Name: Générant des Homo - et xénogreffe entre la pastèque et la gourde pour l’étude des microARN froid-sensible (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-20T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 22 s
Description: Découvrez une méthode efficace de greffage homo- et hétérogène entre pastèque et calebasse pour étudier les microARN sensibles au froid. Cette technique reproductible offre un taux de survie élevé et permet d'analyser la régulation des miARN sous stress thermique.

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Ce travail a été soutenu par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (31772191), le projet de recherche d’intérêt Public dans la Province du Zhejiang (2017C 32027), la clé Science projet de sélection végétale dans le Zhejiang (2016C 02051) et le Programme National pour le Support de Top-Notch jeunes professionnels (à P.X.).

1. stérilisation et la Germination des semences
<ol><li>Pour la stérilisation en surface, tremper les graines de la gourde dans un bécher de 500 mL, rempli d’eau à 58 ° C en remuant occasionnellement, jusqu'à ce que la température de l’eau baisse à 40 ° C.</li>
	<li>Pendant ce temps, mettre 3 kg de tourbe dans un sac en nylon et, pour stériliser, autoclave à 120 ° C/0.5 MPa pendant 20 min.</li>
	<li>Gardez le trempage des graines de la gourde pendant 4-5 h plus sous aucune agitation.<ol>
<li>Une fois que l’eau atteigne la température ambiante, rincer les graines 2 x - 3 x avec l’eau distillée.</li>
		<li>Égoutter l’excès d’eau et laisser les graines à germer dans un sac de gaze à 28 ° C dans une chambre de culture dans l’obscurité.</li>
		<li>Après la germination, semer les graines dans des pots en plastique (6 cm de diamètre) remplis de tourbe stérilisée.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Quand les plantules de Gourde ont développé deux cotylédons aplatis, répétez les étapes 1.1-1.3 avec graines de pastèque. Remarque : Cette gestion du temps s’assure que les tailles du scion et porte-greffe correspondent bien pour greffage réussi.</li>
</ol>2. croissance des semis et greffage
<ol><li>Pousser les semis dans une chambre de croissance avec un cycle de 16 h /8-h lumière sombre, gardant la température à 28 ° C pendant le jour (lumière) et à 22 ° C pendant la nuit (dark). Irriguer les plants en ajoutant de l’eau 1 x par jour en fin d’après-midi.</li>
	<li>Utilisez la méthode de coupe-greffe22 pour faire xénogreffe lorsque les plantules de la gourde (porte-greffe) sont au un stade vrai-feuilles et les cotylédons de la pastèque (scion) ont fait leur apparition (pas encore aplatis).<ol>
<li>Couper l’hypocotyle des semis melon d’eau à 2-3 cm sous les cotylédons et les feuilles de haut des semis Gourde sur le site immédiatement au-dessus de la vraie.</li>
		<li>Utiliser un cure-dent pour faire un trou dans le haut des semis ajustée de la gourde. Insérez les semis de pastèque taillée dans les trous des semis Gourde pour rendre la xénogreffe.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Utiliser une méthode similaire tel que présenté à l’étape 2.2 faire homogreffes. Remarque : Les combinaisons Homo - et heterografting doivent toujours être faits simultanément (Figure 1), qui, dans ce cas, se traduit par ce qui suit : pastèque/Gourde (WB, hétérogreffe), melon/pastèque (WW, homogreffe) et gourde bottle Gourde (BB, homogreffe).</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58242/58242fig1.jpg"> Figure 1 : Illustration des combinaisons de greffe et les structures de greffe-bouture. WB = heterografting de pastèque/bouteille Gourde ; WW = homografting melon/pastèque ; BB = Gourde/bouteille Gourde homo-greffage ; WB-S = feuilles de scion de la xénogreffe gourd pastèque/bouteille échantillonnés ; WB-R = feuilles de porte-greffe de la xénogreffe gourd pastèque/bouteille échantillonnés. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58242/58242fig1large.jpg" target="_blank">S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.</a>
3. postgrafting gestion, traitement par le froid et d’échantillonnage
<ol><li>Enwrap les plants greffés avec des sacs de polyéthylène transparent pour garder une humidité relativement élevée et de les entretenir pour 7D dans des conditions environnementales des cycles de la sombres de lumière/8 h 16 h, gardant la température à 28 ° C pendant le jour (lumière) et à 22 ° C pendant la nuit (obscurité).</li>
	<li>Découvrez les sacs de polyéthylène transparent sur le 7e jour. Laissez que les plantes poussent pour un autre 7 à 10 jours selon les mêmes conditions.</li>
