Name: Simulant une Mission spatiale vers Mars à l’aide du membre postérieur déchargement et poids partielle portant chez le rat (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-04-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 54 s
Description: Découvrez un modèle terrestre innovant simulant une mission vers Mars par déchargement des membres postérieurs et port partiel du poids chez le rat. Cette méthode permet d'évaluer les changements physiologiques liés à l'hypogravité.

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Ce travail a été soutenu par la National Aeronautics and Space Administration (NASA : NNX16AL36G). Auteurs aimeraient remercier Semple Carson qui ont fourni les dessins inclus dans ce manuscrit.

Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvées par l’animalier institutionnel et utilisation Comité (IACUC) de Beth Israel Deaconess Medical Center sous le numéro de protocole 067-2016.
Remarque : Mâle Wistar rats âgés de 14 semaines au départ (jour 0) sont utilisés. Des rats sont logés individuellement en cages personnalisé 24h préalables de base permettant d’acclimatation.
1. déchargement du membre postérieur
Remarque : Le harnais pelvien peut être mis sur animaux anesthésiés ou éveillés. Ici, la description du protocole est donnée sur animaux anesthésiés. Porter le bon équipement de protection individuelle (EPI) pour traiter les animaux.
<ol><li>Placez le rat dans une boîte d’anesthésie avec 3,5 % isoflurane et un débit d’oxygène de 2 L/min. Remarque : Anesthetization correcte est confirmée quand une pincée de ferme de la patte arrière ne pas déclencher une réaction.</li>
	<li>Une fois que l’animal est complètement anesthésié, placez le rat sur le banc avec gaz anesthésique venant d’une ogive avec 2 % isoflurane et une alimentation en oxygène de 1,5 L/min.</li>
	<li>Placez le rat dans une position couchée et enfilez le harnais pelvien dans un mouvement rostro-caudal.</li>
	<li>Plier le harnais pelvien pour fournir un confortable s’adapter tout en veillant à ne pas presser doucement les membres postérieurs pour éviter les écorchures et l’inconfort.</li>
	<li>Fixer la chaîne d’acier inoxydable avec le fermoir pivotant sur le dessus du harnais pelvien, où un crochet est fixé à la base de la queue.</li>
	<li>Retirez le rat de l’anesthésie et placer l’animal dans une cage personnalisée avec la chaîne étendue à son maximum.</li>
	<li>Une fois que le rat est pleinement éveillée et mobile, raccourcir la chaîne à l’aide de la boucle supérieure pivotante jusqu'à ce que les membres postérieurs peuvent ne plus atteindre le sol.</li>
	<li>Observer l’animal pendant quelques minutes afin d’évaluer son confort et s’assurer qu’à tout temps, les deux membres postérieurs restent complètement déchargé.</li>
</ol>2. roulement de poids partielle
Remarque : Cette étape peut être réalisée chez l’animal éveillé et anesthésiés.
<ol><li>Convertir le dispositif de suspension HLU une suspension PWB en ajoutant la partie triangulaire composée de chaînes en acier inoxydable et d’une tige arrière.</li>
	<li>Anesthésier l’animal suivant les mêmes procédures que détaillées pour la HLU (étapes 1.1 et 1.2).</li>
	<li>Placez une veste d’attache de la taille appropriée sur les membres antérieurs du rat (M pour les rats de 400 g ou moins, L pour les rats pesant au-dessus de 400 g) et fermer à l’aide de la rallonge soutien-gorge dos.</li>
	<li>Fixer un fermoir de la partie en forme de triangle au crochet situé sur le prolongateur de dos soutien-gorge et le fermoir opposé sur le crochet situé sur le harnais pelvien à la base de la queue.</li>
	<li>Permettre à l’animal récupérer de l’anesthésie dans la cage. Une fois réveillé, vérifiez que la suspension est égale sur les membres antérieurs et les postérieurs en raccourcissant la chaîne et en modifiant l’emplacement de la boucle de pivot inférieur si nécessaire. Remarque : Cette étape peut également être réalisée à l’aide d’une plaque de force pour confirmer le chargement égal sur tous les membres.</li>
	<li>Placez le rat sur le dessus de l’échelle pour enregistrer le poids de corps « chargé », c'est-à-dire, le poids de l’animal et l’ensemble de l’appareil, sans raccourcir la chaîne.</li>
	<li>Raccourcir la chaîne jusqu'à ce que la balance affiche 40 % du poids corporel « chargé » et rendu l’atteint niveau de gravité (exprimée comme le rapport entre le poids à vide et le poids sous charge).</li>
	<li>Observer l’animal pour s’assurer que le poids à vide est stable et que le rat est également chargé sur tous les membres.</li>
	<li>Retirez l’ensemble de l’appareil à l’aide de la tige et replacez le rat dans sa cage.</li>
</ol>3. Evaluation des pattes arrière poignée de force
<ol><li>Tenir le rat avec une retenue traditionnelle en mettant une main sous les pattes avant. Doucement, maintenez la queue avec la deuxième main.</li>
	<li>Approcher le guidon avec les pattes arrière et assurez-vous que les deux pattes reposent entièrement sur la barre. Remarque : Si le rat ne pas pleinement prenez la barre ou n’affiche pas de toute évidence de préhension volontaire, relâcher légèrement le dispositif de retenue. Si cela échoue, le rat de retour à sa cage et réessayer après quelques minutes.</li>
	<li>Tirez doucement le rat droite jusqu'à ce qu’il libère son emprise. Noter la force maximale affichée sur le transducteur.</li>
	<li>Attendre environ 30 s entre les mesures et répéter le test 3 fois.</li>
	<li>Calculer la moyenne des trois mesures de scoring, pour tenir compte de la fatigue.</li>
</ol>4. enregistrement du muscle masse fraîche
<ol><li>Place le rat dans une chambre l’euthanasie de CO2 . Après avoir attendu le moment opportun selon les lignes directrices IACUC et AVMA, confirmer l’euthanasie par une observation visuelle d’un manque de respiration.</li>
	<li>Placez le rat sur la table de dissection dans une position couchée et enlever la fourrure et la peau par incision près de la cheville à l’aide de ciseaux de dissection petit. Utiliser les mains pour retirer la couche de la peau.</li>
	<li>À l’aide de ciseaux de dissection petit, doucement briser l’aponévrose du muscle et isoler le tendon du calcanéum. Remarque : Le tendon du calcanéum est le point d’attache des muscles Gastrocnémiens et le muscle soléaire.</li>
	<li>Tout en tenant le tendon du calcanéum avec une petite paire de pincettes, utiliser des ciseaux de dissection pour isoler les muscles Gastrocnémiens et soléaire du biceps femoris, situé au-dessus.</li>
	<li>Une fois isolé, coupé du point d’attache des muscles Gastrocnémiens et soléaire dans la région poplitée.</li>
	<li>Tirer le soléaire loin le gastrocnémien délicatement et détacher en coupant le tendon du calcanéum.</li>
	<li>Place le rat dans une position en décubitus dorsal. Avec précaution, retirer le carénage et peler le jambier antérieur de la cheville dans un mouvement ascendant.</li>
	<li>Couper le jambier antérieur à son point de fixation supérieur.</li>
	<li>Enregistrer la masse humide exacte de chaque muscle excisé en utilisant une balance de précision taré et un bateau de pesage.</li>
</ol>

