Name: Un essai à base d’électrochimie pour Les variantes de protéines MeCP2 (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-22T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: Découvrez l'immunoessai d'électrochemiluminescence (ECLIA) pour quantifier les variants de protéine MeCP2 dans les lysats cellulaires. Cette méthode rapide et sensible offre une alternative supérieure au Western blot pour la recherche en neurosciences.

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Nous sommes très reconnaissants à la Dre Brigitte Sturm pour son soutien à l’instrument ECLIA.

L’approbation de l’approvisionnement en biopsie de la peau à des fins de recherche a été obtenue auprès du Comité d’éthique de la recherche humaine de l’Hôpital pour enfants de Westmead, en Australie. Le consentement pour les expériences animales a été obtenu auprès du Ministère fédéral autrichien des sciences, de la recherche et de l’économie, qui ont été effectués conformément aux règlements locaux sur le bien-être animal (GZ: 66.009/0218-II/3b/2015).
REMARQUE : Le principe du système ECLIA est représenté à la figure 1.
1. Sélection d’anticorps
<ol><li>Évaluez le rapport signal-bruit pour une gamme de divers anticorps MeCP2 et identifiez la meilleure force de signal et la plus grande spécificité dans la combinaison d’un anticorps monoclonal de souris primaire MeCP2 (clone Mec-168) et d’anticorps de détection polyclonal de lapin MeCP2 (fabriqué sur mesure). Pour l’anticorps secondaire, utilisez un anticorps spécifique au système(tableau des matériaux), qui a également été vérifié expérimentalement. REMARQUE : Le tableau 1 donne un aperçu de tous les anticorps vérifiés pendant le développement de MeCP2-ECLIA et de leurs plages de dilution testées.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Fonction</td>
			<td>Nom</td>
			<td>Clone</td>
			<td>Dilution</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaire</td>
			<td>Souris, anti-MeCP2</td>
			<td>Mec-168</td>
			<td>1:500-1:10,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaire</td>
			<td>Souris, anti-MeCP2</td>
			<td>4B6</td>
			<td>1:250-1:4,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaire</td>
			<td>Souris, anti-MeCP2</td>
			<td>Hommes-8</td>
			<td>1:500-1:4,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaire</td>
			<td>Souris, anti-MeCP2</td>
			<td>1B11</td>
			<td>1:500-1:4,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaire</td>
			<td>Lapin, anti-MeCP2</td>
			<td>D4F3</td>
			<td>1:500-1:4,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Secondaire</td>
			<td>Lapin, anti-MeCP2</td>
			<td>Polyclonaux</td>
			<td>1:2,000-1:20,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Secondaire</td>
			<td>Lapin, anti-MeCP2</td>
			<td>Polyclonaux</td>
			<td>1:2,000-1:20,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Détection</td>
			<td>SULFO-TAG étiqueté anti-lapin</td>
			<td>Polyclonaux</td>
			<td>1:500-1:1,000</td>
		</tr>
</tbody></table>Tableau 1 : Liste des anticorps et des dilutions de travail utilisées.
<ol start="2"><li>Vous pouvez également utiliser chaque paire d’anticorps MeCP2 qui fonctionne bien avec l’ELISA classique.</li>
</ol>2. Traitement des HDFs avec protéine de fusion TAT-MeCP2
REMARQUE : LE TAT-MeCP2 a été récombiné dans Escherichia coli et purifié à l’aide de techniques chromatographiques standard comme indiqué précédemment8 et stockés à -80 oC.