	<li>Divisez les plants sains uniformes en deux groupes, un pour le traitement par le froid (souligné) et un pour le contrôle (non sollicités). Pour le groupe témoin, laisser les plants dans la même chambre de croissance (à 28 ° C) pendant 48 h supplémentaires, tandis que pour le groupe stress froid, transférer les semis dans une chambre de culture avec une température constante à 6 ° C, avec des conditions de lumière/obscurité tel que décrit à l’étape 2.1.</li>
	<li>Dégustez les feuilles du greffon et le porte-greffe de greffons (Figure 1). Congeler les échantillons immédiatement dans l’azote liquide et les stocker à-70 ° C jusqu'à l’utilisation.</li>
</ol>4. Bibliothèque préparation et séquençage haut débit
<ol><li>Transférer les échantillons congelés dans un tube de microcentrifuge de 2 mL dans l’azote liquide.</li>
	<li>Ajouter une bille en acier inoxydable (5 mm de diamètre) dans chaque tube contenant des tissus.</li>
	<li>Homogénéiser les tissus à une poudre fine à l’aide d’un homogénéisateur de moulin de perle pour 30 s.</li>
	<li>Pour chaque combinaison de greffage, prendre des quantités égales (0,1 g) de l’échantillon de sol de dix plants et mélangez-les dans un tube à centrifuger 10 mL. Ajouter une quantité appropriée de réactif de chlorhydrate de guanidium (Table des matières) basée sur les suggestions du fabricant correspondant au poids du tissu.<ol>
<li>Supprimer des contaminations de l’ADN génomiques par l’ajout de DNase RNA-libre j’ai 150 U/ml à 37 ° C pendant 1 h.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Déterminer le total quantité de RNA sur un système d’électrophorèse microcapillaire pour assurer l’intégrité de la RNA numéro &gt; 7.0. Remarque : Un RIN &gt; 7.0 assure une haute intégrité des échantillons RNA.</li>
	<li>Préparer de petites bibliothèques de RNA à l’aide d’une trousse commerciale (Table des matières) selon les instructions du fabricant. Utilisez 1 µg d’ARN total, par exemple pour lancer.<ol>
<li>Décongeler les réactifs de normalisation Bibliothèque et adaptateurs conformément aux directives du fabricant. Ligaturer les petits ARN avec les adaptateurs 5′ et 3′ et éluer et les purifier. Puis, inverse transcrivent la 5′ et 3' ligaturé petits ARN suivant les directives du fabricant.</li>
		<li>Effectuer l’amplification par PCR selon le protocole du fabricant. Évaluer la qualité et la quantité des banques d’ADNc en utilisant un système d’électrophorèse microcapillaire.</li>
		<li>Charge 1 µL d’une bibliothèque de RNA sur un système d’électrophorèse microcapillaire afin d’assurer le RIN &gt; 7.0.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Séquencer les petites bibliothèques de RNA sur un instrument de séquençage haut débit tel que décrit ailleurs23.</li>
</ol>5. miRNA et prédiction de gène cible
<ol><li>Pour chaque combinaison de greffage, utiliser l’open source UEA sRNA workbench version 2,4-plant24 pour supprimer des séquences de mauvaise qualité et de couper les séquences de l’adaptateur des lectures brutes. Jetez les séquences qui sont plus petits que 18 nt ou plus grand que 32 nt.</li>
	<li>Comparer les séquences « propres » de haute qualité à la base de données open source Rfam 11,0 à reconnaître et à supprimer les lectures des ARNr, ARNt, ARNpno et autres snARN.</li>
	<li>Aligner les lectures restantes et les génomes de référence en utilisant une séquence courte-lecture alignement outil25. Aucune incompatibilité n’est autorisée dans cette étape. Remarque : L’Assemblée de génome « 97103 » pastèque V126 a été utilisé pour l’alignement avec les lectures de scion et l’assemblage de génome « HZ » Gourde V127 a été utilisé pour les lectures de porte-greffe.</li>
	<li>Comparer les lectures restantes contre des miARN matures connues dans l’open source miRBase 22,028. Lectures qui sont homologues à miARN connus sont classés comme miARN conservée.</li>
	<li>Comparer les séquences qui ne parviennent pas à correspondre les précurseurs connus miRNA avec la séquence du génome. L’algorithme de29 MIREAP permet de détecter d’éventuels nouveaux miARN sous paramètres par défaut.</li>
</ol>6. differential Expression et analyse Ontology de gène
<ol><li>Comparer les niveaux d’expression des miARN basé sur leurs chefs en savoir. miARN avec une P-valeur (test exact de Fisher) &lt; 0,05 et une valeur de2 journal absolu &gt; 2 sont censées être exprimés.</li>
	<li>Utiliser un oligonucléotide antisens cible site selection tool (TargetFinder)30 pour prédire le potentiel ARNm complémentaire (gènes cibles de miRNA) pour les miARN différentiellement exprimés selon les paramètres par défaut.</li>
	<li>Utiliser l’ontology de gène (aller) enrichissement outil analytique31 pour révéler l’ontologie de gènes de cible de miRNA (aller) patterns sous une P- valeur seuil de 0,05 pour une signification statistique.</li>
</ol>

