les protéines cytosquelettiques comment comme actine contribuent à membrane dramatique transformant.

Enfin, puisque l’exocytose et l’endocytose aberrant peuvent entraîner des maladies graves, les scientifiques sont désireux de comprendre ce qui provoque ce dérèglement. Une des protéines étant examinés est α-synucléine, dont la sécrétion de neurones a été impliquée dans la mort progressive des neurones à proximité. Comprendre ses exocytose pourrait fournir des indications précieuses sur le traitement des maladies neurodégénératives comme la maladie de Parkinson.

Maintenant que nous avons examiné certaines des principales questions à l’étude, nous allons voir quels sont les outils disponibles pour y répondre.

Les chercheurs utilisent un dosage biotinylation de cellule pour suivre l’endocytose des protéines de surface de cellules. Ce processus implique une protéine de surface avec la biotine fluorescent étiqueté d’étiquetage et permettant ensuite la cellule pour subir une endocytose. Cela peut être suivi par Blot immunitaire, révélant l’internalisation de la protéine.

Afin de quantifier la vésicule neuronale recyclage, beaucoup de scientifiques l’étiquette cellules avec membrane spécifique des molécules fluorescentes, comme colorants FM. Ces colorants lient solidement le feuillet externe et sont seulement internalisés par endocytose. Après une stimulation séquentielle, ils sont exocytosed. Analysant la libération avec un microscope à fluorescence permet de mieux comprendre l’ensemble de processus de recyclage.

Souvent, pour manipuler et comprendre les contributions des composants qui permettent à l’exocytose, scientifiques mis en place des essais de fusion. Deux séries de vésicules à contenu de colorant fluorescent distincts sont préparés et autorisés à se réunir. Fusion entre eux conduit à la formation d’un nouveau produit, qui peut être contrôlé à l’aide d’un lecteur de microplaques.

Enfin, sophistiqué, méthodes d’imagerie, y compris de la fluorescence d’imagerie et de fluorescence vivent imagerie cellulaire, présenter des chercheurs l’occasion unique de structures morphologiques de l’image et des événements moléculaires d’endocytose et d’exocytose.

Enfin, nous allons étudier quelques façons spécifiques dans lesquels les scientifiques mettent en œuvre ces outils dans les laboratoires aujourd’hui.

Les biologistes cellulaires sont intéressés à étudier comment l’exocytose aide à guérir les blessés de membranes. Ici, chercheurs blessé tout d’abord en solution des colorants FM par laminage des perles de verre au-dessus d’eux. Imagerie de fluorescence ultérieur montre que si le taux d’exocytose est rapide, il sera rapidement sceller la membrane et arrêter FM une fuite dans la cellule. Lorsque l’exocytose est lent, il en résulte une vaste intracellulaire FM coloration.

Chercheurs peuvent utiliser fusion dosages pour modéliser la contribution des protéines de fusion spécifique. Ici, les chercheurs exprimé protéines différentes associées aux vésicules membranaires ou « VAMPs », qui sont des protéines SNARE, sur la surface de deux populations de cellules. La fusion pouvait alors avoir lieu, et le résultat a été quantifié à l’aide d’un spectromètre. En utilisant cette configuration, les scientifiques ont pu comparer l’efficacité de la fusion de plusieurs VAMPs.

Enfin, les chercheurs visent à comprendre l’endocytose de récepteur de surface cellulaire en réponse à un médicament. Ici, scientifiques traitement cellules fluorescent étiquetés avec un médicament, et visualisé récepteur médicamenteux endocytose qui passe en temps réel à l’aide de la microscopie Time-lapse.

Vous avez juste regardé introduction de JoVE d’endocytose et d’exocytose. Dans cette vidéo, nous avons examiné les points historiques forts à partir de la découverte de la phagocytose à définir les mécanismes de libération des neurotransmetteurs. Ensuite, nous avons introduit quelques questions clé posées. Aussi, nous avons exploré les stratégies de recherche de premier plan et discuté de certaines de leurs applications actuelles. Comme toujours, Merci pour regarder !

Transcript

Endocytic and exocytic pathways are critical for cellular homeostasis, tissue function, and overall cell survival. Simply put, endocytosis is the process that a cell uses to take in molecules from the extracellular space by folding its membrane around it and forming a vesicle. Exocytosis is the reverse process, which uses vesicles to release substances to the extracellular space. These processes have been suggested to play a critical role in hormone secretion, membrane receptor internalization, pathogen engulfment, and neuronal communications.

Today, we’ll retrace some of the landmark discoveries in the field of endocytosis and exocytosis, highlight some of the unanswered questions, feature notable methods that are used today, and lastly, explore a few specific experiments performed to better understand these processes.

Let’s revisit some of the momentous discoveries that led to the current understanding of endocytosis and exocytosis.

The first documentation related to endocytosis can be mapped back to 1882, when Ilya Metchnikov, using a light microscope, observed that specific cells engulfed invading pathogens. He called this process “phagocytosis,” where cells engulf pathogen via vesicle formation. Almost half a century later, in 1931, Warren Lewis observed a similar process of vesicle formation when cells took in fluid. He named this behavior “pinocytosis.”

