Name: Une nouvelle Technique chirurgicale comme fondement pour In Vivo partielle génie hépatique chez le Rat (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 27 s
Description: Apprenez une technique chirurgicale novatrice pour la perfusion in vivo d'un lobe hépatique chez le rat. Cette méthode permet d'étudier l'ingénierie hépatique partielle avec survie à long terme.

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Les auteurs tiennent à remercier Jens Geiling de l’Institut d’anatomie I, hôpital universitaire de Jena, pour produire des schémas d’anatomie de foie de rat.

Le boîtier et toutes les procédures effectuées ont été conformément à la législation allemande de bien-être animal. Tous les instruments chirurgicaux, gaze et vêtements couvrant sont stérilisés à l’autoclave et préparé avant l’opération. Toutes les procédures sont effectuées dans des conditions stériles.
1. préparation du Rat pour l’intervention chirurgicale
<ol><li>Placez le rat dans une chambre à induction et anesthésier le rat avec l’isoflurane 4 % vaporisé et 100 % d’oxygène de 0,5 L/min pendant environ 3 min, jusqu'à ce que le rat est complètement anesthésié.</li>
	<li>Prenez le rat dans la chambre de l’induction et mesurer sa masse corporelle.</li>
	<li>Raser la fourrure de la région chirurgicale sur l’abdomen.</li>
	<li>Remettre les animaux dans la chambre de l’isoflurane pour un 2 min supplémentaire approfondir anesthésie.</li>
	<li>Placez le rat sur la table d’opération en décubitus dorsal.</li>
	<li>Fixer le masque d’anesthésie à la région de la bouche du rat et de garder l’animal anesthésié avec un débit de gaz en continu de 2 % vaporisé isoflurane et 100 % d’oxygène à un débit de 0,5 L/min.</li>
	<li>Fixer les branches avec des morceaux de ruban adhésif.</li>
	<li>Pommade de vétérinaire sur les deux yeux pour prévenir le dessèchement.</li>
	<li>Administrer la buprénorphine 0,05 mg/kg par voie sous-cutanée, à soulager la douleur au cours de la période d’exploitation.</li>
	<li>Désinfecter le champ opératoire de l’abdomen avec 3 tours de teinture d’iode suivie de 2 tours d’alcool à 70 %.</li>
	<li>Place stérilisés gaze autour de la zone où l’incision se fera seulement quitter le champ de l’opération de l’abdomen exposé.</li>
	<li>Procéder pour effectuer l’opération lorsque le réflexe de retrait d’orteil-pincement du rat est absent.</li>
</ol>2. laparotomie du Rat
<ol><li>Faire une incision peau et le muscle abdominale transverse à l’aide de ciseaux et un coagulateur électrique.</li>
	<li>Difficulté et tirez le processus xiphoïde vers la tête à l’aide d’une suture en polypropylène de 4-0. Remarque : Faites attention à soulever le processus xiphoïde verticalement pour mieux exposer le foie, mais procéder avec prudence pour éviter l’étouffement et restriction respiratoire sévère.</li>
	<li>Ouvrir la cavité péritonéale en tirant sur les deux côtés des parois abdominales vers la tête avec deux crochets sous-costal pour exposer le foie.</li>
	<li>Couvrir le duodénum et l’intestin grêle dans la cavité abdominale avec une gaze humide afin d’éviter le séchage.</li>
	<li>Soulevez le lobe gauche et droite médian à l’aide d’une gaze humide et de les tenir contre le thorax pour mieux exposer le hile du foie.</li>
	<li>Placez le rat sous un stéréomicroscope (grossissement X 8).</li>
	<li>Déposer quelques saline tiède dans l’abdomen et sur la surface du foie et des intestins tous plusieurs minutes, pour éviter le dessèchement pendant toute la procédure.</li>
</ol>3. création d’un Passage de Bypass dans le Lobe latéral gauche
<ol><li>Disséquer la veine gauche et il ligaturer avec une suture de soie de 6-0 à la base (Figure 2 a).</li>
	<li>Bloquer l’artère hépatique gauche, du canal biliaire gauche avec la veine médiane gauche et l’artère hépatique gauche médian médian gauche biliaires avec micro pinces afin d’éviter un écoulement du perfusat le lobe médian gauche (Figure 2 b).</li>
	<li>Séparer le lobe latéral gauche en coupant les ligaments environnants du lobe avec micro ciseaux.</li>
	<li>Bloquer la veine hépatique latérale gauche par serrage à la base du lobe latéral gauche avec micro pinces (Figure 2). Remarque : Veillez à ne pas serrer la veine gauche ainsi par erreur.</li>
	<li>Utiliser des serre-joints moustique à la ligature de la veine gauche et conserver la veine avec une tension correcte pour canulation plus tard.</li>
