Name: À l’aide d’un Arthrometer de genou pour évaluer les Contributions spécifiques des tissus à la Contracture de Flexion du genou chez le Rat (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: Découvrez comment utiliser un arthromètre pour mesurer l'extension du genou chez le rat. Cette méthode précise et reproductible permet d'évaluer l'efficacité des traitements sur la mobilité articulaire.

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Les auteurs tiens à remercier Joao Tomas pour son assistance technique avec l’appareil et Khaoula Louati d’assistance dans l’élaboration de méthodes d’analyse de l’image.

Le modèle d’immobilisation de genou rat utilisé a été approuvé par l’Université du Comité d’éthique local et le Service vétérinaire et animalier de Ottawa.
1. la préparation animaux
<ol><li>À la fin de la période d’immobilisation prédéterminé, euthanasier les rats par administration de dioxyde de carbone. NOTE : Ici nous avons utilisé un modèle d’immobilisation avec une plaque et 2 vis (un inséré dans le fémur proximal et l’autre dans le tibia distal), ce qui évite la violation de n’importe quel genou des structures et maintient une position fléchie au genou de 135° comme précédemment décrit6 . Sur une période de temps, ce qui produit un genou flexion contracture11.</li>
	<li>Couvrir la zone sur et autour de la surface qui l’arthrometer sera mis sur avec des tampons de protection absorbant, imperméable à l’eau. Porter des gants, blouse et lunettes de protection, tout en complétant l’expérience.</li>
	<li>À l’aide d’un scalpel, diviser la peau afin d’exposer la plaque et des vis (voir la note qui suit étape 1.1) ; Insérer la vis plus proximale du fémur proximal et insérer la vis plus distale du tibia distal. Palper pour localiser les vis. Une fois que les têtes de vis sont accessibles, enlever la vis avec un tournevis. Remarque : Au cours de la période d’immobilisation, les têtes de vis peuvent se recouvrent de tissus mous. Dans ce cas, utilisez le scalpel pour enlever le tissu doucement et de découvrir les têtes de vis.</li>
	<li>Une fois les vis enlevées, retirer la plaque manuellement ou à l’aide de pinces à partir d’une trousse de dissection.</li>
	<li>À l’aide de ciseaux et pinces, deglove l’extrémité inférieure pour retirer la peau du fascia sous-jacent.</li>
</ol>2. animal de positionnement sur le moteur Arthrometer
Remarque : Tous les essais doivent être effectuée à la température ambiante. Ici l’arthrometer est propulsé par un V de 120 North American standard d’entrée. La sortie de l’adaptateur est 12 V 500 mA.
<ol><li>La position de l’animal à être testé sur le côté avec la jambe expérimental (la jambe à tester) vers le haut (Figure 2).<ol>
<li>Fixez le fémur dans le collier métallique rainuré qui est intégré dans la phase de montage de l’arthrometer. Percer des trous à travers le muscle à l’aide d’un tournevis de précision pour placer la pince distale au grand trochanter et de sécuriser le fémur. Ajuster le condyle fémoral latéral au-dessus du centre de rotation de l’arthrometer (Figure 1, 2).</li>
		<li>Position du movable armer avec deux poteaux derrière la jambe, juste supérieure au calcanéum, pour pousser le genou en extension passive une fois le moteur électrique est activée.</li>
		<li>Serrer le collier du fémur à sa base à l’aide d’une clé six pans jusqu'à ce qu’elle est fixée.</li>
	</ol>
</li>
	<li>S’assurer que la caméra est correctement montée sur l’arthrometer à l’aide d’un tournevis et est sur la Mise au point manuelle. Concentrer la caméra sur le condyle fémoral.</li>
