Name: Phase contraste d’imagerie par résonance magnétique dans l’artère carotide commune de Rat (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-05T15:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 2 s
Description: Découvrez l'IRM de contraste de phase pour mesurer le flux sanguin dans l'artère carotide commune du rat. Cette technique non invasive permet d'étudier les altérations hémodynamiques liées aux maladies cardiovasculaires.

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Ce travail a été soutenu par des subventions du ministère de la Science et de technologie, Taïwan, sous le numéro de licence de MOST-105-2314-B-039-044-MY2.

Les soins institutionnels et utilisation comités (IACUC) de l’Université de médecine de Chine a approuvé toutes les procédures.
1. animale préparation et le suivi
<ol><li>Laisser tous les objets magnétiquement sensibles tels que clés, carte de crédit, portefeuilles, etc. en dehors de la salle de scanner avant de commencer la préparation animaux pour IRM.</li>
	<li>Au départ, anesthésier le rat (rat Sprague-Dawley (SD) mâle de 2 mois, 280 à 350 g) dans une boîte d’induction utilisant un mélange de 5 % isoflurane (ISO) et l’oxygène (2 L/min) pendant 3 à 5 min, si nécessaire.</li>
	<li>Lorsque l’animal est couché et n’expositions aucune réponse à une pincée de queue ou de l’orteil, cesser l’administration de l’ISO et transférer l’animal dans la salle d’examen.</li>
	<li>Placez le rat dans le lit de MRI dans une position couchée la tête la première et livrer ISO 2-3 % grâce à un dispositif d’extrémité conique pour le maintien de l’anesthésie.</li>
	<li>Surveiller la respiration en plaçant un capteur respiratoire oreiller sous le torse de l’animal.</li>
	<li>Raccorder le capteur d’un appareil respiratoire et rechercher le taux de respiration entre 40 à 50 battements par minute (bpm).</li>
	<li>Pour l’acquisition de PC-MRI cine-dépendants, placer une électrode de chaque sur la patte avant droite et la postérieur gauche patte, respectivement (Figure 1 a).</li>
	<li>Torsadez les câbles de l’électrocardiographie (ECG).</li>
	<li>Utiliser un support de tête avec barres d’oreilles et d’un bar de morsure pour sécuriser l’animal pour restreindre les mouvements de la tête.</li>
	<li>Utilisez un tampons de gaze ou de système de chauffage à air chaud pour maintenir la température corporelle en l’aimant.</li>
	<li>Veiller à ce que l’onde R est clair sur le Moniteur ECG (Figure 1 b) et placer l’animal dans le scanner. Il n’y a pas besoin de placer la bobine de surface sur le dessus du cou de l’animal, comme les images sont acquises par la bobine de volume.</li>
</ol>2. IRM Acquisition
<ol><li>2 – 3 % ISO permet de maintenir l’anesthésie pendant toute la procédure d’imagerie. Surveiller en permanence les réponses physiologiques et gardez aussi constante que possible.</li>
	<li>Une fois l’animal est placé à l’intérieur du scanner et continue d’être physiologiquement stable, démarre l’IRM. Dans cette étude, utilisez un petit animal de 7 T système IRM avec une force de gradient de 630 mT/m, mais les autres intensités de champ de petits systèmes d’IRM animales peuvent être utilisées.</li>
	<li>Sélectionnez la séquence « Loc » dans le moniteur de la console du scanner MRI et d’acquérir des images de scout le long de chacune des trois orientations à l’aide de n’importe quelle séquence d’acquisition rapide d’images, par exemple, l’écho de spin rapide, pour créer coronale, axiale et sagittale . Le but de ces scout images consiste à déterminer les plans d’imagerie.</li>
	<li>Veiller à ce que le centre de la tête et du cou de l’animal est au centre de l’aimant. Si nécessaire, ajustez la position de l’animal jusqu'à ce que la position correcte est atteinte. Si l’animal est repositionnée, répéter le balayage pour obtenir des images de scout.</li>
	<li>Sélectionnez la séquence « temps de vol (TOF) angiographie » dans le moniteur de la console du scanner MRI et acquérir une angiographie TOF 2D tout d’abord pour vérifier la localisation anatomique précise du CCA. Utilisez les paramètres de numérisation suivants : répétition (TR) le temps / echo temps (TE) = 22/4,87 ms, angle de flip = 90°, champ de vision (FOV) = 40 × 40 mm2, matrice taille = 256 × 256, tranche épaisseur 0,6 mm, avec le nombre d’excitation (NEX) = 1. Remarque : Le nom de la séquence TOF pourrait être vender spécifiques. L’utilisateur peut insérer ces paramètres dans le moniteur de la console.</li>
