Name: Nouvelle approche percutanée pour le déploiement d’implants de sténose coronaire imprimés en 3D dans les modèles porcins de la maladie cardiaque ischémique (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-02-18T16:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 39 s
Description: Découvrez une technique percutanée innovante pour déployer des implants coronaires imprimés en 3D chez le porc. Cette méthode utilise un cathéter mère-enfant pour étudier la cardiopathie ischémique de manière mini-invasive et sécurisée.

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Nous remercions les membres du personnel du Centre d’imagerie de recherche translationnelle de l’UCLA et du Département de médecine animale de laboratoire de l’Université de Californie, Los Angeles, CA, États-Unis pour leur aide. Ce travail est soutenu en partie par le Département de radiologie et de médecine de la David Geffen School of Medicine de l’UCLA, l’American Heart Association (18TPA34170049) et par le Clinical Science Research, Development Council of the Veterans Health Administration ( VA-MERIT I01CX001901).

Nous avons mené les expériences conformément aux lignes directrices de la Loi sur le bien-être des animaux, des National Institutes of Health et de l’American Heart Association on Research Animal Use. Notre Comité institutionnel de protection et d’utilisation des animaux a approuvé le protocole d’étude des animaux.
1. Préparation préprocédale des implants de sténose coronaire imprimés en 3D
<ol><li>À l’aide d’une pince à épiler, enrober les implants imprimés d’une solution d’héparine à 25 % pour prévenir la formation de thrombus et laisser sécher à l’air pendant 24 h.</li>
</ol>2. Préparation préprocédale des sujets animaux
<ol><li>Demandez aux porcs mâles du Yorkshire (SNS Farms, 30 à 45 kg) d’arriver à l’établissement 1 semaine avant la date de l’expérience et de leur permettre de s’acclimater.</li>
	<li>Maintenir les porcs dans un état de jeûne après minuit la veille de la procédure.</li>
</ol>3. Anesthésie procédurale
<ol><li>Soudre le porc avec la kétamine intramusculaire (10 mg/kg) et le midazolam intraveineux (1 mg/kg).</li>
	<li>Ventiler les animaux avec un isoflurane à l’oxygène (1 à 2%) Mélange.</li>
	<li>Effectuer l’intubation endotrachéale une fois que le sujet animal est sous sédatif.</li>
	<li>Infuser le rocuronium intraveineux (IV) (2,5 mg/kg/h) et donner des bolus supplémentaires (1 à 3 mg/kg IV toutes les 20 à 30 min) au besoin pour réaliser l’immobilisation diaphragmatique.</li>
	<li>Maintenir un plan chirurgical d’anesthésie tout au long de la procédure en vérifiant le réveil, les mouvements, la grande fluctuation des signes vitaux, et d’autres signes de détresse ou d’inconfort tout au long de la durée de l’expérience. Nous avons surveillé les porcs pendant environ 6 h sous anesthésie.</li>
</ol>4. Accès vasculaire
<ol><li>En utilisant la technique de Seldinger, insérez les gaines artérielles et veineuses dans les artères et veines fémorales bilatérales des sujets.</li>
	<li>Rincer tous les ports de cathéter en continu avec une saline normale héparinisée.</li>
</ol>5. Administration préprocédmonale des médicaments