	<li>Avec précaution, faites une incision dans la paroi avant de la veine gauche il perforera avec un cathéter d’aiguille-logement 24-G ( Figure 3 a). Remarque : Pour créer une voie de contournement, points d’accès vasculaire sur la gauche de la veine porte et la veine hépatique gauche sont nécessaires. Pour cette étape, il est préférable de créer l’accès vasculaire en perforant les vaisseaux avec une aiguille, plutôt que de faire une incision plus large à l’aide de ciseaux. Cela réduit le risque de saignement et plus tard de la sténose.</li>
	<li>Retirer le cathéter et prendre l’aiguille sur le cathéter pour obtenir un cathéter sans aiguille 24-G.</li>
	<li>Raccorder le cathéter sur un tube de perfusion, de qui l’autre extrémité se connecte à une seringue de 20 mL à 15 mL de 40 U/mL une solution sur une pompe à perfusion héparinée.</li>
	<li>Tourner sur la pompe pour perfusant le tube pour expulser l’air du tube et le cathéter sans aiguille.</li>
	<li>Éteindre la pompe à perfusion.</li>
	<li>Encore une fois, insérer le cathéter sans aiguille dans la veine gauche via l’incision percée sur la veine (Figure 3 b). Remarque : En raison du fait, il y a très peu d’espace pour la fixation du cathéter, il n’est pas fixée à ce stade. Par conséquent, le chirurgien doit faire attention d’éviter le déplacement de la sonde canulée.</li>
	<li>Faites une autre incision à la bordure de la région exposée de la veine hépatique latérale gauche il perforera avec un cathéter d’aiguille-logement 22 - ou 24-G (Figure 3). Remarque : Il est recommandé que le cathéter à être légèrement plus petite que le navire.</li>
	<li>Retirer le cathéter et prendre l’aiguille sur le cathéter pour obtenir un cathéter sans aiguille 22-G.</li>
	<li>Tourner sur la pompe à perfusion perfuse sérum physiologique hépariné dans le lobe latéral gauche via le cathéter 24-G canulé sans aiguille de la veine gauche à un débit de 0,5 mL/min.</li>
	<li>Gaze sèche permet d’absorber les out-écoulement fluide des déchets autour de la zone d’incision de la veine hépatique latérale gauche.</li>
	<li>Cathétériser la veine hépatique latéral gauche par l’incision de perforation de la veine avec le cathéter sans aiguille 22 G, pour générer une sortie fluide pour minimiser la contamination intra-abdominale (Figure 3D). Remarque : Il est techniquement difficile de fixer la sonde canulée au lobe du foie. Par conséquent, le chirurgien doit faire attention afin d’éviter le déplacement du cathéter. Sinon, sans cathétérisme de la veine hépatique latérale gauche avec un cathéter, déchets liquides aussi peut être absorbé à la région de l’incision de la veine qu’avec une gaze sèche.</li>
	<li>Garder perfusant le lobe latéral gauche avec du sérum physiologique hépariné pendant environ 20 min (groupe 1) et ensuite seulement avec du sérum physiologique pour 2 h, 3 h ou 4 h (groupe 2, groupe 3 et groupe 4, respectivement).</li>
	<li>Arrêter la pompe pour arrêter la perfusion.</li>
</ol>4. physiologique Reperfusion du Lobe latéral gauche
<ol><li>Enlever les deux cathéters de la gauche de la veine porte et la veine hépatique latérale gauche.</li>
	<li>Refermer l’incision de la veine gauche avec une suture de polyamide 11-0.</li>
	<li>Refermer l’incision de la veine hépatique latérale gauche avec une suture de polyamide 11-0 aussi bien.</li>
	<li>Déconnectez toujours la veine hépatique latérale gauche.</li>
	<li>Déconnectez toujours la veine médiane gauche et gauche voie biliaire principale artère hépatique gauche.</li>
	<li>Couper la ligature sur la veine gauche de rouvrir la veine.</li>
</ol>5. fermeture de la paroi abdominale
<ol><li>Fermer la couche musculaire de la paroi abdominale en suturant interrompu par une suture résorbable polyglactin 910 de 4-0.</li>
	<li>Fermer la couche de la peau de la paroi abdominale en suturant interrompu par une suture résorbable polydioxanone de 4-0.</li>
	<li>Après la fermeture de l’abdomen, désinfecter l’incision de la peau avec de l’alcool 70 %.</li>
</ol>6. postopératoire traitement du Rat
<ol><li>Placez l’animal sur un coussin chauffant pour réanimation pendant environ 10 min et puis le mettre dans une nouvelle cage.</li>
	<li>Administrer la buprénorphine 0,05 mg/kg par voie sous-cutanée de 2 x par jour pour un d 3 consécutive après l’opération libérer la douleur.</li>
</ol>

