Name: Modèle murin d’escarres après une lésion de la moelle épinière (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-03-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: Découvrez une méthode pour induire des escarres cutanées chez la souris après lésion de la moelle épinière. Ce modèle murin permet d'évaluer des stratégies thérapeutiques pour accélérer la cicatrisation chez les patients.

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Ce travail a été partiellement soutenu par la Commission de New Jersey sur la recherche de la moelle épinière (CSCR15IRG010), le U.S. Department of Defense (SC160029) et le Yale département de chirurgie Ohse recherche programme de subventions. Nous remercions Sean o ' Leary du W.M. Keck Center for Neuroscience Collaborative, Rutgers pour l’assistance technique.

Tous les animaux de manutention et les interventions chirurgicales ont été effectuées conformément à un protocole approuvé par le Comité de l’emploi et de Rutgers University Institutional Animal Care. Souris ont été nourries en régime normal et eau ad libitum.
1. élaboration d’Instruments chirurgicaux et Non chirurgicaux
<ol><li>Stérilisation des instruments chirurgicaux et non chirurgicaux dans un autoclave.</li>
	<li>Nettoyer la table d’opération chirurgicale avec 70 % d’éthanol et de réchauffer un coussin chauffant à 37 ° C.</li>
	<li>Placez le coussin chauffant sur la table d’opération et couvrez-la avec draps chirurgicaux stériles. Remarque : Dans toutes les procédures de survie, la technique « No Touch » est utilisée ici pour maintenir la stérilité.</li>
</ol>2. préparation des animaux et en effectuant la laminectomie vertébrale T9-T10
<ol><li>Se procurer chez la souris adulte (Balb/c) mâle de 10 semaines. Induire l’anesthésie chez chaque animal à l’aide d’un début d’inhalateur avec 5 % isoflurane et puis ramené à 2-3 % pour maintenir la sédation pour le reste des procédures.</li>
	<li>Confirmer l’anesthésie complète en ne suscitant aucune réponse à une stimulation de nociception queue/patte pincée induite.</li>
	<li>Se raser les cheveux sur le dos (tête à la queue) avec une tondeuse électrique et appliquez ensuite la crème dépilatoire (3 min) pour enlever les poils restants. Enfin, laver le dos avec gommage eau/humide en cours d’exécution et retourner les animaux de leurs cages. Remarque : Cela est nécessaire pour éviter toute irritation supplémentaire pour la peau et la contamination chimique au moment de la blessure de la peau</li>
	<li>Le lendemain, appliquer la pommade ophtalmique pour les cornées pour protéger les yeux de l’évaporation au cours de l’intervention chirurgicale et ensuite, frotter la peau avec 3 préparations alternatives de betadine scrub et 70 % d’éthanol.</li>
	<li>Avec un scalpel, effectuer une incision de la peau (~1.0-1.5 cm) le long de la ligne médiane sur le dos au niveau des vertèbres T8-T12. Remarque : Au niveau des vertèbres est identifié en retour comptant la vertèbre de T13 utilisant l’emplacement des côtes flottantes qui correspondent au T13 vertèbre11,12.</li>
	<li>Désactivez le tissu adipeux sous-cutané pour obtenir l’accès aux muscles paravertébraux et ensuite disséquer eux lentement pour exposer les apophyses épineuses et les limbes des deux côtés. Remarque : Faire cette procédure très soigneusement pour éviter un saignement excessif ou toute blessure à la moelle épinière, à ce stade.</li>
	<li>Effectuer une laminectomie pour exposer la moelle épinière (T9-T10 vertèbres) en décollant doucement la lame la colonne vertébrale à l’aide de pinces à microdissecting. Remarque : Effectuer la laminectomie afin qu’un excès de la moelle épinière est exposé pour faciliter la création de la lésion. Dans le groupe témoin, seulement la laminectomie est effectuée.</li>
</ol>3. effectuer la T9-T10 complète de la moelle épinière
<ol><li>À l’aide de pinces, fixer la colonne vertébrale à T8 et ascenseur vers le haut à exagérer la courbure de la colonne vertébrale.</li>