<ol><li>Plaque 1 x 106 cellules de fibroblaste dermique humain (HDF) dans des plats de 100 mm et cultivez les cellules pendant la nuit à 37 oC avec 5 % de CO2 jusqu’à ce qu’elles atteignent environ 90 % de confluence.</li>
	<li>Sortez une fiole de protéine de fusion TAT-MeCP2. Décongeler sur la glace et mélanger délicatement.</li>
	<li>Diluer TAT-MeCP2 à une concentration finale de 500 nM dans 50 mL de médias culturels HDF.</li>
	<li>Retirez le support des plats de 100 mm et incuber les cellules avec 500 nM TAT-MeCP2 à 37 oC pour diverses périodes d’incubation jusqu’à 24 h.</li>
	<li>Retirez la solution TAT-MeCP2 des cellules. Laver les cellules 2x avec pré-réchauffé Dulbecco phosphate tamponné saline (DPBS).</li>
	<li>Traiter les cellules avec 2 ml de solution trypsin-EDTA à 0,05 % pendant 5 min à 37 oC10.</li>
	<li>Ajouter 6 ml de support de culture HDF pour inactiver la trypsine et recueillir les cellules dans des tubes de 15 ml.</li>
	<li>Pelleter les cellules par centrifugation à 500 x g pendant 5 minutes à température ambiante.</li>
	<li>Retirer le supernatant et laver les cellules 2x avec DPBS glacé. Rangez le granulé sur la glace et procédez à la préparation de l’échantillon.</li>
</ol>3. Préparation de l’échantillon
<ol><li>HDF lysates<ol>
<li>Déterminez les niveaux de protéines les plus élevés de MeCP2 en utilisant la méthode REAP pour la fractionnement subcellulaire dans les compartiments subcellulaires cytoplasmiques et nucléaires selon Suzuki et coll.11. Limiter la fractionnement à pas plus de six échantillons par expérience.</li>
	</ol>
</li>
	<li>lysates de cerveau de souris<ol>
<li>Préparer 100 ml de chaque réactif hypotonique et tampon d’extraction.<ol>
<li>Pour le réactif hypotonique de lyse, mélanger bien 10 mM HEPES, 1,5 mM de chlorure de magnésium et 10 mm de chlorure de potassium.</li>
			<li>Pour le tampon d’extraction, mélanger bien 20 mM HEPES, 1,5 mM de chlorure de magnésium, 0,42 M de chlorure de sodium, 0,2 mM EDTA et 25% (v/v) glycérol.</li>
			<li>Ajuster le pH des deux tampons à 7,9.</li>
			<li>Ajouter 1 mM dithiothreitol (TNT) et 1x cocktail inhibiteur de protéase aux deux tampons fraîchement. Refroidir sur la glace avant l’utilisation.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Suspendre 100 mg du cerveau total de la souris (souche : C57BL/6J, mâle et femelle de type sauvage et B6.129P2(C)-Mecp2tm1.1Bird/J,mâle hemizygous et femelle hétérozygote; âge : 4-8 semaines) dans 1 mL de froid hypotonique froid lysis reagent.</li>
		<li>Homogénéisez le cerveau avec un homogénéisateur de tissu tout en verre Dounce pré-réfrigéré par 15 coups d’homogénéiseur A (lâche, pour le dégagement important) et B (serré, pour le petit dégagement), respectivement.</li>
		<li>Transférer les cellules homogénéisées dans un tube propre et une centrifugeuse à 10 000 x g pendant 20 min à 4 oC. Jetez le supernatant (ou gardez-le comme fraction cytoplasmatique pour une utilisation ultérieure).</li>
		<li>Réutilisez la granule dans 140 l de tampon d’extraction par 100 mg de matériau de départ. Placer le tube dans un thermobloc pré refroidi et mélanger délicatement pendant 30 minutes à 4 oC.</li>
		<li>Centrifuge le tube à 16.000 g pendant 10 min à 4 oC. Transférer le supernatant (c.-à-d. la fraction nucléaire) dans un nouveau tube pré-réfrigéré et conserver à -80 oC jusqu’à l’utilisation. REMARQUE : La concentration de protéines de lysates dérivées du cerveau de souris et des HDF peut être évaluée par l’essai de protéine de BCA.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Protocole MeCP2-ECLIA
<ol><li>Préparation de la solution de lavage, tampon de blocage et solution diluente d’essai (jour 1)<ol>
<li>Ajoutez 500 L de Tween 20 à 1 L de PBS pour préparer une Tween 20 de 0,05 % dans la solution PBS, mélanger vigoureusement et étiqueter comme « solution de lavage ». REMARQUE : Assurez-vous que seul le tampon de lavage fraîchement préparé est utilisé.</li>
		<li>Préparer une solution de blocage de 3% de bloqueur A(Tableau des matériaux) en saline tamponnée par phosphate (PBS). Mélanger en remuant doucement, filtrer la stérilisation et les conserver au réfrigérateur jusqu’à ce qu’ils soient utilisés pendant un maximum de deux semaines.</li>