	<li>Sélectionnez le paramètre d’orientation sur l’arthrometer (dans le sens horaire ou antihoraire) selon la direction du genou ROM testée et la position du rat.</li>
	<li>Activer le moteur d’arthrometer en poussant simultanément le bouton Power et Démarrer . Remarque : La nécessité de pousser le bouton power et démarrer simultanément est un dispositif de sécurité de l’appareil, ce qui empêche toute activation accidentelle.<ol>
<li>Observer que le moteur arthrometer se déplace à une vitesse de 6,6 t/mn et puis arrêt pour 2,1 s en arrivant le premier couple prédéterminé.</li>
		<li>NOTE : que lorsque le premier couple est atteint, la LED correspondante s’allume et l’appareil photo numérique prendra une photo du genou automatiquement. Remarque : Une fois que la photo est prise, l’arthrometer se poursuivra à l’autre, un couple préréglé plus élevé. Une fois les quatre couples ont été appliquées, l’arthrometer s’arrête. Une fois que le rat est positionné sur l’arthrometer et tests est lancée, le temps total pour tester un genou est environ 18,8 fois s. peuvent varier légèrement selon la condition de la contracture mixte. Les images prises sont utilisés pour mesurer l’extension à chaque couple.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. saisir l’Angle du genou Extension à l’aide de la Arthrometer à moteur
Remarque : Une fois que le moteur s’arrête à chaque couple, un appareil photo numérique est déclenché pour prendre une photo. La caméra est positionnée sur l’image telle qu’elle est directement au-dessus de l’articulation du genou étant testé et axé sur le condyle fémoral.
<ol><li>Poursuivre ses essais avec le même genou depuis le même animal, mais dans une situation différente, par exemple, après avoir effectué une myotomie des muscles postérieurs transarticular pour isoler le composant (non musculaire) arthrogenic d’une contraction, ou avec un genou de un autre animal.<ol>
<li>Lorsque vous remplissez la myotomie, disséquer le muscle proximal assez à l’articulation de genou pour s’assurer que la capsule n’est pas coupée. Remarque : Il est plus facile de compléter la myotomie lorsque la jambe est en extension, après l’application du couple 4 (17,53 N-cm). Ensuite, répétez les étapes 2.1 à 3.1.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Une fois que les deux jambes ont été testés dans toutes les conditions (par exemple, avant et après la myotomie), disposer de la carcasse d’animal et toutes les matières suivant le protocole institutionnel et nettoyer l’arthrometer.</li>
</ol>4. genou ROM mesure analyse
<ol><li>Analyser ROM à l’aide de ImageJ. Remarque : Ici la version 1. 45 s a été utilisée.</li>
	<li>Ouvrez le fichier contenant l’image numérique, prise par la caméra embarquée sur l’arthrometer de rat. Remarque : La personne qui effectue l’analyse devrait être aveuglée pour le groupe expérimental de l’animal (p. ex., immobilisée par opposition à contrôle).</li>
	<li>Sélectionnez l' outil de l’Angle de la barre d’outils principale et tracer l’angle femorotibial en traçant une ligne fémorale au milieu de la pince du fémur du condyle latéral (aligné sur la diaphyse fémorale, Figure 2), et une ligne tibiale de la latérale condyle fémoral à la malléole externe (Figure 2). Remarque : L’angle fémoro-tibiale correspond à l’angle maximal d’extension du genou atteinte à chaque couple prédéfinie.</li>
	<li>Utilisez l’outil de mesure en cliquant sur Analyze | Mesure pour montrer l’angle calculé, produite par les 2 lignes tracées ci-dessus. Utilisent la convention de 0° pour désigner l’extension complète.</li>
</ol>

