Name: Tests biomécaniques des tendons murines (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-10-15T14:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 9 s
Description: Découvrez un protocole de tests biomécaniques des tendons murins utilisant des fixations 3D personnalisées réutilisables. Cette méthode réduit le temps de préparation de plusieurs heures à quelques minutes et élimine les artefacts de préhension.

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L'étude a été soutenue par le NIH / NIAMS (R01 AR055580, R01 AR057836).

<ol><li>Girish, N., Ramachandra, K., Arun, G. M., Asha, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+of+Musculoskeletal+Disorders+Among+Cashew+Factory+Workers%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Environmental+%26+Occupational+Health%22%5BJournal%5D)">Prevalence of Musculoskeletal Disorders Among Cashew Factory Workers.</a> Archives of Environmental & Occupational Health. 67, 37-42 (2012).</li>
<li>Thomopoulos, S., Parks, W. C., Rifkin, D. B., Derwin, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+tendon+injury+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of tendon injury and repair.</a> Journal of Orthopaedic Research. 33, 832-839 (2016).</li>
<li>Scott, A., Ashe, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+Tendinopathies+in+the+Upper+and+Lower+Extremities%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Sports+Medicine+Reports%22%5BJournal%5D)">Common Tendinopathies in the Upper and Lower Extremities.</a> Current Sports Medicine Reports. 5, 233-241 (2006).</li>
<li>Praemer, A., Furner, S., Rice, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Musculoskeletal+Conditions+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22American+Academy+of+Orthopaedic+Surgeons%22%5BJournal%5D)">Musculoskeletal Conditions in the United States.</a> American Academy of Orthopaedic Surgeons. , (1992).</li>
<li>Nourissat, G., Berenbaum, F., Duprez, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tendon+injury%3A+From+biology+to+tendon+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Rheumatology%22%5BJournal%5D)">Tendon injury: From biology to tendon repair.</a> Nature Reviews Rheumatology. 11, 223-233 (2015).</li>
<li>Galatz, L. M., Ball, C. M., Teefey, S. A., Middleton, W. D., Yamaguchi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+outcome+and+repair+integrity+of+completely+arthroscopically+repaired+large+and+massive+rotator+cuff+tears%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Bone+and+Joint+Surgery%22%5BJournal%5D)">The outcome and repair integrity of completely arthroscopically repaired large and massive rotator cuff tears.</a> The Journal of Bone and Joint Surgery. 86, 219-224 (2004).</li>
<li>Sher, J. S., Uribe, J. W., Posada, A., Murphy, B. J., Zlatkin, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+findings+on+magnetic+resonance+images+of+asymptomatic+shoulders%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Bone+and+Joint+Surgery%22%5BJournal%5D)">Abnormal findings on magnetic resonance images of asymptomatic shoulders.</a> The Journal of Bone and Joint Surgery. 77, 10-15 (1995).</li>
<li>Ker, R. F., Wang, X. T., Pike, A. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fatigue+quality+of+mammalian+tendons%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Fatigue quality of mammalian tendons.</a> The Journal of Experimental Biology. 203, 1317-1327 (2000).</li>
<li>Wilson, J. J., Best, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+overuse+tendon+problems%3A+A+review+and+recommendations+for+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22American+Family+Physician%22%5BJournal%5D)">Common overuse tendon problems: A review and recommendations for treatment.</a> American Family Physician. 72, 811-818 (2005).</li>
<li>Fleischer, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+strength+and+failure+mechanism+of+different+tubercula+refixation+methods+within+the+framework+of+an+arthroplasty+for+shoulder+fracture%5BTitle%5D)+AND+%22Orthopaedics+%26+Traumatology%3A+Surgery+%26+Research%22%5BJournal%5D)">Biomechanical strength and failure mechanism of different tubercula refixation methods within the framework of an arthroplasty for shoulder fracture.</a> Orthopaedics & Traumatology: Surgery & Research. 103, 165-169 (2017).</li>
<li>West, J. R., Juncosa, N., Galloway, M. T., Boivin, G. P., Butler, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+in+vivo+Achilles+tendon+forces+in+rabbits+during+treadmill+locomotion+at+varying+speeds+and+inclinations%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Characterization of in vivo Achilles tendon forces in rabbits during treadmill locomotion at varying speeds and inclinations.</a> Journal of Biomechanics. 37, 1647-1653 (2004).</li>
<li>Cavinatto, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+versus+late+repair+of+rotator+cuff+tears+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Shoulder+and+Elbow+Surgery%22%5BJournal%5D)">Early versus late repair of rotator cuff tears in rats.</a> Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 27, 606-613 (2018).</li>
<li>Potter, R., Havlioglu, N., Thomopoulos, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+developing+shoulder+has+a+limited+capacity+to+recover+after+a+short+duration+of+neonatal+paralysis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">The developing shoulder has a limited capacity to recover after a short duration of neonatal paralysis.</a> Journal of Biomechanics. 47, 2314-2320 (2014).</li>