		<li>Ajoutez 5 ml de solution de blocage à 10 ml de PBS pour préparer la solution de diluent d’essai (1 % de bloqueur A dans PBS).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Revêtement des plaques de linge haute<ol>
<li>Sortez une plaque de lier haute à un seul endroit multi-array 96-well. REMARQUE : Les plaques de lier élevées ont une plus grande capacité de liaison et donc une plus grande plage dynamique que les plaques standard avec des surfaces hydrophobes.</li>
		<li>Décongeler l’anticorps anti-MeCP2 de souris monoclonale sur la glace et mélanger 0,67 l d’anticorps avec 4 ml de PBS (1:6,000 dilution d’anticorps dans PBS). Vortex la solution d’anticorps pour bien mélanger et étiqueter le tube comme "solution de revêtement".</li>
		<li>Distribuez soigneusement 25 L de solution de revêtement dans le coin inférieur de chaque puits à l’aide d’un tuyauteur multicanal; c’est ce qu’on appelle la méthode de revêtement de solution. Appuyez doucement sur la plaque de 96 puits de chaque côté pour vous assurer que la solution de revêtement couvre le fond de chaque puits.</li>
		<li>Sceller l’assiette avec un papier d’aluminium adhésif et incuber l’assiette au réfrigérateur à 4 oC pendant la nuit (12-16 h).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Blocage (jour 2)<ol>
<li>Sortir l’assiette du réfrigérateur et retirer le papier d’aluminium.</li>
		<li>Retirez la solution de revêtement d’anticorps en la faisant glisser dans le panier à déchets et appuyez sur la plaque sur un essuie-tout pour enlever toute la solution de revêtement des puits.</li>
		<li>Ajouter 125 L de solution de blocage par puits. Scellez à nouveau la plaque et placez-la sur un shaker orbital de microplaque.</li>
		<li>Incuber la plaque pendant 90 min à température ambiante avec secousse constante à 800 tr/min.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Préparation des normes et des échantillons<ol>
<li>Pendant le temps d’incubation, préparez les normes de protéines MeCP2 et/ou TAT-MeCP2 et divers échantillons. REMARQUE : Le tampon de Lyse utilisé pour la dilution standard doit être le même que celui utilisé dans les échantillons analysés.</li>
		<li>Sortez une fiole de mePC2 et/ou de la solution de stock de protéines TAT-MeCP2 (250 g/mL), des lysates du cerveau de souris et des lysates HDF à partir de -80 oC. Décongeler sur la glace.</li>
		<li>Diluer la solution de stock standard (MeCP2 et/ou TAT-MeCP2) dans des tubes propres selon le tableau 2.</li>
		<li>Diluer les échantillons dans le tampon de lyse comme suit : 1 à 20 g de lysate du cerveau de souris par tampon de lyse de 25 l et 0,25 à 1 g de HDF lysate par tampon de lyse de 25 ll. Préparer suffisamment de volume de chaque échantillon pour effectuer l’analyse en triplicate.</li>
	</ol>
</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Standard</td>
			<td>Concentration</td>
			<td>Dilution</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 1</td>
			<td>1 800 ng/mL</td>
			<td>Solution d’actions standard de 1,08 l ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' '</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 2</td>
			<td>600 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 1 '100 'L 'L Lysis tampon</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 3</td>
			<td>200 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 2 '100 'L 'L Lysis tampon</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 4</td>
			<td>66,67 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 3 et 100 L tampon de Lysis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 5</td>
			<td>22,22 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 4 '100 'L 'L Lysis tampon</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 6</td>
			<td>7,41 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 5 '100 'L 'L Lysis tampon</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 7</td>
			<td>2,47 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 6 '100 'L 'L Lysis tampon</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 8</td>
			<td>0,82 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 7 '100 'L 'L Lysis tampon</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 9</td>
			<td>0,27 ng/mL</td>
			<td>50 L Standard 8 '100 'L 'L Lysis tampon</td>
		</tr>
<tr>
<td>Norme 10</td>
			<td>0 ng/mL</td>
			<td>Tampon de 150 l de Lysis</td>
		</tr>
</tbody></table>Tableau 2 : Série standard de 0 à 1 800 ng/mL.
