Name: Collection rapide de volatiles de parfum floral utilisant une technique de collection volatile despace de tête pour léchantillonnage thermique de desorption de GC-MS (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-12-10T12:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 22 s
Description: Découvrez une méthode non destructive pour échantillonner rapidement les composés volatils floraux en botanique. Cette technique réduit le temps de prélèvement de plusieurs heures à environ dix minutes.

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UsDA-ARS Research Project number 6036-22000-028-00D. L'utilisation des noms de commerce, d'entreprise ou de société dans cette publication est pour l'information et la commodité du lecteur. Une telle utilisation ne constitue pas une approbation ou une approbation officielle par le Département de l'agriculture des États-Unis ou le Service de recherche agricole d'un produit ou d'un service à l'exclusion d'autres personnes qui pourraient convenir. De plus, le département de biologie-Lewis de l'Université de Floride et la bourse Varina Vaughn en biologie des orchidées (2017) et une bourse de recherche supérieure de l'Université de Floride (2014-2018) ont également fourni des fonds. Nous remercions également Cindy Bennington de l'Université Stetson pour la plante d'orchidée utilisée pendant le tournage de cette vidéo.

REMARQUE : Les parfums ou les lotions et produits parfumés ne doivent pas être portés au cours de l'une ou l'autre de ces procédures.
1. Sélection de fleurs
REMARQUE : Les fleurs utilisées peuvent pousser naturellement dans l'environnement ou être conservées dans des conditions environnementales artificielles. La température, l'humidité et le niveau de lumière pendant la collecte peuvent varier en fonction des espèces de fleurs utilisées et du type de données recueillies. Par exemple, des données ont été recueillies pendant la journée et la nuit pour la même fleur afin de déterminer si le parfum varie au cours de la journée, et recueillies à partir de fleurs in situ et de serre.
<ol><li>Sélectionnez une fleur qui n'est pas ouverte au départ, pour normaliser le temps de collecte de l'échantillon. Cela contrôle un parfum de changement de fleur au fil du temps.</li>
	<li>Selon la durée de la floraison, si possible, attendez au moins 24 heures après la floraison pour prélever l'échantillon, ce qui établit une heure standard pour tous les échantillons.</li>
	<li>S'il y a plusieurs fleurs en fleurs sur une plante, marquez celle qui sera utilisée avec du ruban adhésif ou quelque chose de semblable pour assurer l'échantillonnage répété de la même fleur.</li>
</ol>2. Préparation des matériaux
<ol><li>Utilisez des sacs de four (environ 40,5 cm et 44,5 cm) et des tubes PTFE ondulés.</li>
	<li>Dans un premier temps, faire bouillir les sacs de four dans l'eau pendant 30 min pour éliminer les composés plastiques résiduels. Pour sécher, cuire au four à 175 oC.</li>
	<li>Une fois les sacs séchés, ajouter une cloison en polypropylène à chaque coin de l'extrémité fermée des sacs de four. Ces pièces jointes permettent la connexion des tubes pour pousser l'air filtré au charbon de bois dans et tirer le parfum hors de l'espace de tête.</li>
	<li>Rincer tous les sacs et tubes avec 75% d'éthanol. Laisser sécher à l'air après le rinçant.</li>
	<li>Après que les sacs de four aient séché, cuire les sacs et les tubes dans un four à feu doux, environ 74-85 oC pendant 30 min.</li>
</ol>3. Collection volatile
REMARQUE : Des gants en néoprène stérile doivent être portés tout au long de ce processus, car le contact avec le sac ou les cartouches de filtre peut contaminer les échantillons.
