Name: Mesurer la capacité de vol de l’insecte Ambrosia, Platypus Quercivorus (Murayama), utilisant un Low-Cost et petit moulin de vol construit facilement (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-08-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Apprenez à mesurer la capacité de vol de l'insecte Platypus quercivorus à l'aide d'un moulin de vol compact et économique. Cette méthode permet d'étudier la distance et la vitesse de migration des insectes en laboratoire.

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Nous remercions M. S. Fukaya, M. N. Okuda et M. T. Ishino pour aider avec les expériences. Cette étude a été financée de subventions pour la recherche scientifique de la société japonaise pour la Promotion de la Science (n ° 15K 14755).

1. construction d’une usine de vol
<ol><li>
Construction d’un appareil de moulin de vol
	<ol>
<li>Coupez la partie en plastique d’une aiguille (partie métallique : 40 mm de long et 0,25 mm de diamètre ; pièce plastique : 22 mm de longueur et 2 mm de diamètre) avec des pinces (Figure 3).</li>
		<li>Fixer cette aiguille avec une aiguille non traitée sous la forme d’une croix avec des adhésifs de résine époxy (Figure 3), se référant à eux comme un bras de moulin de vol et une aiguille axiale. Remarque : Pour une aiguille axiale, le côté non traité doit être une face inférieure. La pointe non couvert du bras du Moulin de vol est pour le collage d’un coléoptère (Figure 1 b et Figure 3).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Construction de la base
	<ol>
<li>Faire une petite fossette sur la surface d’une plaque mince de métal inox (5 x 5 cm) en martelant un clou pour empêcher l’aiguille axiale de glisser horizontalement (Figure 4). Remarque : Les dimensions réelles de la plaque de métal ne sont pas critiques, et un autre matériau n’est possible, mais éviter d’utiliser n’importe quel matériau souple ; dans le cas contraire, l’aiguille sera collé, empêchant le moulin de renouvelable.</li>
		<li>Placer et fixer la plaque de métal sur le bois Conseil (socle en bois) avec du ruban adhésif.</li>
		<li>Plier une tôle d’acier pour la rendre double en forme de L (Figure 1 et Figure 2 a). NOTE : Il est commode d’utiliser une plaque de métal en forme de L pour la fixation des meubles sur le mur. Un autre bon point à l’appui de l’utilisation de ce type de plaque, c’est que la plaque a déjà eu beaucoup de trous. Trous étaient utilisés pour le vissage et aussi fixer un bouton à ressort (Figure 1 et Figure 4).</li>
		<li>Faire un cylindre en coupant l’extrémité de la pipette en plastique jetable (hauteur = 1 cm, (o.d.) diamètre extérieur = 4 mm, diamètre intérieur (d.i.) = 2 mm) pour guider une aiguille axiale (Figure 2 et Figure 4).</li>
		<li>Placer et fixer la plaque double en forme de L et le cylindre sur la plaque métallique (Figure 2 et Figure 4).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Construction de l’appareil de détection
	<ol>
<li>Plier une plaque de métal pour le rendre en forme de L pour faire un plateau supérieur. NOTE : Il est commode d’utiliser une plaque de métal en forme de L pour la fixation des meubles sur le mur (Figure 5 b- C). Dans l’affirmative, vous pouvez ignorer cette étape.</li>
		<li>Mettre un petit bouchon en métal (5 mm de long et 1 mm de diamètre) sur la plaque supérieure (Figure 2D-E, Figure 4et Figure 5 a). Remarque : Comme un bouchon, nous avons utilisé une bouton-pression. Il passa à travers un trou dans la plaque en forme de L (Figure 4).</li>
		<li>Fixez un capteur photo sur la plaque en forme de L (Figure 4 et Figure 5 a). Visser un substrat de circuit pour le capteur sur la plaque en forme de L pour économiser de l’espace (Figure 2D-Eet la Figure 4).</li>
		<li>Coller une LED infrarouge (150 mW) sur un petit aimant avec un substrat de circuit pour la LED (Figure 1 et Figure 2 a).</li>
		<li>Placer la LED (150 mW) sur la plaque de base sous le capteur photo (Figure 1 et Figure 2 a).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Construction du titulaire
	<ol>
<li>Plier une plaque de métal pour le rendre en forme de L. NOTE : Il est commode d’utiliser une plaque de métal de forme de L pour la fixation des meubles sur le mur (Figure 5 b-C). Dans l’affirmative, vous pouvez ignorer cette étape.</li>