<li>Connizzo, B. K., Sarver, J. J., Iozzo, R. V., Birk, D. E., Soslowsky, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Age+and+Proteoglycan+Deficiency+on+Collagen+Fiber+Re-Alignment+and+Mechanical+Properties+in+Mouse+Supraspinatus+Tendon%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Effect of Age and Proteoglycan Deficiency on Collagen Fiber Re-Alignment and Mechanical Properties in Mouse Supraspinatus Tendon.</a> Journal of Biomechanical Engineering. 135, 021019(2013).</li>
<li>Beason, D. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypercholesterolemia+increases+supraspinatus+tendon+stiffness+and+elastic+modulus+across+multiple+species%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Shoulder+and+Elbow+Surgery%22%5BJournal%5D)">Hypercholesterolemia increases supraspinatus tendon stiffness and elastic modulus across multiple species.</a> Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 22, 681-686 (2013).</li>
<li>Miller, K. S., Connizzo, B. K., Soslowsky, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen+fiber+re-alignment+in+a+neonatal+developmental+mouse+supraspinatus+tendon+model%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Collagen fiber re-alignment in a neonatal developmental mouse supraspinatus tendon model.</a> Annals of Biomedical Engineering. 40, 1102-1110 (2012).</li>
<li>Cong, G. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+the+role+of+subacromial+impingement+in+rotator+cuff+tendinopathy%3A+Development+and+analysis+of+a+novel+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Evaluating the role of subacromial impingement in rotator cuff tendinopathy: Development and analysis of a novel murine model.</a> Journal of Orthopaedic Research. 36, 2780-2788 (2018).</li>
<li>Thomopoulos, S., Birman, V., Genin, G. M. Structural Interfaces and Attachments in Biology. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aThomopoulos%2C+S+%22Infection+and+Immunity%22">Infection and Immunity</a>. 35, Springer. (2013).</li>
<li>Boivin, G. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+properties+and+histology+of+db%2Fdb+diabetic+mouse+Achilles+tendon%5BTitle%5D)+AND+%22Muscles%2C+Ligaments+and+Tendons+Journal%22%5BJournal%5D)">Biomechanical properties and histology of db/db diabetic mouse Achilles tendon.</a> Muscles, Ligaments and Tendons Journal. 4, 280-284 (2014).</li>
<li>Ansorge, H. L., Adams, S., Birk, D. E., Soslowsky, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical%2C+Compositional%2C+and+Structural+Properties+of+the+Post-natal+Mouse+Achilles+Tendon%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Mechanical, Compositional, and Structural Properties of the Post-natal Mouse Achilles Tendon.</a> Annals of Biomedical Engineering. 39, 1904-1913 (2011).</li>
<li>Shu, C. C., Smith, M. M., Appleyard, R. C., Little, C. B., Melrose, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Achilles+and+tail+tendons+of+perlecan+exon+3+null+heparan+sulphate+deficient+mice+display+surprising+improvement+in+tendon+tensile+properties+and+altered+collagen+fibril+organisation+compared+to+C57BL%2F6+wild+type+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PeerJ%22%5BJournal%5D)">Achilles and tail tendons of perlecan exon 3 null heparan sulphate deficient mice display surprising improvement in tendon tensile properties and altered collagen fibril organisation compared to C57BL/6 wild type mice.</a> PeerJ. 6, 5120(2018).</li>
<li>Probst, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+clamping+technique+for+biomechanical+testing+of+tendons+in+small+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Surgery%22%5BJournal%5D)">A new clamping technique for biomechanical testing of tendons in small animals.</a> Journal of Investigative Surgery. 13, 313-318 (2000).</li>
<li>Talan, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Body+temperature+of+C57BL%2F6J+mice+with+age%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Gerontology%22%5BJournal%5D)">Body temperature of C57BL/6J mice with age.</a> Experimental Gerontology. 19, 25-29 (1984).</li>
<li>Newton, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+testing+angle+on+the+biomechanical+properties+of+the+rat+supraspinatus+tendon%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">The influence of testing angle on the biomechanical properties of the rat supraspinatus tendon.</a> Journal of Biomechanics. 49, 4159-4163 (2016).</li>
<li>Schwartz, A. G., Lipner, J. H., Pasteris, J. D., Genin, G. M., Thomopoulos, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+loading+is+necessary+for+the+formation+of+a+functional+tendon+enthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Bone%22%5BJournal%5D)">Muscle loading is necessary for the formation of a functional tendon enthesis.</a> Bone. 55, 44-51 (2014).</li>
<li>Gimbel, J. A., Van Kleunen, J. P., Williams, G. R., Thomopoulos, S., Soslowsky, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long+durations+of+immobilization+in+the+rat+result+in+enhanced+mechanical+properties+of+the+healing+supraspinatus+tendon%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Long durations of immobilization in the rat result in enhanced mechanical properties of the healing supraspinatus tendon.</a> Journal of Biomechanical Engineering. 129, 400-404 (2006).</li>
<li>Freedman, B. R., Sarver, J. J., Buckley, M. R., Voleti, P. B., Soslowsky, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+and+structural+response+of+healing+Achilles+tendon+to+fatigue+loading+following+acute+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Biomechanical and structural response of healing Achilles tendon to fatigue loading following acute injury.</a> Journal of Biomechanics. 47, 2028-2034 (2014).</li>