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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

En bloquant et canulant la veine gauche avec un cathéter comme une admission de fluide et la veine hépatique latérale gauche avec un autre cathéter comme une sortie du fluide, nous avons généré avec succès un pontage fluide in vivo dans le lobe latéral gauche, indiquant que Bien que la technique est très difficile en raison de la petite taille des navires pour la canulation et un haut risque de provoquer des saignements, c’est faisable. Même les rats traverse une période de longue perfusion de 4 heures a survécu...

Les indications pour les transplantations sont sans cesse en expansion. En revanche, taux de don d’organe et de la qualité globale des organes sont en déclin, menant à une demande croissante pour des greffes. Le nombre de candidats ajoutés à la liste d’attente de transplantation du foie a continué d’augmenter (par exemple, aux États-Unis, 11 340 patients ont été ajoutés en 2016, contre 10 636 en 2015)1. Malgré des efforts considérables, le nombre d’organes disponibles ne satisfait pas les besoins cliniques. En raison de l’augmentation de l’incidence des maladies du foie, de nombreux patients atteints meurent de maladies du foie terminale sur la liste d’attente de greffe devant un organe du donneur devient disponible. Pour répondre à l’énorme demande pour les greffes de donneur du foie, des approches alternatives à l’aide de tissu hépatique principes d’ingénierie sont actuellement activement poursuivi2. De nos jours, une technique biologique nouvellement développée d’ingénierie du foie pourrait potentiellement surmonté cette pénurie.
Génie du foie consiste en deux étapes : la génération d’un échafaud acellulaire, suivie d’un repeuplement de l’échafaudage. Pour obtenir un échafaudage foie acellulaire biologique, le foie explanté est perfusé par le système vasculaire avec des détergents ioniques et non ioniques, qui peut enlever le matériel cellulaire du foie. Dans la plupart des études antérieures, un échafaudage de foie acellulaire biologique a été réalisé par perfusion du foie avec une combinaison de dodécyl sulfate de sodium et TritonX100. En conséquence, toutes les cellules ont été retirés, alors que la structure de la matrice extracellulaire a été maintenue. Les échafaudages de l’orgue ont été redéfinis avec cellules matures, hépatocellulaire, ainsi que des lignées de cellules endothéliales et des hépatocytes primaires avec ou sans l’application simultanée des cellules endothéliales ou les cellules souches mésenchymateuses (CSM). La plupart traitant de chercheurs ex vivo foie génie3,4,5,6,7,8,9,10, 11,12,13,14. Toutefois, dans la plupart des études précédentes, seulement de petits morceaux de cubes d’échafaudage repeuplements ont été transplantées dans sites d’implantation hétérotopique différents. Dans quelques études, échafaudages regarnis partielles ont été transplantés comme une greffe auxiliaire. Cependant, la durée maximale de survie signalés était seulement 72 h8,14. Autant que nous le savons, orthotopic transplantation d’un greffon hépatique complet repeuplements a non encore réalisée et publié sur. La fonction à long terme et la transplantation d’organes techniques sont encore à leurs balbutiements. Par conséquent, une approche alternative à l' ex vivo foie ingénierie est nécessaire.
In vivo du foie génie peut représenter une alternative à étudier hépatique repeuplement dans des conditions physiologiques. Les avantages du génie d' in vivo du foie par rapport à l' ex vivo foie ingénierie sont multiples. L' in vivo repeuplée échafaud hépatique partielle est soumise à la perfusion sanguine physiologique avec la bonne température, suffisamment d’oxygène, des nutriments et facteurs de croissance contrairement aux ex vivo perfusion avec milieu de culture artificiel. En outre, le foie normal partiel restant maintient la fonction hépatique, ce qui permet principalement de survie à long terme. Une greffe du foie implanté ex vivo engineered étant toujours incapable de supporter la survie à long terme des animaux d’expérimentation par sa fonction hépatique8, nous envisageons que in vivo partielle du foie engineeringwould au bout du compte devenir un modèle prometteur pour une étude plus approfondie l’évolution des foies machinés avec les observations de survie plus longues que les ex vivo.
Récemment, un groupe de recherche (Pan et ses collègues) a présenté, pour la première fois, une technique in vivo foie15d’ingénierie. Ils ont atteint la perfusion isolée du lobe droit inférieur du foie chez les rats vivant en dépit des défis techniques et anatomiques. Ils ont signalé les premiers résultats peropératoires de repeuplement d’in vivo à l’aide d’une lignée de cellules de primaires d’hépatocytes de rat. Toutefois, le modèle de perfusion chirurgicale en vivo de Pan et al. présente des inconvénients. Ils ont atteint perfusion simple lobe du foie chez les rats au détriment de bloquer complètement la veine porte et la veine cave inférieure, qui peut causer de graves dommages à l’animal. Les rats expérimentaux ont été sacrifiés après seulement 6 heures de temps d’observation peropératoire. Par conséquent, la technique de perfusion in vivo lobe hépatique doit être amélioration pour atteindre la survie postopératoire.
Nous avons développé un modèle de survie roman pour perfusion in vivo lobe du foie, basé sur des études antérieures de l’anatomie hépatique de rat16, la technique de canulation de veine pour la surveillance hémodynamique dans les souris17et du foie bio-ingénierie 18 , 19. les principales étapes de la procédure sont illustrées à la Figure 1 a - 1E.
Cette technique consiste à ceux qui veulent utiliser ce modèle de perfusion expérimentale in vivo pour la recherche fondamentale sur le traitement de l’orgue partielle en infusion avec des médicaments, en vivo DÉCELLULARISATION comme une résection chimique pour les maladies de l’organe (par exemple , cancer du foie), culture in vivo de cellules dans une matrice DECELLULARISE comparant ex vivo bidimensionnelles et tridimensionnelles cell culture systèmes20,21,22,23 , 24 , 25 , 26et in vivo du foie ingénierie par DÉCELLULARISATION et repeuplement.