<ol><li>Desplanches, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+Functional+Adaptations+of+Skeletal+Muscle+to+Weightlessness%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Structural and Functional Adaptations of Skeletal Muscle to Weightlessness.</a> International Journal of Sports Medicine. 18 (S4), S259-S264 (1997).</li>
<li>Fitts, R. H., Riley, D. R., Wildrick, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiology+of+a+microgravity+environment%E2%80%AF%3A+Invited+review%E2%80%AF%3A+microgravity+and+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Physiology of a microgravity environment : Invited review : microgravity and skeletal muscle.</a> Journal of Applied Physiology. 89, 823-839 (2000).</li>
<li>Fitts, R. H., Riley, D. R., Widrick, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+and+structural+adaptations+of+skeletal+muscle+to+microgravity%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Functional and structural adaptations of skeletal muscle to microgravity.</a> The Journal of Experimental Biology. 204 (Pt 18), 3201-3208 (2001).</li>
<li>Narici, M. V., De Boer, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disuse+of+the+musculo-skeletal+system+in+space+and+on+earth%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Disuse of the musculo-skeletal system in space and on earth.</a> European Journal of Applied Physiology. 111 (3), 403-420 (2011).</li>
<li>di Prampero, P. E., Narici, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscles+in+microgravity%3A+from+fibres+to+human+motion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Muscles in microgravity: from fibres to human motion.</a> Journal of Biomechanics. 36 (3), 403-412 (2003).</li>
<li>Wagner, E. B., Granzella, N. P., Saito, H., Newman, D. J., Young, L. R., Bouxsein, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partial+weight+suspension%3A+a+novel+murine+model+for+investigating+adaptation+to+reduced+musculoskeletal+loading%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology+%28Bethesda%2C+Md.%E2%80%AF%3A+1985%29%22%5BJournal%5D)">Partial weight suspension: a novel murine model for investigating adaptation to reduced musculoskeletal loading.</a> Journal of Applied Physiology (Bethesda, Md. : 1985). 109 (2), 350-357 (2010).</li>
<li>Sung, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spaceflight+and+hind+limb+unloading+induce+similar+changes+in+electrical+impedance+characteristics+of+mouse+gastrocnemius+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Musculoskeletal+and+Neuronal+Interactions%22%5BJournal%5D)">Spaceflight and hind limb unloading induce similar changes in electrical impedance characteristics of mouse gastrocnemius muscle.</a> Journal of Musculoskeletal and Neuronal Interactions. 13 (4), 405-411 (2013).</li>
<li>Mcdonald, K. S., Blaser, C. A., Fitts, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force-velocity+and+power+characteristics+of+rat+soleus+muscle+fibers+after+hindlimb+suspension%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Force-velocity and power characteristics of rat soleus muscle fibers after hindlimb suspension.</a> Journal of Applied Physiology. 77 (4), 1609-1616 (1994).</li>
<li>Chowdhury, P., Long, A., Harris, G., Soulsby, M. E., Dobretsov, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+model+of+simulated+microgravity%3A+a+comparative+study+of+hindlimb+unloading+via+tail+versus+pelvic+suspension%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reports%22%5BJournal%5D)">Animal model of simulated microgravity: a comparative study of hindlimb unloading via tail versus pelvic suspension.</a> Physiological Reports. 1 (1), e00012(2013).</li>
<li>Morey, E. R., Sabelman, E. E., Turner, R. T., Baylink, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+rat+model+simulating+some+aspects+of+space+flight%5BTitle%5D)+AND+%22The+Physiologist%22%5BJournal%5D)">A new rat model simulating some aspects of space flight.</a> The Physiologist. 22 (6), S23-4 (1979).</li>
<li>NASA. National Space Exploration Campaign Report. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.nasa.gov/sites/default/files/atoms/files/nationalspaceexplorationcampaign.pdf">https://www.nasa.gov/sites/default/files/atoms/files/nationalspaceexplorationcampaign.pdf</a> (2018).</li>
<li>Mortreux, M., Nagy, J. A., Ko, F. C., Bouxsein, M. L., Rutkove, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+partial+gravity+ground-based+analogue+for+rats+via+quadrupedal+unloading%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">A novel partial gravity ground-based analogue for rats via quadrupedal unloading.</a> Journal of Applied Physiology. 125, 175-182 (2018).</li>
<li>Ellman, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+effects+of+botulinum+toxin+injection+and+hind+limb+unloading+on+bone+and+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Calcified+Tissue+International%22%5BJournal%5D)">Combined effects of botulinum toxin injection and hind limb unloading on bone and muscle.</a> Calcified Tissue International. 94 (3), (2014).</li>
<li>Swift, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partial+Weight+Bearing+Does+Not+Prevent+Musculoskeletal+Losses+Associated+with+Disuse%5BTitle%5D)+AND+%22Medicine+%26+Science+in+Sports+%26+Exercise%22%5BJournal%5D)">Partial Weight Bearing Does Not Prevent Musculoskeletal Losses Associated with Disuse.</a> Medicine & Science in Sports & Exercise. 45 (11), 2052-2060 (2013).</li>
<li>Morey-Holton, E. R., Globus, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hindlimb+unloading+rodent+model%3A+technical+aspects%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Hindlimb unloading rodent model: technical aspects.</a> Journal of Applied Physiology. 92 (4), 1367-1377 (2002).</li>
<li>Andreev-Andrievskiy, A. A., Popova, A. S., Lagereva, E. A., Vinogradova, O. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluid+shift+versus+body+size%3A+changes+of+hematological+parameters+and+body+fluid+volume+in+hindlimb-unloaded+mice%2C+rats+and+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Fluid shift versus body size: changes of hematological parameters and body fluid volume in hindlimb-unloaded mice, rats and rabbits.</a> Journal of Experimental Biology. 221 (Pt 17), (2018).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Ce modèle présente le premier analogiques terrestres développé pour étudier les niveaux successifs de déchargement mécaniques et vise à imiter un voyage à et rester sur Mars.
Beaucoup d’étapes du présent protocole est essentiels pour assurer son succès et doivent être examinés attentivement. Tout d’abord, il est essentiel de surveiller le bien-être des animaux et s’assurer qu’elles maintiennent un comportement normal (c'est-à-dire, exécution de tâches telles que manger, se reposer et explorer)...

