Les colorants de FM sont une classe de molécules fluorescentes qui a trouvé une utilisation importante dans l’étude de la vésicule, processus de recyclage. En vertu d’une structure chimique, ces molécules peuvent s’insérer dans le feuillet externe de membranes de bilayer de phospholipide. Après insertion de la membrane, elles sont internalisées dans la cellule par l’intermédiaire de vésicules mégacaryocyte et libérées lorsque ces vésicules recyclent vers la membrane. Depuis, ces colorants sont fluorescents fortement dans l’environnement hydrophobe dans les membranes et faiblement dans le compartiment extracellulaire, niveaux de fluorescence FM peuvent être utilisés pour suivre l’activité vésiculaire tout au long du processus de recyclage.
Cette vidéo propose une introduction à l’utilisation des colorants de la FM dans les expériences visant à examiner la vésicule recyclage. Nous examinons tout d’abord la biochimie des colorants FM et comment leurs propriétés autorisent leur utilisation dans ces expériences. Nous avons alors passer par un protocole général pour l’utilisation de colorants FM dans ces études et enfin, discuter des études récentes qui fait usage de ces molécules uniques.
Colorants de FM sont des colorants de membrane qui sont largement utilisés pour la vésicule image recyclage. C’est le processus par lequel une cellule forme des vésicules de sa propre membrane pour préserver la taille des cellules, réutiliser les protéines chers et consécutivement transporter des molécules dans l’espace extracellulaire. Ce processus est plus couramment étudié au niveau des synapses neuronales, où elle est impliquée dans la libération de neurotransmetteurs. En plus d’examiner le recyclage de la vésicule, FM colorants sont utilisés pour étudier plusieurs autres phénomènes, comme la sécrétion dans les cellules chromaffines et membrane cellulaire de réparation après une blessure.
Cette vidéo mettra l’accent sur l’utilisation des colorants de FM dans une vésicule d’experimentation expérience recyclage. Nous irons via un protocole étape par étape qui utilise des teintures de FM pour quantifier le processus de recyclage dans les neurones stimulés. Enfin, nous passerons en revue certaines expériences de l’exemple, qui utilisent cette molécule unique de différentes manières.
Avant de sauter dans la procédure, nous allons d’abord revoir les propriétés biochimiques des colorants FM, qui vont nous aider à comprendre leur rôle dans la vésicule recyclage des expériences.
Structurellement, colorants FM sont des molécules de styryl qui en dérivent leur nom le scientifique qui a synthétisé les — Fei Mao. Ces colorants ont trois principales caractéristiques structurelles : tête, queue et pont. Le pont est constitué de deux cycles aromatiques avec une région variable double liaison entre eux. Cette section entière crée le fluorophore.
C’est la nature de n’importe quel fluorophore que lorsque frappé par entrant sur une certaine longueur d’onde excitation, ses atomes absorbent cette énergie et élever ses électrons à un état excité. Ces électrons revenir à l’état fondamental en émettant de l’énergie vibrationnelle et enfin dans la lumière d’une longueur d’onde d’émission. La queue hydrophobe permet à la molécule de FM à partition dans les bicouches lipidiques de la membrane cellulaire, et sa tête hydrophile possède une charge qui restreint sa localisation sur la notice de la membrane externe.
Par conséquent, la seule façon qu’il peut entrer dans la cellule est par endocytose. Colorants de FM sont extrêmement sensibles à l’environnement et montrent une fluorescence faible dans les solvants polaires, mais forte fluorescence dans des environnements comme les membranes hydrophobes. Cela crée un contraste élevé membrane étiquetage qui peut être visualisée et quantifiées à l’aide d’un microscope à fluorescence.
Ces propriétés font des teintures FM spécifiquement adaptés pour évaluer la vésicule recyclage aux synapses. En bref, le processus implique d’incuber les cultures avec la teinture de FM. Certaines molécules FM attachés aux membranes, ce qui augmente considérablement leurs intensités de fluorescence. Ensuite, un stimulus déclenche le processus d’internalisation de membrane. Par conséquent, certaines molécules FM sont pris au piège dans la membrane de la vésicule, et le reste des molécules de colorant localisée externe sont emportées.
Le deuxième stimulation, intériorisées vésicules colorées se fusionnent avec la membrane de la cellule pour libérer leur contenu, et le colorant departitions rapidement, ce qui entraîne une diminution rapide de l’intensité de la fluorescence. Cette décoloration peut être quantifiée à l’aide d’un microscope à fluorescence.
Maintenant que vous êtes familiarisé avec les principes biochimiques des colorants de FM, passons en revue une procédure sur la façon de réaliser une expérience examinant la vésicule synaptique recyclage à l’aide de ces colorants.
Des échantillons propres et sains de cultures de neurones sur les lamelles sont préparés à l’avance. Ces cellules sont déplacés vers une solution de colorant de FM, causant les membranes doivent être étiquetées. La lamelle de l’échantillon est ensuite montée dans la chambre d’imagerie du microscope.
