Name: Implantation d’une nouvelle balise acoustique Micro en juvénile lamproie du Pacifique et l’anguille d’Amérique (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-03-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 36 s
Description: Découvrez l'implantation de balises acoustiques micro chez les juvéniles de lamproie du Pacifique et d'anguille d'Amérique. Cette méthode rapide et sûre permet de suivre les comportements sans affecter la capacité de nage.

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Cette étude a été financée par l’US Corps d’armée des ingénieurs (USACE) et l’Office des Technologies Power eau US Department of Energy (DOE). Nous apprécions l’assistance technique auprès du personnel de PPNL suivant : Colin Brislawn, Eric Francavilla, Jill Janak, Huidong Li et Tim Linley. Nous remercions Kathy Kratchman de Delaware Valley Fish Company pour l’approvisionnement des anguilles à PPNL et Ralph Lampman et Tyler Beals des pêches Yakama Nation pour l’approvisionnement de la lamproie. Nous remercions également Brad Eppard, Scott Fielding et Ricardo Walker de l’USACE et Dana McCoskey et Tim Welch de la biche. Les études de laboratoire ont été menées à PPNL, qui est exploité par Battelle pour le U.S. Department of Energy underContractDE-AC06-76RL01830.

PPNL est accrédité par l’Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care. Anguilles et la lamproie ont été traitées conformément aux lignes directrices fédérales sur le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire, et les protocoles pour notre étude ont été menées dans le respect et approuvés par de PPNL Institutional Animal Care et Comité d’utiliser.
1. tag préparation (timing 22 minutes)
<ol><li>Placez les balises dans la solution d’éthanol 70 % pendant 20 min.</li>
	<li>Supprimer les balises à l’aide de brucelles en plastique et le placer dans un plat petit verre contenant de l’eau stérile.</li>
	<li>Supprimer les balises et les placer sur une tasse de pilule stérile.</li>
</ol>2. préparer la solution anesthésique (calendrier ~ 5 minutes)
<ol><li>Dans une petite tasse en plastique pèsent 40 g de Tricaïne.</li>
	<li>Dissoudre la poudre et l’eau du robinet dans un bécher de 500 mL sur une plaque d’agitateur avec barre de batteur et puis transférer dans une bouteille en plastique pour atteindre une solution stock de 80 g/L.</li>
	<li>Répétez la même procédure avec le bicarbonate de sodium et ajouter une bouteille séparée de 500 mL.</li>
	<li>À l’aide d’un conteneur de cuve en plastique de 10 L, remplissez-le d’eau de 5 L (même source d’eau comme les poissons à être étiqueté).</li>
	<li>Ajouter 6,25 mL de Tricaïne solution anesthésique et 6,25 mL de bicarbonate de sodium en utilisant une jauge battante mesure fixée sur le haut de la bouteille de 500 mL pour obtenir une dose de 100 mg/L pour la baignoire.</li>
	<li>Remuer pour bien mélanger la solution dans l’eau. Remarque : Avoir un couvercle pour couvrir la cuve pour s’assurer de la lamproie n’échappent pas alors que dans la solution anesthésique.</li>
</ol>3. lamproie marquage (calendrier ~ 6 minutes)
<ol><li>Lamproie de juvéniles de place (> 140 mm) en bain anesthésique à l’aide d’une petite épuisette.</li>
	<li>Attendre 4-5 min de la lamproie à devenir totalement démobilisés (la natation n’est plus en solution, tout en conservant un lent mouvement régulier gill).</li>
	<li>Utiliser une épuisette pour enlever lamproie, de prendre des mesures de longueur et de poids et d’enregistrer le code d’identification unique de la balise acoustique.</li>
