Name: Intubation enthotracheal aveugle chez les lapins néonatals (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 4 s
Description: Apprenez une technique d'intubation endotrachéale aveugle chez les lapins nouveau-nés par occlusion œsophagienne sans visualisation directe. Cette méthode améliore la gestion des voies aériennes dans les modèles animaux de petite taille.

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Ces travaux ont été soutenus par des subventions de l’Instituto de Salud Carlos III [PFIS2017-0224], de « Beca Ruza » de la Sociedad Española de Cuidados Intensivos Pediátricos et du Vanderbilt Medical Scholars Program.
Les commanditaires n’ont pas participé à la collecte, à l’analyse ou à l’interprétation des données.
Nous tenons à remercier Isabel Salas pour l’aide apportée au sein du laboratoire animalier et M. Carles Fábrega et Mme Gemma Fernandez-Asensio de l’équipe techincal audiovisuelle de l’hôpital Sant Joan de Déu pour leur soutien technique à l’enregistrement vidéo et à la production.

La procédure d’intubation décrite ci-dessous a été approuvée par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de Barcelone (CEEA 180/19)
1. Préparation expérimentale
<ol><li>Obtenez les matériaux suivants : tube d’alimentation en polyvinyle de 2 mm de diamètre (PVC), tube d’alimentation en polyuréthane de 6 Français (Fr), forceps de dissection à pointe plate et large et lubrifiant stérile (figure 1).</li>
	<li>Pendant les processus d’intubation et de chirurgie, maintenez des conditions stériles.</li>
</ol>2. Anesthésie
<ol><li>Anesthésier l’animal avec 5 mg/kg de xylazine et 25 mg/kg de kétamine appliqués ensemble intramusculairement dans le vastus lateralis des quadriceps fémoraux. Les agonistes Alpha-2 tels que la dexmedetomidine peuvent également être utilisés au lieu de la xylazine.</li>
	<li>Prévoyez de 3 à 5 minutes pour que le médicament atteigne l’effet.</li>
	<li>Lisez la même dose jusqu’à ce que l’anesthésie profonde soit atteinte (pédale négative, réflexes palpebraux et cornéens). Idéalement, le lapin maintiendra la respiration spontanée jusqu’à l’intubation.</li>
</ol>3. Intubation endotracheal
<ol><li>Déposer le lapin sur une couverture thermique à 37 °C. Placez l’animal dans la récumbence dorsale avec la tête dans l’hyperextension. Alignez la tête aussi droit et intermédiaire que possible. Un rouleau de quatre centimètres fait de gaze stérile placée dans la région dorsale du cou peut être utile pour atteindre au moins 45° d’extension (Figure 2).</li>
	<li>Utilisez des forceps de dissection à pointe plate et large pour ouvrir la cavité buccale d’environ un centimètre de large. Utilisez des forceps avec une extrémité émoussée et large pour éviter les traumatismes bucco-ux.</li>
	<li>Mesurer la distance entre la bouche et la région de l’estomac (première côte). Introduire un tube gastrique lubrifié de 6 Français (Fr) en polyuréthane à la marque pré-mesurée (figure 3-4).</li>
	<li>Déplacez le tube d’alimentation vers la gauche et fixez-le avec du ruban adhésif sur le champ chirurgical.</li>
	<li>Introduire le tube en endotracheal en PVC de 2 mm de diamètre, recouvert de lubrifiant stérile à la marque de 3 cm.<ol>
<li>S’il y a des difficultés à faire avancer le tube, déplacez-le complètement et reemptez jusqu’à ce qu’une glisse en douceur soit réalisée. Le risque de traumatisme au larynx et à l’épiglottis est significatif avec des tentatives multiples d’intubation. Fixer le tube avec du ruban adhésif sur le champ chirurgical (figure 5-6).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Connectez le tube ensotracheal au ventilateur avec les réglages suivants : Volume de marée - 10 mL/kg; taux respiratoire : 40 respirations/min; FiO2 100%, PEEP 6.</li>
	<li>Confirmer la position correcte du tube par la détection de CO2 dans l’air expiré (ETCO2),la visualisation directe de l’expansion thoracique et la buée du tube. La surveillance de l’animal par oximétrie pulsée et auscultation pulmonaire peut également être utile (Figure 7).</li>
	<li>À la fin de l’expérience, utiliser un protocole normalisé d’euthanasie qui consiste en l’administration intraveineuse de pentobarbital 120-240 mg/kg. Répétez les doses jusqu’à ce que l’arrêt de l’haleine, l’absence réflexe et l’asystole soient atteints. REMARQUE : Dans les expériences chirurgicales, l’animal est vivant pendant le processus de ventilation et est finalement euthanasié.</li>
</ol>