<ol start="5"><li>Ajout d’échantillons et de solutions standard<ol>
<li>Retirez la solution de blocage en la faisant glisser dans le panier à déchets et appuyez sur la plaque sur un essuie-tout pour supprimer toute la solution de blocage des puits.</li>
		<li>Laver la plaque 3x avec 150 l de solution de lavage en ajoutant la solution de lavage et en l’enlevant immédiatement.</li>
		<li>Ajoutez 25 ul de normes et d’échantillons au coin inférieur du puits à l’aide d’une pipette à canal unique.</li>
		<li>Scellez la plaque et incuber la plaque pendant 4 h à température ambiante avec une secousse constante à 800 tr/min.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Anticorps de détection non étiquetés<ol>
<li>Décongeler l’anticorps anti-MeCP2 de lapin polyclonal sur la glace. Diluer l’anticorps 1:6,000 dans la solution diluent d’essai.</li>
		<li>Retirez les normes et les échantillons en le faisant glisser dans le panier à déchets et appuyez sur la plaque sur un essuie-tout.</li>
		<li>Laver la plaque 3x avec 150 l de solution de lavage en ajoutant la solution de lavage et en l’enlevant immédiatement.</li>
		<li>Ajouter 25 L d’anticorps de détection non étiquetés à chaque puits avec le tuyauteur multicanal. Scellez la plaque et incuber pendant 1 h avec une secousse constante à 800 tr/min à température ambiante.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Anticorps conjugués spécifiques<ol>
<li>Sortez l’anticorps secondaire spécifique(tableau des matériaux) du réfrigérateur et placez-le sur la glace. Diluer l’anticorps 1:666.67 dans la solution de diluent d’essai et mélanger doucement.</li>
		<li>Retirez l’anticorps secondaire non étiqueté en le faisant glisser dans le panier à déchets et appuyez sur la plaque sur un essuie-tout.</li>
		<li>Laver la plaque 3x avec 150 l de solution de lavage en ajoutant la solution de lavage et en l’enlevant immédiatement.</li>
		<li>Ajoutez 25 L d’anticorps conjugués spécifiques(tableau des matériaux)à chaque puits avec le tuyauteur multicanal. Scellez la plaque et incuber pendant 1 h avec une secousse constante à 800 tr/min à température ambiante.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lecture de l’assiette<ol>
<li>Retirez l’anticorps conjugué gratuit (tableau des matériaux) en le faisant glisser dans le panier à déchets et appuyez sur la plaque sur un essuie-tout.</li>
		<li>Laver la plaque 3x avec 150 l ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' '</li>
		<li>Ajoutez 150 L de tampon de lecture d’or à base de 1x Tris(Tableau des matériaux) avec un surfactant contenant de la tripropylamine comme co-réactif pour la production légère à l’assiette. Évitez les bulles d’air en utilisant des techniques de tuyauterie inversée.</li>
		<li>Placez la plaque sur la plate-forme de détection des microplates(tableau des matériaux) et commencez la mesure immédiatement. Utilisez les paramètres pour l’acquisition de plaques de 96 puits.</li>
		<li>Capturez les signaux d’électrochimie par une caméra CCD intégrée dans un système de détection d’électrochimie(Tableau des matériaux) et enregistrez les nombres de signaux, qui correspondent aux unités de lumière relatives (RLU) et sont directement proportionnels à l’intensité de la lumière. REMARQUE : Lors de la stimulation électrochimique, l’étiquette de ruthénium liée à l’électrode de carbone émet une lumière de luminescence à 620 nm. Analyser les données avec le logiciel accompagné d’instruments(Tableau des matériaux).</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Debad, J. D., Glezer, E. N., Wohlstadter, J., Sigal, G. B., Leland, J. K. Clinical and biological applications of ECL. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDebad%2C+JD+%22Electrogenerated+Chemiluminescence%22">Electrogenerated Chemiluminescence</a>. Bard, A. J. , CRC Press. Baca Raton, FL. 359-383 (2004).</li>
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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Pour mesurer les niveaux endogènes MeCP2, recombinants MeCP2 et TAT-MeCP2, une plaque de 96 puits ECLIA a été développée. Il a été démontré que la perte de la fonction de protéine MeCP2 conduit au syndrome de RTT6, pour lequel le traitement est actuellement limité à la gestion des symptômes et la physiothérapie. Une avenue de traitement prometteuse est la thérapie de remplacement de protéine, où les niveaux de MeCP2 peuvent être titrés jusqu’à leur concentration nécessaire12</sup...