	<li>Préparer un tampon de mousse de fermé-cellule épaisse 1,3 cm saturé avec revêtement de protection de l’eau première et puis 150 µL/L (voir Table des matières). Le revêtement de protection permet de contrecarrer la perturbation des muqueuses au cours de l’intervention chirurgicale.</li>
	<li>Placer la face ventrale de la lamproie vers le haut sur la mousse préparée. Placez une petite section de tube avec réglementé d’eau (un réservoir d’eau élevée) à l’écoulement à travers la région de la bouche pendant le processus chirurgical. Cela permet la respiration tandis que le poisson est en cours d’implantation de la balise.</li>
	<li>Localiser le site où l’incision doit être faite, ~ 20 mm en arrière de la branchie pores sur le côté latéral droit ou gauche. Utilisez une règle avec étoffe ou marqueurs placés sur le bloc de mousse pour référence.</li>
	<li>À l’aide d’un scalpel stérile de microchirurgie 3,0 mm avec un 15° lame (voir Table des matières) faites un 2,5 à 3 mm d’ouverture dans le sens latéral, veiller à ce que le scalpel coupe juste à travers la paroi interne de la peau. Voir la Figure 1.</li>
	<li>Placez la balise désinfectée antérieurement dans la cavité du corps à la main. Appliquez une légère pression sur le site de marquage pour s’assurer que la balise a emménagé dans la cavité du corps.</li>
	<li>Lamproie tagged place dans un seau de récupération contenant de l’eau douce des rivières fournis avec une pompe du réservoir d’oxygène poisson, tubes et Pierre à air.</li>
	<li>S’assurer que la lamproie ont récupéré de l’anesthésie et le transfert de réservoir pour futures études.</li>
</ol>4. anguille marquage (calendrier ~ 6 minutes)
<ol><li>Préparation de balise de répliquer et préparez anesthésique avec une dose de 240 mg/L de concentration Tricaïne et de bicarbonate de sodium.</li>
	<li>Ajouter 15 mL de chacun pour le bain d’eau de 5 L.</li>
	<li>Placer les anguilles juvéniles (> 130 mm) en bain anesthésique à l’aide d’une petite épuisette. Attendre 4-5 min pour anguille à devenir totalement démobilisés (la natation n’est plus en solution tout en conservant un lent, mais le mouvement constant de gill).</li>
	<li>Utiliser une épuisette pour enlever les anguilles et placer la face ventrale vers le haut sur une mousse à cellules fermées enduite avec le protecteur des poissons.</li>
	<li>Localiser le site où l’incision doit être faite, ~ 25 mm à la base de la nageoire pectorale, sur le côté latéral droit ou gauche</li>
	<li>Lame à l’aide d’un scalpel stérile de microchirurgie 3,0 mm avec un 15° faites un 2,5 à 3 mm d’ouverture dans le sens latéral, veiller à ce que le scalpel coupe juste à travers la paroi interne de la peau. Voir la Figure 2.</li>
	<li>Placez la balise désinfectée antérieurement dans la cavité du corps à la main. Appliquer une légère pression au site afin d’assurer la balise a emménagé dans la cavité du corps de marquage.</li>
	<li>Anguilles de place le tag dans une reprise seau contenant de l’eau douce des rivières, fourni avec une pompe d’oxygène de réservoir de poissons, tubes et de la pierre.</li>
	<li>Veiller à ce que l’anguille a récupéré de l’anesthésie et le transfert à réservoir pour futures études.</li>
</ol>

<ol><li>Mueller, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retention+and+Effects+of+Miniature+Transmitters+in+Juvenile+American+Eels%5BTitle%5D)+AND+%22Fisheries+Research%22%5BJournal%5D)">Retention and Effects of Miniature Transmitters in Juvenile American Eels.</a> Fisheries Research. 195, 52-58 (2017).</li>
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</ol>

Nous n’avons rien à divulguer.