Pour permettre la sortie et les manipulations de fluides comme la lave, fluide d’entrée lignes sont joints pour former une chambre de perfusion scellé. Monter la chambre sur la scène d’un microscope à fluorescence. Fixez les fils à la chambre et reliez-les au stimulateur électrique. Une fois attachées, les filtres d’excitation et d’émission sont fixés selon la teinture FM utilisée.
Colorant de chargement dans des vésicules par endocytose est induite à l’aide d’une stimulation électrique. Après la stimulation, les terminaisons nerveuses sont autorisés à récupérer. Puis, colorant extracellulaire est rincé avec un tampon ; Cela minimise également la fluorescence de fond. Il est important de garder l’intensité d’excitation minimale parce que les colorants de FM sont sujettes à photobleaching, qui est l’affaiblissement de l’intensité de fluorescence en raison de l’excitation prolongée. Après l’incubation courte, premières images sont obtenues. Ensuite, l’exocytose est induite par un second signal électrique.
Après avoir mesuré la fluorescence à des moments différents après la stimulation, à la fin, les terminaisons nerveuses peuvent être stimulées exhaustive pour décharger tous les colorant libérable. La fluorescence restant après cela est considérée comme l’intensité de fluorescence de fond. Ensuite, la fluorescence intrinsèque de chaque image est mesurée à l’aide de l’outil « Région d’intérêt » dans une zone non-synaptique de l’image. La fluorescence de fond et la fluorescence intrinsèque est ensuite soustraite de l’intensité de la fluorescence de chaque instant pour obtenir l’intensité de la fluorescence normalisé, qui est ensuite tracée en fonction du temps. La diminution de l’intensité avec le temps représente de décoloration, qui est une mesure indirecte du recyclage de la vésicule.
Maintenant que nous avons passé en revue la méthodologie, nous allons étudier comment FM colorants sont utilisés dans des expériences spécifiques.
Nous avons discuté du protocole à l’aide de colorants FM dans les neurones stimulés. Ici, les scientifiques étaient intéressés à étudier le recyclage de la vésicule spontanée. Ils ont fait cela en utilisant le protocole établi en combinaison avec un système d’imagerie assez sensible pour détecter de faibles variations dans l’intensité de la fluorescence. Les résultats représentent une diminution de l’intensité de la fluorescence qui résulte directement de la libération synaptique spontanée.
Dans le neurone présynaptique, les vésicules sont divisés en deux bassins : un bassin de réserve ou RP et une piscine facilement libérable ou PRT. Ici, les scientifiques ont utilisé FM colorants pour analyser la fraction de chaque type dans la population de la vésicule. Par l’application séquentielle de stimuli électriques d’intensité croissante, ces scientifiques ont été en mesure de quantifier les pourcentages relatifs de chaque type de piscine de la vésicule.
Enfin, biologiste cellulaire également utiliser FM colorants à disséquer les facteurs impliqués dans la réparation de la sécrétion des membranes plasmiques des blessés. Dans cette expérience, les chercheurs ont porté particulièrement sur le rôle de la sphingomyélinase, une enzyme de modification des lipides, dans le processus de fermeture de membrane. Tout d’abord, ils ont généré cellules déficientes en la sphingomyélinase enzymatique à l’aide de mise sous silence de traitement RNA. Ensuite, ils ont traitaient ces cellules et un groupe témoin avec exogène FM colorant et une toxine qui crée des lésions de la membrane plasmique. Enfin, ils ont vu tous les échantillons à l’aide d’un microscope confocal. Les résultats ont montré que les cellules déficientes de la sphingomyélinase a montré robuste accumulation de molécules intracellulaires de FM. En revanche, cellules témoins ont montré minime afflux de FM, suggérant un rôle de la sphingomyélinase dans la réparation de la membrane plasmique.
Vous avez juste regardé les vidéo de JoVE sur teintures de FM dans le recyclage de la vésicule. La vidéo décrit la biochimie des colorants de FM, détaillée un protocole pour souiller et quantifier des vésicules synaptiques recyclage et enfin décrit des expériences actuelles utilisant ces colorants de différentes manières. Comme toujours, Merci pour regarder !
FM dyes are membrane dyes that are widely used to image vesicle recycling. This is the process by which a cell forms vesicles from its own membrane to preserve cell size, reuse expensive proteins, and consecutively transport molecules to the extracellular space. This process is most commonly studied at neuronal synapses, where it’s involved in release of neurotransmitters. In addition to examining vesicle recycling, FM dyes are used to study several other phenomena, such as secretion in chromaffin cells and cell membrane repair following injury.
This video will focus on the use of FM dyes in an experiment studying vesicle recycling. We’ll go over a step-by-step protocol that uses FM dyes to quantify the recycling process in stimulated neurons. Lastly, we will review some example experiments, which utilize this unique molecule in different ways.