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Les auteurs n’ont rien à divulguer. Les données de séquençage ARN petites sont déposées dans la GenBank sous le numéro SRP136842.

Dans ce protocole, nous décrit en détail une méthode très efficace et reproductible pour faire homo - et xénogreffe entre la pastèque et la gourde. Cette méthode, ne nécessitant aucun équipement spécifique, est très facile à utiliser et a généralement un taux de survie très élevé de greffage. La méthode peut également être utilisée pour faire des greffes d’autres cucurbitacées, comme entre pastèque, concombre et citrouille.
Il est à noter que la taille relative (âge) du porte-greffe et scion e...

Greffage a longtemps été employé comme une technique agricole pour améliorer la production agricole et la tolérance aux stress biotiques et abiotiques1,2,3. Dans les systèmes heterografting, porte-greffes élites peuvent améliorer l’absorption de l’eau et les nutriments des plantes, renforcer la résistance aux agents pathogènes du sol et limiter les effets négatifs de la toxicité des métaux4,5, qui peuvent conférer les greffons un patrimoine vigueur de la croissance et une tolérance accrue aux stress environnementaux. Dans de nombreux cas, heterografting peut également avoir des répercussions qualités de fruits chez les plantes horticoles, menant à saveur de fruits améliorés et accroissement du contenu liés à la santé des composés6,7. Il a été constaté que le transfert longue distance de phytohormones, ARN, peptides et protéines entre le porte-greffe et le greffon est un mécanisme fondamental modulation de la croissance et le développement de reprogrammation de scion plantes8,9 ,,10. La greffe a été largement utilisée dans les études de signalisation sur de longues distances et le transport en ce qui concerne l’adaptation environnementale11. Expériences de greffes sont particulièrement puissants pour la détection sans ambiguïté des molécules transmises en récepteurs tissulaires ou vasculaire sap et activation ou suppression des cibles moléculaires en raison de la transmission de signal12.
ARN non codant, une grande classe d’ARN qui exercent des fonctions de régulation importantes dans les cellules, ont été signalés à jouer un rôle en facilitant l’adaptation des plantes au stress abiotique13. miARN est endogènes petit non-codantes ARN d’environ 20-24 nt. des études ont révélé le rôle régulateur des miARN dans divers aspects des activités de l’usine, tels que tire la croissance, des latéraux racine formation14,15,16, absorption des éléments nutritifs, le métabolisme de sulfate et homéostasie17et réponses aux stress biotiques et abiotiques insistent sur18. Récemment, l’expression des miARN et leurs gènes cibles étaient liés à la tolérance au stress dans les plants de concombre heterografted19de sel. Dans les greffons intervariety du raisin, les réponses de miRNA expression de contrainte de la sécheresse ont été trouvés à être dépendante de génotype20.
Le développement rapide et diminuant les coûts de la technologie de séquençage haut-débit ont fourni une excellente occasion pour l’étude des règlements de miRNA chez les plantes agronomiques. Pastèque (Citrullus lanatus [Thunb.] Mansf.), une récolte importante cucurbitacées cultivées dans le monde entier, est sensible aux basses températures. Calebasse (Lagenaria siceraria [Molina] Standl.) est une climat plus élastique cucurbitacées couramment utilisées par les agriculteurs à la greffe avec la pastèque. L’objectif principal de cette étude est d’établir une norme, efficace et la méthode pratique pour la fabrication de xénogreffe entre la pastèque (Citrullus lanatus [Thunb.] Mansf.) et la calebasse (Lagenaria siceraria [Molina] lettre standard). Ce protocole fournit également un schéma expérimental détaillé et méthodes analytiques pour l’étude de la régulation des expressions de miRNA après greffage, qui est utile pour révéler les mécanismes sous-jacents des avantages heterografting.
Le matériel végétal utilisé dans cette étude inclure le cultivar de la pastèque et le landrace gourde. Cultivar de la pastèque est un cultivar commercial à haut rendement mais sensibles aux basses températures. La gourde landrace est un porte-greffe populaire pour greffage avec pastèque, concombre et gourde, en raison de son excellente tolérance des basses températures21.