Les résultats des études de laboratoire montrent que la procédure de marquage et étiquetage des effets n’ont pas d’effets néfastes sur la survie du poisson ou de la capacité de nage. Longue tenue et le suivi a montré que minime tag perte a eu lieu et qu’il n’était pas apparent au cours de la vie de tag (30 jours). La procédure d’implantation de balise a été efficace pour placer des balises dans la cavité du corps sans causer d’hémorragie importante ou des infections fongiques sur le site de marquage. La durée du marquage tout traiter (< 6 min) est bénéfique car il réduit le stress associé à du poisson étant anesthésié. Ces résultats caractérisent un nouvel outil de recherche de passage lamproie et anguille juvénile et peuvent être utilisées dans les études à venir. Cette technologie permettra aux chercheurs de suivre les mouvements de la lamproie et anguille dans les réseaux hydrographiques et comme ils approche barrages hydroélectriques ou autres structures qui empêchent le passage des poissons. À leur tour, les résultats peuvent mieux informer les décisions de gestion dans les silos à contribuer à la conservation de ces espèces tout au long de leurs stades juvéniles. Les étapes plus critiques du protocole implantation tag incluent en utilisant la dose d’anesthésique, profondeur et longueur de l’incision, placement des balises et vu la récupération appropriée disponible de bassins de rétention. Cette technique a ses limites minimales. Plus particulièrement, chirurgien de formation est tenu d’effectuer efficacement le < incision de 3 mm et placez les balises à l’endroit désiré. En outre, le processus de marquage exclurait de plus petite taille d’anguilles et de la lamproie (< 140 mm) en raison des limites de charge de balise. Nous ne recommandons pas toutes modifications aux protocoles décrits.
Méthodes alternatives pour le marquage des anguilles et des lamproies comprennent l’utilisation d’étiquettes PIT. Cependant, PIT-tags ne transmettent pas activement les signaux, donc poisson PIT-le tag peut être énuméré seulement car ils sont entraînés et détournées vers des installations de dérivation, ou passe à proximité d’un détecteur fixe10,11. Les applications futures de la balise de lamproie/anguille incluent la capacité de tag et de suivre les populations de migrateur lamproie et anguille dans n’importe quel environnement qu’ils habitent. Avantages supplémentaires à l’aide de la balise de lamproie/anguille comprendraient la possibilité d’estimer la survie, taux de secours déversoirs ou par l’intermédiaire de turbines, trajet dans les réservoirs, passage des retards et associés de comportement que les barrages approche des poissons.