<ol><li>Administrer l’amiodarone par voie intramusculaire (1,5 mg/kg), la lidocaïne par voie intraveineuse (2 mg/kg) et l’esmolol par voie intraveineuse (1 mg/kg) au besoin pour la prophylaxie contre l’arythmie. Donnez des doses répétées d’amiodarone, de lidocaïne et d’esmolol au besoin tout au long de l’expérience pour supprimer les rythmes ventriculaires et contrôler la réponse de la fréquence cardiaque.</li>
	<li>Une fois l’accès vasculaire obtenu, administrer l’héparine (5 000 à 10 000 unités) pour maintenir un temps de coagulation activé (ACT) -300 s. Vérifier l’ACT toutes les heures au cours de l’expérience et donner de l’héparine intraveineuse supplémentaire au besoin pour maintenir l’objectif ACT.</li>
</ol>6. Surveillance hémodynamique
<ol><li>Utilisez une seule électrocardiographie latérale (ECG) plomb thoracique pour l’enregistrement des changements dans le segment ST, Les ondes T, et la fréquence cardiaque pendant toute la période expérimentale.</li>
	<li>Utilisez un transducteur de pression pour enregistrer la pression artérielle fémorale continue tout au long de la procédure.</li>
	<li>Fixez un oxymètre d’impulsion à l’oreille ou à la lèvre de l’animal pour des enregistrements continus d’oxymétrie d’impulsion.</li>
</ol>7. Préparation de l’équipement de livraison d’implants
<ol><li>Avant d’effectuer l’angiographie coronaire, insérez un ballon coronaire dégonflé de NC Trek au-dessus du fil par un cathéter mère-enfant de la taille désirée de telle sorte que l’extrémité de ballon s’étend au-delà de la pointe du cathéter.</li>
	<li>Montez l’implant imprimé 3D sur le ballon d’angioplastie dégonflé de telle sorte que l’implant est positionné entre les marqueurs du ballon et près du marqueur proximal (Figure 1B).</li>
	<li>Gonflez le ballon avec un insufflateur à 2-3 atm afin de fixer l’implant sur le ballon. Vérifier que l’implant est positionné plus près de la moitié proximale du ballon afin qu’il soit le plus proche du cathéter mère-enfant lorsqu’il est prêt pour l’enlèvement (Figure 1B).</li>
</ol>8. Angiographie coronaire et déploiement de l’implant coronaire
<ol><li>Placez le bras C fluoroscopique dans la projection antéropostérieure (AP).</li>
	<li>Fixer une soupape de commande (voir Tableau des matériaux) à un cathéter de guide coronaire gauche ou droite (voir Tableau des matériaux).</li>
	<li>Introduire le cathéter guide sur un fil à pointe J à travers la gaine de l’artère fémorale droite et, sous la direction fluoroscopique, avancer le cathéter à la racine aortique.</li>
	<li>Sélectivement (ou non sélectivement) engager le cathéter dans l’artère coronaire principale gauche (LMCA) et injecter 5 mL de contraste iodé sous fluoroscopie pour visualiser le système coronaire gauche.</li>
	<li>Placez le cathéter guide vers le LMCA pour la deuxième angiographie (figure 2). Si l’engagement de l’artère coronaire s’avère difficile, en partie à cause de la courte arche aortique du porc, envisagez d’effectuer des angiographies non sélectives tant qu’elles fournissent une visualisation adéquate des vaisseaux.</li>
	<li>Une fois engagé à l’intérieur, ou positionné près de la LMCA, sous fluoroscopie, avancez un fil coronarien de 0,014", 300 cm (voir Tableau des matériaux) dans le LMCA et avancez le fil vers l’artère descendante antérieure gauche distale (LAD) ou l’artère coronaire circonflexe gauche (LCX) si désiré (Figure 3).</li>
