Name: Transuréthrale médicamenteuse chez les souris mâles adultes (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 1 s
Description: Découvrez la cathétérisation transuréthrale chez la souris mâle adulte pour l'administration intravésicale de substances actives. Cette technique permet d'étudier la pathologie vésicale et d'évaluer l'efficacité des traitements.

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Les auteurs n’ont pas des remerciements.

toutes les procédures avec des animaux, dont la méthode et la durée de l’anesthésie, ainsi que les soins post-opératoires, ont été discutés avec un vétérinaire et approuvés par l’animalerie institutionnelle et utilisation Comité (IACUC) à la établissement affilié. Dans ce manuscrit, toutes les procédures ont été réalisées avec 8 à des souris mâles C57BL/6 15 semaines et le protocole suit les directives de soins aux animaux, approuvées par l’IACUC à l’Université du Colorado.
 1. préparation du tube Remarque : pour susciter l’inoculum, une aiguille attachée au tuyau de polyéthylène (PE) ( Figure 1 a) ou une petite jauge (&#60; 24 G) cathéter peut être utilisé ( la figure 1). L’utilisation d’un cathéter ne nécessite aucune préparation autre que stérilisation avec 70 % d’éthanol (EtOH). L’inoculum est la substance qui est inculquée/injecté/déposés dans les voies urinaires. Cela peut être une solution contenant des bactéries, virus ou un produit chimique. Il est préparé d’avance et par le protocole de recherche. Par exemple, si l’étude vise à évaluer les effets de l’infection à e. coli sur les voies urinaires basses, les chercheurs devront préparer l’inoculum contenant des bactéries, qui peuvent être inoculés/instillé dans les voies urinaires basses.
<ol><li>Préparation de l’aiguille attachée à tubes PE est simple et se compose des éléments suivants : choisir la taille des tubes PE basé sur l’organe cible et l’âge d’un animal. Pour un animal de moins de 12 semaines, utiliser des tubes PE-10 (diamètre extérieur est de 0,024 pouces et diamètre intérieur est de 0,011 pouces). Tubes PE-10 est suggérée pour être applicable pour (1) l’ensemencement primaire d’inoculum dans la partie antérieure de la prostate (AP) et des vésicules séminales (SV), ou (2) l’ensemencement primaire de l’inoculum dans la vessie d’un animal plus jeune que l’âge de 12 semaines. Tubes PE avec un plus grand diamètre de jusqu'à la taille 50 PE (diamètre extérieur jusqu'à 0,038 po et à l’intérieur de diamètre jusqu'à 0,023 pouces) peut être utilisée pour l’ensemencement primaire de l’inoculum dans la vessie des animaux plus âgés.</li>
	<li>Couper environ 2,5 pouces de tubes PE.</li>
	<li>Sélectionnez une aiguille qui s’adapte au diamètre de PE sélectionné pour être utilisé. Une aiguille de 27 G peut s’insérer dans la lumière des tubes PE-10, et une aiguille de 22 G correspond à la lumière des tubes PE-50.
	<ol><li>Prepare l’aiguille avant l’insertion dans le tube PE en frottant le tranchant de l’aiguille sur une pierre à huile commercialement disponibles ( Figure 1 a -B) pour le rendre terne, ou utiliser un blunt disponible dans le commerce aiguille.</li>
	</ol></li> <li>Introduire l’aiguille émoussée ( Figure 1) dans la lumière du tube PE. Éviter d’endommager le lumen ou l’entrée dans un faux chenal en s’assurant que les restes de l’aiguille au centre du lumen. ( figure 1 -E). Si le tube PE est endommagé lors de l’insertion de l’aiguille émoussée, coupez l’extrémité endommagée et relancer le processus de.</li>
	<li>Déposer le tube à PE aiguille-attaché dans 70 % des EtOH pour stérilisation jusqu'à son utilisation pour la procédure. Rincer les 70 % EtOH dans la tubulure de l’aiguille-PE pour stériliser la lumière tout en assurant là n’est aucune fuite de la tuyauterie PE de dommages pendant le processus d’insertion de l’aiguille. S’il y a des fuites, jeté le tube de l’aiguille-PE. 
	Remarque : L’extrémité du tube PE doit être lisse avant cathétérisme. Pour éviter tout problème avec l’introduction de tube PE dans l’urètre, il est recommandé de couper l’extrémité du tube PE juste avant cathétérisme ( Figure 1F). La longueur minimale suggérée du tube PE est 1,5 pouces, qui comprend la partie entourant l’aiguille.</li>
</ol> 2. Cathétérisme <ol><li>avant l’induction de l’anesthésie, vider la vessie des souris.
	<ol><li>, Appliquez une légère pression et massage au bas du ventre de la souris. Ces manœuvres conduisent généralement à miction spontanée. Une vessie pleine peut entraîner la dilution ou la fuite immédiate des inoculum instillée. 
		NOTE : Une option supplémentaire pour garantir une vessie vide dans une souris est de priver l’animal d’eau pendant au moins 1 heure avant le début de la procédure de l’instillation transurétrale. Privation d’eau devrait être approuvée par l’institution dans le cadre du protocole animal.</li>
	</ol></li> <li>Utilisent une machine d’anesthésie isoflurane courant (2 %) pour induire l’anesthésie.
	<ol><li>Une fois que l’animal est anesthésié, placez-le sur une couverture de chauffage chaude et couvrir avec un tapis bleu avec son nez à l’intérieur d’un nez conique pour l’entretien de l’anesthésie continue.</li>