<ol><li>Clavet, H., Hébert, P. C., Fergusson, D., Doucette, S., Trudel, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Joint+contracture+following+prolonged+stay+in+the+intensive+care+unit%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Medical+Association+Journal%22%5BJournal%5D)">Joint contracture following prolonged stay in the intensive care unit.</a> Canadian Medical Association Journal. 178 (6), 691-697 (2008).</li>
<li>Campbell, T. M., Dudek, N., Trudel, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCampbell%2C+TM+%22Essentials+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%3A+musculoskeletal+disorders%2C+pain%2C+and+rehabilitation%22">Essentials of Physical Medicine and Rehabilitation: musculoskeletal disorders, pain, and rehabilitation</a>. Silver, J. K., Frontera, W. R., Rizzo, T. D. , Saunders. Ch. 126 (2015).</li>
<li>Dehail, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acquired+deforming+hypertonia+and+contractures+in+elderly+subjects%3A+definition+and+prevalence+in+geriatric+institutions+%28ADH+survey%29%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Physical+and+Rehabilitation+Medicine%22%5BJournal%5D)">Acquired deforming hypertonia and contractures in elderly subjects: definition and prevalence in geriatric institutions (ADH survey).</a> Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. 57 (3), 11-23 (2014).</li>
<li>Korp, K., Richard, R., Hawkins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Refining+the+idiom+%26%2334%3Bfunctional+range+of+motion%26%2334%3B+related+to+burn+recovery%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Burn+Care+and+Research%22%5BJournal%5D)">Refining the idiom &#34;functional range of motion&#34; related to burn recovery.</a> Journal of Burn Care and Research. 36 (3), 136-145 (2015).</li>
<li>Elliott, L., Walker, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rehabilitation+interventions+for+vegetative+and+minimally+conscious+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychological+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Rehabilitation interventions for vegetative and minimally conscious patients.</a> Neuropsychological Rehabilitation. 15 (3-4), 480-493 (2005).</li>
<li>Campbell, T. M., Reilly, K., Laneuville, O., Uhthoff, H., Trudel, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+replaces+articular+cartilage+in+the+rat+knee+joint+after+prolonged+immobilization%5BTitle%5D)+AND+%22Bone%22%5BJournal%5D)">Bone replaces articular cartilage in the rat knee joint after prolonged immobilization.</a> Bone. 106, 42-51 (2017).</li>
<li>Trudel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+alterations+of+rabbit+Achilles%27+tendon+after+immobilization+correlate+with+bone+mineral+density+but+not+with+magnetic+resonance+or+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Mechanical alterations of rabbit Achilles' tendon after immobilization correlate with bone mineral density but not with magnetic resonance or ultrasound imaging.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 88 (12), 1720-1726 (2007).</li>
<li>Harvey, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretch+for+the+treatment+and+prevention+of+contractures%5BTitle%5D)+AND+%22Cochrane+Database+of+Systematic+Reviews%22%5BJournal%5D)">Stretch for the treatment and prevention of contractures.</a> Cochrane Database of Systematic Reviews. 1, Cd007455(2017).</li>
<li>Trudel, G., Himori, K., Uhthoff, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrasting+alterations+of+apposed+and+unapposed+articular+cartilage+during+joint+contracture+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Contrasting alterations of apposed and unapposed articular cartilage during joint contracture formation.</a> Archives of Physical Medicine Rehabilitation. 86 (1), 90-97 (2005).</li>
<li>Trudel, G., Uhthoff, H. K., Goudreau, L., Laneuville, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+the+reversibility+of+knee+flexion+contractures+with+time%3A+an+experimental+study+using+the+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Musculoskeletal+Disorders%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of the reversibility of knee flexion contractures with time: an experimental study using the rat model.</a> BMC Musculoskeletal Disorders. 15, 338(2014).</li>
<li>Trudel, G., Uhthoff, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contractures+secondary+to+immobility%3A+is+the+restriction+articular+or+muscular%3F+An+experimental+longitudinal+study+in+the+rat+knee%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Contractures secondary to immobility: is the restriction articular or muscular? An experimental longitudinal study in the rat knee.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 81 (1), 6-13 (2000).</li>
<li>Chimoto, E., Hagiwara, Y., Ando, A., Itoi, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progression+of+an+arthrogenic+motion+restriction+after+immobilization+in+a+rat+experimental+knee+model%5BTitle%5D)+AND+%22Upsala+Journal+of+Medical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Progression of an arthrogenic motion restriction after immobilization in a rat experimental knee model.</a> Upsala Journal of Medical Sciences. 112 (3), 347-355 (2007).</li>
<li>Ando, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remobilization+does+not+restore+immobilization-induced+adhesion+of+capsule+and+restricted+joint+motion+in+rat+knee+joints%5BTitle%5D)+AND+%22Tohoku+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Remobilization does not restore immobilization-induced adhesion of capsule and restricted joint motion in rat knee joints.</a> Tohoku Journal of Experimental Medicine. 227 (1), 13-22 (2012).</li>
<li>Abdel, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+joint+contracture+on+the+contralateral+unoperated+limb+in+a+rabbit+knee+contracture+model%3A+a+biomechanical+and+genetic+study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Effects of joint contracture on the contralateral unoperated limb in a rabbit knee contracture model: a biomechanical and genetic study.</a> Journal of Orthopaedic Research. 30 (10), 1581-1585 (2012).</li>
<li>Hildebrand, K. A., Sutherland, C., Zhang, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+knee+model+of+post-traumatic+joint+contractures%3A+the+long-term+natural+history+of+motion+loss+and+myofibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research+%22%5BJournal%5D)">Rabbit knee model of post-traumatic joint contractures: the long-term natural history of motion loss and myofibroblasts.</a> Journal of Orthopaedic Research . 22 (2), 313-320 (2004).</li>
<li>Klein, L., Player, J. S., Heiple, K. G., Bahniuk, E., Goldberg, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isotopic+evidence+for+resorption+of+soft+tissues+and+bone+in+immobilized+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Bone+and+Joint+Surgery.+American+Volume%22%5BJournal%5D)">Isotopic evidence for resorption of soft tissues and bone in immobilized dogs.</a> Journal of Bone and Joint Surgery. American Volume. 64 (2), 225-230 (1982).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont pas des divulgations ou les conflits d’intérêts à déclarer.

