Name: Examen échocardiographique transthoracique dans le modèle lapin (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-06-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 46 s
Description: Apprenez l'échocardiographie transthoracique chez le lapin pour évaluer la fonction cardiaque en cardiologie vétérinaire. Ce protocole détaillé utilise les modes B-Mode, M-Mode, Doppler couleur et TDI pour l'analyse complète.

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Ce travail a été soutenu en partie par: Fundacion Séneca, Agencia de Ciencia y Tecnologa, Region de Murcia, Espagne (JT) (numéro de subvention: 11935/PI/09) et l'Université de Reading, Royaume-Uni (AG, GB) (Central Funding). Les bailleurs de fonds n'ont joué aucun rôle dans la conception de l'étude, la collecte et l'analyse des données, la décision de publier ou la préparation du manuscrit.

<ol><li>Pogwizd, S. M., Bers, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+models+of+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Discovery+Today+Disease+Models%22%5BJournal%5D)">Rabbit models of heart disease.</a> Drug Discovery Today Disease Models. 5, 185-193 (2008).</li>
<li>Gandolfi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+animal+models+for+cardiac+stem+cell+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Theriogenology%22%5BJournal%5D)">Large animal models for cardiac stem cell therapies.</a> Theriogenology. 75, 1416-1425 (2011).</li>
<li>Harding, J., Roberts, R. M., Mirochnitchenko, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+animal+models+for+stem+cell+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research+%26+Therapy%22%5BJournal%5D)">Large animal models for stem cell therapy.</a> Stem Cell Research & Therapy. 4, 23(2013).</li>
<li>Chong, J. J., Murry, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+regeneration+using+pluripotent+stem+cells--progression+to+large+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Cardiac regeneration using pluripotent stem cells--progression to large animal models.</a> Stem Cell Research. 13, 654-665 (2014).</li>
<li>Del, M. F., Mynett, J. R., Sugden, P. H., Poole-Wilson, P. A., Harding, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+mechanism+of+the+species+difference+in+the+contractile+response+of+ventricular+myocytes+to+endothelin-1%5BTitle%5D)+AND+%22Cardioscience%22%5BJournal%5D)">Subcellular mechanism of the species difference in the contractile response of ventricular myocytes to endothelin-1.</a> Cardioscience. 4, 185-191 (1993).</li>
<li>Sahn, D. J., DeMaria, A., Kisslo, J., Weyman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+regarding+quantitation+in+M-mode+echocardiography%3A+results+of+a+survey+of+echocardiographic+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Recommendations regarding quantitation in M-mode echocardiography: results of a survey of echocardiographic measurements.</a> Circulation. 58, 1072-1083 (1978).</li>
<li>Thomas, W. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+for+standards+in+transthoracic+two-dimensional+echocardiography+in+the+dog+and+cat.+Echocardiography+Committee+of+the+Specialty+of+Cardiology%2C+American+College+of+Veterinary+Internal+Medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Veterinary+Internal+Medicine%22%5BJournal%5D)">Recommendations for standards in transthoracic two-dimensional echocardiography in the dog and cat. Echocardiography Committee of the Specialty of Cardiology, American College of Veterinary Internal Medicine.</a> Journal of Veterinary Internal Medicine. 7, 247-252 (1993).</li>
<li>Lang, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+for+cardiac+chamber+quantification+by+echocardiography+in+adults%3A+an+update+from+the+American+Society+of+Echocardiography+and+the+European+Association+of+Cardiovascular+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Recommendations for cardiac chamber quantification by echocardiography in adults: an update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging.</a> European Heart Journal Cardiovascular Imaging. 16, 233-270 (2015).</li>
<li>Talavera, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Upgrade+on+the+Rabbit+Model+of+Anthracycline-Induced+Cardiomyopathy%3A+Shorter+Protocol%2C+Reduced+Mortality%2C+and+Higher+Incidence+of+Overt+Dilated+Cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">An Upgrade on the Rabbit Model of Anthracycline-Induced Cardiomyopathy: Shorter Protocol, Reduced Mortality, and Higher Incidence of Overt Dilated Cardiomyopathy.</a> BioMed Research International. 2015, 465342(2015).</li>
<li>Borkowski, R., Karas, A. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sedation+and+anesthesia+of+pet+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Techniques+in+Small+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Sedation and anesthesia of pet rabbits.</a> Clinical Techniques in Small Animal Practice. 14, 44-49 (1999).</li>
<li>Cantwell, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ferret%2C+rabbit+and+rodent+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Ferret, rabbit and rodent anesthesia.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 4, 169-191 (2001).</li>
<li>Giraldo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+intramyocardial+injection+of+amniotic+membrane-derived+mesenchymal+stem+cells+improves+ventricular+function+and+survival+in+non-ischaemic+cardiomyopathy+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">Percutaneous intramyocardial injection of amniotic membrane-derived mesenchymal stem cells improves ventricular function and survival in non-ischaemic cardiomyopathy in rabbits.</a> European Heart Journal. 36, 149(2015).</li>
<li>Giraldo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allogeneic+amniotic+membrane-derived+mesenchymal+stem+cell+therapy+is+cardioprotective%2C+restores+myocardial+function%2C+and+improves+survival+in+a+model+of+anthracycline-induced+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Heart+Failure%22%5BJournal%5D)">Allogeneic amniotic membrane-derived mesenchymal stem cell therapy is cardioprotective, restores myocardial function, and improves survival in a model of anthracycline-induced cardiomyopathy.</a> European Journal of Heart Failure. 19, 594(2017).</li>
<li>Bellenger, N. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+left+ventricular+ejection+fraction+and+volumes+in+heart+failure+by+echocardiography%2C+radionuclide+ventriculography+and+cardiovascular+magnetic+resonance%3B+are+they+interchangeable%3F%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">Comparison of left ventricular ejection fraction and volumes in heart failure by echocardiography, radionuclide ventriculography and cardiovascular magnetic resonance; are they interchangeable?</a> European Heart Journal. 21, 1387-1396 (2000).</li>
<li>Flachskampf, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+Imaging+to+Evaluate+Left+Ventricular+Diastolic+Function%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+College+of+Cardiology+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Cardiac Imaging to Evaluate Left Ventricular Diastolic Function.</a> Journal of the American College of Cardiology Cardiovascular Imaging. 8, 1071-1093 (2015).</li>
</ol>