<ol><li>Couvrir la fleur sélectionnée d'un sac de four cuit au four. Enfoncez le sac étroitement avec une cravate zippée en plastique sous la fleur pour empêcher l'écoulement d'air indésirable dans le sac.</li>
	<li>Fixez un tube de la sortie d'air de l'équipement de collecte et connectez-le à l'un des syndicats de cloisons sur le sac de four.</li>
	<li>Sur l'autre union de cloison, attachez une cartouche de filtre en verre contenant adsorbent de polymère poreux.</li>
	<li>Fixez un deuxième tube à l'équipement de collecte sur l'entrée sous vide. Connectez l'extrémité du deuxième tube sur la cartouche de filtre de collecte volatile en verre.</li>
	<li>Allumez à la fois la pompe à air et le vide en même temps réglé à 0,05 L/min. L'espace de tête autour de la fleur se remplira d'air, mais ne deviendra pas surgonflé. Le système tirera l'air du sac à travers le filtre, piégeant les volatiles floraux.</li>
	<li>Laisser la machine fonctionner pendant 10 min, puis éteindre à la fois la pompe à air et le vide. REMARQUE : Les espèces de fleurs qui produisent ou émettent une plus petite quantité de parfum peuvent avoir besoin d'être échantillonnées pendant une plus longue période de temps.</li>
	<li>Démonter les tubes et la cartouche de filtre en verre. Placer le filtre dans une fiole de verre avec un bouchon vissé. Une fois le bouchon allumé, sceller le flacon avec du ruban adhésif PTFE.</li>
	<li>Conserver les échantillons dans un congélateur jusqu'à ce qu'ils soient analysés à l'aide du GC-MS.</li>
	<li>Répétez ce processus avec un sac de four propre et un filtre en verre, cette fois avec un sac de four vide, pour recueillir un échantillon d'air vide comme un contrôle. Cela permet d'identifier tous les composants volatils de fond collectés. REMARQUE : La collecte répétée d'échantillons doit être effectuée à peu près à la même heure chaque jour, car certaines fleurs produisent des niveaux de parfum variables au cours d'une journée.</li>
</ol>4. GC-MS
<ol><li>Retirez la cartouche de filtre en verre du congélateur et placez-la dans un GC-MS dans le port de l'injecteur.</li>
	<li>Libérer les éléments volatils de l'espace de tête recueillis sur des adsorbents de polymère poreux de l'adsorbent par chauffage dans le piège de collecte thermique (TCT) à 220 oC pendant 8 min dans un flux de gaz d'hélium (taux : 1,2 ml/min).</li>
	<li>Recueillir les composés desorbed dans l'unité de trappe à froid tcT à -130 oC. La température du piège à froid est réglementée par le programme GC-MS.</li>
	<li>Chauffer à l'éclair l'unité de trappe à froid TCT pour injecter les composés dans la colonne capillaire du chromatographe à gaz auquel l'unité de piège à froid TCT était reliée. La méthode du TCT commence à -20 oC et se termine à 150 oC.</li>
	<li>Programmez le GC-MS pour passer de 40 à 280 oC à 15 oC/min, avec une cale de 5 min à 40 oC.</li>
</ol>5. Analyse des données
<ol><li>Pour l'identification, comparez les spectres de masse de l'échantillon à ceux des bibliothèques de spectres de masse (NIST et Département d'écologie chimique, Université de Goteborg, Suède11), ainsi que les temps de rétention des volatiles aux périodes des normes composées authentiques12.</li>
	<li>Comparez les chromatogrammes des substances volatiles recueillies pour identifier les pics récurrents courants.</li>
	<li>Après avoir identifié les volatiles de pointe, utilisez Pherobase (base de données en ligne des produits sémiochimiques et des phéromones) pour déterminer si elles ont été précédemment décrites dans les parfums floraux10.</li>
</ol>