		<li>Fixez la plaque sur un bois planche (mur en bois) avec vis (Figure 1, Figure 4et Figure 5 b). La hauteur de la planche de bois n’est pas critique, qu'il était de 7 cm dans cette étude.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Câbles de raccordement
	<ol>
<li>Raccorder le capteur photo à un canal d’entrée analogique (AIN) d’un convertisseur A/D par l’intermédiaire de câbles électriques normales. Remarque : Il est utile si tous les câbles sont groupés et fixés sur la plaque en forme de L (Figure 5 b-D), car un espace de travail salissant empêche souvent la manipulation fine tout au long de l’expérience.</li>
		<li>Connectez le convertisseur A/N à un ordinateur personnel (PC) via un câble USB.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. marche à suivre
<ol><li>Frais virés tout fraîchement émergé P. quercivorus adultes d’une mort Quercus crispula Blume (Fagales : Fagaceae) arbre le matin (7-9 h) de la journée à laquelle l’expérience doit être effectuée. Remarque : N’utilisez pas de coléoptères recueillis le jour précédent. Plus de 100 coléoptères sont sortis tous les jours et coléoptères nouvellement écloses sont vérifiées quotidiennement. Voir une référence16 pour des méthodes détaillées sur les scarabées.</li>
	<li>Mettre un scarabée sur la glace pour anesthetization. Éviter de contracter la coccinelle humide ; dans le cas contraire, il sera difficile d’effectuer la procédure suivante. Effectuez toutes les procédures subséquentes sur la glace.</li>
	<li>Placez une petite quantité d’un élément de la colle instantanée (colle gélatineuse) sur la beetle pronotum avec le bras du moulin et garder le bras du moulin en contact avec le pronotum. Remarque : La colle gélatineuse sèche lentement si cette colle est utilisée seule. Toutefois, cette colle fonctionne rapidement lorsque les deux composants sont mélangés (Table des matières). L’autre composant (colle liquide) serviront à l’étape suivante.</li>
	<li>Ajouter une petite quantité de l’autre composante de la colle (colle liquide) à l’aide d’une aiguille fine ou un bâton. Veiller à ce que les ailes soient exempts de colle (Figure 1 b). La colle liquide est utilisée pour faciliter le durcissement de la colle gélatineuse.</li>
	<li>Ajuster l’aiguille en forme de croix dans l’usine de vol (Figure 6) en utilisant un aimant pour tenir la plaque en forme de L (plaque supérieure) sur l’autre plaque en forme de L. Glissez simplement la plaque supérieure lors du réglage de la hauteur de la plaque supérieure pour l’aiguille. Insérer la pointe supérieure de l’aiguille axiale dans le trou du bouton snap sur la plaque supérieure (Figure 5 a) et placez l’autre extrémité dans le guide sur la plaque de base (Figure 6).</li>
	<li>Ajuster la position d’une LED IR sous le capteur.</li>
</ol>3. obtenir et analyser des données
<ol><li>Enregistrer le signal de sortie amplifié par le capteur photo et stockez-la dans le PC à travers le convertisseur A/N en utilisant des logiciels commerciaux avec une fréquence d’échantillonnage de 1 000 points/s (Figure 7 a) (pour le convertisseur A/N et des logiciels, Table des matières).</li>
	<li>Lancez le logiciel DAQFActoryExpress.</li>
	<li>Cliquez sur une croix (+) marquer sur l’icône de connexion dans la fenêtre Workspace .</li>
	<li>Cliquez avec le bouton droit sur le nom de jeu de journalisation et sélectionnez Commencer Logging Set. Remarque : Le logiciel continue de journalisation et l’enregistrement des données.</li>
	<li>Pour arrêter l’enregistrement, cliquez avec le bouton droit sur le nom de jeu de journalisation et sélectionnez End Logging Set pour enregistrer un fichier .csv.</li>
	<li>Extrait du temps qui passe du bras du moulin vol ci-dessus la LED IR à l’aide d’un logiciel approprié en détectant fois seulement quand la tension enregistrée a dépassé le seuil (0,5 V). Remarque : Étant donné que certains logiciels (p. ex., MS Excel) peut lire un fichier .csv créé, utilisez un logiciel familier selon le but de l’étude. Si nécessaire, télécharger des programmes sur mesure disponibles via Github, https://github.com/HidetoshiIkeno/FlightMill. Pour plus d’informations sur nos programmes, mais aussi les instructions pour utiliser le programme, consultez le fichier README qui s’accompagne avec le programme principal.</li>
</ol>