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Nous avons décrit un protocole pour l'examen échocardiographique des paramètres de fonction cardiaque dans le lapin, représentant un grand modèle préclinique1,2,3. La méthodologie étape par étape décrite ci-contre devrait être considérée comme une orientation, qui, avec une étude complémentaire des principes de base de l'échocardiographie, et une connaissance de base de l'imagerie par ultrasons, aidera le chercheur à obtenir, pa...

L'évaluation longitudinale de la fonction cardiaque dans de grands modèles animaux est une méthodologie de recherche robuste couramment utilisée pour l'évaluation des effets des thérapies nouvelles pour traiter la cardiomyopathie ischémique et non ischémique. Parmi les nombreuses techniques d'imagerie cardiovasculaire disponibles pour la recherche préclinique, l'échocardiographie a été largement utilisée en raison de ses caractéristiques non invasives et portables. Dans les mains expérimentées, l'échocardiographie est également une technique d'imagerie très reproductible pour étudier l'anatomie cardiaque ainsi que la fonction systolique et diastolique du cœur.
Les grands modèles animaux précliniques tels que les porcs, les chiens et les lapins, sont primordiaux pour la recherche translationnelle préclinique1,2,3. En effet, l'avantage potentiel de nouvelles thérapies telles que la médecine régénérative cardiaque dans le cadre de la cardiomyopathie nécessite des tests d'hypothèses approfondies dans de grands modèles précliniques avant qu'ils puissent être considérés pour l'utilisation humaine2,4 . Par rapport à d'autres grands modèles précliniques, le modèle lapin offre certains avantages, y compris son faible coût d'entretien, qui est comparable à celui des souris et des rats. Cependant, contrairement aux souris et aux rats, le système de transport Ca2 et l'électrophysiologie cardiaque sont similaires chez les lapins que chez les humains, et ceux d'autres grands modèles animaux tels que les chiens et les porcs, augmentant ainsi le potentiel translationnel du lapin modèle1,5. Par conséquent, le lapin, en tant que grand modèle préclinique expérimental, a un équilibre exceptionnel de coût et de reproductibilité pour la recherche translationnelle préclinique.
Le lapin a l'avantage supplémentaire de son agréabilité pour l'imagerie échocardiographique utilisant des unités d'ultrason clinique couramment utilisées dans les patients humains et vétérinaires, profitant ainsi de la supériorité de l'imagerie harmonique et de l'état de l'art technique. Pour cela, les transducteurs sectoriels (également connus sous le nom de tableau de phase) de fréquence relativement élevée (jusqu'à 12 MHz), comme ceux utilisés en cardiologie néonatale/pédiatrique, sont préférés. L'examen échocardiographique dans le modèle préclinique de lapin permet l'évaluation complète de la fonction systolique et diastolique utilisant les vues multiples et les différents modes disponibles dans les unités échocardiographiques modernes (par exemple d'onde continue Doppler (CWD), doppler à ondes pulsées (PWD) et formation image d'edau-de-tissu (TDI)).
L'échocardiographie est une technique dépendante de l'opérateur et nécessite donc une formation approfondie et une connaissance approfondie de la technique en accord avec les directives internationales. Une partie de cette formation peut être facilitée par la visualisation de vidéos expliquant en détail comment différentes vues échocardiographiques peuvent être obtenues. La réalisation d'une grande compétence en imagerie échocardiographique, ainsi que le développement d'un protocole standardisé et d'une technique correcte, sont essentiels pour minimiser l'influence de l'opérateur et pour générer des données quantitatives fiables, comme l'exige la rigueur recherche scientifique.