	<li>Sous la direction fluoroscopique, insérez le cathéter mère-enfant précédemment assemblé avec le ballon d’angioplastie coronaire gonflé et implantez sur le fil coronaire et avancez à l’endroit désiré le long du vaisseau coronaire. Injecter 5 ml de contraste iodé pour visualiser un rétrécissement discret à l’endroit désiré où l’implant coronaire devrait être déployé (Figure 4).</li>
	<li>Une fois l’implant en position, avancez le cathéter mère-enfant au marqueur proximal du ballon gonflé.</li>
	<li>Dégonfler le ballon et le rétracter à travers le cathéter mère-enfant. Ce processus permet au cathéter mère-enfant de cisaillant l’implant hors du ballon pendant qu’il est rétracté et fixe la position de l’implant dans le segment désigné du navire.</li>
	<li>Retirez le ballon, le cathéter mère-enfant et le fil coronaire.</li>
	<li>Effectuer des angiographies finales pour documenter l’emplacement de la nouvelle sténose artificielle à l’intérieur du navire. Dans la mesure du possible, les angiographies doivent être exécutées en deux vues orthogonales pour acquérir une estimation visuelle de la gravité de la sténose. Une angiographie finale (Figure 5) peut également être effectuée avec le positionnement sous-sélectif du cathéter mère-enfant dans le vaisseau proximal, qui fournit une excellente opacification avec un contraste minimal.</li>
	<li>Transférez immédiatement l’animal à la suite MR pour subir une IRM de perfusion de stress cardiaque à l’aide de gadobutrol (0,1 mM/kg) injecté à un taux de 2 ml/sec. REMARQUE : L’agent de stress utilisé était une perfusion de 4 min d’adénosine à 300 g/kg/min. Le protocole d’imagerie comprenait 1) l’imagerie cine (champ de vision [FOV] - 292 x 360 mm, taille de la matrice 102 x 126, temps de répétition [TR] - 5,22 ms, temps d’écho [TE] - 2,48 ms, épaisseur de tranche - 6 mm, bande passante pixel - 450 Hz, angle de bascule - 12 degrés); 2) perfusion de première passe au repos et au stress de vasodilatateur d’adénosine de pointe utilisant une séquence d’écho de gradient gâtée (FOV 320 x 320 mm, taille de matrice ' 130 x 130, TR ' 2.5 ms, TE ' 1.1 ms, épaisseur de tranche ' 10 mm, bande passante de pixel '650 Hz, angle de bascule : 12 degrés; et 3) imagerie d’amélioration tardive du gadolinium à l’aide d’une séquence d’amélioration du gadolinium à l’aide d’une séquence d’amélioration de la phase-sensibilité-inversion-recovery (FOV 225 x 340 mm, taille de la matrice - 131 x 175 mm, TR - 5,2 ms, TE - 1,96 ms, épaisseur de tranche ' 8 mm, temps d’inversion (TI) bande passante ixel 465 Hz, angle de bascule à 20 degrés). Une image illustrative de perfusion de première passe est montrée dans la figure 6.</li>
	<li>Après l’achèvement du protocole d’IRM, euthanasiez le porc par une infusion de pentobarbital de sodium (100 mg/kg).</li>
	<li>Effectuer une thoracotomie latérale, exciser le cœur, et disséquer le cœur ex vivo pour exposer les vaisseaux coronaires. Notez l’emplacement de l’implant par rapport aux branches diagonales (territoire DEL) ou aux branches marginales obtus (territoire LCX), et récupérez les implants.</li>
	<li>À l’aide de ciseaux Metzenbaum émoussés et incurvés, ouvrez le navire coronaire et inspectez le navire pour décevoir des blessures graves (voir la figure 7). Photographiez le tissu cardiaque pour la pathologie brute et tachez avec le chlorure triphenyltetrazolium pour exclure l’infarctus du myocarde (voir figure 8).</li>
</ol>