Later in 1953, George Palade, while examining the structural and functional organization of the cell, discovered “cave-like” invaginations of the membranes, and called them caveolae. He inferred that these must be required for cell-intake. Soon after, in 1955, Nobel laureate Christian de Duve coined the term endocytosis, which encompassed “phagocytosis” and “pinocytosis.” However, the story of endocytosis wasn’t over yet.

In 1975, Michael Brown and Joseph Goldstein, with electron microscopy expert Richard Anderson, observed that when low density lipoprotein, or LDL, binds to its cell surface receptor, it leads to formation of “coated pits.” These pits are then internalized, and endocytose LDL receptors. This was the discovery of the third type, called “receptor-mediated endocytosis.” In the same year, Barbara Pearse isolated the major coat protein, a triskelion molecule, and named it as clathrin. Therefore, this process is also called “clathrin-mediated endocytosis.”

That was all regarding endocytosis. Now let’s discuss how we learned about exocytosis. In 1980, Randy Schekman’s group generated yeast mutants that were secretion deficient, and revealed the presence of critical genes that coded for proteins necessary for exocytosis.

In 1993, James Rothman identified some of these proteins, and based on their chemical nature they were called SNAREs. In his seminal, “SNARE hypothesis,” he proposed that these helical structures hook on to each other, causing membranes to come closer with sufficient force to fuse and generate exocytosis.

Around the same time, Thomas Südhof established that this process was also tightly controlled in neurons by calcium-sensing proteins called synaptotagmins that fostered and accurately timed vesicle fusion for neurotransmitter release. Together, these scientists were awarded the Nobel Prize in 2013.

Despite the breadth of these discoveries, many intriguing puzzles remain. Let’s take a look at some of the questions being explored today.

Scientists are starting to ask how the functions of endocytosis and exocytosis go beyond acquiring and secreting substances. For example, how are neurotransmitters continuously released by vesicles fusing to the cell membrane without a catastrophic expansion of cell size? They are trying to identify signals that cause cells to internalize membrane, in order to offset the expansion and recycle resources.

Another interesting topic is: what components make up the sophisticated molecular machinery that drives these processes? For example, phagocytosis necessitates large membrane deformations to surround invading pathogens. Scientists are investigating how cytoskeletal proteins like actin contribute to dramatic membrane remodeling.

Lastly, since aberrant endocytosis and exocytosis can result in serious diseases, scientists are interested in understanding what causes this dysregulation. One of the proteins being scrutinized is α-synuclein, whose secretion from neurons has been implicated in the progressive death of nearby neurons. Understanding its exocytosis could provide valuable insights on the treatment of neurodegenerative diseases like Parkinson’s.

Now that we’ve considered some of the key questions being investigated, let’s see what tools are available to answer them.

Researchers use a cell biotinylation assay to track endocytosis of cell surface proteins. This process involves labeling a surface protein with fluorescently tagged biotin, and then allowing the cell to undergo endocytosis. This can be followed by immune blot analysis, revealing protein internalization.

In order to quantify neuronal vesicle recycling, many scientists label cells with membrane-specific fluorescent molecules, like FM dyes. These dyes bind stably to the outer leaflet, and are only internalized by endocytosis. Following sequential stimulation, they are exocytosed. Analyzing release with a fluorescence microscope allows deeper insight into the whole recycling process.

Often, to manipulate and understand the contributions of components that allow exocytosis, scientists set up fusion assays. Two sets of vesicles with distinct fluorescent dye contents are prepared and allowed to come together. Fusion between them results in formation of a new product, which can be monitored using a microplate reader.

Lastly, sophisticated imaging methods, including fluorescence imaging and fluorescence live cell imaging, present researchers with the unique opportunity to image morphological structures and molecular events of endocytosis and exocytosis.

Finally, let’s look at some specific ways in which scientists are implementing these tools in labs today.

Cell biologists are interested in studying how exocytosis helps heal injured membranes. Here, researchers first injured cells in solution of FM dyes by rolling glass beads over them. Subsequent fluorescence imaging shows that if the rate of exocytosis is fast, it will quickly seal up the membrane and stop FM leaking into the cell. When exocytosis is slow, it results in extensive intracellular FM staining.

Researchers can use fusion assays to model the contribution of specific fusion proteins. Here, researchers expressed different vesicle-associated membrane proteins or “VAMPs,” which are SNARE proteins, on the surface of two pools of cells. The fusion was then allowed to take place, and the result was quantified using a spectrometer. Using this setup, scientists were able to compare the fusion efficiencies of multiple VAMPs.

Lastly, researchers are aiming to understand cell surface receptor endocytosis in response to a drug. Here, scientists treated fluorescently tagged cells with a drug, and visualized receptor medicated endocytosis happening in real time using time-lapse microscopy.

You’ve just watched JoVE’s introduction to endocytosis and exocytosis. In this video, we reviewed the historical highlights starting from the discovery of phagocytosis to defining the mechanisms of neurotransmitter release. Next, we introduced a few key questions being asked. We also explored prominent research strategies, and discussed some of their current applications. As always, thanks for watching!