Certaines considérations sont nécessaires en ce qui concerne le système et la configuration de laboratoire utilisé pour l'échocardiographie chez les lapins et autres grands modèles animaux. Pour une évaluation échocardiographique transthoracique standard de la fonction cardiaque, le système d'échographie doit inclure les modalités suivantes : mode bidimensionnel (mode B ou 2D), mode de mouvement (mode M), doppler de couleur, aussi bien que CWD, PWD et TDI. En outre, la machine devrait avoir un logiciel complet d'analyse cardiaque et de mesure installé, ainsi que suffisamment d'espace interne disque dur pour stocker suffisamment d'images fixes numériques de haute qualité et des boucles vidéo pour l'analyse hors ligne. Certains systèmes utilisent des transducteurs de tableau linéaires; cependant, pour la meilleure image du coeur, les transducteurs échelonnés de secteur de tableau avec un petit diamètre de tête de balayage sont préférés, parce que ceux-ci permettent un passage plus facile des ondes d'ultrason par les espaces intercostaux étroits. Pour les lapins, nous utilisons des transducteurs à fréquence relativement élevée (jusqu'à 12 MHz). La position de l'animal pour l'imagerie est de la plus haute importance pour acquérir des images de bonne qualité. Ainsi, les positions droites et gauches latérales couchées sont recommandées pour obtenir tous les plans d'imagerie standard au cours d'un examen échocardiographique. Pour cela, il est conseillé de déposer une table à un cran qui coïncide avec la zone cardiaque de la poitrine (figure 1A). Cette table encochée facilite l'accès avec le transducteur à la zone de la poitrine qui sera numérisée, et permet donc la libre mobilité de la main de l'opérateur whist maintenir la meilleure position de balayage de l'animal. Le positionnement de l'animal dans une position latérale couchée entraîne une chute du cœur vers le transducteur et l'élévation des poumons, ainsi que l'élargissement de la fenêtre d'accès du faisceau d'ultrasons à travers les espaces intercostaux, améliorant ainsi l'imagerie globale qualité (Figure 1A). L'examen échocardiographique doit être effectué de manière aveugle et suivant les directives du Comité d'échocardiographie de l'American College of Veterinary Internal Medicine et de l'American Society of Echocardiography/European Association pour l'imagerie cardiovasculaire6,7,8.
Une partie de notre équipe scientifique est associée au Service de cardiologie d'un hôpital d'enseignement vétérinaire qui s'occupe quotidiennement des patients vétérinaires (p. ex. chiens et chats), pour lesquels il a la formation et l'accréditation pertinentes en cardiologie vétérinaire et l'échocardiographie, et ses différentes modalités d'imagerie, ainsi qu'une vaste expérience dans l'imagerie de différentes tailles de patients animaux et de conformations thoraciques avec cette technique. En outre, nous utilisons généralement l'échocardiographie pour l'évaluation longitudinale de la fonction cardiaque dans un modèle de lapin de cardiomyopathie induite par des anthracyclines9. Ici, nous décrivons un protocole d'échocardiographie étape par étape pour l'évaluation de la fonction cardiaque utilisant une unité clinique d'ultrason dans un grand modèle préclinique tel que le lapin. Ce protocole est adapté aux lignes directrices internationales actuelles8, et comprend des recommandations pratiques basées sur nos propres expériences dans les milieux cliniques et expérimentaux.