		<li>Confirmer que l’animal soit sous anesthésie en vérifiant le réflexe pédale (pincement de l’orteil).</li>
	</ol></li> <li>Une fois que le réflexe de pédale est absent, procédez en rétractant le prépuce.
	<ol><li>Presse la région pubienne avec le pouce et l’index de l’un main ( Figures 2 a et 2 b) et tirez pour que le pénis de glandes en utilisant le pouce et l’index de l’autre (de la main la figure 2). Lorsque cela est fait correctement, le prépuce, le gland du pénis et corps du pénis restent exposés. ( figure 2D et Figure 2F). Ne pas utiliser de pinces pour tirez pénis glandes que cela se traduira par des dommages au tissu.</li>
	</ol></li> <li>Lubrifier l’extrémité du cathéter et le gland avec lubrifiant chirurgical stérile avant l’insertion du cathéter. Cela facilitera l’insertion du tube PE. 
	NOTE : Carrés emballés individuellement de lubrifiant chirurgical, au lieu d’un grand tube, sont recommandés pour chaque usage afin de maintenir des conditions stériles.</li>
	<li>Tenez délicatement le bout du pénis avec une pincette terne et presser doucement le gland afin de provoquer le méat urétral ouvrir.</li>
	<li>Tenir la seringue avec les tubes PE aiguille-attachées ou le tuyau lui-même PE et insérez le tube de PE dans le méat urétral. 
	Remarque : Une poignée de trépied de la seringue avec l’aiguille-attaché PE-tube ou le tuyau lui-même à l’aide du pouce, index et médius de PE est recommandée pour la stabilité. 
	Remarque : Le chemin d’accès de cathétérisme doit être courbé en raison de la courbure naturelle de l’urètre, entouré par le gland du pénis et le corps du pénis chez la souris mâle adulte, tel qu’illustré dans la Figure 3 a et 3 b Figure. Les tubes PE cathétérisée peuvent rencontrer résistance lors de cathétérisme, par conséquent, il est recommandé d’ajuster l’angle en inclinant le tube vers le haut ou vers le bas pour aide avance les tubes PE à la suite de l’organe cible. Si nécessaire, les tubes de PE peuvent être légèrement tournée pour l’aider à manœuvrer à travers les différents virages de l’urètre. Lorsqu’il y a aussi beaucoup de résistance, le tuyau doit être tiré vers l’arrière et puis avance à nouveau avec la pression minimale. En tirant le tube PE-sortir complètement et en utilisant plus de lubrification peut être utile.</li>
	<li>Effectuer instillation de l’inoculum, une fois que le PE-tube a atteint l’organe souhaité en appuyant sur le piston de l’aiguille d’inculquer le volume souhaité de l’inoculum (volume de 5 à 200 µL est suggéré).
	<ol><li>Car une instillation de l’inoculum dans la vessie, avancer le tube PE jusqu'à environ 0,75 pouces des tubes PE est inséré ( Figure 3 a). 
		Remarque : pour l’instillation de l’inoculum dans les AP et de la SV, généralement, thtube e inséré répond résistance lorsqu’elle atteint le point d’ouverture dans la partie antérieure de la prostate. En ajustant l’angle en inclinant le tube vers le haut ou vers le bas, les tubes PE avancera plus loin jusqu'à ce qu’environ 1 pouce de tubes PE a été inséré ( Figure 3 b).</li>
	</ol></li></ol> 3. In Vivo Imagerie des voies urinaires basses et reins Remarque : l’objectif de l’imagerie in vivo dans ce manuscrit est : (1) pour confirmer la localisation spatiale de l’inoculum ; et (2) pour évaluer l’incidence du reflux de l’inoculum pour la reins. À cet effet, on peut servir une souris soit anesthésiée ou euthanasiée.
<ol><li>Afin de visualiser les voies urinaires basses d’une souris mâle adulte, effectuer inférieure laparotomie médiane abdominale pour exposer la vessie, la prostate et les vésicules séminales.
	<ol><li>Inciser la peau dans la ligne médiane de l’os pubien juste en dessous du processus xiphoïde à l’aide de ciseaux.</li>
		<li>Élever la peau de tissu sous-cutané.</li>
		<li>Identifier l’avasculaire linea alba se trouve dans la ligne médiane et cela pour entrer dans la cavité péritonéale, où se trouvent tous les organes inciser.</li>
		<li>Confirmer la localisation spatiale par la visualisation de la teinture bleue ou un autre agent de suivi appropriée.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Lee, S., Yang, G., Bushman, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prostatic+inflammation+induces+urinary+frequency+in+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Prostatic inflammation induces urinary frequency in adult mice.</a> PLoS One. 10 (2), e0116827(2015).</li>
<li>Wong, L., Hutson, P. R., Bushman, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prostatic+inflammation+induces+fibrosis+in+a+mouse+model+of+chronic+bacterial+infection%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Prostatic inflammation induces fibrosis in a mouse model of chronic bacterial infection.</a> PLoS One. 9 (6), e100770(2014).</li>
<li>Elkahwaji, J. E., Zhong, W., Hopkins, W. J., Bushman, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+bacterial+infection+and+inflammation+incite+reactive+hyperplasia+in+a+mouse+model+of+chronic+prostatitis%5BTitle%5D)+AND+%22Prostate%22%5BJournal%5D)">Chronic bacterial infection and inflammation incite reactive hyperplasia in a mouse model of chronic prostatitis.</a> Prostate. 67 (1), 14-21 (2007).</li>
