Name: Évaluation du taux de Lactate sanguin et d’insuline plasmatique au cours de l’exercice de haute intensité par cathétérisme de la veine antécubitale (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-18T12:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 28 s
Description: Découvrez comment mesurer le lactate sanguin et l'insuline plasmatique pendant l'exercice de haute intensité par cathétérisme de la veine antécubitale. Cette méthode permet le suivi en temps réel des variations hormonales et métaboliques.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Les auteurs aimerait Dr P. Karagiannis pour lire le journal et le professeur T. Hoyo pour son soutien technique.

Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvés par le Comité local d’éthique (Comité éthique de l’Université Doshisha : 15033) et étaient en stricte conformité avec les normes fixées par la déclaration d’Helsinki. Le consentement éclairé a été obtenu de tous les participants. Participants étaient de sexe masculin "loisir" (âge, 20,1 ± 1,2 ans ; poids, 69.7 ± 6,2 kg ; hauteur, 176,1 ± 5,8 cm ; corps gras 13,6 ± 1,5 % et VO2max, 52,6 ± 6,6 mL/min1/kg1).
1. mise en place du protocole exercice
Remarque : La présente étude se composait de l’évaluation du sang hormonal et dynamique des métabolites par prélèvement de sang de la veine antécubitale pendant un protocole HIIE.
<ol><li>Demander l’objet pour effectuer une chaleureuse place avec 5 min de vélo à l’ergomètre à faible intensité. Après l’échauffement, laisser le sujet reposer pendant 5 min.</li>
	<li>Demander l’objet pour effectuer la HIIE suivant dans la bicyclette ergométrique à jambe : trois périodes d’exercice de haute intensité 30 s, séparés par 4 min de repos (Figure 1). Remarque : Les 30 épisodes de s doivent être réglées avec une intensité égale à 90 % la moyenne de la puissance d’un test de Wingate auparavant pratiquées. Voir ailleurs8 pour une description complète de l’épreuve de Wingate.</li>
	<li>Pour calculer la charge de travail pour les 30 épisodes de s, utiliser les équations suivantes : Travail = Force x Distance (équation 1) Force = masse x accélération (équation 2) Travail = (masse x accélération) x Distance (équation 3) Remarque : Dans ce modèle, la Messe est à la charge de travail (kg), et l’accélération est 9,81 m/s2. La distance est le diamètre de la roue (1,622 m). Parce que la roue tourne 3.7 rotation /peal temporisée, la distance par tour de pédale est 3,7 x 1.662. En outre, parce que le pédalage est 90 tr/min1, nous devons multiplier une distance pédale par 90. Travail = charge de travail x 9,81 x 3,7 x 1,622 x 90 (équation 4) Charge de travail = travail / (9,81 x 3,7 x 1,622 x 90) (équation 5)</li>
</ol>2. cathétérisme
NOTE : Tubes et Vacutainer devrait être étiquetés à l’avance pour ne pas perdre de temps.
<ol><li>Enroulez un garrot au bras sélectionné pour le cathétérisme. Pour ce faire, placez une bande élastique à l’arrière de la branche choisie. La bande d’élongation, faire une boucle avec la bande autour du bras et nouer l’élastique.</li>
	<li>Sélectionnez la veine antécubitale visible et stériliser la peau avec l’éthanol ou alcool.</li>
	<li>Insérez l’extrémité de la canule stérile dans la veine à un angle d’environ 15° avec la peau. Remarque : La canule doit être insérée de proximale à distale direction. Si canulation est réussie, on devrait observer une backflush de sang.</li>
	<li>Fixez la canule avec la main et retirer l’aiguille doucement. Remarque : Pour maintenir l’angle de l’aiguille au cours de l’exercice, tissus de coton peuvent être utilisés entre la peau et l’aiguille. Fixez cette structure avec un ruban.</li>
	<li>Connecter un vacutainer avec l’héparine et aspirer pour le premier échantillon de sang (environ 2,5 mL). Immédiatement après, réfrigérer l’échantillon de sang en le plaçant dans une boîte de glace pendant pas plus de 40 minutes. Demander un assistant de l’aide, si les gaz sanguins vont être analysés.</li>
	<li>Raccorder un tube sur le cathéter et injecter l’héparine toute la longueur du tube pour éviter la coagulation du sang. Fermer le papillon.</li>
	<li>À l’aide de ruban adhésif, stabiliser le cathéter. Veiller à ce qu’à ce stade, la mobilité du bras du sujet n’interfère pas avec le prélèvement de sang. Pour confirmer cette condition, n’oubliez pas que la position de l’aiguille n’est pas affectée par n’importe quel mouvement.</li>
</ol>3. prélèvements de sang
<ol><li>Supprimer l’héparine en utilisant un vacutainer dans le cathéter, il y a que du sang. Lorsqu’on observe de flashback de sang, recueillir l’échantillon comme indiqué au point 2.5.</li>
	<li>Après le prélèvement des échantillons, injecter l’héparine à nouveau dans le tube du cathéter pour éviter la coagulation du sang. Après cette action, étape 2.5 peut être répété avec plusieurs collection d’échantillons.</li>
	<li>Après que le dernier échantillon est recueilli, retirer le tube de canulation soigneusement et nettoyer la peau avec de l’alcool. Pour éviter tout saignement possible, demander l’objet pour garder le coton stérilisé à l’endroit où le cathétérisme a été effectué.</li>
	<li>Après que le sang est recueilli dans les tubes vacutainer, soigneusement passer environ 1,5 mL de sang dans un tube de 1,5 mL et garder les tubes sur la glace.</li>
	<li>Mesure de lactate sanguin du sang restant à l’aide d’un détecteur de lactate. Le même jour, obtenir le plasma, les échantillons de sang (environ 1,5 mL de sang).</li>
	<li>Pour la séparation du plasma, centrifuger les échantillons de sang pendant 5 min à 5000 x g à 4 oC et séparer le surnageant dans un nouveau tube de 1,5 mL.</li>
	<li>Répétez la centrifugation une fois de plus pour purifier le plasma.</li>
	<li>Après la séparation du plasma, stocker les échantillons à-80 oC jusqu'à l’analyse de l’hormone.</li>
	<li>Mesurer l’insuline plasmatique à l’aide d’un kit ELISA que par le fabricant protocole (voir Table des matières).</li>
</ol>

