Évaluation semi-quantitative à l’aide de traceurs FDG [¹⁸F] chez les Patients atteints de lésions cérébrales graves

Cette liste peut nous aider avec des questions clés dans le domaine de la neuro-réhabilition. En ce qui concerne le syndrome d’éveil insensible et les états conscients minimaux suivant des dommages traumatiques cérébraux de cerveau. Le principal avantage de cette technique est que, les patients présentant une déformation des tissus cérébraux tels que, l’atrophie, l’enflure, l’élargissement et le rétrécissement des espaces ventriculaires peuvent être aidés dans le stade chronique.

Tomoki Uchida, notre pharmacien Kazuaki Yokoyama, notre opérateur qualifié, Mizuho Kamezawa, notre infirmière Shinji Onodera et Yoshihiro Ozaki, technologue radio de mon laboratoire, démontreront la procédure. Commencez à fabriquer des kits de reagent pour la production automatisée de FDG, adaptés au synthétiseur utilisé. Réglez les seringues pour les kits de reagent de fabrication sur les pilotes de seringue correspondants dans le synthétiseur FDG automatisé.

Assurez-vous d’utiliser le programme automatique pour vérifier la mobilité du système de pompage. Vérifiez le volume de l’eau Oxygène-16 et 18, ainsi que le volume d’hélium, d’hydrogène et de gaz azotés. Assurez-vous également que l’eau du robinet est en dessous de 25 degrés Celsius pour le refroidissement primaire et de moins de 22 degrés Celsius pour le refroidissement secondaire.

Après une heure, assurez-vous que l’air ne peut pas s’échapper du kit de réaccage. Définissez des flacons d’acétyonitrile, de triflate de mannose, d’éthanol et de solution tampon PH. Commencez l’irradiation préliminaire de l’oxygène-16 dans le cyclotron.

Vérifiez que deux à trois millilitres d’eau sont irradiés dans des conditions optimales dans la zone cible. Ensuite, commencer l’irradiation de l’oxygène-18 de l’eau dans le cyclotron 90 minutes après le début. Réglez le temps de bombardement jusqu’à 20 minutes, et l’énergie des protons d’empiétant à 16,5 méga volts d’électrons.

Assurez-vous que la lampe s’allume lorsque le cyclotron est en marche. Après irradiation, utiliser du gaz hélium pour transférer de deux à trois millilitres de l’eau Oxygène-18 du cyclotron au récepteur en polypropylène du synthétiseur FDG. Accrochez les seringues sur les conducteurs de seringues correspondants et les flacons de reagent pressurisés.

Ensuite, dissoudre le triflate de mannose dans un flacon de 99,5 pour cent d’acétyonitrile pur, puis rincer la cassette avec de l’acétyl. Transférer l’eau irradiée Oxygen-18 au synthétiseur FDG. Puis, après avoir transféré l’élitiste à la contenant du fluor-18 sans liquide dans les récipients de réaction.

Laisser les solvants s’évaporer jusqu’à ce qu’ils soient secs. Pendant le séchage, ajouter trois fois 80 microlitres d’acétylonitrile au récipient de réaction. Effectuez l’évaporation à 95 degrés Celsius sous le flux d’azote et le vide.

Dissoudre 25 milligrammes de précurseur triflate mannose dans environ 3,5 millilitres de 99,5 pour cent d’acétylonitrile pur, puis l’ajouter au résidu sec. Une réaction de substitution nucléophile se produit à 85 degrés Celsius dans le synthétiseur FDG. Comme purification préliminaire, mélangé la solution étiquetée avec 26 millilitres d’eau distillée.

Ensuite, renvoyez environ quatre millilitres de la solution d’étiquetage diluée au récipient de réaction pour récupérer l’activité restante. Ensuite, passez la solution à travers la cartouche de phase inverse. Rincez ensuite la cartouche contenant le précurseur étiqueté piégé quatre fois à l’aide d’eau distillée.

Maintenant, convertir le composé acétylated en FDG dans la cartouche par hydrolyse alcaline. Utilisation de 750 microlitres d’hydroxyde de sodium 2 N pendant 90 secondes à température ambiante. Une fois l’hydrolyse terminée, recueillir la solution alcaline FDG en 70 millilitres d’eau, et la mélanger avec une solution de neutralisation.

Ensuite, purifiez la solution FDG neutralisée qui en résulte. Passez la solution FDG neutralisée à travers une deuxième cartouche de phase inverse retenant les composés partiellement hydrolysés et les sous-produits non bipolaires. Ensuite, passez-le à travers une cartouche Alumina-N conservant la dernière trace d’ions flouride F-18 non réagis, puis passez-le à travers un filtre de 0,22 micromètre.