<table><tbody><tr><td>TRIzol Reagent</td><td>Invitrogen</td><td>15596026</td><td></td></tr><tr><td>DNase sans ARN I</td><td>Takara</td><td>D2270A</td><td></td></tr><tr><td>Truseq Kit de préparation d’échantillons de petits ARN</td><td>Illumina</td><td>RS-200-0012</td><td></td></tr><tr><td>2100 Bionalyser</td><td>Agilent</td><td>5067</td><td></td></tr><tr><td>ADN polymérase</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>F530S</td><td></td></tr><tr><td>UEA sRNA workbench 2.4-plant version&nbsp ; (logiciel)</td><td>NA</td><td>NA http://srna-workbench.cmp.uea.ac.uk/</td><td></td></tr> base de <tr><td>données Rfam 11.0&nbsp ;( site web)</td><td>NA</td><td>NA</td><td>http://rfam.janelia.org</td></tr><tr><td>miRBase 22.0&nbsp ;( site web)</td><td>NA</td><td>NA</td><td>http://www.mirbase.org/</td></tr> <tr><td>MIREAP(software)</td><td>NA</td><td>NA</td><td>https://sourceforge.net/projects/mireap/</td></tr> <tr><td>TargetFinder&nbsp ;( logiciel)</td><td>NA</td><td>NA</td><td>http://targetfinder.org/</td></tr></tbody></table>

générant des homo - et xénogreffe entre la pastèque et la gourde pour l’étude des microarn froid-sensible

Generating Homo- and Heterografts Between Watermelon and Bottle Gourd for the Study of Cold-responsive MicroRNAs

MicroARN (miARN) est endogènes petit non-codantes ARN d’environ 20-24 nt, connus pour jouer un rôle important dans le développement de la plante et l’adaptation. Il y a une accumulation preuve montrant que les expressions de certains miARN sont modifiées lorsque la greffe, une pratique agricole couramment utilisée par les agriculteurs pour améliorer la tolérance des cultures aux stress biotiques et abiotiques. La gourde est une culture intrinsèquement résilience climatique par rapport aux nombreux autres cucurbitacées majeures, y compris le melon d’eau, rendant l’un des porte-greffes plus largement utilisés pour le second. La promotion récente de technologies de séquençage haut-débit a fourni de grandes possibilités d’enquêter sur les miARN froid-sensible et leurs contributions aux avantages hétérogreffe ; Pourtant, les procédures expérimentales adéquates sont une condition préalable à cet effet. Nous présentons ici un protocole détaillé pour générer efficacement des homo - et xénogreffe entre le melon d’eau froide-sensibles et la gourde résistant au froid, en plus des méthodes de prélèvement d’échantillons de tissus, la génération de données et l’analyse des données. Les méthodes présentées sont également utiles pour d’autres systèmes de plantes-greffe, d’interroger miRNA règlements sous différentes contraintes environnementales, comme la chaleur, la sécheresse et la salinité.