<table><tbody><tr><td>Pompe de</td><td></td><td></td><td></td>perfusion</tr><tr><td>Perfusor VI</td><td>B. Braun, Melsungen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Catheter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Versatus-W&nbsp ; Cathéter</td><td>Terumo</td><td>SR+DU2419PX</td><td>24G, 0.74&fois ; 19mm</td></tr><tr><td>Versatus-W&nbsp ; Cathéter</td><td>Terumo</td><td>SR+DU2225PX</td><td>22G, 0.9&fois ; 25mm</td></tr><tr>micro instrument <td></td><td></td><td></td><td>chirurgical</td></tr><tr><td>micro ciseaux</td><td>F&middot ; S&middot ; L</td><td>N° 14058-09</td><td></td></tr><tr><td>micro serrefine</td><td>F&middot ; S&middot ; L</td><td>No.18055-05</td><td></td></tr><tr><td>Micro pinces applicatrices</td><td>F&middot ; S&middot ; L</td><td>N° 18057-14</td><td></td></tr><tr><td>Micro-pince droite</td><td>F&middot ; S&middot ; L</td><td>N° 00632-11</td><td></td></tr><tr><td>Micro-pince incurvée</td><td>F&middot ; S&middot ; L</td><td>N° 00649-11</td><td></td></tr><tr><td>micro porte-aiguille</td><td>F&middot ; S&middot ; L</td><td>n° 12061-01</td><td></td></tr><tr>instruments <td></td><td></td><td></td><td>chirurgicaux</td></tr><tr><td>généraux sciseaux standard</td><td>F&middot ; S&middot ; </td><td></td><td></td>L</tr><tr><td>pince anti-moustiques</td><td>F&middot ; S&middot ; </td><td></td><td></td>L</tr><tr><td>pince dentelée</td><td>F&middot ; S&middot ; </td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince dentée</td><td>en L F&middot ; S&middot ; </td><td></td><td></td>L</tr><tr><td>porte-aiguille</td><td>F&middot ; S&middot ; </td><td></td><td></td></tr><tr><td>Suture</td><td></td><td></td><td></td></tr> en L <tr><td>4-0</td><td>éthicon</td><td></td><td></td>prolène</tr><tr><td>4-0 ETHICON*II</td><td>éthicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0</td><td>éthicon</td><td></td><td></td>de soie</tr><tr><td>11-0 polyamide</td><td>éthiconique</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

une nouvelle technique chirurgicale comme fondement pour in vivo partielle génie hépatique chez le rat