<li>Deymier, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+multiscale+structural+and+mechanical+effects+of+mouse+supraspinatus+muscle+unloading+on+the+mature+enthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">The multiscale structural and mechanical effects of mouse supraspinatus muscle unloading on the mature enthesis.</a> Acta Biomaterialia. 83, 302-313 (2019).</li>
<li>Killian, M. L., Thomopoulos, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scleraxis+is+required+for+the+development+of+a+functional+tendon+enthesis%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Scleraxis is required for the development of a functional tendon enthesis.</a> FASEB Journal. 30, 301-311 (2016).</li>
<li>Schwartz, A. G., Long, F., Thomopoulos, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enthesis+fibrocartilage+cells+originate+from+a+population+of+Hedgehog-responsive+cells+modulated+by+the+loading+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Enthesis fibrocartilage cells originate from a population of Hedgehog-responsive cells modulated by the loading environment.</a> Development. 142, 196-206 (2015).</li>
<li>Bell, R., Taub, P., Cagle, P., Flatow, E. L., Andarawis-Puri, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+mouse+model+of+supraspinatus+tendon+insertion+site+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Development of a mouse model of supraspinatus tendon insertion site healing.</a> Journal of Orthopaedic Research. 33, 25-32 (2014).</li>
<li>Connizzo, B. K., Bhatt, P. R., Liechty, K. W., Soslowsky, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diabetes+Alters+Mechanical+Properties+and+Collagen+Fiber+Re-Alignment+in+Multiple+Mouse+Tendons%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Diabetes Alters Mechanical Properties and Collagen Fiber Re-Alignment in Multiple Mouse Tendons.</a> Annals of Biomedical Engineering. 42, 1880-1888 (2014).</li>
<li>Eekhoff, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functionally+Distinct+Tendons+From+Elastin+Haploinsufficient+Mice+Exhibit+Mild+Stiffening+and+Tendon-Specific+Structural+Alteration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Functionally Distinct Tendons From Elastin Haploinsufficient Mice Exhibit Mild Stiffening and Tendon-Specific Structural Alteration.</a> Journal of Biomechanical Engineering. 139, 111003(2017).</li>
<li>Mikic, B., Bierwert, L., Tsou, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Achilles+tendon+characterization+in+GDF-7+deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Achilles tendon characterization in GDF-7 deficient mice.</a> Journal of Orthopaedic Research. 24, 831-841 (2006).</li>
<li>Sikes, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Knockout+of+hyaluronan+synthase+1%2C+but+not+3%2C+impairs+formation+of+the+retrocalcaneal+bursa%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Knockout of hyaluronan synthase 1, but not 3, impairs formation of the retrocalcaneal bursa.</a> Journal of Orthopaedic Research. 36, 2622-2632 (2018).</li>
<li>Wang, V. M., Banack, T. M., Tsai, C. W., Flatow, E. L., Jepsen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variability+in+tendon+and+knee+joint+biomechanics+among+inbred+mouse+strains%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Variability in tendon and knee joint biomechanics among inbred mouse strains.</a> Journal of Orthopaedic Research. 24, 1200-1207 (2006).</li>
<li>Wang, V. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+tendon+function+is+adversely+affected+by+aggrecan+accumulation+due+to+the+knockout+of+ADAMTS5%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Murine tendon function is adversely affected by aggrecan accumulation due to the knockout of ADAMTS5.</a> Journal of Orthopaedic Research. 30, 620-626 (2011).</li>
<li>Zhang, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tendon+mineralization+is+progressive+and+associated+with+deterioration+of+tendon+biomechanical+properties%2C+and+requires+BMP-Smad+signaling+in+the+mouse+Achilles+tendon+injury+model%5BTitle%5D)+AND+%22Matrix+Biology%22%5BJournal%5D)">Tendon mineralization is progressive and associated with deterioration of tendon biomechanical properties, and requires BMP-Smad signaling in the mouse Achilles tendon injury model.</a> Matrix Biology. 52-54, 315-324 (2016).</li>
<li>Rooney, S. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ibuprofen+differentially+affects+supraspinatus+muscle+and+tendon+adaptations+to+exercise+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Ibuprofen differentially affects supraspinatus muscle and tendon adaptations to exercise in a rat model.</a> American Journal of Sports Medicine. 44, 2237-2245 (2016).</li>
<li>Galasso, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quality+of+Life+and+Functional+Results+of+Arthroscopic+Partial+Repair+of+Irreparable+Rotator+Cuff+Tears%5BTitle%5D)+AND+%22Arthroscopy+-+Journal+of+Arthroscopic+and+Related+Surgery%22%5BJournal%5D)">Quality of Life and Functional Results of Arthroscopic Partial Repair of Irreparable Rotator Cuff Tears.</a> Arthroscopy - Journal of Arthroscopic and Related Surgery. 33, 261-268 (2017).</li>
<li>Sarver, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sex+differences+in+tendon+structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Sex differences in tendon structure and function.</a> Journal of Orthopaedic Research. 35, 2117-2126 (2017).</li>
<li>Razmjou, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disability+and+satisfaction+after+Rotator+Cuff+decompression+or+repair%3A+A+sex+and+gender+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Musculoskeletal+Disorders%22%5BJournal%5D)">Disability and satisfaction after Rotator Cuff decompression or repair: A sex and gender analysis.</a> BMC Musculoskeletal Disorders. 12, 66(2011).</li>
</ol>