<ol><li>Knudsen, J. T., Tollsten, L., Bergstrom, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Floral+scents-+A+checklist+of+volatile+compounds+isolated+by+head-space+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Phytochemistry%22%5BJournal%5D)">Floral scents- A checklist of volatile compounds isolated by head-space techniques.</a> Phytochemistry. 33, 253-280 (1993).</li>
<li>Dudareva, N. A., Pichersky, E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDudareva%2C+NA+%22Biology+of+floral+scent%22">Biology of floral scent</a>. , CRC Taylor and Francis. Boca Raton, FL. (2006).</li>
<li>Altenburger, R., Matile, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythms+of+fragrance+emission+in+flowers%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Rhythms of fragrance emission in flowers.</a> Planta. 174, 242-247 (1988).</li>
<li>Dodson, C. H., Dressler, R. L., Hills, H. G., Adams, R. M., Williams, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biologically+active+compounds+in+orchid+fragrances%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Biologically active compounds in orchid fragrances.</a> Science. 164, 1243-1249 (1969).</li>
<li>Theis, N., Raguso, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+pollination+on+floral+fragrance+in+thistles%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Chemical+Ecology%22%5BJournal%5D)">The effect of pollination on floral fragrance in thistles.</a> Journal of Chemical Ecology. 31 (11), 2581-2600 (2005).</li>
<li>Heath, R. R., Manukian, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+evaluation+of+systems+to+collect+volatile+semiochemicals+from+insects+and+plants+using+a+charcoal-infused+medium+for+air+purification%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Chemical+Ecology%22%5BJournal%5D)">Development and evaluation of systems to collect volatile semiochemicals from insects and plants using a charcoal-infused medium for air purification.</a> Journal of Chemical Ecology. 18, 1209-1226 (1992).</li>
<li>Cancino, A., Damon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+floral+fragrance+components+of+species+of+Encyclia+and+Prosthechea+%28Orchidaceae%29+from+Soconusco%2C+southeast+Mexico%5BTitle%5D)+AND+%22Lankesteriana%22%5BJournal%5D)">Comparison of floral fragrance components of species of Encyclia and Prosthechea (Orchidaceae) from Soconusco, southeast Mexico.</a> Lankesteriana. 6, 83-139 (2006).</li>
<li>Cancino, A., Damon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fragrance+analysis+of+euglossine+bee+pollinated+orchids+from+Soconusco%2C+south-east+Mexico%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Species+Biology%22%5BJournal%5D)">Fragrance analysis of euglossine bee pollinated orchids from Soconusco, south-east Mexico.</a> Plant Species Biology. 22, 129-134 (2007).</li>
<li>Sadler, J. J., Smith, J. M., Zettler, L. W., Alborn, H. T., Richardson, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fragrance+composition+of+Dendrophylax+lindenii+%28Orchidaceae%29+using+a+novel+technique+applied+in+situ%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Environmental+Science%22%5BJournal%5D)">Fragrance composition of Dendrophylax lindenii (Orchidaceae) using a novel technique applied in situ.</a> European Journal of Environmental Science. 1, 137-141 (2011).</li>
<li>Ray, H. A., Stuhl, C. J., Gillett-Kaufman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Floral+fragrance+analysis+of+Prosthechea+cochleata+%28Orchidaceae%29%2C+an+endangered+native%2C+epiphytic+orchid%2C+in+Florida%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Signaling+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Floral fragrance analysis of Prosthechea cochleata (Orchidaceae), an endangered native, epiphytic orchid, in Florida.</a> Plant Signaling and Behavior. , (2018).</li>
<li>National Institute of Standards and Technology. U.S. Department of Commerce. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.nist.gov/">https://www.nist.gov/</a> (2019).</li>
<li>The Pherobase: Databse of Pheromones and Semiochemicals. , Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.pherobase.com/">http://www.pherobase.com/</a> (2019).</li>
</ol>

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d'intérêts.

Bien que cette technique soit incroyablement précieuse pour sa vitesse d'échantillonnage et sa portabilité, l'une des limites est de l'utiliser pour les espèces épiphytes, ou celles qui poussent sur les arbres et non pas à partir du sol. Dans l'étude originale10, l'une des fleurs échantillonnées était épiphytique. Parce que la machine est trop lourde pour être suspendue librement, une base stable et élevée doit être faite pour l'échantillonnage. En outre, la machine peut être branchée à une prise ...