<ol><li>Wahl, P., Mathes, S., Köhler, K., Achtzehn, S., Bloch, W., Mester, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+active+vs.+passive+recovery+during+Wingate-based+training+on+the+acute+hormonal%2C+metabolic+and+psychological+response%5BTitle%5D)+AND+%22Growth+Horm+IGF+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of active vs. passive recovery during Wingate-based training on the acute hormonal, metabolic and psychological response.</a> Growth Horm IGF Res. 23 (6), 201-208 (2013).</li>
<li>Wahl, P., Mathes, S., Achtzehn, S., Bloch, W., Mester, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Active+vs.+passive+recovery+during+high-intensity+training+influences+hormonal+response%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Sports+Med%22%5BJournal%5D)">Active vs. passive recovery during high-intensity training influences hormonal response.</a> Int J Sports Med. 35 (7), 583-589 (2014).</li>
<li>Nalbandian, H. M., Radak, Z., Takeda, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+active+recovery+during+interval+training+on+plasma+catecholamines+and+insulin%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sports+Med+Phys+Fitness%22%5BJournal%5D)">Effects of active recovery during interval training on plasma catecholamines and insulin.</a> J Sports Med Phys Fitness. , (2017).</li>
<li>Stolen, T., Chamari, K., Castagna, C., Wislff, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiology+of+Soccer%5BTitle%5D)+AND+%22Sport+Med%22%5BJournal%5D)">Physiology of Soccer.</a> Sport Med. 35 (6), 501-536 (2005).</li>
<li>Bangsbo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+physiology+of+soccer--with+special+reference+to+intense+intermittent+exercise%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol+Scand+Suppl%22%5BJournal%5D)">The physiology of soccer--with special reference to intense intermittent exercise.</a> Acta Physiol Scand Suppl. 619, 1-155 (1994).</li>
<li>MacInnis, M. J., Gibala, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiological+adaptations+to+interval+training+and+the+role+of+exercise+intensity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Physiological adaptations to interval training and the role of exercise intensity.</a> J Physiol. 595 (9), 2915-2930 (2017).</li>
<li>Emberts, T., Porcari, J., Dobers-Tein, S., Steffen, J., Foster, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+intensity+and+energy+expenditure+of+a+tabata+workout%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sports+Sci+Med%22%5BJournal%5D)">Exercise intensity and energy expenditure of a tabata workout.</a> J Sports Sci Med. 12 (3), 612-613 (2013).</li>
<li>Smith, J. C., Hill, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+energy+systems+during+a+Wingate+power+test%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Sports+Med%22%5BJournal%5D)">Contribution of energy systems during a Wingate power test.</a> Br J Sports Med. 25 (4), 196-199 (1991).</li>
<li>Dotan, R., Bar-Or, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Load+optimization+for+the+Wingate+Anaerobic+Test%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Appl+Physiol+Occup+Physiol%22%5BJournal%5D)">Load optimization for the Wingate Anaerobic Test.</a> Eur J Appl Physiol Occup Physiol. 51 (3), 409-417 (1983).</li>
<li>Carrasco-Benso, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+adipose+tissue+expresses+intrinsic+circadian+rhythm+in+insulin+sensitivity%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Human adipose tissue expresses intrinsic circadian rhythm in insulin sensitivity.</a> FASEB J. 30 (9), 3117-3123 (2016).</li>
<li>Hatfield, D. L., Nicoll, J. X., Kraemer, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Circadian+Rhythm+on+Power%2C+Force%2C+and+Hormonal+Response+in+Young+Men%5BTitle%5D)+AND+%22J+Strength+Cond+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of Circadian Rhythm on Power, Force, and Hormonal Response in Young Men.</a> J Strength Cond Res. 30 (3), 725-732 (2016).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Dans cette étude, la veine antécubitale était cathétérisée et échantillons de sang ont été prélevés avec succès lors d’un exercice intervalle élevé. Comme exemple de l’utilisation de cette méthodologie, des échantillons de sang ont été analysés pour taux de lactate sanguin et (après la séparation du plasma) pour insuline plasmatique. Le principal avantage de cette méthode est qu’elle permet la collecte d’échantillons de sang en bref des périodes de temps. Dans le même temps, il a quelques limitations. Par exemple, les mo...