<table><tbody><tr><td>Bluesensor</td><td>Medicotest</td><td>13BY1062</td><td>Adhésif jetable ECG lectrodes</td></tr><tr><td>Domtor (Medetomidine)</td><td>Esteve</td><td>CN 570686.3</td><td>Une prescription vétérinaire est nécessaire</td></tr><tr><td>HD11 XE Système d’échographie Philips</td><td></td><td>10670267</td><td>Système d’échocardiographie.</td></tr><tr><td>Coussin chauffant</td><td>Solac</td><td>CT8632</td><td></td></tr><tr><td>Imalgene (Kétamine)</td><td>Merial</td><td>RN 9767</td><td>Une prescription vétérinaire est nécessaire</td></tr><tr><td>Omnifix-F Seringue de 1 ml</td><td>Braun</td><td>9161406V</td><td></td></tr><tr><td>S12-4</td><td>Philips</td><td>B01YgG</td><td>Transducteur à réseau de phases 4-12 MHz</td></tr><tr><td>Gel de transmission à ultrasons (Aquasone)</td><td>Parker laboratories Inc.</td><td>N° 01-08</td><td></td></tr></tbody></table>

examen échocardiographique transthoracique dans le modèle lapin

Transthoracic Echocardiographic Examination in the Rabbit Model

Les grands modèles animaux comme le lapin sont précieux pour la recherche préclinique translationnelle. Les lapins ont une électrophysiologie cardiaque similaire à celle des humains et celle d'autres grands modèles animaux tels que les chiens et les porcs. Cependant, le modèle de lapin a l'avantage supplémentaire de réduire les coûts d'entretien par rapport à d'autres grands modèles animaux. L'évaluation longitudinale de la fonction cardiaque à l'aide de l'échocardiographie, lorsqu'elle est mise en œuvre de façon appropriée, est une méthodologie utile pour l'évaluation préclinique de nouvelles thérapies pour l'insuffisance cardiaque avec fraction d'éjection réduite (par exemple, la régénération cardiaque). L'utilisation correcte de cet outil non invasif nécessite la mise en œuvre d'un protocole d'examen normalisé suivant les lignes directrices internationales. Ici, nous décrivons, étape par étape, un protocole détaillé supervisé par des cardiologues vétérinaires pour effectuer l'échocardiographie dans le modèle de lapin, et démontrons comment obtenir correctement les différentes vues échocardiographiques et les plans d'imagerie, aussi bien que le différents modes d'imagerie disponibles dans un système clinique d'échocardiographie couramment utilisé chez les patients humains et vétérinaires.

Vue d'axe longue parasternale du coeur
La figure 5A montre un plan d'imagerie de la vue PSLAX droite où les 4 chambres du cœur sont clairement distinguées. Vous pouvez identifier dans cette vue le ventricule droit (RV), la valve tricuspid (TV), IVS, LV, FW, aussi bien que la valve mitrale (MV). Lorsque l'apex est clairement visible sur le côté gauche de l'image dans cette vue et que...

Ici, nous décrivons, étape par étape, un protocole détaillé pour effectuer l'échocardiographie dans le modèle de lapin. Nous montrons comment obtenir correctement les différentes vues échocardiographiques et les plans d'imagerie, ainsi que les différents modes d'imagerie disponibles dans un système d'échocardiographie clinique couramment utilisé chez les patients humains et vétérinaires.

Examen échocardiographique transthoracique dans le modèle lapin

Large animal models such as the rabbit are valuable for translational preclinical research. Rabbits have a similar cardiac electrophysiology compared to ...