Ensuite, rincez la cassette et les cartouches et filtrez avec 3 millilitres d’eau pour récupérer le FDG résiduel dans les lignes. Ensuite, égoutter le FDG dans le flacon final qui devrait contenir 15 à 17 millilitres de liquide. Après deux heures et 30 minutes à partir du début de la préparation, effectuer une analyse qualitative en examinant le flacon pour confirmer qu’il est transparent sans particules.

En outre, mesurer la quantité de liquide à l’aide d’une robe tourne l’équilibre. Et mesurer la radioactivité et la demi-vie à l’aide d’un étalon de dose de radioisotope. Maintenant, mesurez le PH ainsi que le cryptand-22 résiduel à l’aide de papier d’essai.

En outre, mesurez les endotoxines avec le dispositif approprié par la mesure d’absorption. Ensuite, distribuez 0,5 millilitres du flacon et effectuez un test de pureté radiochimique au moyen d’analyses de glucides. Utilisez des colonnes de 3,9 x 300 millimètres pour une chromatographie liquide haute performance pour détecter le pic de radioactivité.

Enfin, remplissez le flacon recouvert de plomb et de tungstène avec le traceur FDG, à une dose de 5 mégabecquerel par kilogramme de poids corporel. Puis, trois heures et 25 minutes après l’heure de départ, transférez le Traceur du Hot Lab à la salle de travail. Commencez par préparer l’itinéraire intraveineux pour l’administration FDG Tracer.

Fixez une aiguille de calibre 22 à 24 avec 5 millilitres d’héparine de sodium, sur l’un des membres inférieurs. Le patient doit ensuite s’allonger pendant 30 minutes avant d’entrer dans la zone contrôlée par rayonnement. Ensuite, revérifiez la patency de la voie intraveineuse en tirant le sang et mesurez le niveau de glucose sanguin du patient.

Ensuite, transférez le Traceur FDG du Hot Lab à la salle de travail par la fenêtre. Configurez le traceur dans le système de distribution automatique et d’injection. Vérifiez l’aspiration du traceur FDG à partir du flacon sur le moniteur.

Connectez le tube entre le patient et le système d’injection automatique de distribution. Poussez le fond et injectez le traceur FDG au patient. À ce stade, arrêtez-vous pour confirmer la quantité et le nombre de tracés, la radioactivité programmée, le temps d’injection, la vitesse d’injection et le niveau de radioactivité mesuré.

Maintenant, enregistrez la mesure automatique de la radioactivité pré-injectée qui apparaît sur l’affichage du système d’affichage automatique et d’injection. Ensuite, injectez le Traceur par voie intraveineuse à trois heures et 30 minutes, après le départ. Faire attendre le patient dans la salle d’attente de la zone contrôlée par rayonnement pendant 50 minutes.

Ensuite, quatre heures et 30 minutes après l’heure de début, transférez le patient de la salle d’attente à la machine PET/CT, et enregistrez des images cérébrales pendant 10 minutes. Après l’imagerie, vérifiez la zone d’injection pour l’extravasation. Une fois toutes les données acquises, évaluer toutes les données d’image pour une mesure normalisée de la valeur d’absorption à l’aide d’un logiciel d’imagerie et comparer l’évaluation clinique avec les images FDG-PET/CT.

Ce chiffre montre une image représentative du cerveau FDG-PET/CT. Montré ici est la mesure du métabolisme thalamic droit de glucose dans un navigateur d’image tridimensionnel. Ici, nous voyons une couleur représentative cartographié image après FDG-PET et CT fusion.

Le taux de glucose sanguin au moment de l’analyse comme représenté comme rouge avec un seuil maximum suv 50 pour cent. Ce panneau, montre des images représentatives de surface du cerveau en trois dimensions FDG-PET. Les régions rouges ont un métabolisme de glucose plus élevé que les régions vertes.

Le taux de glucose sanguin au moment de l’analyse est indiqué en rouge. Tout en essayant cette procédure, il est important que le temps de bombardement et l’énergie soient ajustés en fonction du nombre de patients. En outre, l’attention doit être accordée au tube cryptand-222, car il peut être facilement arrêté par la cristallisation.

Sachez également que le crochet des seringues doit être manipulé avec soin, car il peut être facilement cassé. En outre, sachez qu’un patient présentant des lésions cérébrales traumatiques au cerveau peut parfois faire des mouvements imprévus lors de l’acquisition d’images. Suivez cette procédure, ajoutez de nombreuses façons divers tests radioactifs peuvent être appliqués afin de répondre à des questions supplémentaires impliquant le métabolisme des acides aminés.

N’oubliez pas que travailler avec des matières radioactives peut être extrêmement dangereux et que des précautions telles que la radioprotection doivent toujours être prises lors de l’exécution de cette procédure.