<ol><li>Gilroy, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+of+rabbits+and+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Veterinary+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation of rabbits and rodents.</a> Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).</li>
<li>Graham, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+procedures+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Common procedures in rabbits.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).</li>
<li>Fick, T. E., Schalm, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+technique+for+endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">A simple technique for endotracheal intubation in rabbits.</a> Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).</li>
<li>Conlon, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atraumatic+endotracheal+intubation+in+small+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits.</a> Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).</li>
<li>Johnson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoscopic+intubation+of+exotic+companion+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Endoscopic intubation of exotic companion mammals.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).</li>
<li>Falcão, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+blind+tracheal+intubation+in+rabbits+%28Oryctolagus+cuniculi%29+supported+by+previous+maneuver+of+esophageal+cannulization%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cirurgica+Brasileira%22%5BJournal%5D)">Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization.</a> Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).</li>
<li>Miura, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Japanese+Journal+of+Veterinary+Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation in rabbits.</a> The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).</li>
<li>Thompson, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+Intubation+of+Rabbits+Using+a+Polypropylene+Guide+Catheter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter.</a> Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).</li>
<li>Comolli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+endoscopic+endotracheal+intubation+and+the+v-gel+supraglottic+airway+device+for+spontaneously+ventilating+New+Zealand+white+rabbits+undergoing+ovariohysterectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Record%22%5BJournal%5D)">Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy.</a> Veterinary Record. , 1-8 (2020).</li>
<li>Hua, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+different+ventilation+strategies+on+lung+injury+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Pulmonology%22%5BJournal%5D)">Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits.</a> Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).</li>
<li>Kitchen, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+lung+inflation+and+sodium+transport+in+airway+liquid+clearance+during+lung+aeration+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Research%22%5BJournal%5D)">The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits.</a> Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).</li>
<li>Boon, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tubeless+tracheotomy+for+survival+airway+surgery+in+the+leporine+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model.</a> The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).</li>
<li>Dion, G. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morbidity+and+mortality+associated+with+preclinical+tracheostomy+models%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models.</a> The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).</li>
<li>Phaneuf, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+injury+after+endotracheal+intubation+and+anesthesia+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Les lapins sont largement utilisés dans l’expérimentation animale en raison de leur disponibilité, taux de reproduction élevé avec de courtes périodes intergénérationnelles, et facile àmanipuler 2. Dans notre centre, nous utilisons des lapins néo-zélandais de 5 à 7 jours (Oryctolagus cuniculus) comme modèle néonatal pour étudier les répercussions neurologiques de la chirurgie extracorporelle sur le cerveau en développement. En conséquence, nous utilisons des procédures qui nécessitent une...

L’anatomie particulière du système respiratoire du lapin complique l’intubation enotracheale. La cavité buccale est profonde et étroite avec une gamme limitée d’ouverture de la bouche et une langue relativement grande, ce qui rend la visualisation directe du larynx difficile, même avec l’utilisation d’un laryngoscope1,2. En outre, l’intubation du lapin nouveau-né, qui est 10-20 fois plus petit que l’adulte, est encore plus d’une procédure difficile. En plus de ces caractéristiques anatomiques, les lapins sont sujets au laryngospasme secondaire à la manipulation des voies respiratoires.
Plusieurs techniques d’intubation ont été décrites dans la littérature, telles que l’intubation trachéale de laryngoscope, l’intubation aveugle, l’intubation d’otoscope, l’intubation rétrograde, l’intubation d’endoscope, la trachéostomie et la ventilation supraglottic de dispositif3,4,5,6,7,8,9. Toutes ces techniques ont été réalisées avec succès chez les lapins adultes; cependant, il y a peu de publications concernant la gestion avancée de voie aérienne dans le lapinnouveau-né 10. Une étude décrit l’exécution de trachéostomies chez les animaux de cet âge pour évaluer la mécanique respiratoire et les volumes pulmonaires, bien qu’il s’agit d’une techniqueagressive et irréversible 11. Cette méthode pour l’intubation endotracheal s’est avérée être une méthode efficace et peu-coût de gestion des voies respiratoires chez les lapins nouveau-nés.