Cette vidéo vise à démontrer étape par étape un protocole pour un examen échocardiographique de qualité de recherche dans un grand modèle animal comme le lapin. Ceci est accompli en anesthésiant d’abord l’animal, puis en préparant soigneusement la poitrine pour la procédure. Ensuite, après avoir placé le lapin sur une couverture thermique et vérifié qu’un signal ECG est correctement affiché, placez l’animal dans une position couchée droite pour obtenir les plans d’imagerie à la fois dans une vue parasternale à long axe, et une vue parasternale axe court du cœur.Puis placez le lapin dans une position couchée gauche pour obtenir les différents plans d’imagerie disponibles dans une vue apical de quatre chambre, et une vue apical de chambre de cinq du coeur. Les films et les images fixes devraient être acquis en mode B et en mode M pour l’analyse de la fonction systolique cardiaque ainsi qu’une combinaison de mode B, doppler de couleur et doppler à ondes pulsées, PWD, pour l’analyse du flux sanguin. Ou une combinaison de B-Mode et d’imagerie doppler tissulaire, TDI, modes d’analyse des vitesses myocardiques dans le cœur de lapin.Évaluation longitudinale pour la fonction cardiaque utilisant des modèles animaux agrandis échocardiographiques ceci sert de méthodologie pour l’évaluation apical des thérapies d’arrêt du coeur. Le but de cette vidoe est de démontrer un protocole échocardiographique étape par étape pour l’évaluation de la fonction cardiaque utilisant un système critique d’ultrason sur un grand modèle préclinique tel que le lapin. Le protocole indiqué dans cette vidéo est conforme aux lignes directrices internationales actuelles.Des recommandations pratiques basées sur nos propres expériences en milieu clinique et expérimental sont également incluses. Avant de procéder, commencez par injecter une combinaison de kétamine et de médetomidine pour anesthésier l’animal. Une fois que l’animal est anesthésié, utilisez une tondeuse à cheveux pour enlever les cheveux de la peau du thorax.Raser un à trois centimètres de la face interne du membre antérieur droit ainsi que les régions médiocres des limites arrière droite et gauche. Après avoir placé le lapin sur une couverture thermique appliquer un gel conducteur approprié sur les électrodes et les positionner dans les régions rasées des membres. Fixer les électrodes avec du ruban chirurgical.Vérifiez qu’un signal ECG correct est affiché sur l’écran du système. Pour obtenir une vue parasternale à long axe du cœur, placez l’animal sur la position latérale droite couchée avec les membres antérieurs tendus loin du thorax avec du ruban chirurgical. Il est important de maintenir la peau du thorax aussi plat que possible.Pour cela, tenir les membres antérieurs loin du thorax d’une main tout en utilisant la main libre pour identifier les plis de la peau et les poches, et les aplatir de haut en bas en déplaçant toute peau se pliant loin de la poitrine et en déplaçant les organes abdominaux vers la région caudale par le massage doux. Appliquer le gel de transmission ultrasonique sur la tête du transducteur. Position suivante le transducteur étroitement à la peau de l’hémithorax droit au niveau du deuxième au troisième espace intercostal et environ un à trois centimètres loin de la ligne parasternale droite avec la marque d’orientation transducteur pointant vers l’épaule droite de l’animal.Vous devez obtenir deux plans d’imagerie dans la vue parasternale axe court du cœur. Un plan d’imagerie qui sectionne le cœur longitudinellement et où les quatre chambres du cœur, deux atria et deux ventricules peuvent être identifiés. Effectuez des mouvements subtils du transducteur tels que le balayage, le basculement et la rotation par rapport à l’espace intercostal ainsi que l’angle antétero, postérieur et dorsoventral du faisceau ultrasonique pour obtenir l’autre plan d’imagerie de la vue parasternale à long axe.Une fois que vous obtenez ce plan d’imagerie, vous serez également en mesure d’identifier le tractus ventriculaire gauche, LVOT, et l’aorte. Après avoir obtenu le plan d’imagerie approprié, utilisez une combinaison de mode B et de doppler de couleur