L’immunoassay d’électrochimie (ECLIA) est basé sur un processus qui utilise des étiquettes conçues pour émettre de la luminescence lorsqu’elles sont stimulées électrochimiquement. Il s’agit d’une technique largement applicable pour la détection quantitative des analytes biologiques dans l’industrie de base et la recherche universitaire, l’industrie alimentaire ainsi que dans le diagnostic clinique1. Généralement, une plaque jetable de 96 puits avec des électrodes en encre de carbone est utilisée. Ces électrodes agissent comme un porteur de phase solide pour l’immunoassay. Un anticorps secondaire est conjugué à une étiquette électrochimique et lorsque l’électricité est appliquée au système, l’émission de lumière de l’étiquette chimique est déclenchée. Un dispositif ultra-faible de charge de bruit (CCD) enregistre l’intensité lumineuse qui est directement proportionnelle à l’antigène lié à l’anticorps de capture ayant pour résultat la quantification de l’analyte ciblé de l’échantillon2. Par rapport à l’essai immunosorbent lié à l’enzyme (ELISA), ECLIA est considéré comme avantageux car il offre une plus grande sensibilité et reproductibilité ainsi qu’une meilleure automatisation et la cohérence3.
Ici, nous avons analysé les niveaux de protéine liant méthyle-CpG 2 (MeCP2) dans des échantillons d’origine humaine et trouble ainsi que différentes variantes de la protéine recombinante utilisant le système ECLIA nouvellement développé. MecP2 est une protéine nucléique liée à l’acide X connue pour interagir avec des séquences d’ADN méthylées. Cette protéine a été impliquée dans la régulation de l’expression génique4,5. Les mutations de perte de fonction dans le gène qui code cette protéine sont les principaux coupables causant le syndrome de Rett (RTT), un désordre neurodéveloppemental grave6. Un autre trouble lié à MeCP2, syndrome de duplication MECP2, conduit également à des symptômes neurologiques qui peuvent se chevaucher avec ceux de RTT7. Notamment, les femelles sont principalement affectées par RTT tandis que les mâles sont pour la plupart affligés par le syndrome de duplication MECP2 6,7.
Ces troubles sont associés à des niveaux insuffisants ou excessifs de MeCP2 respectivement dans le système nerveux central (SNC). Par conséquent, les options de traitement pour RTT qui impliquent l’augmentation des niveaux meCP2 dans le SNC devraient éviter les effets néfastes associés à l’excès de MeCP27. En raison de ce fait, une quantification très sensible et précise des niveaux de protéines MeCP2, tel que fourni par le système ECLIA, est crucial pour l’avancement de rtT ainsi que la recherche sur le syndrome de duplication MECP2. Les mesures précises des niveaux endogènes et exogènes meCP2 des lignées cellulaires humaines et des échantillons de tissu de souris ainsi qu’une protéine recombinante composée de l’isoforme B humaine MeCP2 (également connu sous le nom d’isoforme e1), et un domaine minimal de transduction N-terminal HIV-TAT (TAT-MeCP2) qui a le potentiel de traverser la barrière hémato-encéphalique8,,9 sont présentées dans ce travail.