<li>Boehm, B. J., Colopy, S. A., Jerde, T. J., Loftus, C. J., Bushman, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+bacterial+inflammation+of+the+mouse+prostate%5BTitle%5D)+AND+%22Prostate%22%5BJournal%5D)">Acute bacterial inflammation of the mouse prostate.</a> Prostate. 72 (3), 307-317 (2012).</li>
<li>Bjorling, D. E., Wang, Z. Y., Bushman, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Models+of+inflammation+of+the+lower+urinary+tract%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourol+Urodyn%22%5BJournal%5D)">Models of inflammation of the lower urinary tract.</a> Neurourol Urodyn. 30 (5), 673-682 (2011).</li>
<li>Thai, K. H., Thathireddy, A., Hsieh, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transurethral+induction+of+mouse+urinary+tract+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transurethral induction of mouse urinary tract infection.</a> J Vis Exp. (42), (2010).</li>
<li>Bjorling, D. E., Wang, Z. Y., Boldon, K., Bushman, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+cystitis+is+accompanied+by+increased+peripheral+thermal+sensitivity+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Bacterial cystitis is accompanied by increased peripheral thermal sensitivity in mice.</a> J Urol. 179 (2), 759-763 (2008).</li>
<li>Hopkins, W. J., Gendron-Fitzpatrick, A., Balish, E., Uehling, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time+course+and+host+responses+to+Escherichia+coli+urinary+tract+infection+in+genetically+distinct+mouse+strains%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Time course and host responses to Escherichia coli urinary tract infection in genetically distinct mouse strains.</a> Infect Immun. 66 (6), 2798-2802 (1998).</li>
<li>Dinis, P., Charrua, A., Avelino, A., Cruz, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravesical+resiniferatoxin+decreases+spinal+c-fos+expression+and+increases+bladder+volume+to+reflex+micturition+in+rats+with+chronic+inflamed+urinary+bladders%5BTitle%5D)+AND+%22BJU+Int%22%5BJournal%5D)">Intravesical resiniferatoxin decreases spinal c-fos expression and increases bladder volume to reflex micturition in rats with chronic inflamed urinary bladders.</a> BJU Int. 94 (1), 153-157 (2004).</li>
<li>Cayan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Botulinum+toxin+type+A+may+improve+bladder+function+in+a+rat+chemical+cystitis+model%5BTitle%5D)+AND+%22Urol+Res%22%5BJournal%5D)">Botulinum toxin type A may improve bladder function in a rat chemical cystitis model.</a> Urol Res. 30 (6), 399-404 (2003).</li>
<li>Jerde, T. J., Bjorling, D. E., Steinberg, H., Warner, T., Saban, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+mouse+bladder+inflammatory+response+to+E.+coli+lipopolysaccharide%5BTitle%5D)+AND+%22Urol+Res%22%5BJournal%5D)">Determination of mouse bladder inflammatory response to E. coli lipopolysaccharide.</a> Urol Res. 28 (4), 269-273 (2000).</li>
<li>Saban, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LPS-sensory+peptide+communication+in+experimental+cystitis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">LPS-sensory peptide communication in experimental cystitis.</a> Am J Physiol Renal Physiol. 282 (2), F202-F210 (2002).</li>
<li>Schilling, J. D., Mulvey, M. A., Vincent, C. D., Lorenz, R. G., Hultgren, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+invasion+augments+epithelial+cytokine+responses+to+Escherichia+coli+through+a+lipopolysaccharide-dependent+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Bacterial invasion augments epithelial cytokine responses to Escherichia coli through a lipopolysaccharide-dependent mechanism.</a> J Immunol. 166 (2), 1148-1155 (2001).</li>
<li>Saban, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discriminators+of+mouse+bladder+response+to+intravesical+Bacillus+Calmette-Guerin+%28BCG%29%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Immunol%22%5BJournal%5D)">Discriminators of mouse bladder response to intravesical Bacillus Calmette-Guerin (BCG).</a> BMC Immunol. 8, 6(2007).</li>
<li>Bjorling, D. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+acrolein-induced+cystitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22BJU+Int%22%5BJournal%5D)">Acute acrolein-induced cystitis in mice.</a> BJU Int. 99 (6), 1523-1529 (2007).</li>
<li>Sadler, K. E., Stratton, J. M., Kolber, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Urinary+bladder+distention+evoked+visceromotor+responses+as+a+model+for+bladder+pain+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Urinary bladder distention evoked visceromotor responses as a model for bladder pain in mice.</a> J Vis Exp. (86), (2014).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Ce manuscrit a décrit en détail une méthode de transurethral instillation chez les souris mâles adultes. Différentiel principal domaine de semis sont accessibles à l’aide de tubes de PE de différents diamètres. PE-50 est recommandé pour arriver avec succès à la lumière de la vessie, tout en un plus grand diamètre que PE-10 est utilisé pour atteindre l’AP et la SV (Figure 3 a-B). Outre le choix de la taille des tubes PE et organe cible pour l’inoculation, autres facteurs, tel...

