Name: Cinématique oculaire mesurée In Vitro la stimulation des nerfs crâniens de la tortue (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-02T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 49 s
Description: Découvrez la cinématique des mouvements oculaires chez la tortue Trachemys scripta par stimulation des nerfs crâniens sur préparation isolée in vitro. Cette méthode électrophysiologique permet d'étudier l'évolution de la vision sans entraînement animal.

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Les auteurs remercient Mme Paulette McKenna et Lisa Pezzino dans cette étude pour les services de secrétariat et M. Phil Auerbach pour le support technique. Les auteurs remercient également les Drs Michael Ariel et Michael S. Jones (Saint Louis University School of Medicine) pour nous introduire à la préparation de tête en vitro isolé. Prise en charge de cette collaboration a été financé par le département de biologie (Robert S. Chase Fund), le Comité de la recherche universitaire et du programme de neurosciences au Lafayette College. Enfin, cette oeuvre est dédiée à M. Phil Auerbach, qui est décédé le 28 septembre 2016 ; Il a retiré du service en microscopie électronique à balayage et a reconnu l’utilité de son étape 5 axes pour une utilisation dans le présent protocole. Son amitié et l’ingéniosité nous manquera grandement.

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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Étapes essentielles :
Les étapes critiques au sein de ce protocole sont les suivants : 1) la dissection et le soin apporté à maintenir la viabilité des nerfs sectionnées ; 2) la correspondance des tailles par les électrodes d’aspiration aux nerfs crâniens à répondre de manière cohérente ; et 3) le placement de la tête dans le cardan d’étalonnage adéquat des rotations de le œil.
Dépannage :
La dissection peut être difficile, mais après avoir fin...

Justification de l’utilisation des tortues à oreilles rouges dans des expériences électrophysiologiques :
Tortues à oreilles rouges (Trachemys scripta elegans), sont considérés comme un des pires d’espèces envahissantes du monde1 et peut indiquer qu’un écosystème est en difficulté. Pourquoi les tortues à oreilles rouges sont parvenus est mal comprise, mais elle peut être en partie en raison de leur physiologie tolérante et la possession des tissus nerveux qui peut survivre dans des conditions hypoxiques2,3,4 . Leur utilisation pour l’expérimentation ne menace pas leurs numéros et avec des efforts minimes, préparations électrophysiologiques peuvent demeurer viables sur longues durées, tant que 18 heures5,6. L’avantage est semblable à l’avantage d’utiliser des animaux invertébrés tels que les écrevisses7, qui ont également la capacité de résister à faibles niveaux d’oxygène8.
Techniques de mesure des mouvements oculaires :
Approches pour mesurer les mouvements des yeux chez les animaux aux yeux frontal à l’aide de primates non humains ont été bien développé9. Le œil tourne en orbite autour de trois axes : horizontal, vertical et de torsion. La méthode de bobine magnétique de recherche est généralement considérée comme la plus fiable pour la mesure des rotations, mais est envahissante, exigeant des petites bobines pour être inséré dans les scleras des animaux10,11. Systèmes vidéo peuvent également mesurer des rotations et ont l’avantage d’être non invasive. Le développement de meilleures caméras ainsi que de traitement d’image innovants ont amélioré leurs fonctionnalités rendant les systèmes axés sur la vidéo une alternative intéressante à envisager le12,13,14.
Les techniques développées pour mesurer les mouvements des yeux en nonmammals ont été beaucoup moins importants. Mesures sont soit basse résolution ou décrivent quelques-unes des rotations15,16,17,18. Le manque de développement peut être partiellement attribué à la difficulté de nonmammals de formation pour suivre des cibles visuelles. Bien que les mouvements oculaires ont été bien documentés dans les oreilles rouges tortues19,20,21,22,23,24,25 ,26,27,28,29,30, en raison de la contestation chez les animaux de la formation de suivre les objectifs, la cinématique précise de leurs mouvements oculaires est mal compris.
Tortues à oreilles rouges sont généralement considérés comme vertébrés aux yeux latéraux, mais parce qu’ils peuvent rentrer complètement leurs têtes dans leur coquille31, occlusion significative des champs visual latéraux de la carapace produit32. Le résultat est que leur ligne de mire visuelle est forcé vers l’avant, ce qui les rend se comportent plus comme des mammifères aux yeux frontal. Par conséquent, leur utilisation comme un modèle pour l’élaboration d’approches pour mesurer les mouvements des yeux offre également un point de vue évolutif unique.
Le protocole décrit dans cet ouvrage utilise une préparation in vitro isolés tête pour identifier la cinématique des mouvements oculaires dans les tortues à oreilles rouges. Cerveau est disséqués de crânes laissant les nerfs crâniens intact. Chefs sont placées dans un cardan pour calibrer les mouvements oculaires et évoquent des réponses par stimulation électrique des nerfs crâniens innervant les muscles oculaires. Des rotations par les yeux, les mesures sont faites par un système vidéo, en utilisant des algorithmes logiciels, qui trace la pupille sombre et les marquages de l’iris. L’établissement offre la possibilité de mesurer la cinématique des deux extra-oculaires (c'est-à-direles rotations horizontales, verticales et torsion)32 et intraoculaires (c.-à-d., variations de la pupille)33 mouvements.
Système de modèle pour l’analyse des voies nerveuses efférentes :
Plus généralement, l’approche offre la possibilité d’étudier les signaux neuronaux efférents comment générer des mouvements oculaires lorsque les muscles commencent leurs États détendue et en l’absence d’information sensorielle intégré traitée par le cerveau32, les enquêteurs 33. Par conséquent, la cinématique de le œil peut être examinée dans un système de modèle dans lequel elles sont traitées uniquement par la voie neuronale efférente, laissant le cerveau et synapsing sur les muscles.