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</ol>

Les auteurs n’ont rien à révéler.

Dans ce travail, nous nous sommes concentrés sur une nouvelle stratégie percutanée de déploiement pour les implants induisant la sténose coronaire et avons montré qu’un cathéter mère-enfant peut être réaménagé pour la livraison percutanée efficace des implants coronaires imprimés en 3D. Des sténoses coronariennes artificielles discrètes de gravité variable peuvent être créées rapidement dans les modèles porcins avec un taux de réussite élevé et d’une manière minimalement invasive en utilisant des techniques et des équipe...

Les cardiopathies ischémiques continuent d’être la première cause de décès aux États-Unis1. De grands modèles animaux ont été utilisés expérimentalement pour comprendre et caractériser les mécanismes entraînant la maladie coronarienne (CAD) et les complications associées (y compris l’infarctus du myocarde, les événements arythmiques et l’insuffisance cardiaque), ainsi que pour l’essai de nouvelles thérapies ou modalités diagnostiques. Les résultats de ces études ont contribué à élargir la compréhension, le diagnostic et le suivi des maladies cardiaques ischémiques et à faire progresser la pratique clinique2. Plusieurs modèles animaux, y compris des lapins, des chiens et des porcs ont été utilisés. Cependant, les sténoses coronaires, particulièrement les lésions discrètes, se produisent très rarement dans ces animaux et sont difficiles à induire reproductiblement3. Des travaux antérieurs ont décrit la création de sténoses coronaires artificielles utilisant la ligature, les occluders, ou les pinces externes. Récemment, nous avons décrit comment utiliser la technologie d’impression 3D pour fabriquer des implants coronaires qui peuvent être utilisés pour créer percutanement discret coronarien artificiel rétrécissement4. À l’aide d’un logiciel de conception assisté par ordinateur, nous avons conçu des implants d’artère coronaire comme des tubes creux avec des diamètres intérieurs et externes variables ainsi que la longueur des implants, puis nous les avons fabriqués à l’aide de matériaux additifs disponibles dans le commerce. Les implants sont lisses, creux, tubes imprimés en 3D avec des bords arrondis. Nous avons conçu une bibliothèque de tailles d’implants avec une gamme de diamètre intérieur, de diamètre extérieur et de longueur. Le diamètre externe de l’implant est basé sur la taille du cathéter de guide coronaire. Le diamètre intérieur est basé sur la taille d’un ballon d’angioplastie coronaire dégonflé. Nous avons varié la longueur de l’implant pour adapter la sévérité désirée de perfusion. Cependant, la livraison percutanée sûre de tels dispositifs peut être difficile en raison du manque de fils et de cathéters fabriqués spécifiquement pour l’usage d’animaux grands. En revanche, une vaste collection de cathéters, de fils et d’équipement de soutien sont disponibles pour une utilisation clinique dans les artères coronaires humaines. Dans ce travail, nous montrons comment réutiliser un cathéter de guide coronaire de catégorie clinique mère-enfant pour la livraison des implants coronaires imprimés 3D.
Le cathéter GuideLiner (Figure 1A) a été développé pour l’intervention coronaire percutanée (ICP) afin de permettre des sièges à cathéter profond et un soutien accru pour les cas complexes5. Dans notre enquête, le cathéter GuideLiner a été choisi en raison de la familiarité d’utilisation et de disponibilité, mais des cathéters similaires, le cas échéant, peuvent également être considérés. Considéré comme un cathéter guide « mère-enfant » (figure 1B), l’appareil s’inscrit à l’intérieur d’un cathéter de guide coronaire typique (« mère ») et est un tube flexible coaxial (« enfant »). Ce cathéter peut être inséré sur un fil de guidage et allonge efficacement la portée d’un cathéter typique de guide coronaire en s’étendant au-delà de la fin du guide coronaire. Le GuideLiner ou un cathéter mère-enfant similaire peut être utilisé comme support supplémentaire pour le déploiement des implants coronaires imprimés en 3D. Étant donné que les implants sont montés sur des ballons d’angioplastie pour être insérés comme une unité au-dessus d’un fil coronaire dans le vaisseau(figure 1B,1C),le cathéter offre un soutien supplémentaire pour livrer l’implant au site désiré. En positionnant le cathéter mère-enfant juste proximal au ballon, l’implant reste à l’endroit désiré pendant la déflation et la rétraction de ballon. En dépit d’avoir une certaine fermeté à sa structure, la capacité unique du cathéter de mère-enfant d’être avancé profondément dans les artères coronaires au-dessus d’un fil de guidage et du marqueur radiopaque à l’extrémité de cathéter étaient des caractéristiques essentielles pour l’implantation.
Notre appareil de livraison assemblé se composait d’un cathéter de guide coronaire typique, le cathéter mère-enfant, et d’un implant imprimé 3D fixé sur un ballon d’angioplastie coronaire dégonflé (Figure 1B). En tant qu’unité d’accouchement fonctionnelle, le cathéter mère-enfant a non seulement fourni un soutien supplémentaire stable pour la livraison de l’équipement, mais a également été appliqué de façon unique comme un dispositif de tonte pour maintenir les implants en place pendant la déflation et l’enlèvement du ballon. Le marqueur radiopaque à l’extrémité du cathéter a servi de guide de positionnement pour l’appareil assemblé et se trouve proximal au ballon d’angioplastie. Ces caractéristiques ont permis un déploiement précis des implants limitant le débit. Le processus a été conçu pour être reproductible, efficace et humain pour les sujets animaux.
Dans notre application, la technique percutanée de livraison de mère-enfant a été employée pour créer des modèles de porc avec la sténose coronaire focale pour l’évaluation de la formation image de résonance magnétique de perfusion cardiaque de contraste-augmentée de stress (MRI). Cependant, la technique peut être employée dans d’autres investigations comprenant des systèmes vasculaires en dehors des vaisseaux coronaires.