	<li>Veiller à ce que la bande de saturation est « on » et qu’il est placée sur le dessus pour éviter toute interférence de signaux veineux. Remarque : Pour la bande de saturation, il vient habituellement avec la séquence TOF. Si la bande de saturation n’apparaît pas sur l’écran, veuillez en aviser la personne de service.</li>
	<li>Après avoir localisé le CCA à l’aide de l’angiographie TOF, cibler le plan de l’image de la PC-IRM au centre de la CCA et l’orienter telle que la tranche est perpendiculaire à la direction du flux sanguin (Figure 2 a).</li>
	<li>Veiller à ce que la respiration et gating ECG sont connectés au système de MRI, montrant le signal clair sur l’ordinateur de moniteur (Figure 1 b) et configurer le module de déclenchement à être « on » en « Mode de déclenchement » de l’écran de la console du scanner MRI.</li>
	<li>Confirmer que les réactions physiologiques de l’animal sont stables avant de démarrer le PC-IRM de l’ordinateur de surveillance (Figure 1 b). Vérifiez que les sélections de blocage sont « on » dans l’ordinateur de moniteur et le moniteur de la console du scanner de MRI. Remarque : La physiologie système utilisé dans cette étude de suivi est fournie par le vendeur. Pour les scanners plus animales, les systèmes de surveillance de physiologie similaire sont fourni et vender spécifiques.</li>
	<li>Sélectionnez la séquence de la séquence de PC-MRI dans le moniteur de la console du scanner MRI et effectuer des analyses de PC-MRI fermées en utilisant les paramètres suivants : ms TR/TE=15.55/4.51 (minimum TR et TE), flip angle = 30°, FOV = 40 × 40 mm2, matrice taille = 192 × 192, tranche Epaisseur = 2 mm, vitesse d’encodage (VENC) = 120 cm/s, NEX = 8. VENC unidirectionnel est acquise dans la direction dans le plan. Remarque : Le temps de scan est environ 8,5 min, mais le temps de numérisation réelle peut être légèrement différent chez les animaux en raison de la variation des cycles cardiaques.</li>
	<li>Répétez les étapes 2.6 – 2,9 d’acquisition d’images si la région d’intérêt (ROI) doit être modifiée vers un autre emplacement dans le bilan commun de pays, comme à la bifurcation 4.</li>
	<li>Retirer l’animal du scanner et le retourner à sa cage de récupération lorsque l’analyse est terminée.</li>
	<li>Réchauffer l’animal avec une lampe chauffante pour maintenir la température du corps. Garder les cm de la lampe au moins 15 distance l’animal pour éviter la surchauffe.</li>
	<li>Lorsque l’animal se met en mouvement et présente une réponse à une pincée de queue ou de l’orteil, éteindre la lampe chauffante.</li>
</ol>3. traitement des données
<ol><li>Enregistrez les données IRM dans Digital Imaging and Communications au format médecine (DICOM) ou tout autre vendeur spécifique. Générer des ciné séries avec deux types d’images : une image de grandeur (image de l’anatomie) et une image de phase (Figure 2 b). Remarque : Dans certains scanners, le troisième type d’image, qui pourrait être l’image de phase de grandeur image × ou la complexe-différence (la soustraction complexe entre les deux acquisitions avec différents gradients de vitesse-encoding), est générée. La troisième image dépend du fournisseur.</li>
	<li>Pré-traiter les données d’image. Cachée la phase d’image dans le plan de la vitesse et corriger l' erreur de décalage de la phase 5. Remarque : L’image de phase a une unité arbitraire de Monsieur d’intensité du signal au lieu des valeurs de la vitesse vraie, mais l’intensité du signal Monsieur est linéairement proportionnelle à la vitesse. Le signal maximal de MRI de l’image de phase est généralement affecté comme valeur de VENC, et le signal minimal est assigné la valeur opposée de VENC. Voir le fichier de code supplémentaire 1 pour obtenir un exemple de script Matlab et appuyez sur le bouton de «exécuter».</li>
	<li>Délimiter soigneusement le retour sur investissement en traçant la limite de la DPA. Comme l’artère peut se dilater et construire durant les différentes phases de cardiaques, délimiter des ROIs pour chaque laps de temps. Calculer le flux sanguin en intégrant sur l’artère ROI, c.-à-d., vitesse × section. La circulation du sang a entraîné de chaque artère a été dans les unités de mL/s. Voir la fiche 2 de code supplémentaire pour obtenir un exemple de script Matlab et appuyez sur le bouton de «exécuter».</li>
</ol>