<ol><li>Kubono, T., Ito, S. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s102670200037">Raffaelea quercivora sp. nov. associated with mass mortality of Japanese oak, and the ambrosia beetle (Platypus quercivorus).</a> Mycoscience. 43, 255-260 (2002).</li>
<li>Kobayashi, M., Ueda, A. <a target="_blank" href="https://www.jstage.jst.go.jp/article/jjfs2005/87/5/87_5_435/_article">Wilt disease of Fagaceae trees caused by Platypus quercivorus (Murayama) (Coleoptera: Platypodidae) and the associated fungus: Aim is to clarify the damage factors.</a> J Jpn For Soc. 87, in Japanese with English summary 435-450 (2005).</li>
<li>Nunokawa, K. Local distribution and spreading process of damages caused by Japanese oak wilt in Niigata Prefecture, Japan (in Japanese). Bulletin of Niigata Prefectural Forest Research Institute. 48, 21-32 (2007).</li>
<li>Ohashi, A. Distribution and spreading of damages caused by Japanese oak wilt in Gifu Prefecture, Japan (in Japanese). Bulletin of the Gifu Prefectural Research Institute for Forests. 37, 23-28 (2008).</li>
<li>Tokoro, M., Kobayashi, M., Saito, S., Knuura, H., Nakashima, T., Shoda-Kgaya, E., Kashiwagi, T., Tebayashi, S., Kim, C., Mori, K. <a target="_blank" href="http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=JP2007005344">Novel aggregation pheromone, (1S,4R)-p-menth-2-en-1-ol, of the ambrosia beetle, Platypus quercivorus (Coleoptera: Phatypodidae).</a> Bulletin of FFPRI. , 49-57 (2007).</li>
<li>Nobuchi, A. <a target="_blank" href="http://jglobal.jst.go.jp/en/public/20090422/200902187515086492">Platypus quercivorus Murayama (Coleoptera, Platypodidae) attacks to living oak trees in Japan, and information of Platypodidae (I).</a> Forest Pest. 42, 2-6 (1993).</li>
<li>Clements, A. N. <a target="_blank" href="http://jeb.biologists.org/content/32/3/547">The sources of Energy for flight in mosquitoes.</a> J Exp Biol. 32, 547-554 (1955).</li>
<li>Armes, N. J., Cooter, R. J. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1365-3032.1991.tb00549.x/full">Effects of age and mated status on flight potential of Helicoverpaarmigera (Lepidoptera: Noctuidae).</a> Physiol Entomol. 16, 131-144 (1991).</li>
<li>Stewart, S. D., Gaylor, M. J. <a target="_blank" href="https://academic.oup.com/ee/article-abstract/23/1/80/2394603">Effects of age, sex, and reproductive status on flight by the tarnished plant bug (Heteroptera: Miridae).</a> Environ Entomol. 23, 80-84 (1994).</li>
<li>Sarvary, M. A., Bloem, K. A., Bloem, S., Carpenter, J. E., Hight, S. D., Dorn, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diel+flight+pattern+and+flight+performance+of+Cactoblastis+castorum+%28Lepidoptera%3A+Pyralidae%29+Measured+on+a+flight+mill%3A+influence+of+age%2C+gender%2C+mating+status%2C+and+body+size%5BTitle%5D)+AND+%22J+Econ+Entomol%22%5BJournal%5D)">Diel flight pattern and flight performance of Cactoblastis castorum (Lepidoptera: Pyralidae) Measured on a flight mill: influence of age, gender, mating status, and body size.</a> J Econ Entomol. 101 (2), 314-324 (2008).</li>
<li>Zhang, Y., Wyckhuys, K. A. G., Asplen, M. K., Heinpel, G. E., Wu, K. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1049964412000461">Effect of Binodoxys Communis parasitism on flight behavior of the soybean aphid, Aphis glycines.</a> Biol Control. 62, 10-15 (2012).</li>
<li>Sappington, T. W., Burks, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterns+of+flight+behavior+and+capacity+of+unmated+navel+orangeworm+%28Lepidoptera%3A+Pyralidae%29+Adults+related+to+age%2C+gender%2C+and+wing+size%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Entomol%22%5BJournal%5D)">Patterns of flight behavior and capacity of unmated navel orangeworm (Lepidoptera: Pyralidae) Adults related to age, gender, and wing size.</a> Environ Entomol. 43, 696-705 (2014).</li>
<li>Attisano, A., Murphy, J. T., Vickers, A., Moore, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+flight+mill+for+the+study+of+tethered+flight+in+insects%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A simple flight mill for the study of tethered flight in insects.</a> J. Vis. Exp. (106), e53377(2015).</li>
<li>Evenden, M., Whitehouse, L., C, M., Sykes, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+influencing+flight+capacity+of+the+mountain+pine+beetle+%28Coleoptera%3A+Curculionidae%3A+Scolytinae%29%5BTitle%5D)+AND+%22EnvironEntomol%22%5BJournal%5D)">Factors influencing flight capacity of the mountain pine beetle (Coleoptera: Curculionidae: Scolytinae).</a> EnvironEntomol. 43, 187-196 (2014).</li>
<li>Fahrner, S. J., Lelito, J. P., Blaedow, K., Heimpel, G. E., Aukema, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+affecting+the+flight+capacity+of+Tetrastichus+planipennisi+%28Hymenoptera%3A+Eulophidae%29%2C+a+classical+biological+control+agent+of+Agrilus+Planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Entomol%22%5BJournal%5D)">Factors affecting the flight capacity of Tetrastichus planipennisi (Hymenoptera: Eulophidae), a classical biological control agent of Agrilus Planipennis (Coleoptera: Buprestidae).</a> Environ Entomol. 43, 1603-1612 (2014).</li>
<li>Pham, D. L., Ito, Y., Okada, R., Ikeno, H., Isagi, Y., Yamasaki, M. Phototactic behavior of the ambrosia beetle Phatypusquercirorus (Murayama) (Coleoptera: Platypodidae) before and after flight. J Insect Behav. 30, 318-330 (2017).</li>
<li>Wanner, H., Gu, H., Dorn, S. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1365-3032.2006.00494.x/abstract">Nutritional value of floral nectar sources for flight in the parasitoid wasp, Cotesia glomerata.</a> Physiol Entomol. 31, 127-133 (2006).</li>
<li>Rowley, W. A., Graham, C. L. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/0022191068902308">The effect of age on the flight performance of female Aedes aegypti mosquitoes.</a> J Insect Physiol. 14, 719-728 (1968).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Nous avons développé un peu coûteux, facile à construire et usine de vol compact pour petits insectes tels que P. quercivorus (4-5 mm de longueur et 4 à 6 mg poids corporel). Notre moulin de vol composé d’éléments seulement ordinaires comme une aiguille, un IR LED, un capteur photo, colle instantanée, etc.et ne nécessite pas tous les éléments sophistiqués, chers ou rares tels que les appareils électriques commandés par ordinateur. Cela a permis la collecte facile et rapide des éléments nécessaires et ex...