<table><tbody><tr><td>Tortues à oreilles rouges</td><td>Kons Scientific</td><td>Trachemys scripta elegans</td><td>Grande taille (longueur de la carapace 15-20 cm)</td></tr><tr><td>Chlorure de sodium</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>Chlorure de potassium</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>Choure de magnésium</td><td>Sigma-Aldrich Co., LLC.</td><td>M7304</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonate de sodium</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>Dextrose</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>C5767</td><td></td></tr><tr><td>Acide chlorhydrique concentré</td><td>Sigma-Aldrich Co., LLC.</td><td>H7020</td><td></td></tr><tr><td>Chlorure de calcium</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>C7902</td><td></td></tr><tr><td>pH-mètre</td><td>Oakton</td><td>pH 6+</td><td></td></tr><tr><td>Électrode de stimulation par aspiration</td><td>A-M Systems</td><td>573000</td><td>Électrode d’aspiration bipolaire. Notez que 573000 a été remplacé par 573050.</td></tr><tr><td>Verre capillaire</td><td>A-M systems</td><td>626000</td><td>Verre capillaire borosilicaté à barillet unique sans microfilament, longueur 10 cm, diamètre extérieur 1,0 mm, diamètre intérieur 0,50 mm</td></tr><tr><td>Électrode de stimulation par aspiration alternative</td><td>A-M Systems</td><td>573050</td><td>Électrode d’aspiration bipolaire. Nécessite un verre capillaire de plus grand diamètre : 627000, diamètre extérieur 1,2 mm, diamètre intérieur 0,68 mm</td></tr><tr><td>Stéréoscope</td><td>Lieca</td><td>GZ7</td><td>Plage de grossissement, 10x &ndash ; 70x</td></tr><tr><td>Source lumineuse à fibre optique</td><td>Amscope</td><td>HL250-A</td><td>150W Microscope à fibre optique illuminateur caisson lumineux</td></tr><tr><td>Rongeurs</td><td>Carolina Biological Supply Company</td><td>625654</td><td>en acier inoxydable, ressort droit, 5,25"</td></tr><tr><td>Sonde de dissection émoussée</td><td>Carolina Biological Supply Company</td><td>627405</td><td>sonde du centre commercial Huber, sonde à double extrémité et chercheur,</td></tr> <tr>ciseaux de <td>microscission</td> 6 » <td>Carolina Biological Supply Company</td><td>623555</td><td>ciseaux de microdissection Iris, acier inoxydable, lames de 0,5 », pince fine de 4,75 » de long</td></tr><tr><td></td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>F6521</td><td>Pince de bijoutier, dumont n° 5, alliage d’inox, 4,25 "</td></tr><tr><td>Pince incurvée</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>Z168696</td><td>Pointe moyenne, pince incurvée, acier inoxydable,</td></tr> <tr><td>manche de scalpel</td> 4" <td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S2896</td><td>Manches de scalpel, n° 3, acier inoxydable</td></tr><tr><td>Lame de scalpel</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S2771</td><td>Lames