La mesure des marqueurs métaboliques et endocriniennes au cours de l’activité physique est pertinent pour comprendre les implications physiologiques des modalités d’exercice différents. Au cours de certaines modalités de l’exercice (p. ex., exercice de haute intensité interval (HIIE)), les métabolites sanguins et les niveaux hormonaux fluctueront dans relativement peu de temps1,2,3.
Beaucoup de sports (c.-à-d., football, basket-ball et rugby) consiste en de courtes périodes d’exercice intense, séparés par un exercice physique intense faible et/ou des périodes passive4,5. HIIE présente des similitudes avec les sports susmentionnés et est donc largement utilisé comme une méthode d’entraînement pour les athlètes,6. En outre, en raison de sa ressemblance avec le sport, HIIE a été utilisé comme modèle pour étudier la physiologie d’exercice7. Prélèvement de sang est essentiel pour mesurer les variables physiologiques, et il est fréquemment utilisé à des fins de recherche et de l’évaluation de la condition physique. Toutefois, les prélèvements sanguins au cours de la HIIE peuvent être techniquement difficile en raison du peu de temps entre les collections de l’échantillon. Comme une solution à ce problème, nous présentons une méthode pour obtenir des échantillons de sang en antécubitale cathétérisme veineux en bref des périodes alors que sujets effectuent HIIE.