Le rat du genou arthrometer a été développé afin de façon reproductible et fiable de déterminer l’extension maximale du genou rat suite à une intervention. Avantages de ce dispositif incluent la génération cohérente du couple à travers l’articulation avec une force constante bras de longueur et extension du genou. Un autre avantage inclut la possibilité de réglage du couple à un niveau permettant répétitif des tests sur la même articulation afin d’évaluer l’influence des différentes structures articulaires sur genou ROM,...

Avoir une gamme complète de mouvement (ROM) des articulations est critique pour la santé et le bien-être1. Une perte dans la ROM passif commun est appelée une contracture2. Contractures articulaires peuvent résulter de nombreuses conditions, y compris l’alitement prolongé, la paralysie, l’arthroplastie, brûlures, infections et troubles neurologiques1,3,4,5. Une contracture du genou peut être invalidante car elle accélère la dégénérescence mixte, augmente le risque de chutes et négativement affecte la capacité d’une personne à effectuer des tâches de base fonctionnels y compris marchant, assis ou monter des escaliers6, 7.
Une fois établies, les contractures du genou sont difficiles à traiter, et donc de déterminer quels patients sont les plus susceptibles de développer cette condition est essentielle pour la prévention et la prévention de la morbidité associée à une contracture8. Les expériences sont conçues pour évaluer 1) les conditions provoquant ou d’influencer des contractures articulaires du genou, 2) la gravité des contractures, 3) leur progression temporelle, 4) les tissus impliqués dans la contracture, 5) leur réversibilité ainsi que 6) l’utilité de diverses interventions préventives et curatives sur genou conjointe ROM. Pour toutes ces expériences, une méthode valable, objective, précise et reproductible pour mesurer la ROM est essentielle. Autres mesures d’accompagnement nécessaires (dépense d’énergie, histomorphométrie, contenu de protéines et de l’expression génique) sont des marqueurs utiles pour comprendre la physiopathologie des contractures articulaires, mais la limitation mécanique est ce qui limite le patient et conduit à l’invalidité. Certains des défis dans ce domaine de recherche inclut les méthodes hétérogènes par lequel genou ROM peut être testé expérimentalement, ainsi qu’un manque de données quantitatives9. L’utilisation d’une variété de méthodes expérimentales différentes conduit à des résultats qui ne sont pas comparables d’un laboratoire. Cela a conduit à la controverse au sujet des conditions (par exemple arthroplastie immobilisation ou articulaires) qui provoquent des contractures articulaires10. Il faut donc une méthode automatisée de mesurer expérimentalement ROM commun suite à une intervention.
Nous décrivons ici un protocole utilisateur indépendant, valide, précis et reproductible pour évaluer le genou de rat ROM à l’aide d’un arthrometer sur mesure liée à un appareil photo numérique de mesurer avec précision le genou ROM en extension. Nous avons testé l’effet des diverses périodes d’immobilisation genou ROM. Nous décrivons ensuite les méthodes de mesure des ROM à des couples spécifiés au préalable sur les images numériques qui en résulte, à l’aide de repères osseux fixes. Dans l’ensemble, ces méthodes mesurent rat du genou ROM fiable et fournissent des données quantitatives.