<ol><li>Zakszewski, E., Schmit, B., Kurpad, S., Budde, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diffusion+imaging+in+the+rat+cervical+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Diffusion imaging in the rat cervical spinal cord.</a> J Vis Exp. (98), (2015).</li>
<li>Wise, R. G., Al-Shafei, A. I., Carpenter, T. A., Hall, L. D., Huang, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+measurement+of+blood+and+myocardial+velocity+in+the+rat+heart+by+phase+contrast+MRI+using+sparse+q-space+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Simultaneous measurement of blood and myocardial velocity in the rat heart by phase contrast MRI using sparse q-space sampling.</a> J Magn Reson Imaging. 22 (5), 614-627 (2005).</li>
<li>Skardal, K., Espe, E. K., Zhang, L., Aronsen, J. M., Sjaastad, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Directional+Evaluation+of+Mitral+Flow+in+the+Rat+Heart+by+Phase-Contrast+Cardiovascular+Magnetic+Resonance%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Three-Directional Evaluation of Mitral Flow in the Rat Heart by Phase-Contrast Cardiovascular Magnetic Resonance.</a> PLoS One. 11 (3), e0150536(2016).</li>
<li>Peng, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase-contrast+magnetic+resonance+imaging+for+the+evaluation+of+wall+shear+stress+in+the+common+carotid+artery+of+a+spontaneously+hypertensive+rat+model+at+7T%3A+Location-specific+change%2C+regional+distribution+along+the+vascular+circumference%2C+and+reproducibility+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Phase-contrast magnetic resonance imaging for the evaluation of wall shear stress in the common carotid artery of a spontaneously hypertensive rat model at 7T: Location-specific change, regional distribution along the vascular circumference, and reproducibility analysis.</a> Magn Reson Imaging. 34 (5), 624-631 (2016).</li>
<li>Yu, H. Y., Peng, H. H., Wang, J. L., Wen, C. Y., Tseng, W. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+the+pulse+wave+velocity+of+the+descending+aorta+using+axial+velocity+profiles+from+phase-contrast+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Quantification of the pulse wave velocity of the descending aorta using axial velocity profiles from phase-contrast magnetic resonance imaging.</a> Magn Reson Med. 56 (4), 876-883 (2006).</li>
<li>Peng, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+phase-contrast+MRI+for+the+quantification+of+whole-brain+cerebral+blood+flow%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Optimization of phase-contrast MRI for the quantification of whole-brain cerebral blood flow.</a> J Magn Reson Imaging. 42 (4), 1126-1133 (2015).</li>
<li>Peng, S. L., Shih, C. T., Huang, C. W., Chiu, S. C., Shen, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+analysis+of+blood+flow+and+wall+shear+stress+in+the+common+carotid+artery+of+rat+model+by+phase-contrast+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Optimized analysis of blood flow and wall shear stress in the common carotid artery of rat model by phase-contrast MRI.</a> Sci Rep. 7 (1), 5253(2017).</li>
<li>Bozgeyik, Z., Berilgen, S., Ozdemir, H., Tekatas, A., Ogur, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+effects+of+sildenafil+citrate+%28viagra%29+on+vertebral+artery+blood+flow+in+patients+with+vertebro-basilar+insufficiency%5BTitle%5D)+AND+%22Korean+J+Radiol%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the effects of sildenafil citrate (viagra) on vertebral artery blood flow in patients with vertebro-basilar insufficiency.</a> Korean J Radiol. 9 (6), 477-480 (2008).</li>
<li>Swampillai, J., Rakebrandt, F., Morris, K., Jones, C. J., Fraser, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+effects+of+caffeine+and+tobacco+on+arterial+function+and+wave+travel%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Acute effects of caffeine and tobacco on arterial function and wave travel.</a> Eur J Clin Invest. 36 (12), 844-849 (2006).</li>