Comprendre le comportement du poisson et des mouvements près de structures de rivière, comme les barrages hydroélectriques, qui peuvent entraver les voies de migration en amont ou en aval est un besoin de recherche en cours. Bien que de nombreuses études ont été menées à l’aide de la technologie actuelle, il existe encore plusieurs questions de recherche sur les anguilles juvéniles et la survie de la lamproie et comportements. Pour aider à résoudre ces questions, Pacific Northwest National Laboratory (PNNL) a développé un nouvel émetteur micro acoustique spécialement conçu pour une utilisation dans les anguilles juvéniles et les lamproies, appelées la lamproie/anguille tag1. Avant cette évolution, les balises acoustiques existantes étaient trop importantes pour être efficacement implantés dans les cavités du corps d’anguilles juvéniles et les lamproies et se traduirait par une charge de balise qui dépasse les normes acceptées (valeur prudente de balise au rapport de poids de corps est de 2 % ou moins et toute autre littérature suggère 4-5 %)2,3,4. Les balises de lamproie/anguille émettent des signaux codés uniques à une fréquence de 416,7 kHz, qui sont contrôlés par l’intermédiaire de récepteurs autonomes (hydrophones) à des structures fixes ou dans la rivière récepteurs5,6.
Dans le bassin du Columbia aux États-Unis, prise de conscience et le souci de comprendre le cycle de vie de la lamproie du Pacifique (Entosphenus tridentatus) s’est intensifiée parce que les populations ont diminué sensiblement au cours des 40 dernières années7 . Construction et exploitation d’installations hydroélectriques peuvent affecter négativement lamproie juvénile, comme leurs baisses ont eu lieu après la période de grands développements hydroélectriques8. Une source potentielle de mortalité est passage de barrage quand juvénile Pacifique lamproie out-migration vers l' océan9. Passive Integrated Transponders (PIT) sont couramment utilisés pour les espèces migratrices de poissons qui peuvent passer des ouvrages de dérivation (p. ex., des systèmes de bypass pour mineurs), qui permet aux poissons marqués être énuméré10,11. Cependant, lamproie juvénile sont censés migrer plus profondément dans la colonne d’eau que les saumons juvéniles et sont moins susceptible de passer à travers la déviation juvénile systèmes12. En raison de la probabilité de détection faible et un manque d’écloserie ou autres sources concentrées de lamproie juvénile pour PIT marquage, informations sur le passage de lamproie juvénile, survie, ou le comportement est très limitée. Connaissance du comportement Pacifique lamproie et la survie juvénile sont essentiels pour développer des stratégies d’atténuation pour le passage vers l’aval, y compris la conception de systèmes de dérivation pour les installations hydroélectriques et de structures d’irrigation détournement13.
L’anguille d’Amérique (Anguilla rostrata) est catadrome avec la phase adulte de migration de l’eau douce vers l’océan pour frayer. Leurs effectifs ont connu des déclins spectaculaires depuis les dernières décennies. Auparavant, ils étaient très abondants dans tous les grands fleuves qui se jettent dans l’océan Atlantique et en amont dans le fleuve Saint-Laurent au lac Ontario ; mais depuis 1980, anguille ont connu un déclin important dans l’abondance des stocks allant de 50 % dans la baie de Chesapeake à autant que 97 % dans le lac Ontario14,15,16. Les facteurs qui contribuent à leur déclin incluent ; la construction de barrages hydroélectriques, de fragmentation et de perte d’habitat et commercial récolte17. Elles figurent actuellement en voie de disparition en vertu de l’Endangered Species Act de l’Ontario (Canada). Le développement passé des installations hydroélectriques le long des grands fleuves de l’est des États-Unis États créent des obstacles qui empêchent les migrations riveraines des juvéniles et des adultes.
La balise acoustique nouvellement développés lamproie/anguille a été utilisée dans cette étude. Les balises ont été fabriqués de PPNL accrédité Bio-acoustique & Flow laboratoire18. La balise mesure longueur 12 mm x 2 mm de diamètre et a un poids de 0,08 g dans l’air. En raison de la petite taille de la balise, il peut être utilisé efficacement pour implantation dans anguilliforme ou juvéniles à l’aide d’une incision valvule, en raison de la petite incision nécessaire (< 3 mm de long). Également d’incision valvule : une quantité réduite de temps requis pour le processus chirurgical, cicatrisation plus rapide des tarifs et diminué la possibilité d’infections au site implantation19. Effets de l’implantation chirurgicale peut varier en réponse à l’emplacement de l’incision, longueur de la cavité du corps, stade de vie, espèces, étudier la durée et les conditions environnementales20,21,22,23. En plus de la taille, le poids est une variable importante car elle fournit une mesure de la charge de la balise (par exemple, le poids de la balise par rapport au poids du poisson). Le fardeau de la balise, en liaison avec tous les autres aspects de la procédure chirurgicale (p. ex., anesthésie, traitement, chirurgie), peut avoir un effet direct sur la rétention de la balise, survie, croissance, natation performance, ou la capacité du poisson pour éviter la prédation24, 25,26,27.

<table><tbody><tr><td>Bac en plastique de 10 L</td><td>&nbsp ; N/A</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Seau de 19 L</td><td>N/A</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Scalpel 3,00 mm</td><td>&nbsp ; Beaver-Vistec</td><td>377513</td> flacon de <td></td></tr><tr><td>500 ml</td><td>&nbsp ; Nalgene</td><td>&nbsp ; 2089-0016</td><td></td></tr><tr><td>Échelle d’Adam</td><td>&nbsp ; Produits d’essai de matériaux certifiés</td><td>&nbsp ; BCL-LBK12A</td><td></td></tr><tr><td>Pompe à air</td><td>&nbsp ; Amazon</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Pierre à air</td><td>&nbsp ; Pentair</td><td> ; ALS3</td><td></td></tr><tr><td>Épuisette, 3/32 in mesh</td><td>N/A</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Éthanol (70 %)</td><td>&nbsp ; Sigma-Aldrich&nbsp ;</td><td>24102</td><td></td></tr><tr><td>Protection contre les poissons</td><td>Kordon LLC</td><td>31456</td><td></td></tr><tr><td>Coussin en mousse</td><td>N/A</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Gants</td><td>Kimberly Clark&nbsp ;</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Mixer bar</td><td>&nbsp ; Sigma-Aldrich</td><td>&nbsp ; F37110-1128</td><td></td></tr><tr><td>Pince à épiler en plastique</td><td>N/A</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Distributeur verseur gage&nbsp ;</td><td>Fischer Scientific</td><td>&nbsp ; 13-683-60C</td><td></td></tr><tr><td>Manche de scalpel</td><td>&nbsp ; Beaver-Vistec</td><td>371360</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonate de sodium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>&nbsp ; S5761</td><td></td></tr><tr><td>Plaque d’agitation</td><td>&nbsp ; Corning, PC-351</td><td>&nbsp ; N/A</td><td></td></tr><tr><td>Méthanesulfonate de tricaïne, MS-222</td><td>Western Chemical Inc.</td><td>515388</td><td>Les poissons traités destinés à l’alimentation doivent être conservés dans de l’eau douce à une température supérieure à 10 °C. C (50&deg ; F) pendant 21 jours avant utilisation</td></tr><tr><td>Tube, 6 mm</td><td>N/A</td><td>&nbsp ; N/a</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