<table><tbody><tr><td>1,4-Dithiothréitol (DTT)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9779</td><td>Réactif de lyse hypotonique, tampon d’extraction,</td></tr><tr><td>dosage de protéines Bio-Rad, concentré de réactif de colorant</td>, <td>Bio-Rad Laboratories, Inc.</td><td>500-0006</td><td>Préparation d’échantillon</td></tr><tr><td>Détection AB SULFO-TAG étiqueté anti-lapin</td><td>Meso Scale Diagnostics</td><td>R32AB-1</td><td></td></tr><tr><td>Antibody Discovery workbench 4.0</td><td>Meso Scale Discovery</td><td></td><td>Software</td></tr><tr><td>DMEM (1X)</td><td>gibco by Life Technologies</td><td>41966-029</td><td>Préparation d’échantillons</td></tr><tr><td>Dulbecco' s PBS (stérile)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537-500ML</td><td>Préparation d’échantillons, Solution de lavage, Solution d’enrobage</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>EDS</td><td>Tampon d’extraction</td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F9665</td><td>Préparation d’échantillons</td></tr><tr><td>Glycérol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G2025</td><td>Tampon d’extraction</td></tr><tr><td>Gold Read Buffer T (1x) avec tensioactif</td><td>Meso Scale Diagnostic</td><td>R92TG</td><td>MeCP2 Protocole ECLIA</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3375</td><td>Réactif de lyse hypotonique, tampon d’extraction</td></tr><tr><td>KIMBLE Dounce kit de broyeur de tissus</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8938</td><td>Préparation d’échantillons</td></tr><tr><td>Laboratoire Agitateur, mouvement de balancement (basse vitesse)</td><td>GFL</td><td>3014</td><td>MeCP2 Protocole ECLIA</td></tr><tr><td>Chlorure de magnésium hexahydraté (MgCl*6H20)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2670</td><td>Réactif de lyse hypotonique, Tampon d’extraction</td></tr><tr><td>MeCP2 (Humain) Protéine recombinante (P01)</td><td>Abnova Corporation</td><td>H00004204-P01</td><td>Traitement cellulaire</td></tr><tr><td>Microseal B seal</td><td>Bio-Rad Laboratories Inc.</td><td>MSB1001</td><td>pour l’étanchéité</td></tr><tr><td>des plaques Monoclonal Anti-MeCP2, produit chez la souris, clone Mec-168, immunoglobuline purifiée</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6818-100UL ; RRID :AB_262075</td><td>Anticorps, Solution d’enrobage</td></tr><tr><td>MSD Blocker A</td><td>Meso Scale Diagnostics</td><td>R93BA-4</td><td>Blocker</td></tr><tr><td>MSD SECTOR Imager 2400</td><td>Meso Scale Diagnostics</td><td>I30AA-0</td><td>MeCP2 Protocole ECLIA</td></tr><tr><td>Multi-Array 96-well Plate</td><td>Meso Scale Diagnostics</td><td>L15XB-3/L11BX-3</td><td>MeCP2 Protocole ECLIA</td></tr><tr><td>Pénicilline-Streptomycine</td><td>gibco by Life Technologies</td><td>15140122</td><td>Préparation d’échantillons</td></tr><tr><td>Polyclonal Anti-MeCP2, produit chez le lapin</td><td>Eurogentec S.A.</td>anticorps <td>sur mesure</td><td></td></tr><tr><td>Chlorure de potassium (KCl)</td><td>Merck KGaA</td><td>1049361000</td><td>Réactif de lyse hypotonique</td></tr><tr><td>Souris AB primaire, anti-MeCP2 (1B11)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SAB1404063 ; RRID :AB_10737296</td><td>Anticorps</td></tr><tr><td>primaire AB souris, anti-MeCP2 (4B6)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>WH0004204M1 ; RRID :AB_1842411</td><td>Anticorps</td></tr><tr><td>primaire AB souris, anti-MeCP2 (Mec-168)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6818 ; RRID :AB_262075</td><td>Anticorps</td></tr><tr><td>primaire AB souris, anti-MeCP2 (Men-8)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7443 ; RRID :AB_477235</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps primaire AB Rabbit, anti-MeCP2 (D4F3)</td><td>Technologie de signalisation cellulaire</td><td>3456S ; RRID :AB_2143849</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps Inhibiteur de Protéase Cocktail (100X)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>8340</td><td>Réactif de lyse hypotonique, Tampon d’extraction</td></tr><tr><td>Secondaire AB, Lapin, anti-MeCP2</td><td>Eurogentec S.A.</td><td>personnalisé</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps secondaire AB, Lapin, anti-MeCP2</td><td>Merck</td><td>07-013</td><td>Anticorps</td></tr><tr><td>Chlorure de sodium (NaCl)</td><td>Tampon d’extraction</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>S3014</td></tr><tr><td>Anticorps anti-lapin marqué SULFO-TAG (chèvre)</td><td>Meso Scale Diagnostics</td><td>W0015528S</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps TAT-MeCP2</td><td>protéine</td><td></td> de fusion production interne <td>Traitement cellulaire</td></tr><tr><td>Trypsine EDTA 0,25 % (1X)</td><td>gibco par Life Technologies</td><td>25200-056</td><td>Traitement cellulaire</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9416</td><td>Solution de lavage</td></tr></tbody></table>

un essai à base d’électrochimie pour les variantes de protéines mecp2

An Electrochemiluminescence-Based Assay for MeCP2 Protein Variants

L’ECLIA est une méthode polyvalente qui est capable de quantifier les quantités de protéines endogènes et recombinantes dans un format de 96 puits. Pour démontrer l’efficacité d’ECLIA, cet essai a été employé pour analyser des niveaux intrinsèques de MeCP2 dans le tissu de cerveau de souris et l’absorption de TAT-MeCP2 dans les fibroblastes dermals humains. Le MeCP2-ECLIA produit des mesures très précises et reproductibles avec une faible erreur intra-analyse et inter-analyse. En résumé, nous avons développé une méthode quantitative pour l’évaluation des variantes de protéines MeCP2 qui peuvent être utilisées dans des écrans à haut débit.