Extraterrestres cibles, y compris la lune et Mars, représentent l’avenir de l’exploration spatiale humaine, mais les deux ont une gravité beaucoup plus faible que la terre. Alors que les conséquences de l’apesanteur sur le système musculo-squelettique ont été largement étudiées en astronautes1,2,3,4,5 et rongeurs6, 7 , 8 , 9, cette dernière grâce au membre postérieur bien établie déchargement (HLU) model10, très peu est connu sur les effets de gravité partielle. La gravité martienne est 38 % de la terre et cette planète est devenue le centre de l’exploration à long terme11; Il est donc important de comprendre les altérations musculaires qui peuvent survenir dans ce paramètre. Pour ce faire, nous a développé un poids partielle portant (PWB) rats12, issu des travaux précédent de souris6,13, qui a été validé à l’aide de résultats aussi bien musculaires et osseuses. Cependant, l’exploration de Mars sera précédée par une période prolongée de microgravité, qui n’a pas abordée dans notre modèle précédemment décrit12. Par conséquent, dans cette étude, nous altéré notre modèle pour simuler un voyage vers Mars, consistant en une première phase de déchargement total postérieur et immédiatement suivie d’une deuxième phase de roulement de poids partielle à 40 % de charges normales.
Contrairement à la plupart des modèles HLU, nous avons choisi d’utiliser un harnais pelvien (basé sur celui qui est décrit par Chowdhury et al.9) plutôt que d’une suspension de queue pour améliorer le confort des animaux et doit pouvoir se déplacer en toute transparence et sans effort de HLU au PTB en quelques minutes. Parallèlement, nous avons utilisé les cages et les dispositifs de suspension que nous avons précédemment développé et décrit abondamment12. En plus de fournir des données fiables/cohérentes, nous aussi déjà démontré que le point d’attache fixe du système suspension au centre de la tige n’empêchait pas les animaux de déplacement, toilettage, alimentation ou de boire. Dans cet article, nous décrirons comment décharger des membres postérieurs des animaux (totalement ou partiellement), de vérifier leur niveau de gravité atteint, ainsi que la manière d’évaluer sur le plan fonctionnel les altérations musculaires qui en résultent, Agrippez-vous force et humides de la masse musculaire. Ce modèle serait extrêmement utile pour les chercheurs qui cherchent à étudier les conséquences de gravité partielle (artificielle ou extra-terrestre) sur un système musculo-squelettique déjà compromis, leur permettant d’étudier comment les organismes s’adaptent à partielle, rechargement et pour l’élaboration de contre-mesures qui pourraient être développés pour rester en santé pendant et après les vols habités.