<li>Neff, K. W., Horn, P., Schmiedek, P., Duber, C., Dinter, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2D+cine+phase-contrast+MRI+for+volume+flow+evaluation+of+the+brain-supplying+circulation+in+moyamoya+disease%5BTitle%5D)+AND+%22AJR+Am+J+Roentgenol%22%5BJournal%5D)">2D cine phase-contrast MRI for volume flow evaluation of the brain-supplying circulation in moyamoya disease.</a> AJR Am J Roentgenol. 187 (1), W107-W115 (2006).</li>
<li>Stalder, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+2D+and+3D+phase+contrast+MRI%3A+optimized+analysis+of+blood+flow+and+vessel+wall+parameters%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Quantitative 2D and 3D phase contrast MRI: optimized analysis of blood flow and vessel wall parameters.</a> Magn Reson Med. 60 (5), 1218-1231 (2008).</li>
<li>Dall'Armellina, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+method+for+quantification+of+regional+cardiac+function+in+mice+using+phase-contrast+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Improved method for quantification of regional cardiac function in mice using phase-contrast MRI.</a> Magn Reson Med. 67 (2), 541-551 (2012).</li>
<li>Peng, S. L., Ravi, H., Sheng, M., Thomas, B. P., Lu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Searching+for+a+truly+%26%2334%3Biso-metabolic%26%2334%3B+gas+challenge+in+physiological+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cereb+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Searching for a truly &#34;iso-metabolic&#34; gas challenge in physiological MRI.</a> J Cereb Blood Flow Metab. 37 (2), 715-725 (2017).</li>
<li>Liu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+global+cerebral+metabolic+rate+of+oxygen+%28CMRO2%29+in+neonates+using+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22NMR+Biomed%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of global cerebral metabolic rate of oxygen (CMRO2) in neonates using MRI.</a> NMR Biomed. 27 (3), 332-340 (2014).</li>
<li>Xu, F., Ge, Y., Lu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+quantification+of+whole-brain+cerebral+metabolic+rate+of+oxygen+%28CMRO2%29+by+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Noninvasive quantification of whole-brain cerebral metabolic rate of oxygen (CMRO2) by MRI.</a> Magn Reson Med. 62 (1), 141-148 (2009).</li>
<li>Lotz, J., Meier, C., Leppert, A., Galanski, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+flow+measurement+with+phase-contrast+MR+imaging%3A+basic+facts+and+implementation%5BTitle%5D)+AND+%22Radiographics%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular flow measurement with phase-contrast MR imaging: basic facts and implementation.</a> Radiographics. 22 (3), 651-671 (2002).</li>
<li>Pelc, N. J., Herfkens, R. J., Shimakawa, A., Enzmann, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+contrast+cine+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Q%22%5BJournal%5D)">Phase contrast cine magnetic resonance imaging.</a> Magn Reson Q. 7 (4), 229-254 (1991).</li>
<li>Kim, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+phase-contrast+cine+MRI+using+k-t+SPARSE-SENSE%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Accelerated phase-contrast cine MRI using k-t SPARSE-SENSE.</a> Magn Reson Med. 67 (4), 1054-1064 (2012).</li>
<li>Valvano, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerating+4D+flow+MRI+by+exploiting+low-rank+matrix+structure+and+hadamard+sparsity%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Accelerating 4D flow MRI by exploiting low-rank matrix structure and hadamard sparsity.</a> Magn Reson Med. 78 (4), 1330-1341 (2017).</li>
</ol>