Animaux migre sur de longues distances à la recherche de nourriture et mates. Les animaux migrateurs pourraient se livrer parfois indésirables compagnons. La scarabée ambrosia femelle, Platypus quercivorus (Murayama), est un vecteur connu du champignon pathogène, Raffaelea quercivora Kubono et Shin-Ito. Ce pathogène provoque une mortalité massive des Fagaceae arbres (flétrissement du chêne japonais) et un niveau élevé de mortalité1. Depuis 1980, cette maladie se développe dans tout le Japon et est devenu un problème grave2.
P. quercivorus est un petit insecte (4-5 mm de longueur et 4 à 6 mg poids corporel), et une expansion annuelle de la maladie donne à penser qu’ils sont capables de voler jusqu'à plusieurs km3,4. Le mâle quercivorus P. localise un arbre hôte et libère une phéromone d’agrégation qui attire les mâles et les femelles5. Par conséquent, l’arbre hôte est attaqué par leurs congénères et meurt. Le mâle ennuie un tunnel à l’intérieur de l’arbre après l’atterrissage et a attiré la phéromone femelle pénètrent dans le tunnel et Pond des œufs. Le éclos P. quercivours poussent dans le tunnel jusqu'à ce qu’ils deviennent adultes. Les adultes émergent et se dispersent pour trouver de nouveaux hôtes. Ainsi, l’expansion de la maladie est peut-être liée à la capacité migratoire de ce coléoptère. Toutefois, la mesure dans laquelle l’insecte peut voler est encore incertain. En outre, les femelles sont plus grandes que les mâles6 (féminin : 4,6 mm et mâle : 4,5 mm) et les coléoptères mâles chercher un arbre de la cible, entrer dans le tunnel à l’intérieur de l’arbre et ensuite attirent la femelle. Compte tenu de ces différences sexuelles dans la taille et le rôle du vol dans leur vie, des différences sexuelles peuvent exister dans la capacité de vol, mais ne sait pas la différence de capacité.
En général, il est extrêmement difficile de mesurer la capacité migratoire dans le domaine, en particulier au pilotage capacité, en raison de la vaste gamme de l’espace migratoire. Capacité migratoire a été mesurée en laboratoire dans des conditions attachées, comme un système de moulin de vol, pour plus de 60 ans7,8,9,10,11,12 , 13. systèmes d’usine de vol ont montré que certains insectes ont la capacité de vol longue distance. Par exemple, la plus longue distance de vol de dendroctone du pin dans un moulin du vol était de plus de 24 km14, et Yang Tetrastichus planipennisi a volé au maximum sur 7 km15. Bien que le moulin de vol est un outil couramment disponible, des dosages biologiques avec un animal vivant se traduisent souvent par beaucoup de grandes différences individuelles. Pour y remédier, plusieurs mesures, répétés à plusieurs reprises, sont tenus d’obtenir une estimation fiable de la capacité de dispersion moyenne. Par conséquent, plusieurs personnes doivent être utilisés à la fois pour la collecte rapide d’une quantité suffisante de données. Cependant, les expériences simultanées nécessitent un espace plus grand, plusieurs configurations expérimentales et sont plus coûteux par rapport à un système de mesure unique. Par conséquent, le moulin de vol doit être faible coût, devrait être facilement construit avec des éléments couramment disponibles et son format compact. En outre, la procédure expérimentale devrait être compliqué ou pas besoin d’un opérateur habile.
Dans cette étude, nous avons réuni un moulin de vol petit et peu coûteux (Figure 1 et Figure 2) qui pourrait être facilement utilisé dans l’expérimentation et mesure la capacité de vol de l’insecte de l’ambroisie, P. quercivorus.