Les fleurs produisent généralement un parfum utilisé pour attirer les pollinisateurs. Ces parfums sont constitués de nombreux composés chimiques agissant tous ensemble comme un mélange floral1,2,3. Sans ces parfums, les fleurs seraient moins susceptibles de transmettre leurs informations génétiques à l'aide de pollinisateurs. Parfum floral a été documenté dans de nombreuses familles de plantes à fleurs, avec Orchidaceae étant l'une des familles les plus communesétudié4. Pour comprendre le rôle du parfum floral dans la pollinisation, il est important de recueillir et d'analyser non desdestructisés les composés chimiques émis par les fleurs à différents moments de la journée et pendant les quelques jours à semaines les fleurs sont ouvertes, comme le parfum peut varier au fil du temps5.
Un protocole précoce pour ce type d'échantillonnage a été développé par Heath et Manukian6. L'objectif de leurs méthodes d'échantillonnage était de réduire le stress sur le spécimen (p. ex., les plantes, les insectes) étudiés. Des documents antérieurs ont documenté que des procédures destructrices à la plante étaient nécessaires, telles que l'enlèvement des fleurs en fleurs afin de recueillir le parfum. Des publications plus récentes de parfum floral par Cancino et Damon7,8 ont utilisé des méthodes similaires. Cette étude a mis les fleurs dans des chambres en verre et a passé l'air purifié au-dessus d'eux ; puis les composés de parfum de la chambre ont été absorbés sur les adsorbents poreux de polymère dans les pipettes claires de Pasteur. Les parfums ont été recueillis pendant au moins deux heures au cours de cette étude. Sadler et coll.9 ont effectué des études de parfum floral sur une orchidée épiphyte dans le sud de la Floride, un peu comme l'étude originale10. Encore une fois, cette étude a exigé que les fleurs soient échantillonnées pendant plus de deux heures pour recueillir les volatiles de parfum, avec le parfum recueilli sur l'adsorbent poreux de polymère. L'article présente ici une méthode non destructive qui permet un échantillonnage beaucoup plus rapide, d'une durée de seulement 10 minutes. En outre, au lieu d'utiliser un four à four en verre sont utilisés, ce qui permet un mouvement plus flexible de la chambre et de réduire les risques d'dommages aux fleurs. Ces sacs sont disponibles en plusieurs tailles permettant la possibilité de sélectionner la taille du sac qui s'adaptera facilement à des échantillons individuels sans endommager l'échantillon ou le matériau environnant. L'adsorbent utilisé dans cette étude était Tenax Porous Polymer Adsorbent. Cela diffère de Porapak, parce que l'échantillon peut être thermiquement desorbed sur la colonne GC-MS pour analyse, éliminant l'utilisation d'un solvant chimique.
Les méthodes de cette étude fournissent un moyen d'échantillonner rapidement les substances volatiles des parfums produites par les fleurs et pourraient être utilisées pour échantillonner des substances volatiles provenant d'autres spécimens, comme les phéromones d'insectes ou les champignons volatils. Le temps réduit pour l'échantillonnage signifie qu'il y a moins de stress sur l'échantillon et la capacité de recueillir de nombreux échantillons dans un court laps de temps. Par exemple, dans Sadler et coll.9, la fleur n'était parfumée que la nuit, de sorte que seulement deux ou trois échantillons pouvaient être prélevés chaque nuit. Avec la méthode ici, des échantillons pourraient être prélevés toute la nuit à des intervalles de 15-20 minutes à partir de la même fleur. En outre, en utilisant des sacs au lieu de chambres en verre, l'espace de tête peut être suspendu plus facilement pour l'échantillonnage dans le domaine pour la collecte in situ sur les espèces végétales menacées ou menacées. En utilisant la méthode présentée ici, nous avons pu échantillonner des fleurs de 1,5 à 2 mètres au-dessus du sol. Ces méthodes sont incroyablement utiles pour la collecte de parfums en laboratoire et sur le terrain, et fournit aux chercheurs une technique d'échantillonnage qui est rapide et non destructrice pour l'échantillon.

<table><tbody><tr><td>Cloison Union</td><td>Cole-Palmer</td><td>UX-06390-10</td><td></td></tr><tr><td>Tube FEP</td><td>Cole-Palmer</td><td>UX-06407-60</td><td></td></tr><tr><td>Chromatographie en phase gazeuse</td><td>Hewlett Packard</td><td>6890</td><td></td></tr><tr><td>Laine de verre, silanisée</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>20411</td><td></td></tr><tr><td>Doublure d’entrée</td><td>Agilent</td><td>5062-3587</td><td></td></tr><tr><td>Spectromètre</td><td>de masse Hewlett Packard</td><td>5973</td><td></td></tr><tr><td>Reynolds sac de four</td><td>Reynolds Consumer Products</td><td>Turquie taille</td><td></td></tr><tr><td>Tenax Porous Polymer Adsorbant</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11982</td><td></td></tr></tbody></table>

collection rapide de volatiles de parfum floral utilisant une technique de collection volatile d'espace de tête pour l'échantillonnage thermique de desorption de gc-ms