<table><tbody><tr><td>Implants coronariens imprimés en 3D</td><td>Site d’étude Fabrication de</td><td></td><td></td></tr> solution <tr><td>Amiodarone IV</td><td>Site d’étude Pharmacie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amplatz Gauche-2 (AL-2) Cathéter guide (8F)</td><td>Boston Scientific, Marlborough, Massachusetts, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Balance Fil coronarien de poids moyen (0,014" 300cm)</td><td>Abbott Laboratories, Abbott Park, Illinois, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vanne de contrôle de purge COPILOT</td><td>Abbott Laboratories, Abbott Park, Illinois, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solution d’Esmolol IV (1 mg/kg)</td><td>Site d’étude Pharmacie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Formlabs Form 2 Imprimante 3D avec une taille minimale de caractéristique XY de 150 & micro ; m</td><td>Formlabs Inc., Somerville, Massachusetts, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Formlabs Résine grise (matériau d’implant)</td><td>Formlabs Inc., Somerville, Massachusetts, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gadobutrol 0,1 mmol/kg</td><td>Gadvist, Bayer Pharmaceuticals, Wayne, NJ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cathéter GuideLiner (6F)</td><td>Vascular Solutions Inc., Minneapolis, Minnesota, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solution d’héparine IV</td><td>Surface Solutions Laboratories Inc., Carlisle, Massachusetts, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kétamine IM solution (10 mg/kg)</td><td>Site d’étude Pharmacie</td> Lidocaïne <td></td><td></td></tr><tr><td>IV solution</td><td>Pharmacie Porc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Yorkshire mâle (30-45 kg)</td><td>SNS Farms</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Midazolam IV solution</td><td>Site d’étude</td><td></td><td></td>Pharmacie</tr><tr><td>NC Trek over-the-wire ballon coronaire</td><td>Abbott Laboratories, Abbott Park, Illinois, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Oxygène-isoflurane 1-2 % inhalé mélange</td> Site <td>d’étude Pharmacie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solution de rocuronium IV</td> Site <td>d’étude Pharmacie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital de sodium solution IV (100mg/kg)</td><td>Site d’étude</td> Pharmacie <td></td><td></td></tr><tr><td>Coloration au chlorure de triphényltétrazolium</td><td>Institution Pathologie Laboratoire</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

nouvelle approche percutanée pour le déploiement d’implants de sténose coronaire imprimés en 3d dans les modèles porcins de la maladie cardiaque ischémique

Novel Percutaneous Approach for Deployment of 3D Printed Coronary Stenosis Implants in Swine Models of Ischemic Heart Disease

Les méthodes mini-invasives pour créer des modèles de rétrécissement coronaire focal chez les grands animaux sont difficiles. Le prototypage rapide utilisant des implants coronaires imprimés tridimensionnels (3D) peut être employé pour créer percutanément une sténose coronaire focale. Cependant, la livraison fiable des implants peut être difficile sans l’utilisation d’équipement auxiliaire. Nous décrivons l’utilisation d’un cathéter de guide coronaire de mère-enfant pour la stabilisation de l’implant et pour la livraison efficace de l’implant imprimé 3D à n’importe quel endroit désiré le long de la longueur du vaisseau coronaire. Le rétrécissement coronaire focal a été confirmé sous la cinéangiographie coronaire et l’importance fonctionnelle de la sténose coronaire a été évaluée utilisant le gadolinium-amélioré premier passage irm de perfusion cardiaque. Nous avons montré que la livraison fiable des implants coronaires imprimés en 3D dans les modèles de porcs (n - 11) de la maladie cardiaque ischémique peut être réalisée en réutilisant les cathéters de guide coronaire de mère et d’enfant. Notre technique simplifie la livraison percutanée des implants coronaires pour créer des modèles porcins à poitrine fermée de la sténose coronarienne focale et peut être effectuée rapidement, avec un faible taux d’échec procédural.