L’approche de l’instillation transuréthrale a été utilisé dans des études antérieures comme l’une des méthodes pour créer des modèles de rongeurs de la vessie pathologies1,2,3,4 et peut être utilisé pour évaluer la efficacité des traitements localement livrés chez la souris. Bien que les modèles animaux ne peuvent pas entièrement récapituler des pathologies humaines, identification des mécanismes sous-jacents dans les études animales fournit une meilleure compréhension des troubles humains LUT comme le syndrome de douleur de la cystite interstitielle/vessie, neurogène cystite, cystite auto-immune et inflammation bénigne de la prostate5.
La procédure de l’instillation transuréthrale réalisée sur une souris mâle adulte est techniquement plus difficile que l’instillation intravésicale dans une souris femelle adulte6. L’anatomie naturellement courbée de l’urètre masculin ainsi que de son petit diamètre, il est techniquement difficile accomplir la transurethral insertion d’un cathéter. Par conséquent, des instructions détaillées pour l’induction transuréthrale de souris de l’infection des voies urinaires6 et LUT inflammation7,8,9,10,11 , 12 , 13 , 14 , 15 par cathéter inséré à la vessie ont été définis précédemment chez les souris femelles seulement. Ce manuscrit a pour but de fournir une description étape par étape de la technique pour l’instillation transuréthrale de substances chez les souris mâles, y compris les clips vidéo, des images et illustrations. Instillation transuréthrale procédures chez une souris mâle adulte peuvent être effectuées avec la variable inocule semblable à celle précédemment décrite dans la souris femelle7 et fusionné avec des techniques complémentaires telles que des enregistrements d’électromyogramme de viscéromotrice réponses (VMR)16.