	<li>À l’aide des ciseaux, section de la moelle épinière entre les vertèbres T9 et T10 complètement vers le plancher du canal vertébral, afin d’assurer une transection complète.</li>
	<li>Après avoir observé la transection complète sous un microscope chirurgical, appliquer un morceau de graisse sous-cutanée sur le site de laminectomie pour fournir une protection supplémentaire à la moelle épinière avant la fermeture du site opératoire.</li>
	<li>Enfin, fermer la plaie et suturer les muscles paravertébraux, fascia superficiel, à l’aide de la suture continue et puis fermez la peau à l’aide d' agrafes de suture12.</li>
	<li>Post-SCI, observer les selles le lendemain ; Toutefois, gérer la vessie en évacuation manuelle de la vessie. Remarque : L’échelle de souris Basso (BMS) peut être utilisé pour surveiller la progression de la récupération fonctionnelle du membre postérieur post-SCI au jour 2 et puis hebdomadaire, voir supplémentaire Figure 111,12,13.</li>
</ol>4. l’induction de l’escarre de peau après complète SCI
<ol><li>Immédiatement après la chirurgie de la SCI, frottez le dos de l’animal avec betadine et 70 % d’alcool.</li>
	<li>Pour une unité centrale sous le site de la SCI, injecté sous la peau du dos près de l’OS sacrum, un très faible volume (10 µL) de solution de bupivacaïne 0,125 % à l’aide d’une aiguille 25 G à endroits équidistants ~0.5-1.0 cm en dehors, dans une ellipse autour du site d’application aimant. Remarque : Pour une unité centrale au-dessus du site de la SCI, injecter la peau du dos près de la région cervicale.</li>
	<li>Soulevez un pli de peau sur le dos de la souris doucement et de ce "sandwich" entre 2 disques magnétiques (5 × 12 mm de diamètre, 2,4 g chacun, force magnétique 3800 G) (Figure 1). 11 , 12
</li>
	<li>Immédiatement après que l’application d’un aimant, retour animaux dans des cages unique placé sur un coussin chauffant jusqu'à ce que la pleine conscience est retrouvé (Figure 1).</li>
	<li>Après 12 h d’application d’un aimant, légèrement anesthésier l’animal à l’isoflurane et supprimer les aimants. Prendre une photo des sites de plaie, d’enregistrer la comparution initiale de l’unité centrale (jour heure 0 point). Couvrir la plaie avec le film de pansement transparent (3m) pour éviter la contamination ou séchage.</li>
</ol>5. post-opératoire soins aux animaux, l’euthanasie et prélèvement tissulaire pour histologie
<ol><li>Immédiatement après la chirurgie, injecter l’animal avec 1 mL de sérum physiologique 0,9 % par voie sous-cutanée pour l’hydratation.</li>
	<li>Injecter par voie sous-cutanée buprénorphine-SR (1 mg/kg) pour l’analgésie, immédiatement.</li>
	<li>Injecter par voie sous-cutanée animaux quotidienne meloxicam (1 mg/kg) et céfazoline (50 mg/kg pendant 3 à 7 jours) et deux fois quotidiennes évacuation de la vessie manuelle.</li>
	<li>Placer les animaux dans des cages simples et fournir de la nourriture accessible et eau ad libitum. Souris avec SCI complet peuvent marcher à l’aide de leurs pattes avant et approcher les aliments et l’eau sans aucune difficulté.</li>
	<li>Retirer les pinces chirurgicales 7 jours après la chirurgie de la SCI.</li>
	<li>Aux points de temps désirée après SCI et blessures de la peau, euthanasier les animaux par l’inhalation de CO2 (3-5 min), conformément aux directives sur l’euthanasie14AVMA.</li>
	<li>Recueillir des échantillons de peau blessée, difficulté à 10 % de formol pendant 24 h et ensuite stocker dans l’éthanol à 70 % à 4 ° C jusqu’au sectionnement.</li>
	<li>Pour traiter les tissus, incorporer à la paraffine et générer des sections minces (5 µm) sur un microtome. Coloration à l’hématoxyline et éosine (H & E) pour visualiser la morphologie tissulaire (Figure 3). Pour les études d’immunohistochimie (Figure 4), tache sections à l’aide d’anticorps appropriés pour Ki67 (prolifération), CD31 (angiogenèse) et l’actine muscle lisse-alpha (α-SMA) tel que décrit dans Kumar et al.,12 Remarque : Logiciel d’analyse image permet de quantifier l’image fonctionnalités12.</li>
</ol>