<table><tbody><tr><td>Vélo ergomètre</td><td>Monark</td><td>MONARK Ergomedic 874 E Cathéter</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Terumo</td><td>SR-FF2032</td><td></td></tr><tr><td>Vacutainer</td><td>Terumo</td><td>PZ-D03</td><td></td></tr><tr><td>Tube pour cathéter</td><td>Terumo</td><td>SP-PTW30L02</td><td></td></tr><tr><td>Heparine</td><td>Terumo</td><td>PF-10HF10UA</td><td></td></tr><tr><td>Insuline ELISA kit</td><td>Abnova</td><td>ELISA KA0921</td><td></td></tr></tbody></table>

Évaluation du taux de lactate sanguin et d’insuline plasmatique au cours de l’exercice de haute intensité par cathétérisme de la veine antécubitale

Evaluation of Blood Lactate and Plasma Insulin During High-intensity Exercise by Antecubital Vein Catheterization

La mesure des marqueurs métaboliques et endocriniennes au cours de l’activité physique est pertinent pour comprendre les implications physiologiques des modalités d’exercice différents. Au cours de certains exercice modalités (p. ex., exercice de haute intensité interval), métabolites sanguins et les niveaux hormonaux changent en bref des périodes de temps. Dans la présente étude, nous décrivons une méthode pour la section de la veine antécubitale, qui permet la collecte d’échantillons de sang plusieurs au cours de l’exercice. L’insuline et les concentrations de lactate veineux ont été mesurées au cours de l’exercice de haute intensité, par l’application de la méthode décrite. L’exercice consistait en des combats trois 30 s d’exercice de haute intensité séparés par 4 min de récupération. Après la dernière période de récupération, un test de Wingate a été réalisé. Des échantillons de sang de la veine antécubitale ont été obtenus avant et après chaque épisode de s 30 et avant et après le test de Wingate. Ainsi, il a été possible d’évaluer l’insulinémie et variations de lactate sanguin veineux au cours de l’exercice.

Comme résultats représentatifs, nous avons utilisé ce protocole pour mesurer la variation lactate et l’insuline sanguins six sujets pendant un HIIE dans une bicyclette ergométrique. Puissance crête et puissance moyenne pour le test de Wingate étaient 732 ± 120 et 549 ± 84 Watts, respectivement. Puissance moyenne a été utilisé pour calculer la puissance de sortie (494 ± 75 Watts) durant les 30 épisodes de s de la HIIE.
<strong cl...

Nous présentons ici un protocole pour obtenir plusieurs échantillons de sang de la veine antécubitale au cours de l’entraînement par intervalles de haute intensité. Ce protocole peut être utile pour la mesure des métabolites sanguins et marqueurs endocriniennes au cours d’exercice.

Évaluation du taux de Lactate sanguin et d’insuline plasmatique au cours de l’exercice de haute intensité par cathétérisme de la veine antécubitale

The measurement of metabolic and endocrinal markers during physical activity is of relevance to understanding the physiological implications of different ...