Après l’optimisation initiale de la procédure, le composant d’intervention a été accompli dans un délai de 30 min. Les implants ont été livrés avec succès dans chacun des 11 sujets (100%). L’implant a été récupéré à l’autopsie chez les 11 sujets (100%). En utilisant les branches diagonales (le long de la LAD) ou les branches marginales obtus (le long du LCX) comme marqueurs positionnels, nous avons trouvé que la position de l’implant lors du déploiement guidé fluoroscopique et à l’autopsie était cohérente dans 10 des 11 ...

Nous décrivons une technique nouvelle, rentable, et efficace pour la livraison percutanée des implants coronaires tridimensionnels imprimés pour créer des modèles de porcs à coffre fermé de la maladie cardiaque ischémique. Les implants ont été fixés en place à l’aide d’un cathéter d’extension mère-enfant avec un taux de réussite élevé.

Nouvelle approche percutanée pour le déploiement d’implants de sténose coronaire imprimés en 3D dans les modèles porcins de la maladie cardiaque ischémique

Minimally invasive methods for creating models of focal coronary narrowing in large animals are challenging. Rapid prototyping using three-dimensionally ...

Notre modèle de porc à poitrine fermée mini-invasive compatible IRM. Il facilite une étude translationnelle plus rapide des maladies cardiaques ischémiques. Nous avons montré qu’un cathéter mère-enfant peut être utilisé pour déployer avec précision des implants coronaires d’une manière sûre et rapide, limitant les effets indésirables sur les sujets animaux.Notre méthode peut être utilisée pour développer de nouvelles techniques d’imagerie diagnostique dans les maladies cardiaques ischémiques. Avec quelques légères modifications, il peut également être appliqué à d’autres états vasculaires de maladie. Bien qu’il puisse être difficile de cannuler sélectivement l’artère coronaire principale gauche chez les petits porcs, l’utilisation d’un cathéter mère-enfant permet d’obtenir des angiographies d’excellente qualité.Notre méthode nous permet d’induire une lésion coronaire focale dans le navire de notre choix et de mener une étude d’IRM le même jour. La démonstration visuelle de la technique aidera à réduire les essais et erreurs dans les enquêtes futures, ce qui se traduira par des résultats plus reproductibles. La veille de l’intervention, utilisez des pinces à épiler pour tremper les implants imprimés dans une solution 25% Héparine.Et laisser sécher les implants pendant 24 heures. Le jour de la procédure confirmer un niveau approprié de sédation chez un porc du Yorkshire de 30 à 45 kilogrammes, et utiliser la technique Seldinger pour insérer les gaines artérielles et veineuses dans les artères fémorales bilatérales et les veines de l’animal. Rincez ensuite tous les ports de cathéter en continu avec la solution saline normale heparinisée.Après l’accès vasculaire, administrer 5000 à 10 000 unités d’Héparine pour maintenir un temps de coagulation activé de plus de 300 cent secondes. Pour la surveillance hémodynamique, utilisez des alimentations thoraciques d’électrocardiographie pour enregistrer les changements dans le segment ST, les ondes T et la fréquence cardiaque pendant toute la période expérimentale. Utilisez un transducteur de pression pour enregistrer la pression artérielle fémorale continue tout au long de la procédure.Fixez un oxymètre d’impulsion à l’oreille de l’animal pour des enregistrements continus d’oximétrie d’impulsion. Insérez un NC TREK dégonflé au-dessus du ballon coronaire métallique à travers un cathéter mère-enfant de la taille désirée de telle sorte que la pointe du ballon s’étend au-delà de la pointe du cathéter. Montez l’implant imprimé en 3D sur le ballon d’angioplastie dégonflé de sorte que l’implant soit placé entre les marqueurs du ballon et près du marqueur proximal.Ensuite, utilisez un instaflateur pour