<ol><li>Rappl, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiological+changes+in+tissues+denervated+by+spinal+cord+injury+tissues+and+possible+effects+on+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22International+Wound+Journal%22%5BJournal%5D)">Physiological changes in tissues denervated by spinal cord injury tissues and possible effects on wound healing.</a> International Wound Journal. 5 (3), 435-444 (2008).</li>
<li>Salcido, R., Popescu, A., Ahn, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+in+pressure+ulcer+research%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Spinal+Cord+Medicine%22%5BJournal%5D)">Animal models in pressure ulcer research.</a> The Journal of Spinal Cord Medicine. 30 (2), 107-116 (2007).</li>
<li>Mak, A. F., Zhang, M., Tam, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanics+of+pressure+ulcer+in+body+tissues+interacting+with+external+forces+during+locomotion%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Biomechanics of pressure ulcer in body tissues interacting with external forces during locomotion.</a> Annual Review of Biomedical Engineering. 12, 29-53 (2010).</li>
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<li>Redelings, M. D., Lee, N. E., Sorvillo, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pressure+ulcers%3A+more+lethal+than+we+thought%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Skin+%26+Wound%22%5BJournal%5D)">Pressure ulcers: more lethal than we thought?</a> Advances in Skin & Wound. 18 (7), 367-372 (2005).</li>
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<li>Lala, D., Dumont, F. S., Leblond, J., Houghton, P. E., Noreau, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+pressure+ulcers+on+individuals+living+with+a+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Impact of pressure ulcers on individuals living with a spinal cord injury.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 95 (15), 2312-2319 (2014).</li>
<li>Li, C., DiPiro, N. D., Krause, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+latent+structural+equation+model+of+risk+behaviors+and+pressure+ulcer+outcomes+among+people+with+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Spinal+Cord%22%5BJournal%5D)">A latent structural equation model of risk behaviors and pressure ulcer outcomes among people with spinal cord injury.</a> Spinal Cord. 55 (6), 553-558 (2017).</li>
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<li>Kumar, S., Yarmush, M. L., Dash, B. C., Hsia, H. C., Berthiaume, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+complete+spinal+cord+injury+on+healing+of+skin+ulcers+in+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Impact of complete spinal cord injury on healing of skin ulcers in mouse models.</a> Journal of Neurotrauma. 35 (6), 815-824 (2018).</li>
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<li>Leary, S., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLeary%2C+S+%22AVMA+Guidelines+for+the+Euthanasia+of+Animals%22">AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals</a>. , American Veterinary Medical Association. Schaumburg, Illinois, USA. (2013).</li>
<li>Stadler, I., Zhang, R. Y., Oskoui, P., Whittaker, M. S., Lanzafame, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+simple%2C+noninvasive%2C+clinically+relevant+model+of+pressure+ulcers+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Surgery%22%5BJournal%5D)">Development of a simple, noninvasive, clinically relevant model of pressure ulcers in the mouse.</a> Journal of Investigative Surgery. 17 (4), 221-227 (2004).</li>
<li>Peirce, S. M., Skalak, T. C., Rodeheaver, G. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemia-reperfusion+injury+in+chronic+pressure+ulcer+formation%3A+a+skin+model+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair+and+Regeneration%22%5BJournal%5D)">Ischemia-reperfusion injury in chronic pressure ulcer formation: a skin model in the rat.</a> Wound Repair and Regeneration. 8 (1), 68-76 (2000).</li>
<li>Wong, V. W., Sorkin, M., Glotzbach, J. P., Longaker, M. T., Gurtner, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+approaches+to+create+murine+models+of+human+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedicine+and+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Surgical approaches to create murine models of human wound healing.</a> Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 969618-969625 (2011).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Le protocole dans la présente étude décrit un nouveau modèle expérimental de PUs d’évaluer l’impact de la SCI sur la cicatrisation des plaies. La peau PUs ont été induits via une application de 12 h de deux aimants de disque diamètre 12 mm sur un repli de peau dorsale, soit définir au-dessus ou au-dessous du site de la SCI. Les données montrent que la SCI ralentit la peau la cicatrisation chez les souris. Ce qui est important, ces observations ont été faites spécifiquement dans les blessures de la peau sous le niveau de ...