implantation d’une nouvelle balise acoustique micro en juvénile lamproie du pacifique et l’anguille d’amérique

Implantation of a New Micro Acoustic Tag in Juvenile Pacific Lamprey and American Eel

Juvenile Pacific lamproie et anguille servaient pour les évaluations de laboratoire pour déterminer les effets potentiels de l’implantation de la balise. Technologie de télémétrie a été identifiée comme un moyen d’obtenir de plus amples renseignements sur le mouvement et le comportement à travers une échelle spatiale plus grande qu’avec les autres techniques connues. Cette méthode vise à fournir une étape par étape des instructions détaillées sur l’implantation de la balise pour les lamproies et les anguilles. Pour les études de laboratoire en utilisant activement migration juvénile Pacifique lamproie (120-160 mm), nous avons déterminé que la présence de la balise n’a pas altérer la capacité de nage entre individus marqués et non marqués ou avoir toute perte significative de balise (< 3 %). Des résultats similaires ont été déterminées au cours d’essais en laboratoire de phase jaune anguille (113-175 mm). Aucune mortalité n’est survenue pendant une période de 38 jours de détention, et il y a perte minime tag (3,8 %). La présence de la balise n’avait aucun effet significatif sur la capacité de nage ou la survie des anguilles marqués par rapport aux témoins non balisés et il y avait des pertes minimes.