<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58242/58242fig2.jpg"> Figure 2 : phénotypes différents greffons à température ambiante et des conditions de stress froid. (a) ce panneau montre homo - et semis heterografted à température ambiante comme contrôle. (b) ce panneau montre les homo - et heterografted plantules après 48 h de traitement par le froid. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58242/58242fig2large....

Nous présentons ici un protocole détaillé pour faire efficacement des homo - et xénogreffe entre pastèque et gourde, en plus des méthodes de prélèvement d’échantillons de tissus, la génération de données et l’analyse des données, pour l’étude des microARN froid-sensible.

Générant des Homo - et xénogreffe entre la pastèque et la gourde pour l’étude des microARN froid-sensible

MicroRNAs (miRNAs) are endogenous small non-coding RNAs of about 20 - 24 nt, known to play important roles in plant development and adaptation. There is ...

Cette méthode peut aider à répondre aux questions clés dans la réponse miRNA à la capacité de stress dans les greffes de plantes telles que la façon dont miRNA sont réglementés sous le stress froid dans les greffes de gourde bouteille pastèque. Le principal avantage de cette technique est qu’elle est une méthode très efficace et reproductible pour fabriquer de l’homo et des hétérogreffes. Il ne nécessite pas d’équipement spécifique, il est très facile à effectuer, et se traduit généralement par un taux de survie très élevé de la greffe.Grâce à cette méthode, peut fournir un aperçu de la réponse miRNA au stress dû au froid dans le système de greffe de gourde de bouteille de pastèque. Il peut également être appliqué à d’autres organismes modernes pour révéler les mécanismes du transport local et à longue distance miRNA. La démonstration visuelle de cette méthode est critique car les étapes de greffe sont difficiles à apprendre.Cette étape exigeait des compétences avancées et est essentielle à la survie des plantes greffées. Pour commencer, tremper les graines de gourde dans un bécher de 500 millilitres de 58 degrés Celsius d’eau. Remuer les graines de temps en temps jusqu’à ce que la température de l’eau descende à 40 degrés Celsius.Pendant que l’eau refroidit, mettez trois kilogrammes de terre tourbe dans un sac en nylon et autoclavez-la. Une fois que l’eau atteint la température ambiante, rincer les graines deux à trois fois dans de l’eau distillée et égoutter l’excès d’eau. Laissez les graines germer dans un sac de gaze à 28 degrés Celsius dans la chambre de croissance sombre.Après la germination, semer les graines dans des pots en plastique remplis du sol tourbeux stérilisé. Lorsque les semis de gourde de bouteille développent deux cotyléons aplatis, répétez ce processus avec des graines de pastèque. Faire pousser la gourde de bouteille et les semis de pastèque dans une chambre de croissance.Ajouter de l’eau aux semis une fois par jour l’après-midi. Ensuite, couper les hypocotyls des semis de pastèque de deux à trois centimètres sous les cotyléons. Couper le dessus des semis de gourde de bouteille sur le côté, immédiatement au-dessus des cotyléons.Ensuite, utilisez un cure-dent pour faire un trou dans le haut des semis de gourde de bouteille taillés. Insérez les plants de pastèque taillés dans le trou pour faire des hétérogreffes. Après cela, préparer des homogreffes en utilisant la méthode précédemment décrite.Tout d’abord, envelopper les semis greffés dans des sacs transparents en polyéthylène pour maintenir une humidité relativement élevée. Ensuite, maintenez les semis enveloppés dans une chambre de croissance pendant sept jours. Après le septième jour, retirer les sacs et laisser pousser les plantes dans les mêmes conditions pendant sept à dix jours.Divisez les semis en deux groupes, l’un pour les traitements