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Les modèles animaux de Murine sont couramment employés pour étudier des désordres de tendon, mais la caractérisation de leurs propriétés mécaniques est provocante et rare dans la littérature. Le but de ce protocole est de décrire une méthode efficace et reproductible de temps pour l'essai tendu des tendons murins. Les nouvelles méthodes ont réduit le temps nécessaire pour tester un échantillon d'heures en minutes et ont éliminé un artefact de préhension majeur qui était un problème commun dans les méthodes précédentes.</...

Les troubles tendons sont fréquents et très répandus parmi les populations vieillissantes, athlétiques et actives1,2,3. Aux États-Unis, 16,4 millions de lésions des tissus conjonctifs sont signalées chaque année4 et représentent 30 % de toutes les visites au bureau des médecins liées aux blessures3,5,6,7, 8. Les sites les plus fréquemment touchés sont la coiffe des rotateurs, le tendon d'Achille et le tendon rotulien9. Bien qu'une variété de traitements non-opératoires et opératoires aient été explorés, y compris les drogues anti-inflammatoires, la réadaptation, et la réparation chirurgicale, les résultats restent pauvres, avec le retour limité à la fonction et les taux élevés d'échec5, 6. Ces mauvais résultats cliniques ont motivé des études de base et translationnelles visant à comprendre la tendinopathie et à développer de nouvelles approches de traitement.
Les propriétés biomécaniques tensiles sont les principaux résultats quantitatifs définissant la fonction tendinetaire. Par conséquent, la caractérisation en laboratoire de la tendinopathie et de l'efficacité du traitement doit inclure un test rigoureux des propriétés tendineuses. De nombreuses études ont décrit des méthodes pour déterminer les propriétés biomécaniques des tendons à partir de modèles animaux tels que les rats, les moutons, les chiens et les lapins10,11,12. Cependant, peu d'études ont testé les propriétés biomécaniques des tendons murines, principalement en raison des difficultés à saisir les petits tissus pour l'essai tendu. Comme les modèles murins ont de nombreux avantages pour étudier mécaniste tendinopathie, y compris la manipulation génétique, des options de réactifs étendus, et à faible coût, le développement de méthodes précises et efficaces pour tester biomécaniquement les tissus murines est nécessaire.
Afin de tester correctement les propriétés mécaniques des tendons, le tissu doit être saisi efficacement, sans glisser ou extirper l'interface d'adhérence ou la fracturation de la plaque de croissance. Dans de nombreux cas, en particulier pour les tendons courts, l'os est saisi à une extrémité et le tendon est saisi à l'autre extrémité. Les os sont généralement fixés en les incorporant dans des matériaux tels que la résine époxy13 et le polyméthylmethacrylate14,15. Les tendons sont souvent placés entre deux couches de papier de verre, collés avec du cyanoacrylate, et fixés à l'aide de pinces de compression (si la section transversale est plate) ou dans un milieu gelé (si la section transversale est grande)15,16,17 . Ces méthodes ont été appliquées aux tendons murines biomécaniquement d'essai, mais les défis se posent en raison de la petite taille des spécimens et de la conformité de la plaque de croissance, qui n'ossifie jamais18. Par exemple, le diamètre de la tête humérale murine n'est que de quelques millimètres, ce qui rend la préhension de l'os difficile. Plus précisément, l'essai tendu des échantillons de tendon-à-os de supraspinatus murine a souvent comme conséquence l'échec à la plaque de croissance plutôt que dans le tendon ou à l'enthèse de tendon. De même, l'essai biomécanique du tendon d'Achille est difficile. Bien que le tendon d'Achille soit plus grand que les autres tendons maurines, le calcanéum est petit, ce qui rend la préhension de cet os difficile. L'os peut être enlevé, suivi par la préhension des deux extrémités du tendon; cependant, ceci empêche l'essai de l'attachement de tendon-à-os. D'autres groupes rapportent saisir l'os de calcaneus utilisant des montages faits sur commande19,20,moulant par des pinces21,fixant dans le ciment plastique d'auto-traitement22 ou utilisant une fente conique de forme22,pourtant ces les méthodes antérieures restent limitées par une faible reproductibilité, des taux d'échec de préhension élevés et des exigences fastidieuses en matière de préparation.
L'objectif de la présente étude était de développer une méthode précise et efficace pour l'essai biomécanique tendu des tendons murins, en se concentrant sur les tendons supraspinatus et d'Achille comme exemples. Utilisant une combinaison des reconstructions 3D de l'anatomie indigène d'os, de la modélisation pleine, et de la fabrication additive, une nouvelle méthode a été développée pour saisir les os. Ces appareils ont effectivement sécurisé les os, empêché l'échec de plaque de croissance, diminué le temps de préparation d'échantillon, et la reproductibilité accrue d'essai. La nouvelle méthode est facilement adaptable pour tester d'autres tendons maurines ainsi que des tendons chez les rats et d'autres animaux.