<table><tbody><tr><td>Fil de cuivre solide isolé 10G</td><td>Grainger</td><td>4WYY8</td><td>Fil de construction solide de 100 pieds avec type de fil THHN et taille de fil 10 AWG, noir</td></tr><tr><td>2 murs en plexiglas de conception personnalisée</td><td>P & K Custom Acrylics Inc.</td><td>N/A</td><td>2 mur personnalisé en plexiglas transparent 3/16 » tick, largeur 12 3/16 », hauteur 18 13/16 », 1 fente arrondie de 0,25 po de diamètre située au centre en haut du mur</td></tr><tr><td>Ruban chirurgical 3M Transpore</td><td>Fisher Scientific</td><td>18-999-380</td><td>Ruban chirurgical Transpore&nbsp ;</td></tr><tr><td>Accessoire Barre de préhension Rat</td><td>Harvard Apparatus</td><td>76-0479</td><td>Accessoire barre de préhension rat ou pattes arrière</td></tr><tr><td>Balance analytique</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-920-251</td><td>OHAUS Adventurer Analytic Balance</td></tr><tr><td>Animal Scale</td><td>ZIEIS by Amazon</td><td>N/A</td><td>70 lb capacité balance numérique grand chapiteau 11,5 » x 9,3 » dura plate-forme z-seal 110V adaptateur 0,5 once</td></tr><tr><td>Rallonges de soutien-gorge dorsal</td><td>Luzen par Amazon</td><td>N/A</td><td>17 pcs 2 crochet 3 rangées assorties aléatoire couleur femmes espacement soutien-gorge clip sangle d’extension</td></tr><tr><td>Jauge de force numérique</td><td>Wagner Instruments</td><td>DFE2-010</td><td>50 N Capacité Poignée Numérique Force Mètre Chatillon DFE II</td></tr><tr><td>Gaze</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-761-52</td><td>Éponges de gaze de coton non stériles&nbsp ;</td></tr><tr><td>Porte-clés et émerillon claps</td><td>Paxcoo Direct par Amazon</td><td>N/A</td><td>PaxCoo 100 pcs métal, pivotant, lanière, mousqueton, avec porte-clés</td></tr><tr><td>, Lobster Claps</td>, <td>Panda Jewelry, International Limited by Amazon</td><td>N/A</td><td>Pandahall, 100 pcs, grade A, acier inoxydable, pince de homard, fermoirs, 13x8mm</td></tr>, <tr><td>Rat Tether Jacket - Grand</td><td>, Braintree Scientific</td><td>RJ L</td>, <td>Rongent Jacket</td></tr>, <tr><td>Rat Tether Jacket - Moyen</td><td>Braintree Scientific</td><td>RJ M</td><td>Veste pour rongeurs</td></tr><tr><td>Tube en silicone</td><td>Versilon St Gobain Céramiques et plastiques</td><td>ABX00011</td><td>SPX-50 Tube en</td></tr><tr><td>silicone Chaînes en acier inoxydable</td><td>Super Lover par Amazon</td><td>N/A</td><td>4,5 m 15 pieds Maillon de chaîne câble en acier inoxydable en vrac 6x8mm</td></tr></tbody></table>