gonfler le ballon à deux à trois atmosphères pour fixer l’implant sur le ballon et vérifier que l’implant est positionné plus près de la moitié proximale du ballon de sorte qu’il sera le plus proche du cathéter mère-enfant lorsqu’il est prêt pour l’enlèvement. Pour induire une angiographie coronaire avec un bras C fluoroscopique dans la projection postérieure antérieure, fixez une valve de commande à un cathéter coronaire gauche ou droit de guide. Introduire le cathéter guide sur un fil incliné J à travers la gaine de l’artère fémorale droite.Et sous guidage fluoroscopique avancer le cathéter à la racine aortique. Engagez sélectivement le cathéter dans l’artère coronaire principale gauche, et injectez cinq millilitres de contraste iodinated sous fluoroscopie pour visualiser le système coronaire gauche. Placez le cathéter guide vers l’artère coronaire principale gauche pour la deuxième angiographie.Une fois engagé à l’intérieur ou en position près de l’artère coronaire principale gauche, avancez un fil coronaire de 0,014 pouce 300 centimètres dans l’artère coronaire principale gauche et avancez davantage le fil à l’artère descendante antérieure gauche distale. Insérez le cathéter mère-enfant précédemment assemblé avec le ballon d’angioplastie coronaire gonflé et implantez-le au-dessus du fil coronaire et avancez l’assemblage à l’endroit désiré le long du vaisseau coronaire. Injectez cinq millilitres de contraste iodinated pour visualiser un rétrécissement discret à l’endroit désiré où l’implant coronaire doit être déployé.Une fois que l’implant est en position, avancez le cathéter mère-enfant au marqueur proximal du ballon gonflé. Les contraintes géométriques du système de livraison permettent de positionner la sténose dans la partie proximale à moyenne de l’artère coronaire porcine. Dégonflez le ballon et rétractez-le à travers le cathéter mère-enfant pour cisaillé l’implant du ballon pendant qu’il est rétracté, fixant la position de l’implant dans le segment désigné du navire.Effectuez ensuite des angiographies finales pour documenter l’emplacement de la nouvelle sténose artificielle à l’intérieur du vaisseau et deux vues orthogonales que possible pour acquérir une estimation visuelle de la gravité de la sténose. Après la récolte, disséquer le cœur ex vivo pour exposer les vaisseaux coronaires. Notez l’emplacement de l’implant par rapport aux branches où il a été placé à côté pour récupérer les implants et inspecter le navire pour décelé les dommages graves.Photographiez ensuite le tissu cardiaque pour la pathologie brute et la tache avec TTC pour exclure l’infarctus du myocarde. Dans ces images cardiaques de résonance magnétique de profusion de stress d’un implant coronaire déployé dans l’artère descendante antérieure proximale à mi-gauche, le navire implanté peut être observé au repos et au stress de vasodilatateur d’adénosine de pointe. Notez les défauts inductibles de perfusion dans les segments sous-tendus par l’artère descendante antérieure gauche.N’oubliez pas de vous assurer que le cathéter mère-enfant est rincé contre l’implant dans une position stable avant la déflation du ballon coronaire pour permettre le cisaillement du ballon au moment du retrait. Nous pouvons maintenant déployer un implant et mener une étude complète d’imagerie MR commencer à se terminer en une seule journée, réduisant considérablement le calendrier et les défis logistiques pour ces expériences.

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Un modèle d'implantation d'une endoprothèse dans l'artère carotide souris est décrite. Comparé à d'autres méthodes similaires, cette procédure est très rapide, simple et accessible, offrant la possibilité d'étudier d'une manière pratique, la réaction de la paroi vasculaire à différents stents à élution médicamenteuse et les mécanismes moléculaires de la resténose.