Rapid Collection of Floral Fragrance Volatiles using a Headspace Volatile Collection Technique for GC-MS Thermal Desorption Sampling

Les parfums de nombreuses familles de fleurs ont été échantillonnés et les substances volatiles analysées. Connaître les composés qui composent les parfums peut être une étape importante pour la conservation des fleurs qui sont menacées ou en voie de disparition. Parce que le parfum floral est essentiel pour attirer les pollinisateurs, cette méthode pourrait être utilisée pour mieux comprendre ou même améliorer la pollinisation. Nous présentons un protocole utilisant un filtre portatif d'air de charbon de bois et le vide pour recueillir les volatiles de parfum floral, qui sont alors analysés par un GC-MS. En utilisant cette méthode, les éléments volatils des parfums peuvent être échantillonnés à l'aide d'une méthode non destructive avec une machine qui est facilement transportée. Cette méthodologie utilise une procédure d'échantillonnage rapide, réduisant le temps d'échantillonnage de 2-3 heures à environ 10 minutes. En utilisant GC-MS, les composés de parfum peuvent être identifiés individuellement, basés sur des normes authentiques. Les étapes utilisées pour la collecte des données de parfum et de contrôle sont présentées, de la configuration du matériel à la collecte de la sortie de données.

Les données représentatives du GC-MS sont présentées sous la forme d'un chromatogramme à la figure 1. En plus du chromatogramme, un fichier de données des résultats est également fourni (Fichier supplémentaire 1). Ce fichier de données fournit le temps de rétention pour chaque pic (RT), et une identification de ce composé que le pic est (Bibliothèque / ID). Les pics entre 10:00 et 15:00 minutes sont volatiles floraux, en raison du poids moléculaire des composés<sup class="xr...

Ici, nous présentons un protocole pour recueillir les volatiles de parfum floral des fleurs en fleurs, utilisant une procédure d'échantillonnage non destructive.

Collection rapide de volatiles de parfum floral utilisant une technique de collection volatile d'espace de tête pour l'échantillonnage thermique de desorption de GC-MS

Fragrances of many flower families have been sampled and the volatiles analyzed. Knowing the compounds that make up the fragrances can be an important ...