simulant une mission spatiale vers mars à l’aide du membre postérieur déchargement et poids partielle portant chez le rat

Mimicking a Space Mission to Mars Using Hindlimb Unloading and Partial Weight Bearing in Rats

Les modèles de rongeurs terrestres sont largement utilisés pour comprendre les conséquences physiologiques de l’espace de vol sur le système physiologique et ont travaillé régulièrement depuis 1979 et le développement de hind branche déchargement (HLU). Cependant, les prochaines étapes de l’exploration de l’espace maintenant incluent pour voyager vers Mars où la gravité est 38 % de la gravité terrestre. Puisque aucun être humain ne connaît à ce niveau de gravité partielle, un modèle durable au sol est nécessaire d’étudier comment le corps, déjà affaiblie par le temps passé en microgravité, réagirait à cette charge partielle. Ici, nous avons utilisé notre innovateur partielle portantes (PTB) pour imiter une mission courte et rester sur Mars afin d’évaluer la déficiences physiologique dans les muscles de la patte arrière induites par deux différents niveaux de gravité réduite appliquée de façon séquentielle. Cela pourrait fournir un modèle sûr, basés au sol pour étudier les adaptations musculo-squelettiques au changement gravitationnel et à mettre en place des contre-mesures efficaces pour préserver la santé des astronautes et la fonction.

Profitant des nouvelles cages que nous avons déjà conçu et décrit en détail12, nous avons utilisé un dispositif de suspension axée sur la chaîne en acier inoxydable qui convient à la fois du membre postérieur déchargement (HLU, Figure 1) et partiel portantes (PWB, Figure 2). L’avantage essentiel de notre conception est la capacité d’aller d’un type de déchargement à l’autre en quelques minutes tout en mai...

En utilisant un modèle novateur d’analogiques terrestres, nous sommes en mesure de simuler une mission spatiale, y compris un voyage à (0 g) et un séjour sur Mars (0,38 g) chez les rats. Ce modèle permet une évaluation longitudinale des changements physiologiques qui se produisent au cours des deux étapes hypo-gravitationnel de la mission.

Simulant une Mission spatiale vers Mars à l’aide du membre postérieur déchargement et poids partielle portant chez le rat

Rodent ground-based models are widely used to understand the physiological consequences of space flight on the physiological system and have been ...