Études de laboratoire de lamproie juvénile
Une étude a été réalisée en 2015 afin de déterminer la faisabilité d’implantation d’une balise factice lamproie/anguilles en migration active PPNL juvénile lamproie du Pacifique. Un total de 195 lamproie du Pacifique (étape de la vie macrophthalmia) ont été transportés d’un site de collection de champ à PPNL. Deux tâches distinctes ont été menées. La première consistait à déterminer comment les poissons réagissent à l’implantation de la balise. Les variables déterminées perte d’étiquettes inclus, mortalité différée et guérison des tarifs pour les poissons marqués par rapport à un groupe sans étiquette (contrôle). Pour la natation de tâche deuxième essais ont été menés avec des poissons marqués et non marqués des catégories de taille de 10 mm (120-160 mm) pour déterminer les effets indésirables associés à capacité de natation. Les poissons poids varies entre 1,8 et 7,0 g et tag charges varies de 4,8 à 1,25 %. Une radiographie illustrant l’emplacement de l’étiquette à l’intérieur de la cavité corporelle est illustrée à la Figure 31. Un total de deux poissons abandonné leurs étiquettes pendant les 2 premiers jours de détention et aucune balise supprimée supplémentaires ne trouvées pendant le reste de la période de 28 jours de détention. La mortalité cumulée au cours de cette période a été de 14,3 % (7 poissons) pour la lamproie étiquetée et 9,6 % (5 poissons) pour le groupe témoin. Personne, tag et poissons témoins ont été placés dans une chambre de natation et a nagé à une vitesse constante de l’eau de 11 cm/s. Le débit a été sélectionné issu des précédents des tests de laboratoire qui indiquait une constante motion à l’extrémité inférieure de la soutenue de natation natation capacité9. Le temps de nage moyenne du groupe témoin était min 3,15 (SE = 42,5 s) et le temps de nage moyenne du groupe implanté est 2,3 min (SE = 30,2 s), qui n’était pas une différence significative (t = 0.958 ; p = 0,172). Les résultats de la performance de nage tests n’ont révélé aucune corrélation significative entre la longueur du poisson et la natation (durée par exemple, à l’incidence) pour soit les tags ou les groupes témoins (Figure 4). Impingement est décrit comme le poisson n’est plus capable de nager à la vitesse constante de l’eau et s’est reposé à l’écran en aval.
Études de laboratoire de l’anguille d’Amérique
Pour déterminer les effets de balise l possible sur la performance de nage, nous avons procédé à la vitesse de nage critique teste à l’aide de Ucrit, (un indice de performance natatoire prolongée) pour les six groupes de taille (n = 120 ; 113-175 mm) d’anguilles non marqués et étiquetés l’utilisation des balises fictives qui mesurait 11,4 x 1,8 mm (longueur x diamètre)1. Il n’y avait aucune différence significative entre les anguilles marqués et non marqués tel que mesuré en cm/s (Figure 5) ou des valeurs médianes, mesurées à la longueur du corps/s pour tous le tag Ucrits et groupes non balisés combinés (Figure 6). Aussi, nous avons effectué une exploitation prolongée des anguilles étiquetés (38 jours) et ne trouve aucune mortalité de groupes marqués et une perte d’étiquette bas de 3,8 % (1 sur 26 poissons)1. Basé sur les résultats de notre laboratoire, nous concluons que les balises acoustiques micro peuvent être efficacement implantés en anguille juvénile avec aucun effet significatif sur la capacité, la survie à long terme de natation et eu pertes minimes au cours de la vie de tag (30 jours).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59274/59274fig1.jpg"> Figure 1 . Photographies illustrant la séquence de marquage pour l’insertion de la balise au juvénile la lamproie du Pacifique. (A) lamproie positionné sur coussin en mousse. (B) Incision faite avec bistouri microchirurgical. Tag (C) être implanté. (D) lamproie de l’étiquetage. Toutes les photos ont été prises de la lamproie même (148 mm). 
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59274/59274fig2.jpg"> Figure 2 . Photographies illustrant la procédure de marquage pour les anguilles d’Amérique juvénile. (A) avant l’incision. (B) après l’incision. (C) après insertion antérieure de la balise. Toutes les photos ont été prises de l’anguille même (138 mm). 
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59274/59274fig3.jpg"> Figure 3 . Radiographies de balise factice lamproie/anguille à l’intérieur de la cavité du corps d’une lamproie du Pacifique juvéniles. 
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59274/59274fig4.jpg"> Figure 4 . Tarifs à partir de tests de performance pour le contrôle (non identifié) de natation et tag lamproie, séparée en catégories de taille de 10 mm avec des barres de l’écart-type positif. La taille des échantillons est répertoriée dans les barres individuelles.
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59274/59274fig5.jpg"> Figure 5 . Diagrammes en boîte de nage critique vitesse pour les catégories de taille des anguilles testés en cm/s pour les anguilles marqués et non marqués (10 par traitement). Les lignes dans chaque case représentent la médiane ; le haut et le bas lignes représentent le 75e et 25e percentiles, respectivement ; les moustaches sont les albums 90e et les percentiles 10 bas ; et les valeurs extrêmes sont représentés par des cercles fermés. 
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59274/59274fig6.jpg"> Figure 6 . Vitesse de diagrammes en boîte de nage critique dans la longueur du corps/s pour les anguilles marqués et non marqués (10 par traitement). Les lignes dans chaque case représentent la médiane ; le haut et le bas lignes représentent le 75e et 25e percentiles, respectivement ; les moustaches sont les albums 90e et les percentiles 10 bas ; et les valeurs extrêmes sont représentés par des cercles fermés.