Un modèle murin d&#39;implantation d&#39;une endoprothèse dans l&#39;artère carotide pour l&#39;étude de la resténose

Le but du présent protocole est de démontrer la mise en place d’un dispositif de constriction retardé (un constrictor Améroïde) autour d’une artère coronaire dans un modèle de porcs. Ce dispositif crée une zone ischémique du coeur qui est utile pour l’étude de nouvelles techniques d’imagerie diagnostiques et nouvelles méthodes de traitement.

Un modèle d’ischémie cardiaque chronique chez les porcs à l’aide d’un Constrictor Améroïde

Ce protocole décrit l’implantation des stents coronaires humains dans l’aorte abdominale des rats avec un fond d’apoE-/- utilisant un accès transport-fémoral. Par rapport à d’autres modèles animaux, les modèles murins ont les avantages d’un débit élevé, d’une reproductibilité, d’une facilité de manipulation et de logement et d’une large disponibilité de marqueurs moléculaires.

Implantation d’endoprothèses coronaires de taille humaine dans l’aorte abdominale du rat à l’aide d’un accès transfémoral

Nous présentons ici le développement d’une configuration de circulation simulée pour l’évaluation de la thérapie multimodale, la planification pré-interventionnelle et la formation des médecins sur les anatomies cardiovasculaires. Avec l’application de tomodensitogrammes spécifiques au patient, cette configuration est idéale pour les approches thérapeutiques, la formation et l’éducation en médecine individualisée.

Développement et évaluation de fantômes cardiovasculaires imprimés en 3D pour la planification interventionnelle et la formation

Les modèles animaux d’infarctus du myocarde (IM) qui imitent le processus naturel de la maladie chez l’homme sont essentiels pour comprendre les mécanismes physiopathologiques et tester l’innocuité et l’efficacité des nouvelles thérapies émergentes. Nous décrivons ici un modèle de porc MI créé en déployant une bobine d’embolisation percutanée.

Infarctus du myocarde par déploiement de bobine d’embolisation percutanée dans un modèle porcin

Cette étude démontre la faisabilité et l’innocuité du développement d’une valve pulmonaire autologue pour l’implantation à la position de la valve pulmonaire native en utilisant un stent nitinol auto-extensible dans un modèle de mouton adulte. Il s’agit d’une étape vers le développement d’un remplacement valvulaire pulmonaire transcathéter pour les patients présentant un dysfonctionnement du tractus d’écoulement ventriculaire droit.

Remplacement valvulaire pulmonaire transcathéter du péricarde autologue avec un stent au nitinol auto-extensible dans un modèle de mouton adulte

Le présent protocole décrit trois méthodes d’administration d’agents thérapeutiques cardioactifs dans un modèle porcin. Les porcs femelles ont reçu un traitement par : (1) thoracotomie et injection transépicardique, (2) injection transendocardique par cathéter, ou (3) perfusion intraveineuse par minipompe osmotique de la veine jugulaire.

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Cette étude présente un modèle chirurgical porcin d’ischémie myocardique chronique due à une sténose progressive de l’artère coronaire, entraînant une altération de la fonction cardiaque sans infarctus. Après l’ischémie, les animaux subissent un pontage aortocoronarien sans pompe avec mise en place épicardique d’un patch de collagène chargé d’exosomes dérivés de cellules souches. Ce traitement d’appoint améliore la fonction myocardique et la récupération.

Modèle chirurgical porcin d’ischémie myocardique chronique traité par un patch de collagène chargé d’exosomes et un pontage aortocoronarien sans pompe

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Une méthode de transfert de gènes pour le traitement de l'insuffisance cardiaque ischémique est décrit en utilisant un modèle porcin d'infarctus du myocarde. Notre méthode simple et reproductible nous permet de facilement évaluer l'efficacité des transferts de gènes différents avec une manière très simple et reproductible.

Transfert de gènes pour insuffisance cardiaque ischémique dans un modèle préclinique

Découvrez une technique percutanée innovante pour déployer des implants coronaires imprimés en 3D chez le porc. Cette méthode utilise un cathéter mère-enfant pour étudier la cardiopathie ischémique de manière mini-invasive et sécurisée.

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