Notre protocole offre un avantage significatif en créant la possibilité d’exposer les animaux à des niveaux successifs de déchargement. Dans le passé, les modèles au sol ont utilisé séparément le déchargement de la limite postérieur ou le roulement partiel du poids. Le principal avantage de cette technique est l’utilisation d’un seul appareil et d’un seul environnement pour offrir de nombreuses possibilités telles que l’imitation d’un voyage vers Mars et un court séjour sur Mars.Ce modèle aidera à comprendre l’état physiologique à l’atterrissage sur Mars et les défis physiologiques pour les astronautes exposés à plusieurs niveaux de déchargement au cours de leur mission. Ce modèle pourrait aider les chercheurs à explorer un large éventail de changements physiologiques, y compris, sans s’y limiter, le comportement, la mémoire, la performance ou le stress. Daniela Riveros, chercheur dans notre laboratoire, démontrera la procédure.Pour effectuer le déchargement de la limite postérieur, placez le rat entièrement anesthésié sur le banc avec du gaz anesthésique provenant d’un cône nasal avec 2% d’isoflurane et un flux d’oxygène de 1,5 litres par minute. Placez le rat dans une position couchée et mettez le harnais pelvien dans un mouvement rostrocaudal. Pliez doucement le harnais pelvien pour fournir un ajustement serré tout en prenant soin de ne pas presser les membres postérieurs pour prévenir les écorchures et l’inconfort.Fixez la chaîne en acier inoxydable avec le fermoir pivotant au sommet du harnais pelvien, où un crochet est fixé à la base de la queue. Retirer le rat de l’anesthésie et placer l’animal dans une cage personnalisée avec la chaîne étendue à son maximum. Une fois que le rat est complètement éveillé et mobile, raccourcissez la chaîne à l’aide du fermoir pivotant supérieur jusqu’à ce que les membres postérieurs ne puissent plus atteindre le sol.Convertissez le dispositif de suspension de déchargement de la limite arrière en un dispositif de suspension porte-poids partiel en ajoutant la partie en forme de triangle, composée de chaînes en acier inoxydable et d’une tige arrière. Placez une veste d’attache de la taille appropriée sur les membres avant du rat, et fermez-la à l’aide de l’extenseur de soutien-gorge arrière. Fixez un fermoir de la partie en forme de triangle du crochet situé sur l’extension du soutien-gorge arrière, et le fermoir opposé sur le crochet situé sur le harnais pelvien à la base de la queue.Placez le rat sur le dessus de l’échelle pour enregistrer le poids corporel chargé, y compris le poids de l’appareil entier sans raccourcir la chaîne. Raccourcissez la chaîne jusqu’à ce que l’échelle affiche 40 % du poids corporel chargé et enregistrez le niveau de gravité atteint. Avec la tige, retirez tout l’appareil de l’écaille et placez le rat dans sa cage.Pour évaluer la force d’adhérence postérieur, maintenez le rat avec la retenue traditionnelle en plaçant une main sous les membres avant. Maintenez doucement la queue avec la seconde main. Approchez la barre d’adhérence avec les pattes arrière, et assurez-vous que les deux pattes reposent entièrement sur la barre.Enfin, tirez doucement le rat directement en arrière jusqu’à ce qu’il libère son adhérence. Répétez trois fois et enregistrez la force maximale affichée sur le transducteur. Calculez la moyenne des trois mesures pour tenir compte de la fatigue.Une semaine de HLU suivie d’une semaine de PWB40 a eu comme conséquence une perte significative de poids corporel semblable à ce qui a été observé chez les rats exposés à seulement PWB40 pour la même durée. Cependant, ces rats ont continué à perdre du poids au fil du temps tout en étant plus tard exposés à PWB40. Une semaine de déchargement total a entraîné une diminution de la force d’adhérence postérieur par rapport aux commandes appariées par âge.Cependant, après une semaine suivante de PWB40, aucun autre changement concernant la force d’adhérence n’a été observé. En outre, les rats qui ont subi le déchargement total suivi d’un roulement partiel de poids ont montré une perte de force d’adhérence significativement plus grande par rapport au groupe PWB40. PWB40 dans les groupes HLU-PWB40 a eu la masse humide sensiblement inférieure du soleus, du gastrocnemius, et des muscles antérieurs de tibialis que les contrôles âge-assortis.Cependant, aucune différence significative entre la masse humide des groupes PWB40 et HLU-PWB40 n’a été observée. Le succès de cette méthode repose sur l’exactitude du niveau partiel de port de poids. Une surveillance fréquente est cruciale pour évaluer le bien-être et le déchargement quotidiens des animaux.Cette méthode n’est pas invasive et n’empêche donc pas l’utilisation de procédures d’essai supplémentaires concernant tous les systèmes. Les mesures longitudinales sont également faciles à mettre en œuvre si le temps de chargement reste contrôlé. Cette méthode a été entièrement développée en laboratoire et l’utilisation d’équipements personnalisés peut être difficile pour les nouvelles équipes.Cette technique ouvre la voie à des études approfondies dans lesquelles le port partiel de poids est en jeu. Cela pourrait inclure des situations cliniques telles que l’utilisation d’équipement d’assistance, par exemple des béquilles, des cannes ou des moulages, ainsi que l’aquathérapie.