de scalpel, n° 11, acier</td></tr><tr><td>Guillotine</td><td>Harvard Apparatus</td><td>73-1918</td><td>Guillotine Kleine type 7575</td></tr><tr><td>Spatula</td><td>Sigma</td><td>Z648299</td><td>Micro cuillère et spatule set de pesée. Utiliser une petite spatule : 5,9" long x 0,07 po Diamètre de la poignée avec extrémité carrée : 0,17" x 1,3 po Long, autre extrémité ronde : 0,17 po x 1,27 po </td></tr><tr><td>Long Hook</td><td>Autozone</td><td>98069</td><td>SureBilt hook and pick set. Utilisez le broyeur pour émousser les pointes pointues de l’hameçon afin d’éviter de blesser la bouche des animaux.</td></tr><tr><td>95/5 % O2/CO2</td><td>Airgas, Inc.</td><td>X02OX95C2003102</td><td>5 % de dioxyde de carbone équilibre oxygène certifié mélange gazeux standard, bouteille de taille 200, CGA-296</td></tr><tr><td>Régulateur</td><td>Airgas, Inc.</td><td>Y11244D296-AG</td><td>Régulateur de cylindre analytique mono-étagé en laiton 0-100 psi CGA-296 avec sortie d’aiguille. Utilisez une valve de tuyau d’air réglable en laiton pour passer de 3/8 », de diamètre intérieur, un tube d’air en vinyle connecté au régulateur à un diamètre intérieur de 3/16 », un raccord d’air allant à une pipette en pierre à air ou en verre pasteur</td></tr>.<tr><td>Valve de tuyau d’air réglable</td><td>Doctors Foster and Smith</td><td>CD-12061</td><td>Valve en laiton</td></tr><tr><td>Table rigide</td><td>Inconnu</td><td>Inconnu Porte</td><td>autoclave posée sur une table solide. Neuf balles de tennis de 5 po de diamètre isolent les vibrations de la surface supérieure de la table.</td></tr><tr><td>Balle de tennis 5"</td><td>Petco Animal Supplies, Inc.</td><td>712868</td><td>balle de tennis Petco Jumbo Pet : les balles sont découpées et maintenues dans un cadre intégré sur la partie inférieure de la porte de l’autoclave.</td></tr><tr><td>Table alternative d’isolation des vibrations</td><td>Newport Corporation</td><td>INT1-36-6-N</td><td>Système rigide de contrôle des vibrations, intégrité 1 : Dimensions de surface, 3' x 6'Gimbal</td></tr> <tr><td></td><td>ISI, International Scientific Instruments, Inc.</td><td>Platine de SUPER III-A Scanning EM</td><td>Platine eucentrique à 5 axes : mouvements linéaires X, Y et Z, &plusmn ; Précision de 20 mm, 0,1 mm ; Rotations, verticales, &plusmn ; 10&deg ;, et horizontal, &plusmn ; 12,5 ° ° ° , avec 1,25 ° ° précision. Remarque : de l’instrument de mise hors service.</td></tr><tr><td>Mandrin pour cardan</td><td>Inconnu</td><td>Le</td><td>mandrin d’un vieux microtome de fabrication inconnue a été usiné pour s’adapter à l’arbre du porte-échantillon de l’étage de balayage EM</td></tr><tr><td>cardan alternatif</td><td>ThorLabs, Inc.