Before jumping into the procedure, let’s first review the biochemical properties of FM dyes, which will help us understand their function in vesicle recycling experiments.
Structurally, FM dyes are styryl molecules that derive their name from the scientist who synthesized them—Fei Mao. These dyes have three main structural features: head, tail, and bridge. The bridge consists of two aromatic rings with a variable double bond region between them. This entire section creates the fluorophore.
It is the nature of any fluorophore that when struck by incoming light at a certain excitation wavelength, its atoms absorb that energy and raise its electrons to an excited state. These electrons return to the ground state by emitting energy vibrationally, and finally as light of an emission wavelength. The hydrophobic tail allows the FM molecule to partition into the lipid bilayers of the cell membrane, and its hydrophilic head has a charge that restricts its localization to the outer membrane leaflet.
Therefore, the only way it can go into the cell is via endocytosis. FM dyes are acutely environment sensitive, and show weak fluorescence in polar solvents, but strong fluorescence in hydrophobic environments like membranes. This creates high contrast membrane labeling that can be visualized and quantified using a fluorescence microscope.
These properties make FM dyes specifically suited to assess vesicle recycling at synapses. Briefly, the process involves incubating the cultures with FM dye. Some of the FM molecules get attached to the membranes, which significantly increases their fluorescence intensities. Next, a stimulus initiates the membrane internalization process. Therefore, some FM molecules are trapped in the vesicle membrane, and the rest of the outer localized dye molecules are washed away.
On second stimulation, internalized stained vesicles fuse with the cell membrane to release their contents, and the dye quickly departitions, resulting in a rapid decrease in fluorescence intensity. This destaining can be quantified with the help of a fluorescence microscope.
Now that you’re familiar with the biochemical principles of FM dyes, let’s review a procedure on how to perform an experiment examining synaptic vesicle recycling using these dyes.
Clean, healthy samples of neuronal cultures on coverslips are prepared in advance. These cells are moved to a FM dye solution, causing the membranes to be labeled. The sample coverslip is then mounted onto the imaging chamber of the microscope.
To allow fluid manipulations like washes, fluid input and output lines are attached to form a sealed perfusion chamber. Mount the chamber onto the stage of a fluorescence microscope. Attach wires to the chamber and connect them to the electrical stimulator. Once attached, the excitation and emission filters are set according to the FM dye used.
Dye loading into vesicles via endocytosis is induced using an electrical stimulation. After stimulation, nerve terminals are allowed to recover. Then, extracellular dye is washed off with buffer; this also minimizes the background fluorescence. It is important to keep the excitation intensity minimum because FM dyes are prone to photobleaching, which is weakening of fluorescence intensity due to prolonged excitation. Following the short incubation, initial images are obtained. Next, exocytosis is induced with a second electric signal.
After measuring fluorescence at different time points following stimulation, at the end, nerve terminals can be exhaustively stimulated to unload all releasable dye. The fluorescence remaining after that is considered as the background fluorescence intensity. Then, intrinsic fluorescence of each image is measured using the “Region of Interest” tool in a non-synaptic area of the image. The background fluorescence and the intrinsic fluorescence is then subtracted from the fluorescence intensity of each time point to obtain normalized fluorescence intensity, which is then plotted versus time. The decrease in intensity over time represents destaining, which is an indirect measure of vesicle recycling.
Now that we’ve reviewed the methodology, let’s look at how FM dyes are used in specific experiments.
We discussed the protocol using FM dyes in stimulated neurons. Here, scientists were interested in studying spontaneous vesicle recycling. They did this using the established protocol in combination with an imaging system sensitive enough to detect small changes in fluorescence intensity. The results represent a decrease in fluorescence intensity that is directly due to spontaneous synaptic release.
Within the presynaptic neuron, vesicles are divided into two pools: a reserve pool or RP, and a readily releasable pool or RRP. Here, scientists used FM dyes to analyze the fraction of each type in the vesicle population. By sequential application of electrical stimuli of increasing intensities, these scientists were able to quantify the relative percentages of each type of vesicle pool.
Lastly, cell biologist also use FM dyes to dissect factors involved in the exocytic repair of wounded plasma membranes. In this experiment, researchers were particularly focused on the role of sphingomyelinase, a lipid-modifying enzyme, in the membrane resealing process. First, they generated cells deficient in the enzyme sphingomyelinase with the help of silencing RNA treatment. Next, they treated these cells and a control group with exogenous FM dye and a toxin that creates plasma membrane lesions. Finally, they viewed all the samples using a confocal microscope. The results showed that sphingomyelinase deficient cells showed robust accumulation of intracellular FM molecules. On the other hand, control cells showed minimal FM influx, suggesting a role of sphingomyelinase in plasma membrane repair.
You’ve just watched JoVE’s video on FM dyes in vesicle recycling. The video described the biochemistry of FM dyes, detailed a protocol to stain and quantify synaptic vesicle recycling, and finally outlined current experiments utilizing these dyes in different ways. As always, thanks for watching!
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