Le principe du système ECLIA est décrit à la figure 1. Les courbes standard pour deux variantes MeCP2 sont indiquées dans la figure 2. La quantification précise était possible sur un large éventail de concentrations (1 à 1 800 ng/mL). Dans la figure 3, les niveaux de lysates meCP2 dérivés du cerveau de souris et des HDF ont été analysés. L’expression meCP2 dans les lysates nucléaires du cerveau des hétérozygotes, du wildtype et des ...

L’immunoassay d’électrochimie (ECLIA) est une nouvelle approche pour la détection quantitative des variantes de protéines MeCP2 endogènes et exogènement appliquées, qui produit des mesures hautement quantitatives, précises et reproductibles avec une erreur intra- et inter-essais faible sur un large éventail de travail. Ici, le protocole pour le MeCP2-ECLIA dans un format de 96 puits est décrit.

Un essai à base d’électrochimie pour Les variantes de protéines MeCP2

The ECLIA is a versatile method which is able to quantify endogenous and recombinant protein amounts in a 96-well format. To demonstrate ECLIA efficiency, ...

L’ECLIA est une méthode simple mais efficace pour quantifier les niveaux cellulaires de MeCP2. L’ECLIA est rapide, plus sensible et plus facile à manipuler par rapport à d’autres méthodes de quantification telles que la tache occidentale et l’ELISA. Pour préparer la solution de lavage, qui est de 0,5%Tween 20 en PBS, ajouter 500 microlitres de Tween 20 à un litre de PBS et mélanger vigoureusement.Préparer une solution de blocage de 3% Bloqueur A et PBS et remuer doucement. Stériliser la solution de blocage par filtration. Pour préparer la solution diluant d’essai, 1% Bloqueur A, et PBS, ajoutez cinq millilitres de solution de blocage à 10 millilitres de PBS.Ensuite, décongelez l’anticorps anti-MeCP2 de souris monoclonal sur la glace. Mélanger 0,67 microlitres de l’anticorps avec quatre millilitres de PBS, puis vortex de la solution. Pour enrober la plaque de liaison haute de 96 puits, distribuez soigneusement 25 microlitres de solution de revêtement dans le coin inférieur de chaque puits, à l’aide d’un pipetter multicanal.Tamponnez doucement la plaque de 96 puits de chaque côté pour vous assurer que la solution de revêtement couvre le fond de chaque puits. Sceller la plaque avec du papier adhésif et incuber toute la nuit à quatre degrés Celsius. Récupérer la plaque de 96 puits du réfrigérateur et retirer le papier d’aluminium.Retirez la solution de revêtement anticorps dans les puits en la faisant glisser dans un conteneur à déchets. Puis appuyez sur la plaque sur une serviette en papier pour enlever toute solution restante. Ensuite, ajoutez 125 microlitres de solution de blocage à chaque puits.Sceller ensuite à nouveau la plaque avec du papier adhésif. Placez la plaque sur un shaker microplaqué orbital, réglé à 800 RPM et incubez-la pendant 90 minutes à température ambiante. Décongeler sur la glace un flacon de solution de stock de protéines MeCP2 ou Tat-MeCP2, de lysates cérébraux de souris et de lysates HDF.Diluer la solution de stock de protéines dans des tubes propres tel que décrit dans le tableau deux du manuscrit. Ensuite, diluer les échantillons de lysate. Pour le cerveau de la souris lysates, utiliser un à 20 microgrammes par 25 microlitres de tampon de lyse.Pour le lysate HDF, ajouter 0,25 à un microgramme par 25 microlitres de tampon de lyse. Après l’incubation de la plaque de 96 puits pendant 90 minutes, retirez la solution de blocage des puits en la faisant glisser dans un conteneur à déchets. Puis appuyez sur la plaque sur une serviette en papier pour enlever toute solution restante.Lavez ensuite la plaque trois fois avec 150 microlitres de solution de lavage, en ajoutant la solution de lavage et en l’enlevant immédiatement. Ajouter 25 microlitres de normes et d’échantillons aux puits de la plaque