Il n’y a rien à divulguer.

PC-IRM est une approche globale pour l’évaluation non invasive et longitudinale de la circulation sanguine. Nous présentons un protocole pour l’exécution de PC-MRI du rat CCA. Cette procédure est facile à effectuer dans n’importe quel animal IRM et montre la bonne reproductibilité.
La technique de PC-MRI a une popularité croissante en humain 10,11 ainsi que les études animales 4,12</...

L’imagerie par résonance magnétique (IRM) est une approche souple qui fournit des informations détaillées sur la physiologie et les structures internes du corps et est plus en plus utilisée pour le diagnostic clinique et préclinique chez l’animal. Modèles animaux sont essentiels pour une meilleure compréhension de l’implication clinique considérable 1. Modèles animaux diffèrent considérablement des humains en ce qui concerne les exigences de l’anesthésie et les paramètres physiologiques, optimisation des procédures de MRI pour ces animaux revêt une importance.
MRI de contraste de phase (PC-MRI) est un type spécialisé de l’IRM qui utilise la vitesse de spins qui coule pour quantifier les paramètres liés au flux tels que la circulation sanguine. Avec PC-MRI, cartographie des modèles d’écoulement dans les artères principales à l’aide de modèles animaux peut faire toute la lumière sur les pathologies cardiovasculaires 2. En outre, PC-MRI peut surveiller non invasive les alternances inhérentes dans la circulation sanguine dans des conditions physiopathologiques 3. Ces observations suggèrent que PC-IRM est une démarche précieuse qui peut être utilisée dans des modèles animaux de maladies cardiovasculaires.
Dans ce rapport, nous décrivons une méthode pour la quantification du débit sanguin dans l’artère carotide commune (CCA) de rats. La deux CCAs fournir la tête et du cou avec le sang oxygéné, et la maladie de l’artère carotide est une cause majeure d’accident vasculaire cérébral. Détection de la pathologie précoce dans le CCA est donc crucial. Cette procédure a une durée d’environ 15 min et peut être éventuellement appliquée aux conditions, moyennant les modifications hémodynamiques, telles l’athérosclérose ou un accident vasculaire cérébral.

<table><tbody><tr><td>Système d’IRM 7T pour petits animaux</td><td>Bruker</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane&nbsp ;</td><td>Baxter</td><td>1001936040</td> sonde ECG <td>anesthésique</td></tr><tr><td>&nbsp ;</td><td>3M</td><td>2269T</td><td></td></tr><tr><td>Matlab</td><td>MathWorks</td><td></td><td>pour le traitement d’images</td></tr><tr><td>Système de surveillance et de contrôle</td><td>SA instruments, Inc</td><td>Modèle 1030</td><td></td></tr></tbody></table>

phase contraste d’imagerie par résonance magnétique dans l’artère carotide commune de rat

Phase Contrast Magnetic Resonance Imaging in the Rat Common Carotid Artery

Phase de contraste IRM (PC-MRI) est une approche non invasive qui permet de quantifier les paramètres liés au flux tels que la circulation sanguine. Des études antérieures ont montré que le flux sanguin anormal peut être associée à un risque vasculaire systémique. Ainsi, le PC-MRI peut faciliter la traduction des données obtenues à partir des modèles animaux de maladies cardiovasculaires à des investigations cliniques pertinentes. Dans ce rapport, nous décrire la procédure de mesure du débit sanguin dans l’artère carotide commune (CCA) de rats à l’aide de PC-MRI cine-dépendants et discuter des méthodes d’analyse pertinents. Cette procédure peut être effectuée chez des animaux vivant, anesthésié et ne nécessite pas l’euthanasie après la procédure. Les paramètres de numérisation proposés donnent des mesures reproductibles pour l’écoulement de sang, indiquant l’excellente reproductibilité des résultats. La procédure PC-MRI décrite dans cet article peut être utilisée pour les essais pharmacologiques, évaluation physiopathologique et évaluation hémodynamique cérébrale.

Bonne tranche de géométrie est essentielle pour assurer le succès de l’expérience de PC-MRI. Le positionnement de plan précis image donne une forme de « round » de l’artère (Figure 3 a), et lorsque l’angulation augmente, c'est-à-direlorsqu’il est moins perpendiculaire à l’artère, la géométrie résultante de l’artère devient ovoïde, menant à plus grand volume partiel effets (Figure 3 b). Les effets de volume partiel sévère...