A Novel Surgical Technique As a Foundation for In Vivo Partial Liver Engineering in Rat

Génie de l’orgue est une stratégie novatrice pour générer des substituts d’orgue du foie qui peuvent potentiellement être utilisés en transplantation. Récemment, in vivo du foie ingénierie, y compris en vivo DÉCELLULARISATION orgue suivie de repeuplement, est apparue comme une approche prometteuse sur ex vivo du foie de génie. Cependant, la survie postopératoire n’a pas été atteint. Le but de cette étude est de développer une nouvelle technique chirurgicale de la perfusion lobe hépatique sélective in vivo chez le rat comme condition préalable pour l’ingénierie de in vivo du foie. Nous générons une dérivation du circuit qu’à travers le lobe latéral gauche. Ensuite, le lobe latéral gauche est perfusé avec du sérum physiologique hépariné. L’expérience est réalisée avec 4 groupes (n = 3 rats par groupe) issu des fois différentes de perfusion de 20 min, 2 h, 3 h et 4 h. survie, ainsi que le changement macroscopiquement visible de couleur et l’absence déterminée sur le plan histologique des cellules sanguines dans le espace porte et les sinusoïdes, est considérée comme un indicateur pour un établissement de modèle de réussite. Après la perfusion sélective du lobe latéral gauche, nous observons que le lobe latéral gauche, tourné en effet, du rouge au jaune pâle. Dans une évaluation histologique, aucune cellule de sang ne sont visibles dans la branche de la veine porte et la veine centrale les sinusoïdes. Le lobe latéral gauche devient rouge après avoir rouvert les navires bloqués. 12/12 rats ont survécu la procédure pendant plus d’une semaine. Nous sommes les premiers à signaler un modèle chirurgical pour in vivo de perfusion simple lobe hépatique avec une période de survie longue de plus d’une semaine. À la différence du rapport publié antérieurement, l’avantage le plus important de la technique présentée ici est que la perfusion de 70 % du foie est maintenue tout au long de la procédure dans son ensemble. La mise en place de cette technique fournit une base pour in vivo partielle génie du foie chez les rats, dont DÉCELLULARISATION et recellularization.

Douze hommes (âgés de 12 - 13 semaines) rats Lewis ont été utilisées pour évaluer l’effet de la perfusion de lobe hépatique sélective. L’expérience a été réalisée en quatre groupes (n = 3 rats par groupe). En perfusion différents périodes de 20 minutes, 2 heures, 3 heures et 4 heures, suivant les étapes décrites ci-dessus, nous avons atteint in vivo la perfusion simple lobe.
In Vivo <s...

Nous établissons une nouvelle technique chirurgicale pour un modèle de perfusion in vivo seul lobe de foie de rat comme une condition sine qua non pour étudier plus en vivo foie partielle d’ingénierie à l’avenir.

Une nouvelle Technique chirurgicale comme fondement pour In Vivo partielle génie hépatique chez le Rat

Organ engineering is a novel strategy to generate liver organ substitutes that can potentially be used in transplantation. Recently, in vivo liver ...

Au cours des dernières années, l’ingénierie hépatique est devenue un sujet d’actualité dans le monde entier en raison de son potentiel de générer des greffes de foie capables de greffe. Toutefois, la fonction viable à long terme et la transplantation d’organes artificiels sont encore une vision de l’avenir. Récemment, la profusion in vivo du lobe du foie est devenue une stratégie prometteuse pour commencer l’ingénierie hépatique.Un avantage majeur de cette technique est que l’échafaudage partiel in vivo de foie a soumis la profusion scatologique de sang. Ceci fournit à l’échafaudage la température appropriée, l’oxygène suffisant, les éléments nutritifs et les facteurs de croissance en contraste à la profusion ex vivo avec le milieu artificiel de culture. Un autre avantage est que le foie restant maintient la fonction hépatique et permet ainsi principalement la survie à long terme.Cependant, le modèle in vivo de profusion de lobe unique est techniquement difficile et la survie postopératoire n’a pas encore été réalisée. Ici, nous allons présenter un autre modèle chirurgical avec la survie à long terme comme base pour d’autres in vivo ingénierie lobe du foie unique. Avant de démontre

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Nous présentons une révision facile à mettre en place de la classique à deux revers technique pour la transplantation hépatique chez le rat.

