26 septembre 2020
Une technique de ballonnement occidental à très grande vitesse est développée en améliorant la cinétique de la liaison antigène-anticorps grâce à la technologie cyclique de drainage et de réapprovisionnement (CDR) en conjonction avec un agent améliorant l’immunoréaction.
Le Western blot est une méthode établie qui détecte les antigènes sur une membrane transférée et est couramment utilisée dans la recherche biomédicale, mais il faut des heures ou des jours pour terminer l’ensemble de la procédure. En utilisant la combinaison d’une technologie d’immuno-amélioration avec un drainage et un réapprovisionnement cycliques, une fois que vous avez une membrane de bloc, l’ensemble de la procédure peut être accompli en aussi peu que 20 minutes sans sacrifier la sensibilité. Parce que le transfert Western est commun à de nombreux domaines de recherche différents, il a une large applicabilité pour accélérer la recherche.
L’utilisation réussie de ce protocole repose sur l’optimisation de la dilution des anticorps avec une immunoréaction améliorant le réactif et le temps d’incubation. Commencez par incuber les membranes PVDF dans des tampons de blocage appropriés pendant une heure en les agitant à température ambiante. Pendant que les membranes sont en incubation, préparez une solution d’agent d’immunoréaction à 10 % ou IRE1 avec de l’eau distillée et mélangez-la bien, puis diluez l’anticorps primaire avec 10 % d’IRE1, en le mélangeant doucement et soigneusement.
Prélevez la membrane PVDF à l’aide d’une pince à épiler et égouttez brièvement la solution de blocage. Insérez la membrane dans un tube conique avec l’anticorps primaire, en vous assurant que toute la membrane adhère à la paroi du tube et que le côté de la membrane qui était à l’origine en contact avec le gel est tourné vers l’intérieur. Fermez hermétiquement le tube.
Insérez le tube dans une bouteille en verre pour le four d’hybridation et allumez le four. Incuber la membrane avec une rotation de six tr/min pendant au moins cinq minutes. Arrêtez la rotation et retirez délicatement la membrane PVDF du tube à l’aide d’une pince à épiler.
Placez la membrane dans un récipient avec 50 millilitres de PBST et rincez-la, puis rincez-la dans un récipient avec de l’eau distillée jusqu’à ce qu’aucune bulle n’apparaisse, ce qui éliminera la majorité de l’anticorps. Transférez la membrane dans une essoreuse à salade qui contient 250 millilitres de PBST. Placez le panier de la passoire dans l’essoreuse et assurez-vous que le couvercle a été bien installé, puis activez l’essoreuse et faites-la fonctionner pendant 20 à 30 secondes.
Jetez la solution et rincez brièvement l’intérieur de l’essoreuse à l’eau distillée. Ajoutez 250 millilitres de PBST dans l’essoreuse et répétez l’essorage, puis incubez la membrane avec les anticorps secondaires et lavez-la à nouveau comme décrit dans le manuscrit du texte. Placez un morceau de film flexible semi-transparent sur une surface plane.
Mélangez deux composants du substrat chimiluminescent dans un tube de cinq millilitres et transférez immédiatement 1,5 millilitre du substrat mélangé dans le film semi-transparent. Placez la membrane PVDF sur la solution et transférez le reste de la solution de substrat sur la membrane. Incuber la membrane PVDF avec le substrat mélangé pendant une minute.
Prenez la membrane PVDF à l’aide d’une pince à épiler et égouttez brièvement la solution de substrat. Placez la membrane en sandwich entre une paire de films transparents et imagez-la en mode chimiluminescent. Les quantités d’antigène et d’anticorps respectivement nécessaires à la détection chimiluminescente du Western blot sont indiquées ici.
Dans les incubations statiques et CDR, l’utilisation de solutions IRE a augmenté la sensibilité. De même, la concentration minimale d’anticorps anti-6s His tag a été abaissée de 100 à 50 nanogrammes par millilitre dans des conditions statiques et de 100 à 12,5 nanogrammes par millilitre dans des conditions CDR. L’incubation CDR pendant 5 ou 10 minutes a considérablement abaissé la limite de détection par rapport à l’incubation statique.
De plus, l’association de CDR et d’IRE a révélé une sensibilité supérieure sur le Western blot, même pendant la période d’incubation extrêmement courte. L’application réussie de cette méthode à un transfert Western avec détection fluorescente est démontrée ici. La détection fluorescente, contrairement à la détection chimiluminescente, a la capacité unique de détecter plusieurs cibles sur le même transfert en même temps, sans décapage ni résonance des anticorps.
La phosphatase alcaline et la bêta-actine marquées à his dans les lysats cellulaires ont été détectées simultanément à l’aide d’un fluorophore bicolore. L’incubation de CDR avec IRE a non seulement accéléré la détection, mais a également augmenté la sensibilité. Pendant l’incubation, la membrane doit rester attachée à la paroi du tube.
Le tube doit être tourné horizontalement de manière à ce que la solution se lave continuellement sur la surface de la membrane. Ce protocole a considérablement accéléré notre productivité en recherche, qui dépend fortement des procédures de transfert Western.
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Cet article présente une technique de transfert western ultra-rapide qui réduit considérablement le temps nécessaire à la procédure. En utilisant une technologie de drainage et de réapprovisionnement cycliques (CDR) ainsi qu'un agent d'amélioration de l'immunoréaction, l'ensemble du processus peut être réalisé en aussi peu que 20 minutes sans compromettre la sensibilité.
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