<table><tbody><tr><td>Sonde endotrachéale en polychlorure de vinyle (PVC) de 2 mm de diamètre</td><td>Vygon</td><td>520.20</td><td></td></tr><tr><td>6 Sonde d’alimentation française en polyuréthane</td><td>Vygon</td><td>310.06</td><td></td></tr><tr><td>Anesthésie (kétamine et xylazine)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Moniteur multiparamètre Intellivue MP5</td><td>Phillips</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince de dissection à pointe lisse et large</td><td>LensforVision</td><td>AK005</td><td></td></tr><tr><td>Lubrifiant stérile (Silkospray)</td><td>Rush</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ventilator Servo 900c</td><td>Maquet</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

intubation enthotracheal aveugle chez les lapins néonatals

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

Le lapin nouveau-né est un modèle animal utile pour diverses pathologies et procédures. La gestion des voies respiratoires du lapin est complexe en raison de ses caractéristiques anatomiques, ce qui est encore compliqué dans le cas du nouveau-né. Des différentes méthodes de gestion avancée des voies respiratoires, l’intubation enotracheal est moins agressive que la trachéostomie, et est plus faisable que la gestion supraglottique étant donné l’absence de dispositifs supraglottiques d’une si petite taille. Comme la visualisation directe de la glotte est très difficile chez les animaux de cette taille, ce modèle d’intubation aveugle est présenté comme une alternative efficace, en particulier pour les expériences nécessitant une anesthésie prolongée. En utilisant cette méthode, nous avons effectué des intubations aveugles avec un taux de réussite de 90%.

En laboratoire, cette technique est réalisée par du personnel médical ayant de l’expérience dans l’expérimentation avec des lapins néo-zélandais et une expertise en gestion des voies respiratoires pédiatriques. La procédure a été effectuée par un chercheur sur 10 animaux avec un taux de réussite global de 90%. Auparavant, un autre chercheur avait pratiqué l’optimisation de la position de l’animal et de la longueur correcte de fixation du tube. Aucun des animaux n’a été intubé dans l’oesop...

Nous décrivons une technique d’intubation endotracheal dans les lapins nouveau-nés après cathétérisme oesophagal avec un tube gastrique.

Intubation enthotracheal aveugle chez les lapins néonatals

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

Introduction.Newborn lapin est utile comme un modèle animal de diverses pathologies et procédures. Certaines de ces procédures nécessitent une gestion avancée des voies respiratoires, et cela peut être difficile en raison des caractéristiques complexes des voies respiratoires et de la petite taille de l’animal. Nous présentons une nouvelle technique pour l’intubation enotracheal exécutée par l’occlusion de l’oesophage et l’introduction du tube dans les voies aériennes sans visualisation directe. Matériaux.Nous aurons besoin d’un tube entérrachéal en PVC de deux millimètres de diamètre, d’un tube d’alimentation en polyuréthane de six Français et de forceps de dissection à pointes simples et larges. En outre, nous pouvons utiliser un lubrifiant stérile. Anesthésie. Sedate l’animal avec xylazine cinq milligrammes par kilo et kétamine 25 milligrammes par kilo.Appliquer ensemble intramusculairement dans le vastus lateralis des quadriceps fémoraux. Prévoyez de trois à cinq minutes pour que le médicament atteigne l’effet. Répétez-les jusqu’à ce que le réflexe de pédale négatif soit atteint.Évaluer le lapin maintiendra une respiration spontanée jusqu’à l’intubation. Intubation enotracheal. Placez l’animal dans la récumbence dorsale avec la tête dans l’hyperextension.Un rouleau fait d’une gaze stérile et placé dans la région dorsale du cou peut être utile. Utilisez des forceps de dissection simples et à bout large pour ouvrir la cavité buccale d’environ un centimètre de large. Introduire un tube gastrique Français polyuréthane de six mois jusqu’à l’arrêt de sa progression.Le tube d’alimentation est déplacé et le fixer. Introduire le tube en endotracheal en PVC de deux millimètres de diamètre imprégné du lubrifiant stérile jusqu’à ce qu’il atteigne la marque de trois centimètres. S’il y a des difficultés à faire avancer le tube, il doit être complètement enlevé et re-tentative jusqu’à ce qu’une glisse en douceur soit réalisée.Le tube est également fixé. Résultats. La procédure a été effectuée chez 10 animaux. Leur gamme de poids se situe entre 110 et 210 grammes selon le jour de la vie et leur état nutritionnel.Le taux de réussite mondial était de 90%La seule défaillance s’est produite chez le plus petit lapin en raison de ses voies respiratoires étroites. Conclusion. Le modèle d’intubation des lapins nouveau-nés que nous décrivons ici ne nécessite pas l’utilisation d’équipements spécialisés, il est facile à maîtriser et peut être effectué par une seule personne sans avoir besoin d’un assistant. Toutes les techniques d’accès aux voies respiratoires aveugles présentent un certain niveau de risque, mais nous croyons que cette technique est une option lorsque la visualisation guidée est difficile, comme chez les très petits animaux.

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Canulation trachéale dans un modèle de lapin : une procédure pour insérer une canule trachéale dans la trachée de lapin

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