13 juin 2020
Ici, des méthodes sont présentées pour comprendre les effets anticancéreux du surnageant sans cellules de Lactobacillus (LCFS). Les lignées cellulaires du cancer colorectal montrent des décès cellulaires lorsqu’elles sont traitées avec LCFS dans des cultures 3D. Le processus de génération de sphéroïdes peut être optimisé en fonction de l’échafaudage et les méthodes d’analyse présentées sont utiles pour évaluer les voies de signalisation impliquées.
Ce protocole a été optimisé pour faciliter l’étude de l’effet anticancéreux du surnageant acellulaire de Lactobacillus dans plusieurs types de sphéroïdes de cellules cancéreuses du côlon. Cette technique est la première approche qui étudie les effets anticancéreux du LCFS sur les sphéroïdes du cancer du côlon dans des conditions de mimétisme in vivo. Commencez par placer une plaque de gélose MRS stérilisée en autoclave dans une chambre anaérobie à hydrogène à 37 degrés Celsius avec 20 parties par million d’oxygène et inoculez la plaque avec du stock bactérien Lactobacillus fraîchement décongelé.
Ajoutez deux à trois millilitres de bouillon MRS, complété par de la l-cystéine dans le tube et scellez le tube avec le bouchon en caoutchouc butyle et le capuchon du tube. Ensuite, utilisez une boucle pour prélever une seule colonie et placez la colonie dans un tube de culture de 1,5 millilitre contenant 500 microlitres de PBS. Remettez la colonie en suspension de manière homogène dans la solution saline et chargez toute la suspension bactérienne dans une seringue d’un millilitre.
Insérez l’aiguille au centre du couvercle du tube de culture et versez la colonie dans le milieu. Placez la culture dans un incubateur à 37 degrés Celsius, 5 % de dioxyde de carbone et 200 tours par minute. Après deux jours, mesurez l’OD620 de la culture sur un spectrophotomètre.
Lorsque l’OD620 est égal à deux, sédimentez les bactéries par centrifugation et lavez les bactéries en granulés avec du PBS. Après la deuxième centrifugation, remettre les bactéries en suspension dans quatre millilitres de RPMI 1640, complété par 10 % de sérum de veau fœtal sans antibiotiques et placer les bactéries dans l’incubateur pendant quatre heures à 100 tours par minute. À la fin de l’incubation, granulez les bactéries par centrifugation et filtrez stérilement le surnageant récupéré à travers une passoire de 0,22 micron pour un stockage à moins 80 degrés Celsius.
Pour préparer les lignées cellulaires du cancer colorectal à la formation de sphéroïdes, cultivez les cellules d’intérêt sous forme de monocouches dans des boîtes de Pétri de 100 millimètres dans l’incubateur de culture cellulaire. Lorsque les cellules atteignent une confluence de 70 à 80 %, lavez les cultures deux fois avec quatre millilitres de PBS par lavage avant de détacher les cellules avec un millilitre de 0,25 % de trypsine-EDTA par plat. Après deux minutes, vérifiez la dissociation au microscope optique.
Si les cellules se sont détachées, neutralisez la réaction enzymatique avec cinq millilitres de milieu de croissance. Recueillir les cellules par centrifugation dans un tube conique de 15 millilitres par culture cellulaire et remettre doucement les granulés en suspension avec trois millilitres de milieu de croissance par tube. Ensuite, comptez le nombre de cellules viables en excluant le bleu de trypan.
Après le comptage, diluez les cellules à une à deux fois 10 à la cinquième concentration de cellules par millilitre dans un milieu frais et ajoutez de la méthylcellulose aux cellules jusqu’à une concentration finale de 0,6 %. Transférez les cellules dans un réservoir stérile et utilisez une pipette multicanaux pour distribuer 200 microlitres de cellules dans chaque puits d’une microplaque à fond rond de 96 puits à fixation ultra basse. Ensuite, placez la plaque dans l’incubateur de culture cellulaire pendant 24 à 36 heures avant de vérifier la formation de sphéroïdes par microscopie optique.
Pour le traitement LCFS, diluez en série la solution mère LCFS préparée et décongelée dans un milieu de croissance frais à des concentrations de 25, 12,5 et 6 % et utilisez une pipette de 200 microlitres pour prélever soigneusement autant de surnageant que possible de chaque puits des cultures de lignées cellulaires de cancer colorectal en plaques. Ensuite, ajoutez doucement 200 microlitres de milieu de croissance complété par LCFS en trois exemplaires à chaque ensemble de cellules cancéreuses et remettez la plaque dans l’incubateur pendant 24 à 48 heures supplémentaires. Une concentration de méthylcellulose de 0,6 % transforme les cellules de la lignée cellulaire cancéreuse testée en sphéroïdes compacts, ce qui indique que les sphéroïdes peuvent être générés à partir de plusieurs types de cancer colorectal à l’aide de ce protocole.
Les sphéroïdes cultivés avec 25 % de LCFS présentent des surfaces perturbées et une viabilité cellulaire diminuée de manière dose-dépendante. En effet, les cellules co-cultivées LCFS présentent des niveaux plus élevés d’expression de l’iodure de propidium par rapport aux cellules témoins viables. L’analyse PCR par transcriptase inverse, le Western blot et l’analyse cytométrique en flux de l’annexine V/7-AAD peuvent également être effectués pour évaluer les effets du LCFS sur l’apoptose des cellules cancéreuses.
Assurez-vous de manipuler les sphéroïdes avec précaution lors du retrait du milieu de croissance, car les sphéroïdes peuvent facilement se casser, ce qui rend impossible l’observation de l’effet du traitement LCFS. À la suite de cette procédure, des tests de viabilité cellulaire, une PCR quantitative en temps réel, un western blot et une analyse FACS peuvent être effectués pour caractériser plus en détail l’effet anticancéreux du LCFS.
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Cet article présente un protocole permettant d'étudier les effets anti-cancéreux du surnageant cellulaire sans cellules de Lactobacillus (LCFS) sur des sphéroïdes de cancer du côlon. L'étude optimise la génération de sphéroïdes et évalue les voies de signalisation impliquées dans la mort cellulaire.
Ce protocole permet aux équipes de recherche et développement en biopharmacie d'évaluer l'activité anti-cancéreuse de surnageants dérivés de probiotiques dans des modèles tridimensionnels de cancer colorectal physiologiquement pertinents. En utilisant le surnageant cellulaire libre de Lactobacillus fermentum (LCFS) dans des cultures de sphéroïdes stables, cette méthode soutient la caractérisation mécanistique et la réduction des risques associés aux candidats produits naturels, tout en améliorant la fiabilité prédictive des efforts de validation ciblée. L'approche établit un lien entre le criblage en phase de découverte et la pertinence translationnelle en modélisant les interactions du microenvironnement intestinal qui influencent la viabilité des cellules cancéreuses.
La méthode s'intègre aux flux de travail de découverte précoce après l'identification de la cible et avant l'optimisation du composé candidat, en fournissant un système pertinent pour la maladie afin d'évaluer les surnageants bioactifs provenant de sources microbiennes.