Une transplantation hépatique orthotopique chez le rat

Transplantation hépatique orthotopique chez le rat est un modèle expérimental indispensable pour la recherche biomédicale. Nous présentons ici nos procédures chirurgicales de transplantation hépatique orthotopique chez le rat à la reconstruction de l'artère hépatique à l'aide d'une greffe partielle de 50%.

Interventions chirurgicales pour un modèle de rat de transplantation hépatique orthotopique partielle avec reconstruction artérielle hépatique

Nous décrivons la conception du dispositif "quick-linker" pour la transplantation de foie de rat orthotopic facile.

fabriquer des dispositifs et instruments pour faciliter le Rat Liver Transplantation

Nous avons décrit un protocole permettant d’effectuer une hépatectomie partielle (PHx) et la transplantation de cellules par l’intermédiaire de rate en clin de œil. SCID (CLIN De ŒIL. CB17-Prkdcscid/J) souris. Dans ce protocole, une incision est faite pour exposer et résection du lobe gauche du foie suivi d’une autre incision pour la transplantation intra-splénique de cellules.

Intra-splénique Transplantation d’hépatocytes après hépatectomie partielle en clin de œil. Souris SCID

Ici, un protocole impliquant une transplantation hépatique partielle rat re-artérialisé est présenté. Plus précisément, 70 % foie a été réséquée en vivo en utilisant une technique de mise à jour d’une hépatectomie axée sur le navire. L’artère hépatique a été reconstruite d’une manière d’extrémité à l’autre. La technique de Brassard a été modifiée pour raccourcir le temps de l’abouchement de la veine cave infrahepatic.

Re-artérialisé Transplantation de foie partielle de Rat in vivo axée sur le navire 70 % hépatectomie

La reconstruction de la veine sus-hépatique (SHVC) reste une étape difficile dans une transplantation hépatique orthotopique rat. Dans cet article, nous montrons un protocole étape par étape pour la reconstruction de SHVC chez le rat en utilisant une technique nouvelle anastomose magnétique.

Un modèle de Rat de la Orthotopic Transplantation hépatique en utilisant une Technique nouvelle anastomose magnétique pour la Reconstruction de veine sus-hépatique

Nous présentons ici une nouvelle méthode pour la résection partielle du lobe hépatique gauche chez les souris néonatales (jour 0). Ce nouveau protocole est convenable pour l’étude d’atteinte hépatique aiguë et réponse de blessures dans le cadre néonatal.

Une hépatectomie partielle lobulaire : Un modèle chirurgical pour la régénération du foie morphologique

Il a été démontré que l’association de la partition hépatique et de la ligature de la veine porte pour l’hépatectomie échelonnée (ALPPS) entraîne une régénération hépatique remarquable plusieurs semaines après la première étape de la chirurgie. Des modèles animaux ayant subi l’ALPPS ont été développés pour explorer la capacité potentielle de régénération du foie et obtenir des résultats cliniques favorables.

Modèle murin de l’association de la partition hépatique et de la ligature de la veine porte pour une procédure d’hépatectomie échelonnée assistée par microscopie

Nous décrivons ici une plateforme qui permet une imagerie in vivo non invasive de sphéroïdes hépatiques greffés dans la chambre antérieure de l’œil de souris. Le flux de travail s’étend de la génération de sphéroïdes à partir de cellules hépatiques primaires à la transplantation dans l’œil de la souris et à l’imagerie in vivo à résolution cellulaire par microscopie confocale.

Imagerie in vivo de sphéroïdes hépatiques greffés dans la chambre antérieure de l’œil de souris

Le protocole de greffe hépatique auxiliaire hétérotopique de rat décrit ici offre un outil d’investigation pratique pour explorer les mécanismes de rejet de l’allogreffe hépatique. Ce modèle permet d’atténuer les obstacles chirurgicaux et le stress animal de la transplantation hépatique orthotopique chez le rat.

Modèle de greffe de foie entier auxiliaire hétérotopique utilisant une hépaticourétérostomie pour des études de rejet d’allogreffe

Apprenez une technique chirurgicale novatrice pour la perfusion in vivo d'un lobe hépatique chez le rat. Cette méthode permet d'étudier l'ingénierie hépatique partielle avec survie à long terme.

Une nouvelle Technique chirurgicale comme fondement pour In Vivo partielle génie hépatique chez le Rat

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