<table><tbody><tr><td>Agarose</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP160-100</td><td>Dissovle 1g dans 100 ml d’eau ultra-pure pour faire 1 % d’agarose&nbsp ;</td></tr><tr><td>Bruker microCT&nbsp ;</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td>Skyscan 1272°</td><td>Utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>ElectroForce&nbsp ;</td><td>TA Instruments</td><td>3200</td><td>Plateforme d’essai</td></tr><tr><td>Éthanol 200 Proof</td><td>Fisher Scientific</td><td>A4094</td><td>Diluer à 70 % et utiliser comme suggéré dans le protocole</td></tr><tr><td>Fixation des poignées</td><td>Fabriqué sur</td><td></td> mesure <td>Utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark</td><td>&nbsp ; S-8115</td><td>Comme suggéré dans le protocole</td></tr><tr><td>MicroCT CT-Analyser (Ctan)</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Utilisé par les auteurs pour la visualisation et l’analyse des micro-tomodensitogrammes&nbsp ;</td></tr><tr><td>Eau MilliQ (eau ultrapure)</td><td>Millipore Sigma</td><td>QGARD00R1 (ou purificateur associé)</td><td>100 ml&nbsp ;</td></tr><tr><td>Meshmixer</td><td>Autodesk</td><td>http://www.meshmixer.com/</td> <td>Logiciel d’ingénierie gratuit utilisé par les auteurs pour affiner le maillage</td></tr><tr><td>Objet EDEN 260VS&nbsp ;</td><td>Stratasys LTD</td><td></td><td>Prototypage de précision</td></tr><tr><td>Objet Studio</td><td>Stratasys LTD</td><td></td><td>Utilisé par les auteurs avec imprimante 3D</td></tr><tr><td>PBS - Phosphate-Buffered Saline</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10010031</td><td>2,5 L de 10 % PBS&nbsp ;</td></tr><tr><td>S& Pince en T</td><td>Outils de science fine</td><td>00108-11</td><td>Utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>Lame de scalpel - #11</td><td>Outils de science fine</td><td>10011-00</td><td>Utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>Manche de scalpel - #3</td><td>Outils de science fine</td><td>10003-12</td><td>Utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>SkyScan 1272</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Utilisé par les auteurs pour la visualisation et l’analyse des micro-tomodensitogrammes.</td></tr><tr><td>Skyscan CT-Vox</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Utilisé par les auteurs pour la visualisation et l’analyse des micro-tomodensitogrammes.</td></tr><tr><td>SkyScan NRecon</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Utilisé par les auteurs pour la visualisation et l’analyse des micro-tomodensitogrammes&nbsp ;</td></tr><tr><td>SolidWorks CAD</td><td>Dassault Syst&egrave ; Mes</td><td>SolidWorks Research Subsription</td><td>Modélisation solide Conception assistée par ordinateur utilisée par les auteurs</td></tr><tr><td>SuperGlue</td><td>Loctite</td><td>234790</td><td>Comme suggéré dans le protocole</td></tr><tr><td>Bain d’essai</td><td>Fabriqué sur</td><td></td> mesure <td>Utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>Poignées à couche mince&nbsp ;</td><td>Sur</td><td></td> mesure <td>Utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>VeroWhitePlus</td><td>Stratasys LTD</td><td>NA</td><td>Matériau d’impression 3D utilisé par les auteurs</td></tr><tr><td>WinTest&nbsp ;</td><td>Logiciel</td><td></td> WinTest <td>Utilisé par les auteurs pour collecter des données</td></tr></tbody></table>