L’objectif global de cette procédure est de mesurer le flux sanguin dans l’artère carotide commune de rat à l’aide de phase non invasive de contraste IRM.

Phase contraste d’imagerie par résonance magnétique dans l’artère carotide commune de Rat

Phase contrast magnetic resonance imaging (PC-MRI) is a noninvasive approach that can quantify flow-related parameters such as blood flow. Previous ...

Cette méthode peut répondre à une question clé dans le domaine cardiovasculaire relative à l’anomalie du flux sanguin. Le principal avantage de cette technique est qu’elle est non invasive. Elle peut être réalisée dans n’importe quel système d’IRM pour petits animaux.L’implication de cette technique s’étend au diagnostic des maladies cardiovasculaires car elle peut faire la lumière sur les altérations hémodynamiques. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle, car le balayage déclenché est important pour la réussite de l’IRM à contraste de phase, mais il est difficile à apprendre et n’est pas couramment utilisé dans les examens de routine. Chiu Shao-Chieh et Hsu Shih-Ting, assistant de recherche de notre centre, feront la démonstration de la procédure.Avant d’effectuer cette technique, retirez tous les objets magnétiquement sensibles, tels que les portefeuilles, les clés et les cartes de crédit, et laissez-les à l’extérieur de la salle du scanner. Après la dose initiale d’anesthésie, placez le rat dans le lit d’IRM en position couchée tête première et administrez deux à 3 % d’isoflurane à travers un cône nasal pour maintenir l’anesthésie. Surveillez la respiration de l’animal en plaçant un capteur d’oreiller respiratoire sous le torse de l’animal et connectez le capteur à un système de surveillance.Vérifiez que le rythme respiratoire du rat est compris entre 40 et 50 battements par minute avant de continuer. Pour l’acquisition d’une IRM-PC-cinéma cinéma, placez une électrode sur la patte avant droite et une sur la patte arrière gauche. Torsachez les câbles d’électrocardiographie ensemble et assurez-vous qu’ils sont connectés au moniteur.Ensuite, placez le rat dans un support de tête avec des barres d’oreille et une barre de morsure pour sécuriser l’animal et limiter ses mouvements de tête. Ensuite, allumez le système de chauffage à air chaud ou utilisez des compresses de gaze pour aider le rat à maintenir sa température corporelle pendant l’IRM. Enfin, assurez-vous que l’onde R est claire sur le moniteur ECG et placez l’animal dans le scanner.Une fois que l’animal est physiologiquement stable, commencez les IRM. Sélectionnez la séquence d’alignement de piste à partir de l’écran de la console de l’IRM et acquérez des images de reconnaissance le long des trois orientations à l’aide de n’importe quelle séquence d’acquisition d’images rapides, telle que l’écho de spin rapide, pour créer des images coronales, axiales et sagittales. Regardez les images de repérage pour vous assurer que le centre de la tête et du cou de l’animal est au centre de l’aimant.Si nécessaire, ajustez la position de l’animal jusqu’à ce que la bonne position soit atteinte. Si l’animal est repositionné, répétez les balayages d’images de repérage. Une fois que le rat est correctement positionné, sélectionnez la séquence d’angiographie à temps de vol sur le moniteur de la console de l’appareil d’IRM, et obtenez d’abord une angiographie à temps de vol 2D pour déterminer l’emplacement anatomique précis de l’artère carotide commune.Assurez-vous que la bande de saturation est activée et placée sur le dessus pour éviter les interférences des signaux veineux. La bande de saturation est généralement accompagnée d’une séquence de temps de vol. Si la bande de saturation ne s’affiche pas sur le moniteur, veuillez en informer le technicien.Après avoir localisé l’artère carotide commune à l’aide de l’angiographie à temps de vol, ciblez le plan d’image de l’imageur à résonance magnétique à contraste de phase au centre de la même artère et orientez-le de manière à ce que la tranche soit perpendiculaire à la direction du flux sanguin. Assurez-vous que la respiration et le déclenchement ECG sont connectés au système d’IRM, affichant le signal clair sur l’ordinateur du moniteur, et réglez le module de déclenchement pour qu’il soit activé en mode de déclenchement à partir du moniteur de la console de l’appareil d’IRM. À ce stade, confirmez à nouveau que les réponses physiologiques de l’animal sont stables et vérifiez que les sélections de déclenchement sont activées à la fois dans l’ordinateur de surveillance et sur l’écran de la console de l’appareil d’IRM.N’oubliez pas de vous assurer que les sélections de déclenchement sont activées à la fois dans l’ordinateur du moniteur et dans le moniteur du scanner IRM. Ensuite, sélectionnez la séquence de séquence PC-MRI sur le moniteur de console du scanner IRM et effectuez les balayages PC-MRI contrôlés. Répétez ce processus pour chaque région d’intérêt.Une fois que toutes les régions ont été imagées, retirez l’animal du scanner et remettez-le dans sa cage. Réchauffez l’animal avec une lampe chauffante pour maintenir la température corporelle. Gardez la lampe à au moins 15 centimètres de l’animal pour éviter la surchauffe jusqu’à ce que l’animal commence à bouger et réagisse à un pincement de la queue ou des orteils.Enfin, assurez-vous d’enregistrer les données IRM et de les traiter comme décrit dans le protocole texte ci-joint. Une coupe correcte ayant une géométrie ronde est essentielle pour assurer le succès de l’expérience PC-MRI. À mesure que l’angulation augmente, la géométrie de l’artère qui en résulte devient ovoïde, ce qui entraîne des effets de volume partiel plus importants et une surestimation du flux sanguin.Si la tranche de droite a été observée, le balayage doit être repositionné et répété. Lorsqu’il est correctement positionné, la reproductibilité intra-balayage des changements de flux sanguin au cours d’un cycle cardiaque doit être élevée. Comme on peut le voir, le flux sanguin atteint son maximum pendant la phase systolique et revient à la ligne de base pendant la phase diastolique.Le flux sanguin dans l’artère carotide commune chez le rat dépend de l’âge, comme le soulignent ici, dans les balayages longitudinaux, la différence du débit systolique maximal entre un rat de deux mois et un rat de quatre mois. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’appliquer l’IRM-PC pour mesurer de manière non invasive le flux sanguin dans l’artère carotide commune du rat en moins de 30 minutes si elle est effectuée correctement. Lors de cette procédure, il est important de ne pas oublier de connecter correctement le système de contrôle.Après son développement, cette technique a ouvert la voie à la recherche sur le terrain pour explorer le mécanisme à l’origine de certaines maladies cardiovasculaires.