pour évaluer le flux sanguin à travers toutes les valves et l’intégrité du septum intertriculaire. Avec le transducteur dans une vue parasternale à long axe, effectuer une rotation dans le sens inverse des aiguilles d’une montre du transducteur d’environ 90 degrés pour obtenir une vue parasternale droite axe court.Cette fois, la marque d’orientation transducteur doit être pointée vers l’épaule gauche du lapin. Pour aider à maintenir le transducteur au même endroit de la poitrine tout en tournant le transducteur, utilisez la main gauche pour effectuer la rotation à partir du cordon du transducteur. Dans la vue parasternale à axe court, vous devez régulièrement obtenir trois plans d’imagerie en balayant le transducteur le long de l’axe du cœur.Le plan d’imagerie midventriculaire qui sectione le cœur aux muscles papillaires. Ici, vous pouvez généralement visualiser le ventricule droit en haut et le ventricule gauche au bas de l’image. En utilisant le mode B, vous pouvez évaluer la contraction radiale et circonférentielle et la relaxation du ventricule gauche.Utilisez le mode M, puis placez le curseur au milieu du ventricule gauche entre les deux muscles papillaires. En balayant le transducteur vers la région céphalique, vous devez obtenir un plan de valve mitrale. Utilisez le mode B et le mode M et placez le curseur au milieu du ventricule gauche pour évaluer l’intégrité et la motilité des folioles mitrales.Le balayage du transducteur plus cranially se traduira par un plan d’imagerie au niveau de la base élevée également connu sous le nom de plan de valve aortique. Pour visualiser complètement l’artère pulmonaire et sa bifurcation, une plus grande angulation et parfois un déplacement crânien du transducteur et de l’espace intercostal peuvent être nécessaires. Vous devez identifier dans cette vue la valve aortique et ses folioles, l’atrium droit, l’atrium gauche, le tractus ventriculaire droit, la valve pulmonaire et l’artère pulmonaire.Utilisez le mode B puis utilisez le mode M et placez le curseur le long de la valve aortique et de l’atrium gauche. Enfin, utilisez des modes doppler couleur et doppler à ondes pulsées pour enregistrer la vitesse du flux sanguin au niveau de la valve pulmonaire en plaçant le volume de l’échantillon juste en dessous de l’ouverture des folioles pulmonaires. Pour obtenir une vue apical de quatre chambres, placez le lapin dans la position couchée latérale gauche maintenez la peau du thorax plat d’une manière semblable comme décrit précédemment.Appliquer le gel à ultrasons sur le transducteur puis le positionner étroitement sur la peau de l’hémithroax gauche au niveau des quatrième et cinquième espaces intercostals avec la ligne midclavicular avec la marque d’orientation transducteur pointant vers l’arrière du lapin dans le sens de l’omoplate gauche. De cette position si nécessaire déplacer le transducteur vers le haut un espace intercostal à la fois, une manœuvre souvent appelé lèche-vitrines. Une fois que vous atteignez l’espace intercostal approprié, vous devez observer une image du cœur de l’apex à la base du cœur.La forme typique du cœur où les quatre chambres peuvent être vus avec les ventricules gauche et droit en haut et les deux atria au bas de l’image. Utilisez le mode B pour vérifier les anomalies régionales du mouvement du mur et avoir une vue globale de la fonction ventriculaire gauche. Utilisez doppler couleur pour évaluer le débit à travers les valves atrioventriculaires et utiliser doppler vague pulsée et positionner le volume de l’échantillon au niveau des pointes de folioles de valve mitrale pour obtenir des images du spectre d’entrée de valve mitrale.Utilisez le mode d’imagerie doppler tissulaire et placez le volume de l’échantillon sur les côtés septaux et laraux de l’anulus de valve mitrale. En commençant par le transducteur dans la vue apical quatre chambres, effectuer une légère inclinaison cordialement jusqu’à ce que le tractus ventriculaire gauche de sortie et la valve aortique entrent en vue. C’est la vue apical de cinq chambres du coeur.Utilisez le mode B pour évaluer le tractus ventriculaire gauche, le mouvement des folioles de