de 96 puits. Sceller la plaque et l’incuber pendant encore quatre heures à température ambiante avec des secousses constantes de 800 RPM.Décongeler l’anticorps de détection non étiqueté, anti-MeCP2 de lapin polyclonal, sur la glace. En utilisant la solution diluante d’essai, diluer l’anticorps à un rapport de 1 à 6000. Lorsque la plaque de 96 puits est terminée en incubation sur le shaker, retirez les normes et les échantillons en faisant glisser la plaque dans un conteneur à déchets.Puis appuyez sur la plaque sur une serviette en papier pour enlever toute solution restante. Lavez la plaque trois fois avec 150 microlitres de solution de lavage en ajoutant la solution de lavage et en l’enlevant immédiatement. Ajouter 25 microlitres de solution anticorps de détection non étiquetée à chaque puits avec le pipetter multicanal.Sceller la plaque et l’incuber pendant une heure à température ambiante avec des secousses constantes à 800 RPM. Obtenez l’anticorps secondaire spécifique du réfrigérateur et placez-le une glace. Diluer le corps secondaire dans une solution diluante d’essai et mélanger délicatement.Pour retirer l’anticorps de détection sans ceinture de la plaque de 96 puits, faites un film dans le conteneur à déchets, puis appuyez sur la plaque sur une serviette en papier. Après avoir lavé la plaque trois fois comme perviously décrit, ajouter 25 microlitres d’anticorps secondaires à chaque puits avec le pipetter multicanal. Sceller la plaque et l’incuber pendant une heure à température ambiante avec des secousses constantes à 800 RPM.Retirez l’anticorps secondaire gratuit en feuilletant dans le conteneur à déchets et en tapant la plaque sur une serviette en papier, puis lavez la plaque trois fois, comme décrit précédemment. À chaque puits de la plaque, ajouter 150 microlitres de 1X Tris base Gold Read Buffer avec surfactant, contenant de la tripropylamine comme coreactant pour la production de lumière. Pour éviter de produire des bulles d’air, utilisez des techniques de pipetage inversé.Placez la plaque de 96 puits sur la plate-forme microplaquée avec système de détection d’électrochimieluminescence. À l’aide de la caméra CCD intégrée, commencez immédiatement à capturer des données. Enregistrez les nombres de signaux qui correspondent à des unités lumineuses relatives et qui sont directement proportionnels à l’intensité de la lumière.Les courbes standard meCP2 ont été générées à partir du MeCP2 humain dans de multiples mesures. L’ECLIA peut quantifier avec précision le MeCP2 humain recombinant sur une plage d’un nanogramme par millilitre à 1800 nanogrammes par millilitre. À l’aide d’ECLIA, les niveaux de protéines MeCP2 ont été mesurés dans les lysates nucléaires du cerveau à partir d’hétérozygotes et de souris femelles de type sauvage et d’une souris KO MeCP2.ECLIA a été mené sur des lysates cellulaires à partir d’un contrôle sain et de la lignée cellulaire c. 806delG utilisée comme modèle pour le syndrome de Rett. Aucune protéine MeCP2 n’a été détectée dans les lignées cellulaires mutantes par ECLIA ou par immunofluorescence.ECLIA a également été utilisé pour étudier l’adoption de Tat-MeCP2 par la ligne cellulaire déficiente MeCP2 heures supplémentaires. Eclia entre et la précision intra-analyse a été déterminée sur trois jours consécutifs. Pour la future thérapie de remplacement des protéines, l’administration de MeCP2 peut être optimisée à plusieurs reprises après évaluation du niveau de protéines par l’ECLIA.

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Un peu coûteuse, la méthode à haut débit pour la détection simultanée de jusqu'à 43 cibles moléculaires est décrit. Applications de MPCR / RLB comprennent tapant microbienne et la détection de pathogènes multiples à partir d'échantillons cliniques.

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