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Mesure de l’Expression des gènes dans les couches d’Aleurone orge bombardé avec un débit plus élevé
Mesure de l’Expression des gènes dans les couches d’Aleurone orge bombardé avec un débit plus élevé
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JoVE Journal Genetics
Measuring Gene Expression in Bombarded Barley Aleurone Layers with Increased Throughput

Mesure de l’Expression des gènes dans les couches d’Aleurone orge bombardé avec un débit plus élevé

Full Text
6,954 Views
10:29 min
March 30, 2018

DOI: 10.3791/56728-v

Grace Uwase1, Taylor P. Enrico1, David S. Chelimo1, Benjamin R. Keyser1, Russell R. Johnson1

1Department of Biology,Colby College

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents an improved protocol for measuring transient gene expression from reporter constructs in barley aleurone cells via particle bombardment. The method enhances throughput by combining automated grain grinding with 96-well plate enzyme assays.

Key Study Components

Area of Science

  • Plant Biology
  • Gene Expression
  • Biotechnology

Background

  • Understanding gene expression is crucial for studying plant responses to hormones.
  • Barley aleurone cells serve as a model for investigating gene regulation.
  • Particle bombardment is a technique used to introduce DNA into plant cells.
  • High-throughput methods are needed to test multiple gene constructs efficiently.

Purpose of Study

  • To develop a protocol for measuring gene expression in barley aleurone cells.
  • To facilitate the study of abscisic acid-regulated genes.
  • To increase the efficiency of testing various gene constructs and conditions.

Methods Used

  • Particle bombardment to introduce reporter constructs into cells.
  • Automated grain grinding for sample preparation.
  • 96-well plate enzyme assays for high-throughput analysis.
  • Use of chloramphenicol to inhibit protein synthesis during the assay.

Main Results

  • The protocol allows for the simultaneous testing of multiple gene constructs.
  • Higher throughput compared to traditional methods was achieved.
  • Successful measurement of gene expression levels in barley aleurone cells.
  • Insights into the regulation of abscisic acid-induced genes were obtained.

Conclusions

  • The improved protocol is effective for studying gene expression in barley aleurone cells.
  • This method can advance research on plant hormone signaling.
  • Future applications may include testing various genetic constructs under different conditions.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this protocol?
The main advantage is its higher throughput, allowing for more gene constructs and conditions to be tested simultaneously.
How are the reporter constructs introduced into the cells?
Reporter constructs are introduced into barley aleurone cells using particle bombardment.
What role does chloramphenicol play in the protocol?
Chloramphenicol is used to inhibit protein synthesis during the gene expression measurement process.
Who demonstrates the protocol in the video?
The protocol is demonstrated by Grace, a student in the lab.
What type of assays are used in this protocol?
The protocol utilizes 96-well plate enzyme assays for high-throughput analysis of gene expression.

Un protocole amélioré est présenté pour la mesure de l’expression transitoire de constructions de journaliste dans les cellules d’aleurone orge après le bombardement par des particules. La combinaison d’automatisé grain de meulage avec essais enzymatiques plaque 96 puits offre un débit élevé pour la procédure.

L’objectif global de cette procédure est de mesurer l’expression génique à partir de constructions rapporteures après les avoir introduites dans des cellules d’aleurone d’orge par bombardement de particules. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés sur l’expression des gènes régulés par les hormones végétales, telles que la façon dont des molécules de signalisation spécifiques agissent pour réguler l’acide abscissique en gènes induits par l’orge. Le principal avantage de cette technique est qu’elle offre un débit plus élevé que les méthodes précédentes, ce qui permet de tester un grand nombre de constructions génétiques et de conditions d’incubation.

La démonstration du protocole sera faite par Grace, une étudiante de mon laboratoire. Tout d’abord, placez quelques grains sans embryons dans le couvercle d’une boîte de Pétri en plastique de 90 millimètres contenant 20 millilitres de solution d’absorption et 20 microlitres de chloramphénicol. À l’aide d’une pince stérile, retirez délicatement le tégument transparent de chaque grain.

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