Parce que le parfum floral est essentiel pour attirer les pollinisateurs, cette méthode pourrait être utilisée pour mieux comprendre ou même améliorer la pollinisation des espèces de fleurs indigènes. Avec cette méthode, les volatiles parfum sont échantillonnés à l’aide d’une méthode non destructive avec une machine facile à transporter. Cette méthodologie utilise un échantillonnage rapide, réduisant le temps d’échantillonnage de deux à trois heures à 10 minutes.Ces méthodes permettent d’échantillonner rapidement les substances volatiles produites par les fleurs et pourraient être utilisées pour échantillonner les substances volatiles provenant d’autres spécimens, comme les phéromones d’insectes. Pour commencer, choisissez une fleur qui n’est pas ouverte au départ, et marquez la fleur avec du ruban indicateur pour assurer un échantillonnage répété de la même fleur. Faire bouillir les sacs du four dans l’eau pendant 30 minutes pour éliminer les composés plastiques résiduels.Pour sécher, cuire au four à 175 degrés Celsius pendant 60 minutes. Une fois les sacs séchés, ajouter une union de cloisons en polypropylène à chaque coin de l’extrémité fermée des sacs du four. Rincer tous les sacs et tubes avec 75% d’éthanol et laisser sécher à l’air libre.Ensuite, cuire les sacs et les tubes dans un four à feu doux, entre 74 et 85 degrés Celsius pendant 30 minutes. Selon la durée du temps de floraison, attendre au moins 24 heures après la floraison pour recueillir l’échantillon. Couvrir la fleur sélectionnée d’un sac allant au four cuit au four.Cinch le sac ensemble étroitement avec une cravate zippée en plastique sous la fleur pour empêcher l’écoulement d’air indésirable dans le sac. Portant des gants stériles en néoprène, fixez un tube de la sortie d’air de l’équipement de collecte et connectez-le à l’un des syndicats de cloisons sur le sac de four. Sur l’autre syndicat de cloisons, fixez une cartouche de filtre en verre contenant de l’adsorbent poreux en polymère.Fixez un deuxième tube à l’équipement de collecte sur l’entrée sous vide. Connectez l’extrémité du deuxième tube sur la cartouche de filtre de collecte volatile en verre. Allumez à la fois la pompe à air et le vide en même temps et réglez à 0,05 litres par minute.L’espace de tête autour de la fleur est rempli d’air mais pas surgonflé. Le système tire l’air du sac à travers le filtre, piégeant les volatiles floraux. Laissez la machine fonctionner pendant 10 minutes.Et puis éteignez à la fois la pompe à air et le vide. Démonter les tubes et la cartouche de filtre en verre. Placez le filtre dans un flacon de verre et vissez sur un bouchon.Sceller le flacon avec du ruban de fil ptfe. Conserver l’échantillon dans un congélateur jusqu’à l’analyse du SGMC. Répétez ce processus avec un sac de four vide pour recueillir un échantillon d’air blanc comme un contrôle.Pour des réplications cohérentes des mêmes substances volatiles, répétez la collecte d’échantillons à la même heure chaque jour, car certaines fleurs produisent des niveaux de parfum variables au cours de la journée. Tout d’abord, retirez la cartouche de filtre en verre du congélateur et placez-la dans un GCMS dans le port d’injection. Pour libérer les volatiles de l’espace de tête recueillis sur l’adsorbent poreux polymère de l’adsorbent, chauffer le piège de collecte thermique à 220 degrés Celsius pendant huit minutes dans un flux de gaz hélium à 1,2 millilitres par minute.Comparez les chromatogrammes des substances volatiles recueillies pour identifier les pics récidivants courants. Après avoir identifié les pics volatils, utilisez Pherobase pour déterminer s’ils ont déjà été décrits dans les parfums floraux. Dans cette étude, les données représentatives du GCMS sont présentées sous forme de chromatogramme.Les pics entre 10 et 15 minutes sont des volatiles floraux. Les substances volatiles recueillies ont été référencées à Pherobase pour déterminer si elles ont déjà été décrites dans un parfum floral. Par exemple, le composé numéro 21, avec un temps de rétention de 10.311 a été identifié comme benzaldéhyde.Benzaldéhyde est consultable sur Pherobase avec une liste de toutes les espèces de fleurs, organisée par la famille des plantes, à partir de laquelle ce composé parfum a été identifié. Les espèces d’orchidées sont montrées ici, à partir de laquelle le benzaldéhyde a été déterminé pour être présent dans le parfum floral. Les méthodes précédentes presédait de deux à quatre heures par échantillon.L’utilisation d’un solvant pour retirer l’échantillon du filtre entraînerait un pic de solvant sur le GCMS. Cela cacherait les composés de zéro à 3,5 minutes. Cette méthode permet de voir tous les composés.

rapid-collection-floral-fragrance-volatiles-using-headspace-volatile

Research

Recherche

JoVE Journal

Biochemistry

Biochimie

Une méthode simple est fourni qui permet l'extraction rapide et l'analyse des hormones végétales multiples à partir de petits échantillons de tissu. La procédure utilise l'extraction en phase vapeur comme l'étape de purification solennelle. Les échantillons sont analysés par des ions + GC / MS avec ionisation chimique qui produit principalement des (M +1).

Surveillance des hormones végétales Durant les réponses au stress

Secondaire ionisation par électronébulisation spectrométrie de masse (SESI-MS) permet la détection de composés organiques volatils (COV) sans avoir besoin d'aucune préparation d'échantillons. Ce protocole fournit des instructions pour le rapide (quelques minutes) la caractérisation des COV bactériennes utilisant le SESI-MS.

Caractériser Volatiles bactérienne secondaire à l&#39;aide d&#39;ionisation électrospray spectrométrie de masse (SESI-MS)

Une méthode rapide pour l'analyse des composés volatils dans les fruits est décrite. Les composés volatils présents dans l'espace de tête d'un homogénat de l'échantillon sont séparés et détectés rapidement à la chromatographie gazeuse ultra-rapide (GC) couplée à une onde acoustique de surface (SAW) du capteur. Une procédure de traitement des données et l'analyse est également discuté.