Cet article illustre la procédure d’implantation d’une balise acoustique micro en juvéniles Pacifique lamproie et anguille d’Amérique. Notre demande est fondée sur des essais en laboratoire, qui indiquent que les balises acoustiques peuvent être implantés avec succès avec aucun effet apparent sur la capacité ou de survie et de pertes minimes de natation.

Implantation d’une nouvelle balise acoustique Micro en juvénile lamproie du Pacifique et l’anguille d’Amérique

Juvenile Pacific Lamprey and American eels were used for laboratory evaluations to determine potential effects from tag implantation. Telemetry technology ...

L’objectif global de cette procédure est d’implanter des étiquettes acoustiques miniatures dans les cavités corporelles de la lamproie juvénile du Pacifique et de l’anguille américaine et de surveiller leur comportement et leurs effets physiques après le processus d’étiquetage. De nombreuses études ont été menées pour comprendre la survie, le comportement et les mouvements des poissons près des structures fluviale, comme les barrages hydroélectriques, qui peuvent entraver les voies de migration en amont ou en aval. Pour répondre à ce besoin continu et d’utilisation, pacific Northwest National Lab a mis au point une nouvelle étiquette acoustique miniature spécialement conçue pour l’utilisation dans la lamproie juvénile et les anguilles appelée lamproie et étiquette d’anguille.Cette méthode identifie les protocoles d’utilisation de taux de dose acceptables, de manipulation du poisson sans blessure ni perte de stress et d’identification de l’emplacement optimal où les étiquettes peuvent être implantées. Le principal avantage de cette technique de marquage est la vitesse du processus, car aucune suture n’est requise. L’emplacement de l’étiquette dans la cavité du corps minimise le stress physiologique, favorise la rétention des étiquettes et ne cause aucun effet néfaste sur la capacité ou le comportement des poissons à nager.Pour commencer, préparez les étiquettes pour l’implantation en les désinfectant. Placez les étiquettes dans la solution 70% éthanol à partir de 20 minutes. Retirez ensuite les étiquettes à l’aide d’une pince à épiler en plastique et placez-les dans un petit plat en verre contenant de l’eau stérile.Ensuite, retirez les étiquettes et placez-les dans une tasse de pilule stérile. L’étape suivante consiste à préparer le bain anesthésique qui permet de manipuler et de tagué les poissons. Dans une petite tasse en plastique, poids 40 grammes de tricaine.Dissoudre la poudre dans un bécher de 500 millilitres d’eau du robinet sur une plaque à remuer et une barre de mélangeur. Ensuite, transférez-le dans une bouteille en plastique de 500 millilitres pour obtenir une solution de stock de 80 grammes par litre. Répétez la même procédure avec du bicarbonate de sodium et ajoutez-le à une bouteille séparée de 500 millilitres.Remplissez une baignoire en plastique de 10 litres avec cinq litres d’eau de la même source que le poisson à tagué. Ajouter 6,25 millilitres de solution tricaine et 6,25 millilitres de bicarbonate de sodium, à l’aide d’une jauge de mesure fixée au sommet des bouteilles de 500 millilitres. Il en résulte une dose de 100 milligrammes par litre à la baignoire.Le bicarbonate de sodium est ajouté à une dose égale à la tricaine pour maintenir l’équilibre du pH, car la tricaine est acide. Remuer pour bien mélanger la solution, dans la baignoire, et avoir un couvercle disponible pour couvrir la baignoire pour s’assurer que la lamproie ne s’échappe pas pendant la solution anesthésique. Ceci complète la préparation de solution anesthésique.Placez une lamproie individuelle dans le bain anesthésique, à l’aide d’un petit filet à trempette. Attendez de quatre à cinq minutes que la lamproie soit complètement démobilisée et arrêtez de nager, tout en maintenant un mouvement branchial lent mais régulier. Utilisez un filet à trempette pour enlever la lamproie.Prenez la mesure de la longueur et du poids et enregistrez le code d’identification unique de l’étiquette acoustique. Pendant ce temps, préparer un tampon de mousse à cellules fermées de 1,3 centimètre d’épaisseur, saturé d’eau d’abord, puis 150 microlitres