<table><tbody><tr><td>Tube en polyéthylène BD INTRAMEDIC/ PE 10</td><td>BD Medical</td><td>63019-004</td><td></td></tr><tr><td>Tube en polyéthylène BD INTRAMEDIC/ PE 50</td><td>BD Medical</td><td>63019-048</td><td></td></tr><tr><td>BD Insyte-N Autoguard/ Angiocath</td><td>BD Medical</td><td>311411</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol (EtOH)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP2818500</td><td></td></tr><tr><td>Aiguille BD Seulement 22 Calibre (G) 1 pouce</td><td>Becton Dickson</td><td></td><td></td>205155</tr><tr><td>Aiguille BD seulement 27 calibre (G) 1/2 pouce</td><td>Becton Dickson</td><td>305129</td><td></td></tr><tr><td>Luer stub, 22 G X 0,5 po / Aiguille émoussée</td><td>Instech</td><td>LS22</td><td></td></tr><tr><td>Luer, 27 G X 0,5 po / Aiguille émoussée</td><td>Instech</td><td>LS27</td><td></td></tr><tr><td>6 » de long x 2 » de large x 1 » d’épaisseur, pierre à aiguiser en oxyde d’aluminium / pierre à huile</td><td>Norton</td><td>40204034</td><td></td></tr><tr><td>Lubrifiant chirurgical Bactériostatique stérile Folilpac</td><td>Surgilube</td><td>281020543</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Fluriso</td><td>13985-528-60</td><td></td></tr><tr><td>SomnoSuite Système d’anesthésie à faible débit</td><td>Kent Scientific</td><td>SS-01</td><td></td></tr><tr><td>Pince à dissectionner, courbée</td><td>vwr</td><td>82027-392</td><td></td></tr><tr><td>BD Seringue de 1 ml</td><td>BD Medical</td><td>309626</td><td></td></tr><tr><td>India Ink Solution., 0,2 % dans le tampon PBS</td><td>Alfa Aesar</td><td>J61007</td><td></td></tr><tr><td>8~12 semaines mâle C57B / 6 souris</td><td>Jackson Lab</td><td>#000664</td><td></td></tr></tbody></table>