<table><tbody><tr><td>aiguille</td><td>Seirin</td><td>J type n° 5 x 40 mm</td><td></td></tr><tr><td>résine époxy adhésif</td><td>Konishi</td><td>#16113</td><td></td></tr><tr><td>plaque</td><td></td><td></td><td>métallique d’un magasin de bricolage</td></tr><tr><td>pipette</td><td></td><td></td> en plastique jetable <td>d’un magasin de bricolage</td></tr><tr><td>bouton-pression</td><td></td><td></td><td>d’un magasin d’artisanat</td></tr><tr><td>capteur IR</td><td>Hamamatsu Photonics</td><td>S7136</td><td></td></tr><tr><td>IR LED</td><td>OptoSupply</td><td>OSIR5113A</td><td>programme</td></tr><tr><td></td><td></td><td>sur mesure</td> de 150 mW <td>téléchargeable sur Github. URL : https://github.com/HidetoshiIkeno/FlightMill</td></tr><tr><td>colle instantanée</td><td>Toagosei</td><td>31204</td><td></td></tr><tr><td>Convertisseur A/N</td><td>LabJack Co.</td><td>U3-HV</td><td></td></tr><tr><td>Logiciel d’acquisition de données</td><td>AzeoTech</td><td>DAQFactoryExpress</td><td>à télécharger depuis la page Web d’AzeoTech.</td></tr></tbody></table>

mesurer la capacité de vol de l’insecte ambrosia, platypus quercivorus (murayama), utilisant un low-cost et petit moulin de vol construit facilement

Measuring the Flight Ability of the Ambrosia Beetle, Platypus Quercivorus (Murayama), Using a Low-Cost, Small, and Easily Constructed Flight Mill