Escarres (PUs) sont les principales complications secondaires de traumatique SCI1. PUs sont des lésions localisées de la peau ou des tissus sous-jacents qui se produisent généralement sur les proéminences osseuses importantes où le poids corporel est concentré pendant que le patient est assis ou couché1. La peau, la graisse et le muscle sont exposés à cette pression constante qui mène au développement d’ischémie localisée, une inflammation des tissus, des dommages mécaniques et nécrose2,3.
Le développement de PUs est affecté par plusieurs facteurs locaux, y compris l’ampleur de la pression et de cisaillement, durée, humidité de la peau et la température, longévité de blessure et hygiène peau générales de chargement. Il y a aussi des facteurs systémiques qui jouent un rôle, tels que l’état physique général, OS et morphologie des tissus musculaires et force4, âge du patient, mesures hématologiques, sexe et des facteurs socio-économiques même, y compris l’état matrimonial, l’éducation, et revenu4,5.
La prévention et le traitement de PUs restent des défis importants chez les patients de la SCI. SCI patients développent PUs en ~ 30-40 % des cas, avec un taux de répétition de 60 à 85 %, probablement en raison de la faiblesse du tissu cicatriciel et le manque de sensation protectrice1. Ainsi, PUs aboutit souvent à la nouvelle hospitalisation de patients SCI et dans l’ensemble constituent un fardeau financier important (80 % vs SCI uniquement) pour le système de santé5,6,7,8,9 , 10.
Au meilleur de notre connaissance, il n’y a eu aucune étude dans les paramètres expérimentaux contrôlés d’étudier l’impact de la SCI sur le processus de guérison de PU à cause du manque de modèles animaux appropriés. Est décrit ici, un modèle de souris reproductible et cliniquement pertinente de PU dans la peau. Ce modèle peut être utilisé pour étudier la dynamique de l’apparition d’unité centrale et la guérison ultérieure, ainsi que de tester des approches thérapeutiques potentiels pour empêcher d’unité centrale ou améliorer d’unité centrale de guérison dans le cadre de la SCI.

<table><tbody><tr><td>Aimants Master</td><td>Magnetcs, Inc., Castle Rock, CO</td><td>CD14C</td><td>3800 G Force magnétique</td></tr><tr><td>Souris régime standard</td><td>PMI Nutrition International, Brentwood, MO</td><td></td><td>Standard Food Pellet</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>HENRY SCHEIN Santé animale&nbsp ;</td><td>SKU 029405</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH, Bethesda, MD</td><td></td><td>Logiciel d’analyse d’images</td></tr><tr><td>BETADINE Surgical Scrub HENRY</td><td>SCHEIN Santé animale&nbsp ;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pommade ophtalmique&nbsp ;</td><td>HENRY SCHEIN Santé animale&nbsp ;</td><td>SKU 008897</td><td></td></tr><tr><td>NAIR-Lotion Décapante</td><td>Church & Dwight Co., Inc. Princeton, NJ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ELOXIJECT (méloxicam) Injection</td><td>HENRY SCHEIN Santé animale&nbsp ;</td><td>UGS 049755</td><td>5 mg/mL, 10 mL</td></tr> de <tr><td>céfazoline sodique</td><td>HENRY SCHEIN Santé animale</td><td>UGS 054846</td><td>1 g, bouteille de 10 mL</td></tr><tr><td>Buprénorphine-SR&nbsp ;</td><td>ZooPharm, Windsor, CO</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>0,9 % Chlorure de sodium injectable USP</td><td>BRAUN, Irvine, CA</td><td>S8004-5384</td><td></td></tr><tr><td>10 % Neutre Buffered Formalin&nbsp ;</td><td>VWR, Radnor, PA</td><td>16004-130</td><td></td></tr><tr><td>BALB/C Souris mâle</td><td>Charles River Lab., Wilmington, MA</td><td>28</td><td></td></tr><tr><td>Applicateur stérile à pointe de coton</td><td>Puritan, Guilford, ME</td><td>SKU# : 25-806</td><td></td></tr><tr><td>Michel Suture</td><td>Clips Fine Science Tools (USA) Inc., Foster City, CA</td><td>12040-01</td><td></td></tr><tr><td>Suture chirurgicale, U.S.P.</td><td>Henry Schein Santé animale&nbsp ;</td><td>Référence 101-2636</td><td></td></tr></tbody></table>