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JoVE Journal

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Médecine

L'induction chirurgicale d'une lésion cérébrale ischémique chez le rat est un modèle largement utilisé pour la recherche sur les AVC. Ici nous démontrons l'induction d'une ischémie cérébrale focale par occlusion de l'artère cérébrale moyenne. Visualisation de l'infarctus entraînant par coloration histologique et l'imagerie par résonance magnétique est également représentée.

Focale modèle d&#39;ischémie cérébrale par occlusion suture endovasculaire de l&#39;artère cérébrale moyenne chez le rat

Source : Chiu, S., et al. Imagerie par résonance magnétique à contraste de phase dans l’artère carotide commune du rat. J. Vis. Exp. (2018). Cette vidéo fait la démonstration de l’imagerie par résonance magnétique à contraste de phase (IRM-PC) pour mesurer le flux sanguin dans l’artère carotide commune d’un rat. Après avoir fixé un rat anesthésié sur le lit d’IRM et s’être assuré de la stabilité des paramètres physiologiques, l’artère carotide commune est scannée pour capturer des images à des...

 Imagerie par résonance magnétique à contraste de phase pour évaluer le flux sanguin dans les artères d’un rat

Surveillance perfusion cérébrale a été démontré pour améliorer la précision dans ischémiques modèles d'AVC. Les difficultés techniques limitent souvent l'utilisation de cet outil essentiel pour la recherche vasculaire cérébral. Dans cette vidéo, un système optimisé est indiqué pour obtenir un contrôle simple ou multi-sites hémodynamique pendant intraluminale occlusion de l'artère cérébrale moyenne chez le rat.