La scarabée ambrosia, Platypus quercivorus (Murayama), est le vecteur d’un champignon pathogène qui provoque une mortalité massive des Fagaceae arbres (flétrissement du chêne japonais). C’est pourquoi, connaissant la capacité de dispersion peut contribuer à éclairer le piégeage/arbre enlèvement efforts visant à prévenir cette maladie plus efficacement. Dans cette étude, nous avons mesuré la vitesse de vol et de la durée et estimé la distance de vol de l’insecte à l’aide d’un moulin de vol nouvellement développé. Le moulin de vol est construit en utilisant des éléments couramment disponibles, petits et faible coût. Tant le bras de moulin de vol et son axe vertical comprennent une aiguille fine. Un spécimen de la beetle est collé à un bout du bras à l’aide de colle instantanée. L’autre extrémité est épaisse en raison étant recouvert de plastique, il facilite ainsi la détection de rotation du bras. La révolution du bras est détectée par un capteur photo monté sur une LED infrarouge et est indiquée par un changement de la tension de sortie lorsque le bras passé au-dessus de la LED. Le capteur photo est connecté à un ordinateur personnel et les données de tension de sortie sont stockées à une fréquence d’échantillonnage de 1 kHz. En effectuant des expériences à l’aide de ce moulin de vol, nous avons trouvé que le P. quercivorus peuvent voler au moins 27 km. Parce que notre moulin de vol comprend à peu de frais et petits éléments ordinaires, plusieurs usines de vol peuvent être préparés et utilisés simultanément dans un espace petit laboratoire. Cela permet aux expérimentateurs obtenir une quantité suffisante de données dans un délai court.

Dans ces expériences, environ 50 % des coléoptères appliqués à l’usine de vol a montré un ou plusieurs tours. Lorsque la partie en plastique passé une ligne virtuelle entre le capteur et la LED, la tension enregistrée changé de sujet 0 V à environ 6,5 V, et la durée d’un passant a été dans les 10 à 20 ms, selon la vitesse de vol. Par conséquent, un changement de tension de pointe est observé comme une révolution (Figure 7 b). Nous avons défini le vol que lors...

Nous développé un moulin à faible coût et petit vol, construits avec des éléments couramment disponibles et facilement utilisés dans l’expérimentation. En utilisant cet appareil, nous avons mesuré la capacité de vol d’une scarabée ambrosia, Platypus quercivorus.

Mesurer la capacité de vol de l’insecte Ambrosia, Platypus Quercivorus (Murayama), utilisant un Low-Cost et petit moulin de vol construit facilement

The ambrosia beetle, Platypus quercivorus (Murayama), is the vector of a fungal pathogen that causes mass mortality of Fagaceae trees (Japanese oak wilt). ...

Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans les domaines de l’entomologie et de la médecine légale, telles que le contrôle de la migration des ravageurs. Le principal avantage de cette technique est de mesurer facilement la distance et la vitesse migratoire d’un petit insecte en laboratoire dans des conditions contrôlées. Début de la construction de la partie filature du laminoir à vol.Tout d’abord, retirez la partie en plastique d’une aiguille d’acupuncture. Une aiguille métallique de 40 millimètres de long avec un diamètre de 0,25 millimètre. Ensuite, à l’aide d’un adhésif époxy, faites une croix avec l’aiguille modifiée et une aiguille non modifiée de la même taille.Cela fait le bras de l’usine à vol et une aiguille axiale. Ensuite, préparez une petite plaque métallique. Martelez une fossette au centre de la plaque où l’aiguille axiale se fixera.Ensuite, fixez la plaque à une base en bois à l’aide de ruban adhésif. Ensuite, fabriquez un cylindre en plastique pour maintenir l’axe de rotation du moulin. Coupez une pipette en plastique pour la faire de la même longueur avec la plaque double L, qui a un diamètre extérieur de 4 millimètres et un diamètre intérieur de 3 millimètres.Fixez ensuite ces pièces à la plaque de base avec le cylindre sur la fossette et avec la plaque en double L stabilisant le cylindre. Fabriquez maintenant un support à partir d’une pièce de métal en forme de L et vissez le métal sur une planche de bois verticale pour stabiliser l’ensemble. Dans le trou d’une autre plaque en L, insérez un petit capuchon métallique d’environ 10 millimètres de long et d’un millimètre de diamètre.Un bouton-pression peut fonctionner à cet effet. Ajoutez maintenant un capteur photo infrarouge pour compter les tours. Tout d’abord, incorporez le capteur IR dans la carte de circuit imprimé, puis vissez la carte de circuit imprimé dans la plaque L.Le trajet de la partie plastique des aiguilles croisées doit passer directement sous le capteur pour que l’ensemble fonctionne. Ensuite, fixez une LED infrarouge de 150 milliwatts fixée au substrat du circuit à un petit aimant à l’aide de colle. Placez ensuite la LED sur la plaque de base sous le capteur photo.Enfin, connectez le capteur photo à un canal d’entrée analogique d’un convertisseur AD. Ensuite, regroupez tout le câblage et fixez les câbles à la plaque. Enfin, connectez le convertisseur AD à un ordinateur personnel via un câble USB.Le matin de l’expérience, collectez tous les adultes de P. Quercivorus fraîchement émergés d’un arbre mort en fleurs de Qercus crispula. Plus de 100 coléoptères sont couramment récoltés. Ensuite, mettez un scarabée sur de la glace pour l’anesthésie.Évitez de mouiller le coléoptère, sinon il sera difficile de terminer la procédure. Maintenant, à l’aide de colle à deux composants, mettez une noisette du composant de consistance de gelée sur la pointe du bras du moulin. Fixez ensuite le bras du moulin au pronotum du coléoptère.Ensuite, à l’aide d’une aiguille fine, mélangez une petite quantité de colle liquide dans un composant de colle gélatineuse. Ne mettez pas de colle sur les ailes du coléoptère. Une fois la colle durcie, utilisez un aimant sur la plaque supérieure pour faire glisser les plaques et réinsérez facilement le broyeur à vol dans l’appareil.Ensuite, ajustez la position de la LED infrarouge pour qu’elle se trouve directement sous le capteur. Lorsque le scarabée se réveille, il commencera à voler. Lancez ensuite l’enregistrement de la sortie amplifiée du capteur photo à une fréquence d’échantillonnage de 1000 hertz.Lorsque le moulin tourne avec le vol du coléoptère, le faisceau IR est perturbé par la pièce en plastique, ce qui entraîne un saut de tension sur le capteur de 0 à 3,7 volts. Si le seuil d’enregistrement dépasse 0,5 volts, les données sont bonnes pour l’analyse. À l’aide des commandes du logiciel, démarrez l’enregistrement en cliquant sur le symbole plus sur l’icône d’enregistrement dans la fenêtre de l’espace de travail.Ensuite, faites un clic droit sur le nom du journal et sélectionnez Commencer l’ensemble de journalisation"Pour arrêter l’enregistrement, cliquez avec le bouton droit de la souris sur le nom du journal et sélectionnez Terminer l’ensemble de journalisation"Les données seront enregistrées dans un fichier csv. Dans ces expériences, environ la moitié des coléoptères attachés au moulin à vol ont montré une ou plusieurs révolutions. Quelque temps après avoir été attachés, la plupart des coléoptères ont commencé à voler pendant un certain temps, puis ont volé à nouveau après un intervalle de repos.Chaque coléoptère a été enregistré pendant au moins une heure. Le coléoptère moyen volait à une vitesse de 0,75 à 1,5 mètre par seconde. Tout coléoptère qui volait à moins d’un kilomètre a été omis de l’analyse.Pour 16 coléoptères qui répondaient à ce critère, le temps de vol minimum était de 1,26 heure sans apport énergétique, et le temps et la distance les plus longs étaient de 7,5 heures et 27,1 kilomètres. Dans cette cohorte, aucune différence significative n’a été observée entre les hommes et les femmes. Après avoir regardé cette vidéo, vous collecterez rapidement de nombreuses données car ce moulin à vol est peu coûteux, petit et facile à construire.Et pas beaucoup de moulin à vol. Depuis son développement, cette méthode a ouvert la voie à des recherches dans le domaine de la biologie fondamentale ainsi qu’à la lutte antiparasitaire pour explorer de nouvelles avenues de la physiologie et de l’écologie des petits insectes volants. En modifiant cette méthode, par exemple en installant un système de diffusion d’odeurs ou un système d’éclairage, nous pouvons explorer comment les informations sensorielles influencent la capacité de vol.

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Nous présentons une nouvelle procédure chirurgicale pour implanter des électrodes dans Manduca sexta au cours de ses premiers stades métamorphiques. Cette technique permet un couplage mécaniquement stable et électriquement fiable avec le tissu neuromusculaire pour étudier la dynamique de la neurophysiologie du vol. Nous présentons également une nouvelle plate-forme de lévitation magnétique pour l’étude captive du lacet des insectes.