contre le rhume et l’autre pour le contrôle. Remettre les semis de contrôle dans les mêmes conditions environnementales. Placez les semis traités à froid dans une chambre de croissance réglée à six degrés Celsius avec les mêmes conditions sombres et légères que le groupe témoin.Après 48 heures, laissez les échantillons du scion et des porte-greffes des greffes. Congelez immédiatement les échantillons dans de l’azote liquide et conservez-les à moins 70 degrés Celsius. Transférer l’échantillon congelé dans un tube de microcentrifugeuse de deux millilitres dans de l’azote liquide.Ajouter une perle en acier inoxydable à chaque tube d’échantillon et homogénéiser les tissus à une poudre fine. Pour chaque combinaison de greffage, prenez des quantités égales d’échantillon moulu à partir de 10 semis et mélangez-les dans un tube de centrifugeuse de 10 millilitres. Ajouter une quantité appropriée de reagent d’hydrochlorure de guanidium.Ensuite, ajoutez un à 150 unités par millilitre à 37 degrés Celsius sans ARN pendant une heure. Déterminez ensuite la quantité totale d’ARN sur un système d’électrophorésie microcapillaire. Après cela, décongelez les réaccateurs et adaptateurs de normalisation de la bibliothèque.Puis ligate petit RNase avec les cinq adaptateurs premier et trois premiers, et elute et les purifier. Reverse transcrire les cinq premier et trois premier ligated petite RNase suivant les directives du fabricant. Ensuite, effectuez l’amplification PCR suivant le protocole du fabricant.Ensuite, utilisez le système d’électrophoresis microcaillary pour s’assurer que le nombre d’intégrité de l’ARN est supérieur à sept. Chargez un microlitre d’une bibliothèque d’ARN sur le système d’électrophoresis microcapillllaire pour s’assurer que le numéro d’intégrité de l’ARN est supérieur à sept. Enfin, séquencez les petites bibliothèques d’ARN sur un instrument de séquençage à haut débit.En utilisant ce protocole, un taux de survie de 98% pour la greffe et les phénotypes pour la température ambiante et les conditions de stress froid ont été obtenus. les ARN de 24 nucléotides ont composé la plus grande classe d’ARN dans toutes les combinaisons de greffage, indépendamment du traitement de température. Après 48 heures de traitement à froid, 30 et 268 microARN ont été régulés de haut en bas, respectivement.Dans les feuilles de la scion dans les hétérogreffes, inversement, dans les feuilles du porte-greffe, 31 et 12 microARN étaient de haut en bas-réglés, respectivement. Dans les homogreffes de pastèque-pastèque, 64 et 83 microARN ont été vers le haut et vers le bas-réglés, respectivement. Ceci a démontré que l’hétérogreffe a causé la reprogrammation profonde des expressions de microARN.Tout en essayant cette procédure, il est important de se rappeler la taille relative et l’âge de la tige de fille et le scion est essentiel pour faire une greffe réussie. Suite à cette procédure, d’autres méthodes comme le séquençage de lncRNA, le profilage protéomique peuvent être effectuées afin d’étudier la régulation de l’ARNl et des protéines et le système de codage dans le système de greffage. Après son développement, cette technique a ouvert la voie à la recherche dans le domaine de la tolérance abiotique des plantes pour explorer le mécanisme de l’avantage de greffe de plantes à Cucurbitaceae et au-delà.N’oubliez pas que le travail avec l’hydrochlorure de guanidine peut être extrêmement dangereux et des précautions appropriées doivent toujours être prises avec l’exécution de cette procédure.

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Cette vidéo décrit la microinjection, une méthode courante de création de souches transgéniques de C. elegans. Dans l’exemple, nous verrons la micro-injection utilisée pour introduire un complexe ribonucléoprotéique (RNP) pour l’édition de gènes basés sur CRISPR.