Système optimisé pour la surveillance de la perfusion cérébrale chez le rat des maladies du intraluminale occlusion de l&#39;artère cérébrale moyenne

Les lésions cérébrales résultant d’une ischémie cérébrale peuvent être imagées de manière non invasive et étudiées chez le rat à l’aide d’une tomographie par émission de positrons préclinique couplée à la sonde radioactive injectable, le 18F-fluorodésoxyglucose. De plus, l’utilisation d’outils logiciels modernes qui incluent des modèles de volume d’intérêt (VOI) pour le cerveau augmente considérablement les informations quantitatives recueillies dans le cadre de ces études.

Imagerie non invasive et analyse des ischémie cérébrale chez les rats de vie en utilisant la tomographie par émission de positons avec<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG

La méthode présentée ici utilise simultanément la tomographie par émission de positrons et l'imagerie par résonance magnétique. Dans le modèle hypoxie-ischémie cérébrale, des changements dynamiques dans le métabolisme du glucose et de diffusion se produisent pendant et après une blessure. Les dommages évolutive et reproductible dans ce modèle nécessite l'acquisition simultanée si les données d'imagerie multi-modaux significatifs doivent être acquis.

Imagerie simultanée PET / IRM cérébrale Pendant souris hypoxie ischémie

Un protocole pour l’estimation de temps AVC apparition dans un modèle de rat d’AVC exploitant des paramètres quantitatifs d’imagerie par résonance magnétique (qMRI) est décrit. La procédure exploite diffusion MRI pour délimitation de lésion vasculaire cérébral aigu et quantitative T1 et T2 (qT1 et qT2) temps de relaxation pour le chronométrage de la course.

Un protocole d’imagerie par résonance magnétique pour l’Estimation de temps AVC apparition dans l’ischémie cérébrale permanente

Nous présentons ici les modifications nécessaires pour un bien caractérisé et couramment utilisé petit induite par le chlorure ferrique (FeCl3) artère carotide blessure modèle animal pour une utilisation dans un modèle de grandes lésions vasculaires chez les animaux. Le modèle résultant peut être utilisé pour une évaluation du procès préclinique d’interventions pharmacologiques et mécaniques, prophylactiques et thrombolytiques.

Thrombose de l’artère carotide Canine induite par le chlorure ferrique : Un grand modèle Animal de lésion vasculaire

Nous présentons ici un protocole d’imagerie expérimentale pour la quantification de la fonction cardiaque et de la morphologie à l’aide de la tomographie par émission de positons à haute résolution / tomodensitométrie pour les petits animaux. Les souris et les rats sont pris en compte, discutant des différentes exigences des agents de contraste par tomodensitométrie pour les deux espèces.

Tomographie cardiaque à émission de positons à haute résolution/tomodensitométrie pour petits animaux

L’évaluation de la sténose de l’artère carotide interne (ICA) est basée sur l’estimation du pourcentage de sténose, qui ne tient pas compte des facteurs de risque physiologiquement pertinents pour l’AVC tels que la composition de la plaque et l’hémodynamique. Ce protocole s’appuie sur l’imagerie par résonance magnétique quantitative et la dynamique des fluides numérique pour caractériser la composition des plaques ICA et l’hémodynamique.

Un protocole informatique basé sur l’imagerie par résonance magnétique pour l’analyse de la morphologie et de l’hémodynamique de la plaque chez les patients atteints de sténose de l’artère carotide

Une méthode précise et pratique pour mesurer des paramètres comme la tension dans le tissu myocardique est de grande valeur clinique, car il a été démontré, que la souche est un marqueur plus sensible et plus tôt pour que le dysfonctionnement contractile fréquemment utilisés EF paramètre.

Résonance Magnétique Dérivé évaluation souche du myocarde par fonctionnalité de suivi

Découvrez l'IRM de contraste de phase pour mesurer le flux sanguin dans l'artère carotide commune du rat. Cette technique non invasive permet d'étudier les altérations hémodynamiques liées aux maladies cardiovasculaires.

Phase contraste d’imagerie par résonance magnétique dans l’artère carotide commune de Rat

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