tests biomécaniques des tendons murines

Biomechanical Testing of Murine Tendons

Les troubles tendons sont fréquents, touchent les personnes de tous âges et sont souvent débilitants. Les traitements standard, tels que les médicaments anti-inflammatoires, la réadaptation et la réparation chirurgicale, échouent souvent. Afin de définir la fonction tendineuse et de démontrer l'efficacité des nouveaux traitements, les propriétés mécaniques des tendons des modèles animaux doivent être déterminées avec précision. Les modèles animaux de Murine sont maintenant largement employés pour étudier des désordres de tendinon et pour évaluer de nouveaux traitements pour des tendinopathies ; cependant, la détermination des propriétés mécaniques des tendons de souris a été difficile. Dans cette étude, un nouveau système a été développé pour les essais mécaniques de tendon qui inclut les montages 3D-imprimés qui correspondent exactement aux anatomies de l'humérus et du calcaneus pour tester mécaniquement des tendons supraspinatus et tendons d'Achille, respectivement. Ces appareils ont été développés en utilisant des reconstructions 3D de l'anatomie osseuse indigène, la modélisation solide, et la fabrication additive. La nouvelle approche a éliminé les défaillances de préhension artifactual (par exemple, l'échec à l'échec de la plaque de croissance plutôt que dans le tendon), a diminué le temps d'essai global, et a augmenté la reproductibilité. En outre, cette nouvelle méthode est facilement adaptable pour tester d'autres tendons et tendons murines d'autres animaux.

Des montages 3D-imprimés ont été employés pour examiner le supraspinatus murine de 8 semaines et les tendons d'Achille. Tous les échantillons testés mécaniquement ont échoué à l'enthèse, comme caractérisé par des balayages de microCT, l'inspection visuelle, et l'analyse vidéo après des essais tendus. Une comparaison en tête-à-tête des méthodes précédentes et actuelles pour l'essai du tendon supraspinatus dans notre laboratoire est montrée dans la figure 3. Dans la méthode précédente<sup clas...

Le protocole décrit des méthodes d'essai biomécaniques tendineuses et reproductibles efficaces et reproductibles pour les tendons murins grâce à l'utilisation d'appareils imprimés 3D sur mesure.

Tests biomécaniques des tendons murines

Tendon disorders are common, affect people of all ages, and are often debilitating. Standard treatments, such as anti-inflammatory drugs, rehabilitation, ...