</td><td>GN2/M avec MBT602/M</td><td>Goniomètre à deux axes (GN2/M) monté sur une platine à 3 axes avec ajusteurs à vis moletées (MBT602/M) : concevoir un mandrin pour maintenir la tête de tortue avec l’œil à 12,7 mm au-dessus de la surface supérieure du goniomètre (distance au point de rotation)</td></tr><tr><td>Système de suivi oculaire basé sur la vidéo</td><td>Arrington Research, Inc.</td><td>ViewPoint EyeTracker, PC-60</td><td>Méthode de suivi : Vidéo infrarouge par pupille sombre ; Appareil photo noir et blanc (article BC02) : 30 Hz, 640 x 480 ; Configuration requise : Windows 2000, XP, 7, 8, 8.1, 10 ; Portée visuelle : Horizontale +/- 44&deg ;; vertical +/- 20&deg ;; Précision ~0.5&deg ;; Résolution spatiale ~0.15&deg ;; Résolution de la taille de la pupille ~0,03 mm ; Données oculaires : X, Y, position du regard, hauteur et largeur de la pupille, torsion, temps delta, temps total et régions d’intérêt (ROI) ; Communication en temps réel (article 0022) : sortie analogique à 4 canaux avec huit canaux d’entrée TTL pour marquer les codes dans le fichier</td></tr><tr><td>de données Base magnétique multiposition</td><td>Harbor Freight Tools</td><td>Pittsburg, article #5645</td><td>Le support magnétique atteint jusqu’à 12" et produit 45 lb de traction magnétique. Permet de positionner la caméra. Usinez des trous de vissez à l’extrémité de la tige pour monter les caméras.</td></tr><tr><td>Micromanipulateur</td><td>Kopf</td><td>900</td><td>Manipulation 5 axes pour le montage de l’électrode d’aspiration : X, Y, Z course linéaire, 2 axes de rotation Lunette de</td></tr><tr><td>dissection sur rampe</td><td>Lieca</td><td>GZ6</td><td>Plage de grossissement, 6,7x &ndash ; 40x</td></tr><tr><td>Stimulateur nerveux/musculaire</td><td>Astro-Med Grass Telefactor</td><td>Grass S88</td><td>Stimulateur de tension à double impulsion : deux canaux de sortie qui peuvent être exploités indépendamment ou synchronisés pour générer des impulsions à tension constante non isolées (10 mv à 150 V). Les impulsions peuvent être uniques (10 &mu ; s à 10 sec), répétitifs (0,01 Hz à 1 KHz) et trains (1 ms à 10 s) et synchronisés avec les entrées et sorties TTL. Envoyez des sorties TTL via les canaux de sortie d’un connecteur DB25 vers les canaux d’entrée TTL du ViewPoint EyeTracker. Remarque : Astro-Med Grass Telefactor n’est plus en affaires.</td></tr><tr><td>Dispositif d’isolation de courant</td><td>Astro-Med Grass Telefactor</td><td>PSIU6</td><td>Unité d’isolation de stimulus de courant : permet de fournir en toute sécurité des courants constants par le S88 à la préparation. Le PSIU6 se connecte par un câble BNC à l’un des canaux de sortie du S88. Les commutateurs multiplicateurs sur le PSIU6 permettent au S88 de générer un large éventail d’amplitudes de courant allant de 0,1 à micro ; A à 15 mA.</td></tr><tr><td>Stimulateur nerf/musculaire alternatif avec isolation</td><td>A-M Systems</td><td>2100</td><td>Stimulateur d’impulsions isolé : L’unité dispose d’un isolateur intégré pour produire des courants constants.</td></tr></tbody></table>