L’objectif global de cette expérience est d’obtenir plusieurs échantillons de sang veineux d’un seul sujet pendant un exercice sur ergomètre. Cette mesure peut aider à répondre à des questions clés sur la physiologie poreuse et les variations hormonales et métabolisées au cours de différentes modalités d’exercice. Le principal avantage de cette technique est qu’il est possible d’obtenir plusieurs échantillons de sang, même pendant l’exercice.La démonstration des procédures sera assurée par Rie Oosaki qui collaborera avec notre laboratoire. Pour évaluer la dynamique sanguine, hormonale et métabolite de la veine antecubitale pendant le protocole d’exercice par intervalles de haute intensité, demandez au sujet d’effectuer d’abord un échauffement de cinq minutes sur l’ergomètre à faible intensité. Après un repos de cinq minutes, demandez au sujet d’effectuer trois intervalles d’exercices de haute intensité de 30 secondes à 90 % d’intensité à la puissance moyenne déterminée à partir d’un test Wingate précédemment effectué, séparés par quatre minutes de repos par intervalle d’exercice.Pour le prélèvement d’échantillons de sang, attachez un garrot autour du bras sélectionné pour le cathétérisme et identifiez la veine antécubitale. Stérilisez la peau avec de l’alcool et insérez l’extrémité d’une canule stérilisée dans la veine antécubitale et dans un angle d’environ 15 degrés par rapport à la peau. Si la canulation réussit, un retour de sang doit être observé.Après avoir retiré l’aiguille, fixez la canule et placez un mouchoir en coton sous l’aiguille. Retirez l’héparine avec un tube de prélèvement vide et connectez un nouveau récipient pour le prélèvement sanguin à la canule. Aspirez environ 2,5 ml de sang et fermez le papillon en plaçant immédiatement l’échantillon sur de la glace.Ensuite, injectez de l’héparine sur toute la longueur du tube pour éviter la coagulation de l’échantillon de sang, et demandez au sujet de commencer la prochaine série d’intervalles d’exercice. Une fois le dernier échantillon prélevé, retirez soigneusement le tube de canulation et désinfectez la peau avec plus d’alcool. Pressez doucement un morceau de coton stérile sur le site de prélèvement pour minimiser les saignements et transférez 1,5 ml de sang de chaque échantillon dans des tubes de microcentrifugation individuels de 1,5 ml sur de la glace.Utilisez le détecteur de lactate, mesurez le lactate sanguin de chaque échantillon de sang de 1 ml et centrifugez deux fois les aliquotes de l’échantillon de sang de 1,5 ml. Transférez les surnageants dans de nouveaux tubes de mirocentrifugeuse, et centrifugez à nouveau les échantillons dans des surnageants de transfert dans de nouveaux tubes. Conservez ensuite les échantillons de plasma purifié à moins 80 degrés Celsius jusqu’à l’analyse de l’insuline plasmatique par ELISA.Dans cette expérience représentative, les niveaux d’insuline plasmatique ont diminué dans les six échantillons de sang périphérique des patients au cours de la première et de la troisième période d’exercice par intervalles de haute intensité de 30 secondes, mais ont augmenté pendant le deuxième intervalle des périodes de récupération. Cependant, le lactate plasmatique a diminué pendant les deuxième et troisième périodes d’exercices à haute intensité de 30 secondes et a augmenté pendant les premières périodes d’intervalle et de récupération de 30 secondes. Lors de la tentative de cette procédure, il est important de se rappeler de maintenir les échantillons de sang à une température ne dépassant pas 40 degrés Celsius.Après cette procédure, d’autres méthodes comme l’analyse de Brodgar peuvent être effectuées pour répondre à des questions supplémentaires sur les variations de niveau de pH pendant l’exercice. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon de prélever des échantillons de sang consécutifs dans la veine antecubitale pendant l’exercice d’un vélo ergomètre.

evaluation-blood-lactate-plasma-insulin-during-high-intensity

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

La pince hyperinsulinémique-euglycémique est le «gold standard» pour l'évaluation de l'action d'insuline. L'insuline est perfusée à un taux constant stimulant l'absorption du glucose. La quantité de glucose exogène infusé pour contrer cette baisse est révélatrice de sensibilité à l'insuline. Voici la procédure est effectuée sur une conscience, rat effrénée.

Hyperinsulinémique euglycémique-Clamp chez le rat conscient

La pince hyperinsulinémique-euglycémique, ou pince à l'insuline, est le gold standard pour évaluer action de...

Hyperinsulinémique euglycémique-pinces dans Conscient, Souris illimités

Ce protocole permet chercheurs se sont concentrés sur l'exercice et des sciences du sport afin de déterminer la contribution relative des trois différents systèmes énergétiques de la dépense énergétique totale au cours d'une grande variété d'exercices.