Microinjection de gonades : une méthode d’administration de composés directement dans la lignée germinale de C. elegans

Utilisation de l'assemblage de l'ADN, de multiples vecteurs de CRISPR peuvent être construits en parallèle dans une réaction de clonage unique, ce qui rend la construction d'un grand nombre de vecteurs CRISPR une tâche simple. Tomate racines chevelues sont un excellent modèle pour valider des vecteurs CRISPR et de générer des matériaux mutantes.

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La micro-injection d'ovocytes de souris est couramment utilisée à la fois pour la transgénèse classique ( c.-à-d. L'intégration aléatoire des transgènes) et le ciblage des gènes médié par CRISPR. Ce protocole examine les derniers développements en micro-injection, avec un accent particulier sur le contrôle de la qualité et les stratégies de génotypage.

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Un protocole pour l&#39;élimination des gènes multiples dans les petits organoïdes intestinaux de souris à l&#39;aide d&#39;un concatériste CRISPR

Nous présentons ici des protocoles pour la collecte et microinjecting maïs precellular embryons de la chrysomèle des racines du afin d’effectuer des analyses génomiques fonctionnelles telles que la transformation de la lignée germinale et CRISPR/Cas9-génome édition.

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Cet objectif de ce protocole est de produire des axolotls chimériques avec des membres antérieurs héloïdes dérivés du tissu donneur cas9-mutagérisé utilisant des techniques embryonnaires de greffe de tissu.

Génération d'axolotls chimériques avec des membres haploïdes mutants par le biais de greffeembryonnaire

Nous présentons un protocole détaillé pour le système de silençage microARN (VbMS) à base du virus X de la pomme de terre (PVX) pour caractériser fonctionnellement les microARN endogènes (miARN) dans la pomme de terre. Les molécules d’imitation cible (TM) de miARN d’intérêt sont intégrées dans le vecteur PVX et exprimées transitoirement dans la pomme de terre pour faire taire la famille de miARN ou miARN cible.

MicroARN À base de virus de la pomme de terre X Silençage (VbMS) dans la pomme de terre.

Présenté ici est un protocole de micro-injection d’embryon Helicoverpa armigera (Hübner) et d’identification de mutant knockout créé par l’édition du génome CRISPR / Cas9. Les insectes mutants permettent de poursuivre les recherches sur la fonction des gènes et l’interaction entre différents gènes in vivo.

Microinjection embryonnaire et identification des mutants Knockout de l’Helicoverpa Armigera éditée par le génome CRISPR/Cas9 (Hübner)

Un protocole d’injection (agroinjection) à base d’Agrobacterium est présenté pour l’inoculation du virus de la mosaïque de la queue de renard et du virus de la mosaïque de la canne à sucre dans les semis de maïs. L’inoculation de cette manière conduit à une infection virale, à un silençage génique induit par le virus des gènes marqueurs et à une surexpression virale de GFP.

Agroinoculation directe de plants de maïs par injection avec le virus recombinant de la mosaïque de la queue de renard et le virus de la mosaïque de la canne à sucre Clones infectieux

Ce protocole décrit la microinjection et l’électroporation in vivo pour l’édition du génome médiée par CRISPR restreinte régionalement dans l’oviducte de souris.

Modèles murins génétiquement modifiés par génome somatique utilisant la microinjection et l’électroporation in vivo

Cette étude a développé un flux de travail pour la génération et le maintien de lignées mutantes stables pour l’escargot pommier d’eau douce, Pomacea canaliculata. Les protocoles incluent la collecte de zygotes, leur microinjection avec les composants du système CRISPR/Cas9 pour induire l’édition du génome, la culture ex ovo des embryons, et le génotypage après des croisements contrôlés.

L’escargot pommaque dorée Pomacea canaliculata : des zygotes aux lignées mutantes stables

Découvrez une méthode efficace de greffage homo- et hétérogène entre pastèque et calebasse pour étudier les microARN sensibles au froid. Cette technique reproductible offre un taux de survie élevé et permet d'analyser la régulation des miARN sous stress thermique.

Générant des Homo - et xénogreffe entre la pastèque et la gourde pour l’étude des microARN froid-sensible

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