cinématique oculaire mesurée in vitro la stimulation des nerfs crâniens de la tortue

Ocular Kinematics Measured by In Vitro Stimulation of the Cranial Nerves in the Turtle

Après que les animaux est euthanasiés, leurs tissus commencent à mourir. Tortues d’offrir un avantage en raison d’une plus longue durée de survie de leurs tissus, surtout comparé aux vertébrés à sang chaud. Pour cette raison, des expériences in vitro chez les tortues peuvent être effectuées pour des périodes prolongées de temps pour étudier les signaux neurones et le contrôle de leurs actions de la cible. En utilisant une préparation de tête isolée, nous avons mesuré la cinématique des mouvements oculaires chez les tortues, et leur modulation par des signaux électriques portés par les nerfs crâniens. Après que le cerveau a été supprimé sur le crâne, laissant les nerfs crâniens intact, la tête disséquée a été placée dans un cardan pour calibrer les mouvements des yeux. Électrodes de verre étaient attachés aux nerfs crâniens (oculomoteur, trochléen et abducens) et stimulés par des courants d’évoquer les mouvements des yeux. Nous avons suivi les mouvements des yeux avec une vidéo infrarouge suivi système et quantifiées rotations des yeux. Les impulsions de courant avec une gamme des amplitudes, des fréquences, et durées de train ont été utilisées pour observer les effets sur les réponses. Parce que la préparation est séparée par le cerveau, la voie efférente va cibles musculaires peut être examinée isolément pour étudier la signalisation neuronale en l’absence d’informations sensorielles centralement traitées.

La figure 1 illustre les alambics d’images tirées d’une vidéo décrivant la dissection. Images fournissent des endroits typiquement des nerfs avant la Coupe du cerveau.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56864/56864fig1.jpg"> Figure 1 : Stills d’images capturées à partir de la vidéo de la dissection pour montrer les emplacements du nerf optique (nII), nerf oculomote...

Ce protocole décrit comment utiliser une in vitro isolé tortue préparation tête pour mesurer la cinématique des mouvements de leurs yeux. Après l’ablation du cerveau de la boîte crânienne, nerfs crâniens peut être stimulées par des courants de quantifier les rotations de le œil et les changements dans la taille de la pupille.

Cinématique oculaire mesurée In Vitro la stimulation des nerfs crâniens de la tortue

After animals are euthanized, their tissues begin to die. Turtles offer an advantage because of a longer survival time of their tissues, especially when ...

L’objectif global de ce protocole électrophysiologique est de permettre de mesurer la cinématique des mouvements oculaires de la tortue à oreilles rouges à l’aide d’une préparation de tête isolée in vitro. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine oculo-moteur, telles que l’évolution de la vision chez les tortues. Le principal avantage de cette technique est qu’elle ne nécessite pas d’entraîner les animaux à suivre les cibles et utilise un cardan pour calibrer leurs mouvements oculaires.La démonstration de cette technique est assurée par Steven Nesbit, un étudiant de premier cycle dans mon laboratoire. Commencez par la tête de tortue dans un plat de dissection. Ayez suffisamment de solution de baguage de tortue à portée de main pour irriguer les tissus.Maintenez le tissu à quatre degrés Celsius en plaçant de la glace autour de l’extérieur du plat. Placez une sonde de dissection émoussée dans la bouche pour faciliter la manipulation de la tête. Ensuite, tout en travaillant sous un microscope de dissection, coupez l’articulation reliant l’os dentaire au crâne avec le scalpel.Ensuite, utilisez des rongeurs pour éloigner la mâchoire inférieure du crâne. E

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Dans cette vidéo, nous effectuons l'enregistrement électrorétinogramme, l'enregistrement du nerf optique, et l'enregistrement intrarétinienne avec le crabe fer à cheval,...

Utilisation de la limule, Limulus Polyphemus, En recherche sur la vision

Contrôle neural et les processus cognitifs peuvent être étudiés par des mouvements oculaires. Le logiciel Visualeyes permet à un opérateur de programmer stimuli sur deux écrans d'ordinateurs utilisant indépendamment un langage simple, des scripts personnalisés. Le système peut stimuler les mouvements oculaires (tandem saccades et la poursuite en douceur) ou mouvements oculaires opposées (vergence) ou ne importe quelle combinaison.

Visualeyes: un système logiciel modulaire pour l&#39;expérimentation oculomoteurs

Vidéo-oculographie est une méthode très quantitative pour étudier les performances du moteur oculaire ainsi que l'apprentissage moteur. Ici, nous décrivons la façon de mesurer la vidéo-oculographie chez la souris. En appliquant cette technique sur la normale, pharmacologiquement traitées ou des souris génétiquement modifiées est un puissant outil de recherche pour explorer la physiologie sous-jacente des comportements moteurs.