modèle murin d’escarres après une lésion de la moelle épinière

Mouse Model of Pressure Ulcers After Spinal Cord Injury

Escarres (PUs) sont communs débilitante des complications des traumatismes de la moelle épinière (SCI) et ont tendance à se produire dans les tissus mous autour des protubérances osseuses. Il, cependant, connaît peu de choses sur l’impact de la SCI sur la guérison de blessure de la peau dans le contexte des modèles animaux dans les paramètres expérimentaux contrôlés. Dans cette étude, un modèle de souris simple, non invasif, reproductible et cliniquement pertinente de PUs dans le cadre de la SCI complet est présenté. Des souris mâles adultes (Balb/c, âgés de 10 semaines) ont été rasées et épilées. Post-épilation (24h), souris ont été soumises à une laminectomie suivie de transection de moelle épinière complète (T9-T10 vertèbres). Immédiatement après, un pli de peau sur le dos des souris a été levé et pris en sandwich entre deux disques magnétiques qui s’est tenues en place avant 12 h, créant ainsi une zone ischémique qui se transformèrent en une unité centrale au cours des jours suivants. Les zones blessés a démontré un oedème tissulaire et disparition épidermique par application d’un aimant après jour 3. PUs spontanément développé et guéri. La guérison était, cependant, comparée plus lente chez les souris de la SCI pour contrôler la souris non-SCI lorsque la plaie a été créée sous le niveau du SCI. par contre, aucune différence dans la guérison a été observée entre la SCI et le contrôle des souris non-SCI lorsque la plaie a été créée au-dessus du niveau de la SCI. Ce modèle est un outil potentiellement utile pour étudier la dynamique du développement d’unité centrale de peau et la guérison après SCI, aussi bien quant à tester des approches thérapeutiques qui peuvent aider à guérir les blessures.

Ce protocole crée une unité centrale dans le cadre du SCI. complet brièvement (tel qu’illustré à la Figure 1), toutes les souris avec ou sans SCI complet toléré les aimants très bien, qui sont restés dans leur position d’origine pour le plein 12 h (Figures 1C, 1D, 1f, 1 h ). Toutes les souris mis au point deux plaies circulaires, séparés par un pont de tissu normal (Figure 1e, 1i, 1 g). La réponse initiale de ble...

Nous décrivons ici une méthode simple pour provoquer des escarres peau cliniquement pertinente (PUs) dans un modèle murin de la moelle épinière (SCI). Ce modèle peut servir dans des études précliniques à l’écran pour les thérapies différentes pour PUs de guérison chez les patients de la SCI.

Modèle murin d’escarres après une lésion de la moelle épinière

Pressure ulcers (PUs) are common debilitating complications of traumatic spinal cord injury (SCI) and tend to occur in soft tissues around bony ...

L’objectif global de cette étude est d’examiner l’effet des lésions médullaires sur la dynamique du développement et de la guérison des ulcères de pression dans un modèle animal. Le principal avantage de cette technique est qu’elle n’altère pas les mouvements des animaux et qu’elle est très reproductible. Ce modèle fournit une plate-forme pour étudier la dynamique de la cicatrisation des plaies et tester diverses stratégies thérapeutiques pour les patients sci.Avant de commencer la procédure assurer une anesthésie appropriée par l’absence de réponse à un pincement de la queue. Raser les cheveux sur le dorsum à l’aide d’une tondeuse électrique. Ensuite, appliquez la crème depilatory, et laisser pendant trois minutes pour enlever le reste des cheveux.Après trois minutes, retirer la crème depilatory avec le gommage humide et laver le dorsum de la même façon. Et puis retourner les animaux dans leurs cages. Le lendemain anesthésier les animaux et appliquer l’onguent ophtalmique sur les cornées pour protéger les yeux du séchage pendant l’intervention chirurgicale.Ensuite, frottez la peau animale trois fois chacun avec du gommage à base de bétadine et 70% d’éthanol. Avant l’incision, util