Analyse de fruits instable avec un nez électronique

Signaux olfactifs médiation de nombreux comportements différents chez les insectes, et sont des mélanges souvent complexes composées de quelques dizaines à quelques centaines de composés volatils. Chromatographie en phase gazeuse avec multi-canal d'enregistrement dans le lobe antennaire des insectes, nous décrivons une méthode pour l'identification de composés bioactifs.

L&#39;identification des composés volatils olfactifs chromatographie en phase gazeuse-à logements multiples enregistrements (GCMR) dans le lobe antennaire des insectes

Tracer des vapeurs explosives de TNT et RDX recueillies sur des tubes de désorption thermique sorbant remplis ont été analysés en utilisant un système de désorption programmée en température couplé au CA avec un détecteur à capture d'électrons. L'analyse instrumentale est combiné avec la méthode de dépôt direct de liquide pour réduire la variabilité de l'échantillon et compte de la dérive et des pertes instrumentation.

Détection quantitative des traces de vapeurs explosives par désorption à température programmée gaz Détecteur à capture d&#39;électrons-chromatographie

Les travailleurs mineurs de l’espèce de fourmi Colobopsis explodens sont disséqués afin d’isoler la cireuse de contenu stocké dans les réservoirs de leurs glandes mandibulaires hypertrophiés pour ultérieures d’extraction par solvant et l’analyse par chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse. L’annotation et l’identification des constituants volatils en utilisant le logiciel open source MetaboliteDetector est également décrite.

Isolement des matières réservoir glande mandibulaire de Bornéo ' explosion des fourmis (Formicidae) pour l’analyse par GC-MS et MetaboliteDetector Volatilome

Nous avons développé une méthodologie efficace pour l’échantillonnage et l’analyse des signaux d’odeur afin de comprendre comment ils peuvent être utilisés dans la communication animale. En particulier, nous utilisons la microextraction en phase solide de l’espace de tête couplée à la chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse pour analyser les composants volatils des odeurs animales et des marquages olfacteurs.

Échantillonnage et analyse des signaux olfacteurs d’animaux

La microextraction en phase solide de vaporisation totale (TV-SPME) vaporise complètement un échantillon liquide tandis que les analytes sont sorbés sur une fibre SPME. Cela permet de cloisonner l’analyte entre uniquement la vapeur de solvant et le revêtement de fibre SPME.

Chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse associée à la vaporisation totale de la microextraction en phase solide en tant qu’outil médico-légal

Une plate-forme de microextraction-chromatographie en phase solide et de chromatographie en phase gazeuse est décrite ici pour une identification et une quantification rapides, fiables et semi-automatisées des volatiles dans les fruits mûrs du cassis. Cette technique peut être utilisée pour augmenter les connaissances sur l’arôme des fruits et pour sélectionner des cultivars à saveur améliorée à des fins de sélection.

Profilage des composés volatils dans les fruits de cassis à l’aide de la microextraction en phase solide de l’espace de tête couplée à la chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse

Ce protocole décrit l’extraction de composés organiques volatils à partir d’un échantillon biologique avec la méthode d’extraction par sorbant assistée par vide, la chromatographie en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse à l’aide du rail de préparation d’échantillon Entech et l’analyse des données. Il décrit également la culture d’échantillons biologiques et le sondage d’isotopes stables.

Capture de composés organiques volatils microbiens produits activement à partir d’échantillons associés à l’homme avec extraction par sorbant assistée par vide

Présenté ici est une méthode d’enrichissement et d’analyse des composants volatils des extraits de thé en utilisant l’évaporation de saveur assistée par solvant et l’extraction par solvant suivie d’une chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse, qui peut être appliquée à tous les types d’échantillons de thé.

Analyse de l’arôme du thé basée sur l’enrichissement par évaporation des arômes assisté par solvant

Découvrez une méthode non destructive pour échantillonner rapidement les composés volatils floraux en botanique. Cette technique réduit le temps de prélèvement de plusieurs heures à environ dix minutes.

Collection rapide de volatiles de parfum floral utilisant une technique de collection volatile despace de tête pour léchantillonnage thermique de desorption de GC-MS (Vidéo) | JoVE Journal

Collection rapide de volatiles de parfum floral utilisant une technique de collection volatile d'espace de tête pour l'échantillonnage thermique de desorption de GC-MS

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