Le protocole décrit une méthode efficace et reproductible pour l’essai biomécanique des tendons de souris par des montages imprimés 3D réutilisables adaptés sur mesure. Les nouvelles méthodes réduisent le temps nécessaire pour tester l’échantillon d’heures à quelques minutes et éliminer un artefact de préhension majeur qui était un problème courant dans les méthodes précédentes. Cette méthode ne se limite pas aux tendons supraspinatus et achilles.Il peut facilement être adapté pour tester d’autres tendons et tendons de souris de plus gros animaux. Pour assurer la reproductibilité et l’efficacité de l’approche, plusieurs cycles de prototypage et de validation de conception peuvent être nécessaires pour les appareils non décrits ici. Pour commencer, effectuez un balayage de tomographie micro-calculée de l’os entier dans le gel d’agarose.Après la reconstruction en images transversales, sélectionnez le fichier de commande ouvert pour ouvrir le jeu de données de fichiers. Ouvrez les préférences de fichier de dialogue et sélectionnez l’onglet Advanced. Utilisez l’algorithme de rendu adaptatif pour construire les modèles 3D qui fournissent des détails de surface plus lisses.Utilisez 10 comme paramètre de localité qui définit la distance en pixels au point voisin utilisé pour trouver la bordure de l’objet. Réduisez au minimum la tolérance à 0,1 pour diminuer la taille du fichier. Pour spécifier le volume d’intérêt, sélectionnez manuellement deux images à définir en haut et en bas de la plage VOI sélectionnée, puis passez à la deuxième page, Région d’intérêt.Sélectionnez manuellement la région d’intérêt sur une seule image transversale. Répétez la sélection du roi pour chaque 10 à 15 images transversales. Ensuite, passez à la troisième page, Sélection binaire.Sur le menu Histogramme, cliquez sur From Dataset pour afficher la distribution histogramme de luminosité à partir de toutes les images de l’ensemble de données. Également sur le menu Histogramme, cliquez sur le menu Créer un fichier modèle 3D. Enregistrez un modèle 3D de l’os en format fichier STL.Dans le logiciel Meshmixer, importez le maillage et sélectionnez Tous pour modifier. Choisissez produire à partir de la modification de l’ensemble d’outils, puis sélectionnez Triangle Budget à partir de l’ensemble d’outils Réduire l’objectif. Réduisez le tricompte et acceptez les modifications.Resavez le fichier nouvellement réduit en format STL en choisissant Export As.To concevoir un os huméral tendon supraspinatus, utiliser un solide modèle assisté par ordinateur programme de conception pour créer un modèle personnalisé de montage humérus-préhension. Ouvrez le fichier format STL de l’os de l’humérus dans un programme de modélisation solide et économisez en tant que fichier de pièce dans le format SLDPRT. Ouvrez ensuite le fichier Partie pour créer manuellement trois plans anatomiquement pertinents, par exemple, sagittal, coronal et transversal.Cliquez sur Fichier Nouveau pour créer la partie composant de bloc solide. Cliquez sur Fichier Nouveau pour créer un modèle d’assemblage avec deux composants, le bloc solide et l’os de l’humérus droit ou gauche. Définissez l’orientation de l’os dans le bloc pour s’assurer que l’angle entre le tendon et l’os soit de 180 degrés.Assurez-vous que tout le volume osseux s’insère à l’intérieur du bloc. Dans la fenêtre Assembly, sélectionnez le bloc et cliquez sur Modifier le composant de la barre d’outils de l’Assemblage. Cliquez sur Insert, Caractéristiques, Cavité.Sélectionnez mise à l’échelle uniforme et entrez 0% comme valeur à l’échelle dans toutes les directions. Supprimer la partie osseuse et enregistrer l’assemblage en tant que partie. Ouvrez le cylindre avec une partie de cavité.Créer un croquis, assurez-vous de ne laisser que 0,5 millimètre au-dessus de la tête humérale. Parmi les fonctionnalités, sélectionnez Coupe extrudée. Couper l’assemblage le long du plan sagittal pour créer deux composants symétriques qui s’adaptent à l’os antérieurement et postérieurement.Coupez la partie d’assemblage le long du plan sagittal pour créer deux composants symétriques qui s’adaptent à l’os antérieurement et postérieurement. Il est essentiel d’assurer la tête humérale pour prévenir la défaillance de la plaque de croissance et de définir un dégagement serré qui évite le désengagement de l’humérus du modèle pendant les essais. Procédez tel que décrit dans le manuscrit pour terminer le composant postérieur et le composant antérieur.Enregistrez les deux composants sous forme de fichiers de pièces distincts. Appuyez maintenant sur Insérer le motif, le miroir et sélectionnez Miroir pour créer des modèles miroir 3D pour chaque composant de l’appareil pour le membre opposé. Sélectionnez la face avant comme une plaine de face miroir.Sélectionnez la pièce comme