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Bioingénierie

Un examen longitudinal de la perte osseuse dans les fémurs et les tibias des souris adultes a été réalisée suite à une blessure de la moelle épinière en utilisant séquentielle faible dose de rayons X scanne. La perte osseuse du tibia a été détecté pendant l'étude, tandis que la perte osseuse dans le fémur n'a pas été détecté jusqu'à 40 jours après la lésion.

Évaluation longitudinale des souris Limb perte osseuse Hind après un traumatisme médullaire utilisant Novel, In vivo Méthodologie

Une façon fiable et reproductible pour produire un col de l'utérus blessures unilatérale moelle épinière aide de l'impacteur Infinite Horizon est décrite. La méthode tire parti d'un cadre personnalisé conçu et pince pour stabiliser la colonne vertébrale. La procédure normalisée et biomécanique des blessures paramètres entraînent des blessures suffisantes et durables.

Un modèle de contusion unilatérale des blessures moelle épinière cervicale aide de l&#39;impacteur Infinite Horizon

Source : Kumar, S., et. al. Modèle murin d’escarres après une lésion de la moelle épinière. J. Vis. Exp. (2019)Cette vidéo montre une induction détaillée de lésions de la moelle épinière chez la souris. La souris anesthésiée est disséquée pour exposer les vertèbres T9-T10, et leurs apophyses épineuses sont retirées. La moelle épinière exposée est ensuite transectée pour infliger la blessure. La zone chirurgicale est alors fermée et la souris est laissée récupérer.

Génération d’un modèle de souris avec une lésion de la moelle épinière

Un modèle de contusion de la lésion médullaire sévère est décrite. Les étapes détaillées pré-opératoire, opératoires et post-opératoires sont décrits pour obtenir un modèle cohérent.

Un modèle de contusion de graves lésions de la moelle épinière chez les rats

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Neural Transplantation de cellules souches dans la partie expérimentale Modèle contusion de la moelle épinière des blessures

Les modèles de lésions de la moelle épinière doivent être hautement reproductibles. Nous démontrons que le modèle de compression par forceps calibré des lésions de la moelle épinière est une méthode chirurgicale facile à utiliser pour générer des lésions reproductibles de la moelle épinière murine.

Calibré Forceps modèle de compression de la moelle épinière des blessures

Cet article décrit une méthode permettant de générer une lésion par compression de la moelle épinière (LME) reproductible chez la souris néonatale. Le modèle fournit une plate-forme avantageuse pour étudier les mécanismes de plasticité adaptative qui sous-tendent la récupération fonctionnelle spontanée.

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Nous présentons un modèle de lésion de la moelle épinière à base de déplacement tissulaire qui peut provoquer une lésion de la moelle épinière persistante et cohérente chez les souris adultes.

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Des techniques mini-invasives et un dispositif de laboratoire simple améliorent la reproductibilité du modèle de lésion de la moelle épinière en réduisant les dommages opératoires chez les animaux de laboratoire et en permettant le maintien de la morphologie anatomique. La méthode est intéressante car les résultats fiables et la procédure reproductible facilitent les recherches sur les mécanismes de réparation des maladies.

Établissement d’un modèle de lésion médullaire par contusion chez la souris basé sur une technique mini-invasive

Un pipeline expérimental pour décrire quantitativement le modèle locomoteur de souris marchant librement à l’aide de la boîte à outils MouseWalker (MW) est fourni, allant des enregistrements vidéo initiaux et du suivi à l’analyse post-quantification. Un modèle de lésion de la moelle épinière chez la souris est utilisé pour démontrer l’utilité du système MW.

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Voici un nouveau dispositif automatisé de contusion des lésions de la moelle épinière pour les souris, qui peut produire avec précision des modèles de contusion des lésions de la moelle épinière à des degrés divers.

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Modèle murin d’escarres après une lésion de la moelle épinière

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