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Ce protocole illustre notre modèle de formation axée sur l’activité locomotrice tapis roulant pour les rats avec de la moelle épinière (SCI). On trouve des groupes fois quadrupèdes et patte avant uniquement, en plus de deux types distincts de groupes témoins non formés. Les enquêteurs sont en mesure d’évaluer les effets de la formation sur des rats SCI utilisant ce protocole.

La formation axée sur l’activité sur un tapis roulant avec la moelle épinière blessée des Rats Wistar

Ce protocole présente un modèle robuste et reproductible d’allotransplantation composite vascularisée (VCA) orienté vers l’étude simultanée de l’immunologie et de la récupération fonctionnelle. Le temps investi dans la technique méticuleuse dans une greffe orthotopique droite de membre postérieur de mi-cuisse avec des anastomoses vasculaires cousues à la main et la coaptation neuronale donne la capacité d’étudier la récupération fonctionnelle.

Passer à l’étape suivante : un modèle de transplantation orthotopique orthotopique des membres de l’utérus pour maximiser la récupération fonctionnelle chez les rats

L’analyse automatisée de démarche est un outil faisable pour évaluer la récupération fonctionnelle dans les modèles de rongeur des dommages périphériques de nerf et des dommages de contusion de moelle épinière. Bien qu’il ne nécessite qu’une seule configuration pour évaluer la fonction locomotrice dans divers modèles expérimentaux, l’ajustement méticuleux des marchandises dures et douces et la formation des animaux est très important.

Analyse automatisée de la démarche pour évaluer la récupération fonctionnelle chez les rongeurs ayant des lésions périphériques du nerf ou de la contusion de la moelle épinière

Cet article présente un protocole de transplantation de lambeau ostéocutané hétérotopique partiel chez le rat et ses résultats potentiels dans le suivi à moyen terme.

Modèle de transplantation de membres postérieurs hétérotopiques partiels chez le rat

Le présent protocole décrit le suivi/évaluation tridimensionnel des mouvements pour décrire l’altération du mouvement de la démarche des rats après exposition à un environnement de désuétude simulé.

Compréhension globale de l’altération de la démarche induite par l’inactivité chez les rongeurs

Ce protocole montre comment effectuer une amputation sous le genou chez les rats et réaliser immédiatement une réinnervation musculaire ciblée (iTMR) afin d’étudier des stratégies pour traiter et prévenir la douleur liée à l’amputation et mieux comprendre les mécanismes de la douleur associés à l’amputation.

Modèle d’amputation du membre postérieur du rat sous le genou et réinnervation musculaire ciblée immédiate

Ce protocole établit une chaîne d’évaluation cinématique des membres postérieurs de rat utilisant un test de tapis roulant sans marqueurs avec auto-marquage multi-articulaires piloté par apprentissage profond, permettant une quantification reproductible du mouvement.

Suivi synchrone multiarticulaire basé sur l’apprentissage profond pour la quantification objective de la cinématique locomotrice des membres postérieurs chez les rats

Découvrez un modèle terrestre innovant simulant une mission vers Mars par déchargement des membres postérieurs et port partiel du poids chez le rat. Cette méthode permet d'évaluer les changements physiologiques liés à l'hypogravité.

Simulant une Mission spatiale vers Mars à l’aide du membre postérieur déchargement et poids partielle portant chez le rat

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