Vidéo-oculographie chez la souris

La suppression des yeux, aussi appelé l'énucléation, fournit une stratégie utile pour étudier les aspects de visuel, multi-modal, et la plasticité du développement le long du système visuel des mammifères, car il induit irréversible partielle (monoculaire) ou complète (binoculaire) la perte de vision. Nous décrivons ici une approche hautement reproductible et simple à effectuer dans l'énucléation in vivo.

Une méthode hautement reproductible et facile à Effectuer In Vivo Oculaire énucléation chez la souris après ouverture des yeux

Un protocole détaillé pour l’évaluation des afficheurs structurels et visuelles chez les rongeurs par réaction d’optocinétique et de tomographie par cohérence optique est présenté. Les résultats fournissent des indications précieuses pour la recherche ophtalmologique ainsi que neurologique.

Utilisant la tomographie par cohérence optique et réponse optocinétique comme lectures structurale et fonctionnelle de système visuel chez les souris et les Rats

Un présagéex-invivo permet d'imaginer l'excroissance du nerf oculomoteur en temps réel. Les tranches sont générées par l'intégration d'embryons E10.5 IslMN:GFP dans l'agarose, en coupant sur un vibratome et en grandissant dans un incubateur de toit de scène. Le rôle des voies de guidage d'axone est évalué en ajoutant des inhibiteurs aux médias de culture.

Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth Ex Vivo

VisualEyes2020 (VE2020) est un langage de script personnalisé qui présente, enregistre et synchronise les stimuli visuels des mouvements oculaires. VE2020 fournit des stimuli pour les mouvements oculaires conjugués (saccades et poursuite en douceur), les mouvements oculaires disconjugués (vergence), l’accommodation et les combinaisons de chacun. Deux programmes d’analyse unifient le traitement des données des systèmes de suivi oculaire et d’enregistrement des hébergements.

Quantification des réponses oculomotrices et de l’accommodation à l’aide de boîtes à outils d’instrumentation et d’analyse

Nous décrivons ici un protocole standard pour quantifier le réflexe optocinétique. Il combine la stimulation virtuelle du tambour et la vidéo-oculographie, et permet ainsi une évaluation précise de la sélectivité caractéristique du comportement et de sa plasticité adaptative.

Quantification de la sélectivité des caractéristiques visuelles du réflexe optocinétique chez la souris

Nous décrivons ici PyOKR, une méthode d’analyse quantitative semi-automatisée qui mesure directement les mouvements oculaires résultant des réponses visuelles au mouvement d’une image bidimensionnelle. Une interface utilisateur et un algorithme d’analyse basés sur Python permettent un débit plus élevé et des mesures quantitatives plus précises des paramètres de suivi oculaire que les méthodes précédentes.

PyOKR : une méthode semi-automatisée pour quantifier la capacité de suivi du réflexe optocinétique

La méthodologie a exploré les contributions visuelles et vestibulaires à la stabilisation du regard pendant les rotations optocinétiques et du corps entier. Les stimulations ont été réalisées par le biais d’essais visuels, vestibulaires et visuo-vestibulaires. Le gain de mouvement oculaire en torsion et les fréquences du nystagmus ont servi d’indicateurs pour le relais sous-cortical des informations de mouvement spécifiques sensorielles vers la réponse réflexe du tronc cérébral pour chaque...

Utilisation de l’oculométrie pour évaluer l’importance relative de l’entrée visuelle et vestibulaire dans le traitement du mouvement sous-cortical dans le plan de roulis

Découvrez la cinématique des mouvements oculaires chez la tortue Trachemys scripta par stimulation des nerfs crâniens sur préparation isolée in vitro. Cette méthode électrophysiologique permet d'étudier l'évolution de la vision sans entraînement animal.

Cinématique oculaire mesurée In Vitro la stimulation des nerfs crâniens de la tortue

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