Éléments clés de Photo Attraction Bioassay for Studies insectes ou les programmes de surveillance
26 juillet 2018
Arènes de biodosage photo-attraction servent à déterminer l’ou des couleurs lumière optimales afin de maximiser l’attraction des insectes ; Cependant bioessais et méthodes sont spécifiques pour cibler les habitats et les comportements de l’insectes. Modifications et équipements personnalisables sont expliquées pour insectes nocturnes ou diurnes et terrestres ou aériennes.
Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés en matière de surveillance et de contrôle des insectes, en améliorant l’attraction des pièges existants et en incorporant des couleurs ou des lumières dans la conception des futurs pièges de surveillance et de contrôle. Le principal avantage de cette technique est l’évaluation initiale des couleurs attrayantes et des comportements des insectes en laboratoire, avant les tests coûteux et longs sur le terrain. Les insectes ont des comportements innés ou des instincts qui doivent être utilisés pour rendre la surveillance et le piégeage plus efficaces.
Le domaine des essais biologiques est conçu pour être une méthode flexible pour évaluer les comportements de n’importe quelle espèce d’insecte, avant les essais sur le terrain. Ce protocole utilise une arène aérienne, mais une conception d’arène terrestre est également disponible. La différence essentielle entre l’arène aérienne et terrestre est l’utilisation de l’espace vertical, ce qui modifie la taille de l’arène.
Lorsque vous choisissez un type d’arène pour une expérience, tenez compte de l’espèce d’insecte étudiée. L’arène aérienne a la capacité de capturer des insectes dans un conteneur de collecte, tandis que l’arène terrestre est un objet bidimensionnel et est vraiment conçu pour enregistrer les visites aux lumières. Pour commencer, démontez et nettoyez l’arène aérienne avec un savon inodore et non abrasif et de l’eau tiède.
Ensuite, séchez l’arène et laissez-la terminer son séchage à l’air. Avant chaque expérience, notez les conditions environnementales pertinentes et surveillez les tendances qui se produisent d’une expérience à l’autre. Tout d’abord, utilisez quatre supports et un chiffon en lin noir pour mettre en place un piédestal.
Placez ensuite la plaque de base de l’arène sur le piédestal et assemblez chaque pièce de l’arène sur la plaque de base. Ensuite, placez l’arène en trèfle autour du point de libération central dans la plaque de base. Installez ensuite les LED dans les supports de LED des quatre conteneurs de collecte et configurez l’équipement électrique pour contrôler les lumières.
Pour préparer l’arène à une expérience compétitive, placez des lumières LED avec des caractéristiques distinctes sur chaque trèfle. La configuration de l’arène est le facteur le plus important et le plus critique, car de simples changements dans l’arène peuvent modifier les comportements de l’insecte. Par conséquent, de nombreux facteurs peuvent être modifiés ou modifiés pour s’attaquer aux comportements des insectes, tels que l’attraction photo.
Comportements avec l’alimentation, donc nourri au sang, ou nourri au sucre ou affamé. Différents stades du cycle biologique ou différentes réponses physiologiques. Ensuite, pour contrôler l’effet potentiel des interférences lumineuses ou des préférences environnementales, tournez les positions des feux après chaque répétition.
Reportez-vous au protocole textuel pour plus d’informations sur les appareils de tournage. Placez d’abord le couvercle transparent sur l’arène, parallèlement à la plaque de base. Introduisez ensuite des moucherons immobilisés dans l’arène.
Après la période expérimentale, notez les conditions environnementales pertinentes. Enfin, après l’euthanasie, les moucherons comptent les intervenants dans chaque récipient de collecte. Dans cette étude, le mouvement des coléoptères rouges a été évalué dans une arène terrestre de style compétitif pendant cinq minutes et filmé avec une caméra infrarouge.