valve aortique, ainsi que la taille et la fonction de la cavité ventriculaire gauche. Utilisez le mode doppler couleur pour l’évaluation de l’écoulement à travers la valve aortique et utilisez doppler d’onde pulsée pour évaluer la vitesse d’écoulement à travers cette valve en positionnant le volume de l’échantillon juste derrière la valve aortique. Ici, nous montrons un plan d’imagerie de la vue parasternale droite à long axe où les quatre chambres du cœur sont clairement reconnaissables.Vous pouvez identifier dans cette vue le ventricule droit, le ventricule gauche, l’oreillette droite, l’oreillette gauche, le septum intertriculaire, la paroi libre du ventricule gauche, ainsi que la valve mitrale. Dans cette vue, il est possible d’estimer avec précision le volume ventriculaire gauche à l’aide de la méthode biplan des disques. Il s’agit de la règle des Simpson modifiés comme le montre cette image en diastole et en systole.Ici, l’autre plan d’imagerie de l’axe long parasternal droit est montré. L’emplacement pour le placement des étriers pour la mesure précise de la région de sortie ventriculaire gauche est indiqué dans cette image. Dans cette image, une vue parasternale droite de l’axe court du cœur au niveau du plan des muscles papillaires est montrée.Vous pouvez identifier dans cette vue le ventricule droit, le ventricule gauche, le septum intertriculaire, le mur libre ventriculaire gauche, aussi bien que les muscles papillaires antélatéraux et postromedial. Un exemple d’une trace de mode M dans la vue parasternale de l’axe court au niveau des muscles papillaires est montré dans cette image où le placement des étriers pour les mesures du ventricule droit, du ventricule gauche, du septum intertriculaire et du mur libre ventriculaire gauche est également démontré. Les mesures correspondant au diamètre diastolique ventriculaire gauche, au LVDd, et au diamètre systolique gauche d’extrémité ventriculaire, LVDs, sont également montrées.Il s’agit d’un exemple de trace en mode M au niveau du plan de valve mitrale dans la vue parasternale à axe court. L’emplacement des étriers pour la mesure de la séparation septale e-point, EPSS, de la valve mitrale est également indiqué. Un exemple de l’analyse de sortie de valve pulmonaire utilisant le doppler de couleur et le doppler pulsé d’onde est montré dans cette image.Un exemple de l’afflux de valve mitrale utilisant le doppler de couleur dans une vue apical de quatre chambres est montré ici. Dans cette même vue et à l’aide d’un doppler d’ondes pulsées, le spectre d’entrée de valve mitrale peut être évalué comme le montre cette image où les ondes de remplissage précoce, E et tardive, A, pendant le diastole sont facilement différenciées. Cette image montre un exemple de vitesses des tissus myocardiques à l’aide de l’imagerie doppler tissulaire avec le volume de l’échantillon situé à la paroi septale de l’anulus valve mitrale.La composante systolique est indiquée par l’onde S tandis que les ondes prédentales E et A correspondent au mouvement myocardique de l’anulus de valve mitrale pendant le remplissage précoce, e prime, et le remplissage tardif, Un premier, composants de diastole. Cette image montre un exemple de doppler de couleur placé à la sortie ventriculaire gauche dans une vue apical de cinq chambres. Ici, nous montrons un exemple de la façon de quantifier l’écoulement de la valve aortique à l’aide du signal doppler d’onde pulsée pour évaluer le temps de volume intégral, VTI, temps d’éjection systolique, ET, ainsi que la période de pré-éjection, PEP, de la valve aortique.L’élaboration d’un protocole normalisé et d’une technique correcte est essentielle pour minimiser l’influence de l’opérateur et générer des données quantitatives fiables. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension des étapes essentielles de la façon d’effectuer un examen transthoracique et cardiographique dans le modèle lapin. Si vous allez pratiquer sous la supervision d’un mentor aidera à trouver et à développer vos compétences échocardiographiques.Dans les mains expérimentées cet examen peut être accompli dans les 15 minutes après induire l’anesthésie.