Début d&#39;insertion de technologie métamorphique des insectes Vol surveillance des comportements

Nous décrivons ici une méthode de mesure rapide et précise des performances de vol chez la drosophile, permettant le criblage à haut débit.

Une méthode améliorée pour la mesure précise et rapide des performances de vol en<em&gt; Drosophila</em

Le vol des insectes est influencé par un certain nombre de facteurs et la propension à se disperser est une variable importante pour comprendre l’écologie des insectes et les stratégies de lutte biologique. Nous décrivons la construction et l’utilisation d’un moulin à vol simple, relativement peu coûteux et flexible pour mesurer les paramètres du vol captif chez les insectes.

A Mill vol simple pour l&#39;étude du vol captif chez les insectes

Ce protocole décrit le processus de construction d’un système hybride insecte-machine et la réalisation d’une stimulation électrique sans fil des muscles de vol nécessaires pour contrôler le mouvement de rotation d’un insecte volant.

Insect-machine à système hybride: Radio Control à distance d&#39;un scarabée volant librement (<em&gt; Mercynorrhina torquata</em&gt;)

Les usines de vol sont des outils importants pour comparer comment l'âge, le sexe, l'état d'accouplement, la température ou divers autres facteurs peuvent influencer le comportement de vold'uninsecte. Ici, nous décrivons les protocoles d'attache et de mesurer la propension de vol et la performance du ver racine de maïs occidental sous différents traitements.

Utilisation de flight Mills pour mesurer la propension et la performance du ver de racine de maïs occidental, Diabrotica virgifera virgifera (LeConte)

Ce protocole utilise des imprimantes tridimensionnelles (3D) et des découpeuses laser trouvées dans les makerspaces afin de créer une conception de fraise de vol plus flexible. En utilisant cette technologie, les chercheurs peuvent réduire les coûts, améliorer la flexibilité de la conception et générer des travaux reproductibles lors de la construction de leurs usines de vol pour les études de vol d’insectes attachés.

Construction d’un moulin de vol amélioré pour l’étude du vol d’insectes attachés

Ce protocole présente les méthodes de création, d’attache et de suivi des balises radar harmoniques pour les insectes.

Balises radar harmoniques pour le suivi des insectes : légères, peu coûteuses et accessibles

Plus de la moitié des protéines sont de petites protéines (masse moléculaire &lt;200 kDa) qui sont difficiles pour les deux électrons imagerie de microscope et des reconstructions tridimensionnelles. Coloration négative optimisé est un protocole robuste et à haut débit pour obtenir un contraste élevé et des images de petites protéines ou des complexes asymétriques dans différentes conditions physiologiques résolution relativement élevée (~ 1 nm).

Optimisé coloration négative: un protocole à haut débit pour examen petites et asymétrique structure des protéines par microscopie électronique

Le graphe de pénétration électrique (EPG) est une technique bien établie pour étudier le comportement alimentaire des insectes porteurs de stylet. Nous montrons ici une nouvelle application de l’EPG en tant qu’outil non invasif pour l’acquisition d’enregistrements électrophysiologiques intracellulaires d’éléments de tamis (SE), les cellules qui forment le système vasculaire du phloème chez les plantes.

Une nouvelle application de l&#39;électrique pénétration Graphique (EPG) pour l&#39;acquisition et la mesure des signaux électriques dans le phloème Sieve Elements

Ici, nous présentons de petites incubations de carottes pour la mesure du gaz sédiment-eau et de l’échange de soluté. Celles-ci fourniront des mesures fiables de l’échange sédiments-eau qui évalueront le rôle des sédiments dans l’influence des processus biologiques et biogéochimiques dans les écosystèmes aquatiques.

Le benthique Échange de O<sub&gt; 2</sub&gt;, N<sub&gt; 2</sub&gt; et nutriments dissous par petit noyau incubations

Apprenez à mesurer la capacité de vol de l'insecte Platypus quercivorus à l'aide d'un moulin de vol compact et économique. Cette méthode permet d'étudier la distance et la vitesse de migration des insectes en laboratoire.

Mesurer la capacité de vol de l’insecte Ambrosia, Platypus Quercivorus (Murayama), utilisant un Low-Cost et petit moulin de vol construit facilement (Vidéo) | JoVE Journal

Mesurer la capacité de vol de l’insecte Ambrosia, Platypus Quercivorus (Murayama), utilisant un Low-Cost et petit moulin de vol construit facilement

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