Les couleurs de test comprenaient le bleu et trois longueurs d’onde de la lumière UV. Les données de l’essai ont indiqué que les coléoptères étaient plus attirés par la lumière proche de l’UV avec une longueur d’onde de 390 nanomètres. Le mouvement des mouches de Hesse a également été évalué dans une arène aérienne de style compétitif avec un cadre diurne.
Les lumières étaient plus attirées par les lumières dans des longueurs d’onde vertes à haute intensité. Les mouches femelles préféraient les spectres verts de 502 et 525 nanomètres. Alors que les deux sexes préféraient la lumière de haute intensité de 16 watts par mètre carré.
Des moucherons piqueurs ont également été testés dans l’arène aérienne dans des conditions nocturnes, afin de déterminer les couleurs attrayantes optimales. Les plus grandes proportions de moucherons ont été attirées par la lumière UV, les lumières les plus brillantes étant les plus attrayantes. Une fois maîtrisé, le bioessai d’attraction photographique peut être utilisé pour évaluer rapidement le comportement des insectes, avant des essais sur le terrain coûteux et exigeants en main-d’œuvre.
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Aperçu
Cet article traite de l'utilisation de bioessais basés sur l'attraction lumineuse afin d'optimiser l'attraction des insectes par le choix de la couleur de la lumière. Il souligne l'importance d'adapter l'équipement aux différents comportements et habitats des insectes.
Composantes clés de l'étude
Domaine scientifique
- Comportement des insectes
- Méthodes de bioessai
- Optimisation de l'attraction
Contexte
- La surveillance et la lutte contre les insectes sont essentielles pour contrôler les populations de ravageurs.
- La compréhension des comportements innés des insectes peut améliorer l'efficacité des pièges.
- Des évaluations en laboratoire peuvent précéder les essais sur le terrain afin de gagner du temps et des ressources.
- Différents designs d'arènes conviennent aux insectes aériens et terrestres.
Objectif de l'étude
- Améliorer l'attrait des pièges utilisant des couleurs de lumière optimales.
- Évaluer les comportements des insectes dans un environnement contrôlé.
- Fournir une méthode souple pour évaluer diverses espèces d'insectes.
Méthodes utilisées
- Arènes de bioessai phototactiques pour tester différentes couleurs de lumière.
- Conceptions d'arènes personnalisables selon les types d'insectes.
- Évaluations initiales en laboratoire destinées à guider les essais sur le terrain.
- Comparaison des configurations d'arènes aériennes et terrestres.
Résultats principaux
- Identification des couleurs attractives pour des espèces d'insectes spécifiques.
- Démonstration de techniques de surveillance efficaces.
- Connaissances approfondies sur les comportements des insectes pouvant être utilisés pour le piégeage.
- Validation de conceptions d'arènes pour les insectes aériens et terrestres.
Conclusions
- Des aires de bioessai personnalisables sont efficaces pour étudier l'attraction des insectes.
- Les évaluations en laboratoire peuvent considérablement améliorer le succès du piégeage sur le terrain.
- Comprendre les instincts des insectes est essentiel pour une surveillance et une maîtrise efficaces.
Questions fréquemment posées
Pertinence professionnelle dans l'industrie
Les bioessais par photo-attraction utilisant des arènes LED personnalisables permettent une évaluation rapide et quantitative des réponses comportementales des insectes aux stimuli visuels, soutenant les tests préliminaires d'hypothèses dans le développement d'outils de surveillance des vecteurs et de lutte contre les ravageurs. Cette approche réduit les risques associés aux essais ultérieurs sur le terrain en optimisant la conception des pièges et les paramètres des attractants dans un cadre de laboratoire contrôlé et reproductible. La méthode améliore la fiabilité prédictive des programmes de surveillance ciblant les vecteurs de maladies et les espèces invasives, influant directement sur la priorisation des projets en recherche et développement pour la lutte antivectorielle.
Applications stratégiques en recherche et développement en biopharmaceutique
Début de la découverte et validation de la cible
- Permet l'interrogation systématique des réponses comportementales des insectes à des longueurs d'onde et des intensités lumineuses spécifiques.