<table><tbody><tr><td>Arthromètre</td><td>Centre de réadaptation de l’Hôpital d’Ottawa - Génie de la réadaptation</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Appareil photo</td><td>Canon</td><td>EOS-500D</td><td>Communément appelé EOS Rebel T1i</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>National Institutes of Health</td><td>Version 1.45s</td><td></td></tr><tr><td>Sous-couches absotbent</td><td>VWR</td><td>820202-845</td><td></td></tr><tr><td>Kit de dissection</td><td>Fisher</td><td>08-855</td><td>Le kit comprend :&nbsp ; Pince : pointes moyennes, nickelé Ciseaux : 1,5 po Lames (40 mm) en acier inoxydable Manche du couteau de dissection : nickelé Lames de couteau : acier inoxydable, paquet de 3 Pipette compte-gouttes : verre Aiguille de dissection coudée : acier inoxydable avec poignée en plastique Aiguille de dissection droite : acier inoxydable avec manche en plastique Règle en vinylite 6 po. (15 cm)</td></tr><tr><td>Tournevis de précision</td><td>Mastercraft</td><td>057-3505-8</td><td></td></tr><tr><td>Lames de scalpel - #10</td><td>Fine Science Tools</td><td>10010-00</td><td></td></tr><tr><td>Tournevis</td><td>Stanley</td><td>057-3558-2</td><td></td></tr><tr><td>Clés hexagonales</td><td>Mastercraft</td><td>058-9684-2</td><td></td></tr><tr><td>Adaptateur universel AC à DC en poudre</td><td>RCA</td><td>108004951</td><td></td></tr></tbody></table>

À l’aide d’un arthrometer de genou pour évaluer les contributions spécifiques des tissus à la contracture de flexion du genou chez le rat

Using a Knee Arthrometer to Evaluate Tissue-specific Contributions to Knee Flexion Contracture in the Rat

Gamme de genou normal de mouvement (ROM) est essentielle au bien-être et permet d’effectuer des activités de base comme la marche, monter les escaliers et assis. ROM perdue est appelée une contracture mixte et entraîne une morbidité accrue. En raison des difficultés de marche arrière genou établi contractures, dépistage précoce est important, et connaissant les facteurs de risque pour leur développement est donc essentielle. Le rat représente un bon modèle avec laquelle l’effet d’une intervention peut être étudié en raison de la similitude de l’anatomie du genou rat à celui des humains, la capacité du rat à tolérer de longues périodes d’immobilisation du genou en flexion, et parce que les caractéristiques mécaniques peuvent être en corrélation avec l’analyse histologique et biochimique du tissu du genou.
À l’aide d’un arthrometer automatique, nous démontrons une méthode validée, précise, reproductible, utilisateur indépendant de la ROM d’extension de l’articulation de rat à couples spécifiques de mesure. Cette arthrometer peut être utilisé pour déterminer les effets des interventions sur le genou ROM en collaboration chez le rat.

Le montant de l’extension du genou déterminé pour diverses périodes d’immobilité sont résumées à l’augmentation des durées d’immobilité et montrent que les contractures plus sévères ont été produites suivant les longueurs croissantes d’immobilisation. Résultats représentatifs avec ImageJ sont indiquées à la Figure 3.
La capacité de mesurer l’extension maximale des genoux de rat de façon valide, préc...

L’objectif du protocole est de mesurer l’amplitude de l’extension du mouvement du genou rat. Les effets de diverses maladies qui augmentent la raideur de l’articulation du genou et de l’efficacité des traitements peuvent être quantifiés.

À l’aide d’un Arthrometer de genou pour évaluer les Contributions spécifiques des tissus à la Contracture de Flexion du genou chez le Rat

Normal knee range of motion (ROM) is critical to well-being and allows one to perform basic activities such as walking, climbing stairs and sitting. Lost ...

Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine musculo-squelettique, comme l’effet d’une intervention sur la gamme de mouvement des articulations du genou à l’aide d’un modèle de rat. Le principal avantage de cette technique est qu’elle fournit une méthode précise, reproductible et indépendante de l’utilisateur pour mesurer l’extension de l’articulation du genou du rat. Commencez par utiliser des ciseaux et des forceps pour démêler l’extrémité inférieure du rat euthanasié et enlever la peau de la facia sous-jacente.Ensuite, placez le corps sur le côté avec la jambe expérimentale orientée vers le haut. Placez le fémur dans la pince métallique rainurée qui est intégrée dans la scène de montage de l’arthromètre. Sécurisez le fémur en perforant les trous à travers le muscle avec le tournevis de précision pour placer le distal clamp au trochanter plus grand.Ensuite, ajustez le condyle fémoral latéral au-dessus du centre de rotation de l’arthromètre. Placez le bras mobile avec deux poteaux droits derrière la jambe, juste proximal au calcanée pour pousser le genou dans l’extension passive une fois que le moteur électrique est activé. Utilisez une clé hex pour ser

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Les modèles animaux sont des outils importants pour l’évaluation des greffons issus de l’ingénierie tissulaire. Cet article présente le protocole de préparation d’une greffe de polymère biodégradable électrofilé pour une utilisation dans l’ingénierie tissulaire du ligament croisé antérieur, ainsi qu’un protocole chirurgical pour l’implantation dans un modèle de rat.