par litre de solution de revêtement protecteur. Le revêtement aide à contrer la perturbation des muqueuses pendant l’intervention chirurgicale.Placez le côté ventral de la lamproie vers le haut sur la mousse préparée. Placez une petite section de tuyaux de sorte qu’un approvisionnement réglementé en eau d’un réservoir d’eau élevé coule à travers la région de l’embouchure de la lamproie. Cela permet la respiration pendant que les poissons sont en cours d’implantation tag.Ensuite, localiser l’endroit où l’incision doit être faite, environ 20 millimètres postérieures aux pores branchials sur le côté latéral gauche ou droit. Une règle peut être utilisée pour la référence ou des marqueurs placés sur le tampon de mousse. À l’aide d’un scalpel microchirurgical stérile de 3,0 millimètres avec une lame de 15 degrés, faites soigneusement une ouverture de 2,5 à 3 millimètres dans la direction latérale, en veillant à ce que le scalpel coupe juste à travers la paroi intérieure de la peau.Ensuite, placez soigneusement l’étiquette désinfectée antérieurement dans la cavité du corps, à la main. Appliquez une légère pression sur le site de marquage pour vous assurer que l’étiquette s’est déplacée dans la cavité du corps. Ensuite, placez la lamproie étiquetée dans un seau de récupération, contenant de l’eau douce de la rivière avec un tube de pompe à oxygène et de la pierre d’air.Assurez-vous que la lamproie s’est remise de l’anesthésique et transférée au réservoir de détention pour une étude future. Suivez les mêmes étapes pour marquer l’anguille américaine à phase jaune avec ces différences. Pour atteindre un taux de dose de 240 milligrammes par litre, utilisez la solution anesthésique précédemment décrite de 80 grammes par litre de tricaine et de bicarbonate de sodium.Ajouter 15 millilitres de chacun au bain d’eau de cinq litres. L’incision doit être faite 25 millimètres à la base de la nageoire pectorale sur le côté latéral gauche ou droit ou environ 1/3 de la longueur totale de l’anguille. Assurez-vous que les poissons nagent normalement dans le récipient de récupération.Ce chiffre illustre la durée de l’empiage dans un tube de natation à vitesse constante de l’eau pour les quatre groupes de taille testés, de 120 à 160 millimètres. Les résultats ne montrent aucune différence statistique entre les groupes de contrôle marqués et non marqués. Ce chiffre illustre la vitesse critique de nage dans la longueur du corps par seconde pour les tests effectués dans une chambre de natation.Les groupes de taille varient de 111 à 120 à 161 à 175 millimètres. Les résultats montrent qu’il n’y a pas de différence statistique entre les groupes de contrôle marqués et non marqués. Ce chiffre montre la vitesse médiane de nage dans la longueur du corps par seconde pour tous les groupes de taille testés.Les vitesses étaient de 4,12 longueurs de corps par seconde pour les marqués et de 3,88 pour le groupe témoin. Encore une fois, il n’y a pas de différence statistique entre les groupes marqués et les groupes de contrôle. Les résultats de ces études de laboratoire démontrent que la procédure d’étiquetage et les effets d’étiquetage n’ont pas d’effets néfastes sur la survie ou la capacité de baignade des poissons.La procédure d’implantation de l’étiquette a été efficace pour placer des étiquettes dans la cavité du corps sans causer d’hémorragie ou d’infections significatives sur le site de marquage. La durée du processus d’étiquetage, inférieure à 60 secondes, est bénéfique en ce qu’elle réduit le stress associé à l’anesthésie du poisson. Ces résultats caractérisent un nouvel outil de recherche sur la lamproie juvénile et le passage de l’anguille et peuvent être utilisés dans de futures études.Cette technologie permettra aux chercheurs de suivre les mouvements de la lamproie et de l’anguille à l’intérieur des systèmes fluviaux à mesure qu’ils s’approchent de barrages hydroélectriques ou d’autres structures qui pourraient entraver le passage des poissons. À leur tour, les résultats peuvent mieux éclairer les décisions de gestion pour aider à conserver ces espèces tout au long de leurs stades de vie juvénile.

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