transuréthrale médicamenteuse chez les souris mâles adultes

Transurethral Instillation Procedure in Adult Male Mouse

Instillation transurétrale peut être utilisée pour offrir des solutions différentes, avec des ingrédients actifs (par exemple, médicaments, produits chimiques, de bactéries et virus) localement dans la vessie à induire des modèles animaux de pathologies de la vessie ou évaluer la efficacité des traitements intravésicale. Plus les modèles de rongeurs du bas appareil urinaire (LUT) pathologies sont induites chez les souris femelles due à la facilité d’instillation intravésicale des substances par l’intermédiaire de l’urètre féminin. Toutefois, en raison de différences anatomiques entre le LUT féminin et masculin, transurethral instillation dans une souris mâle a été considéré comme une procédure très difficile, et il n’a pas été précédemment décrit. Dans ce manuscrit, nous fournir une description détaillée de la façon de préparer les tubes en polyéthylène (PE) pour une insertion ultérieure dans l’urètre d’une souris mâle. En outre, nous analysons le type idéal de tubes PE à utiliser selon le site désiré d’inoculation. En outre, nous décrire point par point comment préparer un animal pour une instillation transuréthrale réussi à éviter toute blessure de l’urètre et assurer la livraison de la solution à l’endroit désiré. La procédure est engagée en rétractant le prépuce et le gland pour exposer l’ouverture du méat urétral. Ensuite, le gland sont saisies par émoussé pinces non-concasser pour stabiliser le pénis et les tubes de PE. Les tubes PE sont d’abord inséré dans le méat urétral parallèle au corps animal, puis son angle est ajusté en inclinant le cathéter pour manœuvrer pour suivre la courbure naturelle de l’urètre. Cette technique peut être utilisée pour les modèles murins induite par des pathologies de la vessie et/ou évaluer l’efficacité du traitement intravésical chez les souris mâles.

Instillation transuréthrale de teinture bleue par l’intermédiaire de tubes PE 50 a entraîné l’instillation du colorant dans la vessie (Figure 4 a) et par l’intermédiaire de tubes PE 10 dans la colorisation de la SV et AP (Figure 4 b), respectivement. Afin de déterminer si l’instillation transuréthrale jouée provoque un reflux instantané de l’inoculum aux reins ou non, le rein et l’uretère ont été observés suivi par l’instillation...

Instillation transuréthrale est une procédure difficile et n’a pas été bien décrite dans la littérature. Le but de ce manuscrit est de décrire une technique pour l’insertion d’un cathéter intravésical livraison de liquides par des substances actives dans la vessie ou la prostate chez les souris mâles adultes transurétrale.

Transuréthrale médicamenteuse chez les souris mâles adultes

Transurethral instillation can be used to deliver different solutions with active ingredients (e.g., drugs, chemicals, bacteria, and viruses) locally into ...

L’objectif global de cette procédure est d’utiliser l’insertion d’un cathéter transurétral pour l’administration intravésicale de substances actives dans la vessie et/ou la prostate de souris mâles adultes. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la pathologie de la vessie sur la façon d’étudier les mécanismes sous-jacents impliqués dans les maladies des voies urinaires inférieures chez les hommes. Les principaux avantages de cette technique sont qu’elle peut être utilisée pour induire des modèles animaux de pathologie de la vessie et pour évaluer l’efficacité du traitement intravésiculaire.L’instillation de transurétre chez l’homme est difficile en raison de la courbure naturelle de l’urètre, de la minceur de la paroi urétrale et de la nécessité d’une instillation répétitive de substance active. Avant de commencer la procédure, choisissez la taille du tube en PE en fonction de l’organe cible et de l’âge de l’animal, et coupez un morceau d’environ 2,5 pouces de long dans le tube. Émoussez le bord tranchant d’une aiguille de taille compatible sur une pierre à huile disponible dans le commerce et introduisez soigneusement l’aiguille dans la lumière

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Immunologie et infection

Cette vidéo va montrer des méthodes pour induire des infections de souris transurethrally des voies urinaires et de quantifier l'ampleur des infections résultant.

Induction transurétrale d&#39;infection des voies urinaires souris

Source : Luyts, N., et al. Suivi longitudinal des infections urinaires et leur traitement chez la souris par imagerie bioluminescente. J. Vis. Exp. (2021).Cette vidéo montre l’induction et le suivi de l’infection des voies urinaires dans un modèle murin utilisant l’E. coli bioluminescente injectée dans la vessie, où se produisent l’adhésion, l’invasion et la réplication intracellulaire bactérienne. La lumière émise par l’opéron bioluminescent sert de marqueur en temps réel de la charge...