corps à refléter. Sélectionnez le plan miroir et créez un croquis qui inclut tout le matériel. À partir de fonctionnalités, sélectionnez Coupe extrudée pour supprimer la pièce d’origine et ne garder qu’une partie en miroir.Cliquez sur le bas de la pièce et utilisez-le comme plan pour faire un croquis. Cliquez sur Sketch Text et ajoutez L ou R.This ajoute une gravure sur le bas des appareils pour distinguer entre les côtés gauche et droit. Enregistrez toutes les pièces de montage au format de fichier standard STL en vue de l’impression 3D.Pour disséquer le tendon musculaire supraspinatus, spécimen d’os d’humérus, placez d’abord la souris euthanasiée dans une position sujette et faites une incision dans la peau au-dessus du coude de la scie avant vers l’épaule. Utilisez des forceps pour enlever soigneusement la peau avec une dissection émoussée afin que la musculature de l’épaule soit visible. Enlever le tissu entourant l’humérus jusqu’à ce que l’os soit exposé.Tenez l’humérus avec des forceps et retirez soigneusement les muscles deltoïdes et trapèzes pour exposer l’arc coracoacromial. Identifiez l’articulation AC et séparez soigneusement la clavicule de l’acromion à l’aide d’une lame de scalpel. En prenant soin de ne pas endommager le tendon supraspinatus et son attachement osseux, retirez le muscle de son attachement scapulaire à l’aide d’une lame de scalpel.Détachez la tête humérale du glenoïde et lacérer la capsule articulaire et le subscapularis infraspinatus et teres tendons mineurs. Désarticuler l’articulation du coude pour séparer l’humérus de l’ulna et du rayon. Isoler le spécimen de muscle du tendon humérus-supraspinatus et nettoyer l’excès de tissus mous sur l’humérus et la tête humérale.Pour disséquer le tendon d’Achille, l’os du calcanée, placez une souris euthanasiée dans une position couchée. En prenant soin de ne pas endommager le tendon d’Achille et son attachement osseux, enlever la peau avec dissection émoussée de sorte que la musculature autour de la cheville et les articulations du genou est exposée. À l’aide d’une lame de scalpel, à partir de l’attachement tendon d’Achille-calcaneus, détachez soigneusement le muscle gastrocnemius de ses attachements proximaux.Désarticuler soigneusement le calcanée des différents os adjacents et isoler le spécimen tendon d’Achille-calcanée et nettoyer les tissus mous excédentaires. Pour déterminer la zone transversale du tendon, insérez l’os à l’envers pour suspendre le spécimen dans le cryotube rempli de gel agarose avec l’os dans le gel agarose et le tendon et le muscle à l’extérieur. Après l’analyse à l’aide d’une tomographie micro-calculée, retirez doucement le muscle du tendon à l’aide d’une lame de scalpel.Insérez l’os dans l’appareil imprimé en 3D et fixez-les aux grilles d’essai. Insérez et collez le tendon entre un papier de soie mince plié et serrez-le à l’aide de poignées de film minces. Insérez l’échantillon et les poignées dans un bain d’essai de PBS à 37 degrés Celsius et effectuez un test mécanique.Dans cette étude, utilisant les montages imprimés 3D réutilisables pour saisir l’os, le temps de préparation de spécimen a été réduit d’heures à minutes. Les courbes représentatives de déformation de charge pour l’essai tensile du tendon supraspinatus utilisant les méthodes courantes ont éliminé l’artefact principal de préhension tel que la défaillance de plaque de croissance. Les propriétés mécaniques des tendons supraspinatus et Achille démontrent un effet significatif du sexe basé sur des essais non apprirés de T avec la valeur de P moins de 0.05.Micro CT a mesuré avec succès la zone transversale le long de la longueur du tendon supraspinatus le long de la longueur du tendon d’Achille. Il est important de se rappeler que chaque site anatomique a des critères de conception spécifiques nécessaires pour une préhension efficace. Par conséquent, la conception de chaque appareil doit être adaptée en conséquence.En plus des tests tensiles à l’échec, ces appareils peuvent être utilisés pour les tests de chargement cyclique, qui fournissent des informations sur la fatigue des tendons et les propriétés viscoéléastiques. La caractérisation des propriétés mécaniques des tendons murins est rare dans la littérature en raison d’un certain nombre de raisons, y compris la difficulté à saisir ces petits tissus, les méthodes fastidieuses et longues de préparation de spécimen, et les ruptures de plaque de croissance. Ce protocole présente une méthode efficace dans le temps et reproductible pour tester les tendons de souris qui a éliminé les défaillances d’adhérence artifactual et a triplé le nombre de spécimens qui peuvent être testés en une journée.

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JoVE Journal

Bioengineering

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