Détermination de la contribution des systèmes d&#39;énergie pendant l&#39;exercice

Vasodilatation induite par l’insuline régule la perfusion musculaire et augmente la microvasculaire surface habitable (recrutement microvasculaire) disponible pour échange soluté entre interstitium de sang et de tissus. La microscopie intravitale combinée et échographie de contraste accentué est présenté Evaluer simultanément l’action de l’insuline à des gros vaisseaux et la microcirculation in vivo.

Combiné la microscopie intravitale et échographie de contraste accentué des membres postérieurs souris pour étudier la vasodilatation induite par l’insuline et la Perfusion du Muscle

Nous présentons un protocole pour tester la puissance aérobie et anaérobie des muscles du haut du corps sur une durée de 3 min chez des personnes valides aussi bien que paraplégiques et tétraplégiques. Le protocole présente des modifications spécifiques dans sa demande d'exercice du haut du corps chez les personnes ayant ou non un handicap.

Protocole expérimental d&#39;un essai d&#39;exercices de manivelle à trois minutes et à tous les bras dans les individus blessés et sans douleur de la moelle épinière

Ici, nous présentons un protocole pour le postconditionnement avec du sang enrichi en lactate, qui est une nouvelle approche pour la cardioprotection. Ce protocole comprend la réperfusion intermittente et les injections coronaires opportunes de la solution de Ringer. Ceci peut être appliqué aux patients d'infarctus d'élévation de ST-segment qui subissent l'intervention coronaire percutanée primaire.

Postconditionnement avec du sang enrichi de lactate pour la cardioprotection dans l'infarctus du myocarde d'élévation de segment ST

Une régulation intacte de l’absorption du glucose musculaire est importante pour maintenir l’homéostasie du glucose dans tout le corps. Ce protocole présente une évaluation de l’absorption de glucose stimulée par l’insuline et la contraction dans les muscles squelettiques matures isolés et incubés lors de la délimitation de l’impact de diverses interventions physiologiques sur le métabolisme du glucose dans tout le corps.

Mesure de l’absorption de glucose stimulée par l’insuline et la contraction dans le muscle squelettique mature isolé et incubé de souris

La production de lactate myocardique (différence artério-veineuse coronaire dans le taux sérique de lactate) lors des tests de provocation des spasmes coronaires est considérée comme un marqueur très sensible qui reflète l’ischémie myocardique induite par l’acétylcholine due à un spasme microvasculaire. Cet article présente les procédures d’évaluation de la production de lactate myocardique pour le diagnostic des spasmes microvasculaires coronariens.

Mesure de la production de lactate myocardique pour le diagnostic des spasmes microvasculaires coronaires

Les déséquilibres de l’état d’hydratation peuvent avoir un effet à court terme sur les déterminants directs et indirects de l’absorption d’oxygène et du pouls, ainsi que sur les facteurs pronostiques de morbidité et de mortalité dans les cardiopathies ischémiques. Ce protocole décrit la technique d’évaluation de l’état d’hydratation par analyse bioélectrique des vecteurs d’impédance et de la réponse cardiopulmonaire lors d’un test d’effort à l’effort.

Évaluation de l’état d’hydratation par analyse des vecteurs d’impédance bioélectrique chez les patients atteints de cardiopathie ischémique soumis à un test d’effort

Cette étude décrit un protocole d’essai contrôlé randomisé visant à évaluer les effets aigus du volume d’exercice de force sur la sensibilité à l’insuline chez les personnes obèses.

Essai contrôlé randomisé pour étudier les effets aigus de l’exercice de force sur la sensibilité à l’insuline chez les adultes obèses

Découvrez comment mesurer le lactate sanguin et l'insuline plasmatique pendant l'exercice de haute intensité par cathétérisme de la veine antécubitale. Cette méthode permet le suivi en temps réel des variations hormonales et métaboliques.

Évaluation du taux de Lactate sanguin et d’insuline plasmatique au cours de l’exercice de haute intensité par cathétérisme de la veine antécubitale (Vidéo) | JoVE Journal

Évaluation du taux de Lactate sanguin et d’insuline plasmatique au cours de l’exercice de haute intensité par cathétérisme de la veine antécubitale

Explorer plus de vidéos