Visualisation de l’infection des voies urinaires dans un modèle murin utilisant la bioluminescence

Dans cette vidéo, nous décrivons la procédure intravésicale consistant à administrer des cellules cancéreuses dans la vessie d’un modèle murin. Cette procédure permet de générer un modèle de tumeur orthotopique de la vessie qui peut être utilisé pour développer des stratégies thérapeutiques.

Modélisation d’une tumeur orthotopique de la vessie dans un modèle murin : une procédure d’administration intravésicale de cellules cancéreuses dans la vessie murine

Dans cette vidéo, nous décrivons la technique d’administration intravésicale de bactéries uropathogènes pour générer un modèle d’infection urinaire chez la souris. Ce modèle peut être utilisé pour comprendre la propagation de l’infection bactérienne uropathogène dans le système urinaire et les mécanismes qui déterminent la susceptibilité aux infections urinaires.

Génération d’un modèle d’infection des voies urinaires : une technique pour administrer des bactéries uropathogènes chez la souris afin de développer un modèle d’infection des voies urinaires

Cette vidéo démontre l’établissement d’une infection uropathogène à Escherichia coli dans une vessie de souris femelle par instillation d’un cathéter transurétral. Les bactéries injectées réussissent à établir une infection des voies urinaires dans la vessie, fournissant une plate-forme précieuse pour l’étude des maladies associées aux soins de santé liées aux voies urinaires.

Cathétérisme transurétral et inoculation bactérienne pour générer un modèle d’infection des voies urinaires chez des souris mâles

Etablissement d’un modèle d’infection urinaire chez des souris femelles

La capacité à modéliser les infections des voies urinaires (IVU) est cruciale pour pouvoir comprendre la pathogenèse bactérienne et favoriser le développement de nouvelles thérapies. L’objectif de ce travail est de démontrer des modèles murins d’infections urinaires expérimentales et d’infections urinaires associées à un cathéter qui récapitulent et prédisent les résultats observés chez l’homme.

Création et caractérisation de l&#39;UTI et Cauti dans un modèle de souris

Le modèle établi de cathétérisme transuréthrale de la souris permet l’étude des pathologies de la vessie, y compris les infections urinaires, mais ne peut être effectué chez les femelles. Un nouveau modèle de mâle instillation transurétrale, présenté ici, permettra des recherches dans une région marquée par fortes différences cliniques et épidémiologiques entre les sexes.

Infection des voies urinaires chez un modèle Animal petit : cathétérisme transuréthrale de souris mâles et femelles

Nous décrivons une nouvelle méthode pour la livraison de plasmides d’ADN dans les cellules urothéliales de souris la vessie in vivo par cathétérisme de l’urètre et électroporation. Il offre un moyen rapide et pratique pour générer des modèles autochtones murins de maladies de la vessie.

Nouvelle méthode de livraison ADN plasmidique aux souris vessie urothélium par électroporation

Nous décrivons l'utilisation de l'ultrason à haute fréquence avec la formation image de contraste comme méthode pour mesurer le volume de réservoir souple, l'épaisseur de mur de réservoir souple, la vitesse d'urine, le volume vide, la durée de vide, et le diamètre urétral. Cette stratégie peut être employée pour évaluer le dysfonctionnement d'annulation et l'efficacité de traitement dans divers modèles de souris du dysfonctionnement inférieur d'appareil urinaire (LUTD).

Ultrasonographie de l'appareil urinaire masculin adulte pour l'essai fonctionnel urinaire

Ce manuscrit décrit l’administration intravésicale de bactéries uropathogènes avec un opéron lux pour induire une infection des voies urinaires chez la souris et l’analyse longitudinale in vivo ultérieure de la charge bactérienne à l’aide de l’imagerie par bioluminescence.

Suivi longitudinal des infections des voies urinaires et leur traitement chez la souris à l’aide de l’imagerie par bioluminescence

Découvrez la cathétérisation transuréthrale chez la souris mâle adulte pour l'administration intravésicale de substances actives. Cette technique permet d'étudier la pathologie vésicale et d'évaluer l'efficacité des traitements.

Transuréthrale médicamenteuse chez les souris mâles adultes

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