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L'échocardiographie transthoracique propose une méthode non invasive pour l'évaluation de la fonction cardiaque chez la souris. Une combinaison de l'échographie Doppler et les modalités d'imagerie peuvent être utilisées pour obtenir des mesures dimensionnelles du cœur et la circulation sanguine intracardiaque, qui, ensemble, fournissent une évaluation de la performance cardiaque et systolique diastolique.

L&#39;échocardiographie transthoracique chez la souris

Nous décrivons l'examen de la fonction cardiaque foetale avec échocardiographie fœtale fonctionnelle et contemporain fœtoplacentaire échographie Doppler utilisant le VisualSonics VEVO 2100 microultrasound dans un modèle chirurgicalement induite de restriction de croissance intra-utérin chez le lapin.

L&#39;échocardiographie fœtale et Pulsed-ondes ultrasons Doppler dans un modèle de lapin de la restriction de croissance intra-utérine

Ventricule droit (VD) dysfonctionnement est critique dans la pathogenèse des maladies cardiovasculaires, mais les méthodes limitées sont disponibles pour l'évaluation. Les progrès récents de l'imagerie par ultrasons offrent une option non invasive et précise pour l'étude de RV longitudinal. Ici, nous avons une méthode échocardiographique étape par étape en utilisant un modèle murin d'une surcharge de pression un véhicule de camping détail.

Évaluation de ventriculaire droite Structure et fonction dans le modèle de souris de l&#39;artère pulmonaire constriction par échocardiographie transthoracique

L'objectif de ce protocole est d'évaluer de manière non invasive des changements structurels et fonctionnels cardiaques dans un modèle murin de maladie cardiaque créée par constriction aortique transverse, en utilisant B et M-Mode échocardiographie et la couleur / impulsion Doppler imagerie.

Évaluation des cardiaques morphologiques et fonctionnelles changements dans le modèle de souris de Transverse Aortic Constriction par échocardiographie Imaging

Nouvelles stratégies thérapeutiques en médecine régénérative cardiaque nécessitent des études étendues et détaillées dans des modèles animaux précliniques grands avant ils peuvent être considérés pour une utilisation chez l’homme. Ici, nous démontrons une technique d’injection de contraste percutanée guidée par échocardiographie intramyocardique chez le lapin, qui est précieux pour l’efficacité de ces traitements novateurs des tests d’hypothèses.

Injection de contraste percutanée guidée par échocardiographie intramyocardique et livraison de cellule dans un modèle préclinique grand

Ici, nous décrivons et comparons deux positions pour obtenir la vue apical à quatre chambres chez les souris. Ces positions permettent la quantification de la fonction ventriculaire droite, fournissent des résultats comparables, et peuvent être utilisées de façon interchangeable.

Mesure échocardiographique des paramètres diastoliques ventriculaires droits dans la souris

Un protocole non-invasif pour l'évaluation transthoracique d'échocardiographie de l'anatomie cardiaque et de la fonction pour des rats adultes est présenté dans l'étude courante. Les valves cardiaques, les quatre chambres cardiaques et l'aorte ascendante, l'arc aortique et l'aorte descendante sont étudiées en détail.

Évaluation échocardiographique de l'anatomie cardiaque et de la fonction chez les rats adultes

Le présent protocole décrit la caractérisation échocardiographique de la morphologie et de la fonction ventriculaires droites dans un modèle d’hypertension artérielle pulmonaire chez le rat.

Évaluation échocardiographique complète de la fonction du ventricule droit dans un modèle d’hypertension artérielle pulmonaire chez le rat

L’échocardiographie transthoracique est le test diagnostique de première intention pour la dysfonction ventriculaire gauche post-réanimation et les changements structurels dans un modèle porcin d’arrêt cardiaque.

Échocardiographie transthoracique pour évaluer la dysfonction ventriculaire gauche post-réanimation après un infarctus aigu du myocarde et un arrêt cardiaque chez le porc

L’insuffisance cardiaque droite (RHF) se caractérise par une dilatation et une hypertrophie cardiaques du côté droit, entraînant un dysfonctionnement ventriculaire et auriculaire. Les affections cardiopulmonaires associées à la FRH s’accompagnent d’un risque accru d’arythmies cardiaques. Cet article décrit un modèle standardisé de RHF induite par le cerclage de l’artère pulmonaire associé à une arythmogenèse ventriculaire et auriculaire améliorée.

Modèle de rat de remodelage cardiaque du côté droit et d’arythmie à l’aide d’un cerclage de l’artère pulmonaire

Apprenez l'échocardiographie transthoracique chez le lapin pour évaluer la fonction cardiaque en cardiologie vétérinaire. Ce protocole détaillé utilise les modes B-Mode, M-Mode, Doppler couleur et TDI pour l'analyse complète.

Examen échocardiographique transthoracique dans le modèle lapin

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