- Permet la validation fonctionnelle d'attractants visuels pour un ciblage spécifique aux espèces et aux stades.
- Facilite la réduction des risques mécanistiques en isolant des variables telles que la couleur, l'intensité et l'état physiologique des insectes.
- Fournit des données quantitatives pour éclairer les décisions d'aller ou de ne pas aller de l'avant dans les pipelines de développement de pièges.
Développement de criblages et de tests
- Offre des conditions d'essai standardisées et reproductibles pour l'évaluation comparative de l'efficacité des attractants.
- Permet la montée en échelle des essais et la réutilisation de la plateforme pour plusieurs espèces d'insectes et différents critères comportementaux.
- Permet une mesure robuste des réponses des insectes, notamment le nombre de contacts et le suivi comportemental.
- Prépare des systèmes validés pour la validation sur le terrain et le criblage à haut débit de conceptions de pièges.
Recherche translationnelle et préclinique
- Aligne les résultats de laboratoire avec des critères pertinents sur le terrain pour assurer une continuité translationnelle dans la surveillance des vecteurs.
- Permet la progression ajustée au risque des attractants candidats en se basant sur des données prédictives obtenues en laboratoire.
- Facilite l'optimisation itérative des prototypes de pièges avant leur déploiement sur le terrain, qui est coûteux en ressources.
Intégration du pipeline et du flux de travail
L'arène de bioessai en trèfle s'intègre dans la continuité entre la découverte et la validation sur le terrain, en reliant le criblage comportemental précoce à l'optimisation préclinique des pièges pour les programmes de lutte contre les vecteurs.
- Biologie de la découverte : Permet de tester selon une hypothèse les indices visuels et les mécanismes comportementaux à l'origine de l'attraction des insectes.
- Écrantage : Fournit des résultats reproductibles et quantitatifs pour comparer l'efficacité des attractants dans des conditions contrôlées.
- Analyse : Facilite l'analyse statistique des nombres de répondants et des critères comportementaux selon différentes variables expérimentales.
- Recherche translationnelle : Relie l'optimisation en laboratoire à la validation sur le terrain, assurant une continuité dans les flux de travail de développement de pièges.
- Réutilisation en milieu professionnel : Offre une plateforme souple et réutilisable, adaptable à diverses espèces d'insectes et à différents objectifs de recherche.
Impact opérationnel et organisationnel
- Valeur scientifique : Accroît la confiance prédictive dans le choix des attractants et le ciblage comportemental.
- Valeur opérationnelle : Standardise les conditions des tests, améliorant la reproductibilité et l'extensibilité entre les projets.
- Valeur stratégique : Permet de prendre des décisions éclairées de poursuite ou d'abandon, réduisant les risques en phase avancée et optimisant l'allocation des ressources.
- Impact sur le portefeuille : Facilite la priorisation ajustée au risque des pièges et attractants candidats pour les programmes de surveillance et de lutte.
Considérations relatives à la mise en œuvre
- Nécessite une expertise en comportement des insectes, conception de bioessais et contrôle environnemental.
- Requiert des instruments pour la commande des LED, la surveillance environnementale et l'enregistrement du comportement.
- Exige une standardisation interéquipes des protocoles d'essai et des méthodes de collecte de données.
- Adaptable à des modèles d'insectes aériens et terrestres moyennant une configuration appropriée de l'arène.
- Limité par la transposition du laboratoire au terrain et la variabilité comportementale propre à chaque espèce.
F.A.Q. sur la bio-industrie pharmaceutique
Chapters in this video
0:04
Title
0:47
Arena Preparation and Types of Experiments
1:50
Arena Setup
3:18
Starting, Ending, and Quantifying Bioassays
3:45
Results: Terrestrial and Aerial Bioassay Arenas Provide Flexible Method to Assess Photo-attraction Responses by Insects
4:56
Conclusion