Athymiques Rat Modèle d&#39;évaluation des Engineered ligament croisé antérieur greffes

Ce protocole présente un modèle de rat in vivo de capsulite rétractile. Le modèle inclut une fixation interne de la gléno-humérale conjointe avec fixation de la suture extra-articulaires pendant une période prolongée, aboutissant à une plage de pivotement une diminution de mouvement (ROM) et une augmentation de raideur articulaire.

Modèle de rat de capsulite rétractile de l’épaule

Ici, nous présentons un protocole pour décrire une technique mini-invasive pour l'immobilisation d'articulation de genou dans un modèle de rat. Ce protocole reproductible, basant sur le modus de séparation de muscle-écart et la compétence de mini-incision, est approprié pour étudier le mécanisme moléculaire sous-jacent de la contracture commune acquise.

Une technique de fixation interne mini-invasive pour étudier la contracture de flexion du genou induite par l'immobilisation chez les rats

La quantification de la force maximale de l’extenseur du genou est impérative pour comprendre les adaptations fonctionnelles au vieillissement, à la maladie, aux blessures et à la réadaptation. Nous présentons une nouvelle méthode pour mesurer à plusieurs reprises le couple tétanique de crête isométrique d’extension du genou in vivo.

Mesure in vivo de la fonction musculaire extensrice du genou chez la souris

Ici, nous présentons le modèle de lésion cartilagineuse intra-articulaire induite par la charge cyclique du genou du rat, générée par 60 compressions cycliques sur 20 N, entraînant des dommages au cartilage condylien fémoral chez le rat.

Méthode non invasive pour générer le modèle de lésion cartilagineuse intra-articulaire induite par la charge cyclique du genou du rat

Ce protocole établit un modèle de défauts cartilagineux de pleine épaisseur (FTCD) en perçant des trous dans la rainure trochléaire fémorale de rats et en mesurant le comportement douloureux et les changements histopathologiques ultérieurs.

Développement et évaluation d’un modèle de rats-de-cartilage de pleine épaisseur

Nous présentons un protocole de manipulation de Tuina réalisé sur des rats souffrant d’arthrose du genou induite par un plâtre. Sur la base des résultats préliminaires, il a suggéré que l’efficacité de la méthode reposait sur la réduction de l’inflammation et de la perte de cartilage.

Manipulation du tuina pour réduire l’inflammation et la perte de cartilage chez les rats souffrant d’arthrose du genou

Dans ce protocole, un modèle d’arthrose du genou a été préparé en utilisant la méthode Videman modifiée, et les procédures opératoires et les précautions de l’acupotomie sont détaillées. L’efficacité de l’acupotomie a été démontrée en testant les propriétés mécaniques du quadriceps fémoral et du tendon et les propriétés mécaniques et morphologiques du cartilage.

Application de l’acupotomie dans un modèle d’arthrose du genou chez le lapin

Ce protocole décrit les méthodes d’intervention de Tuina dans le modèle d’arthrose du genou (KOA) induit par l’injection de monoiodoacétate de sodium chez le rat, qui fournit une référence pour l’application de Tuina dans des modèles animaux KOA. Ce protocole étudie également le mécanisme efficace du Tuina pour le KOA, et les résultats aideront à promouvoir son application.

Intervention de Tuina dans le modèle d’arthrose du genou induit par injection de monoiodoacétate de sodium chez le rat

L’arthrose du genou est fréquemment observé dans le département orthopédique. Nous présentons en détail le procédé de traitement de l’arthrose du genou tout avec injection de plasma riche en plaquettes, y compris la préparation, des procédures et l’évaluation.

Préparation, procédures et l’évaluation de l’Injection de Plasma riche en plaquettes dans le traitement de l’arthrose du genou

Découvrez comment utiliser un arthromètre pour mesurer l'extension du genou chez le rat. Cette méthode précise et reproductible permet d'évaluer l'efficacité des traitements sur la mobilité articulaire.

À l’aide d’un Arthrometer de genou pour évaluer les Contributions spécifiques des tissus à la Contracture de Flexion du genou chez le Rat (Vidéo) | JoVE Journal

À l’aide d’un Arthrometer de genou pour évaluer les Contributions spécifiques des tissus à la Contracture de Flexion du genou chez le Rat

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