Name: Détection de l’anticorps du domaine de liaison au récepteur du SARS-CoV-2 à l’aide d’un biorapporteur basé sur HiBiT (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-08-12T13:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: Découvrez une méthode de détection rapide et sensible des anticorps anti-SARS-CoV-2 dans le sérum patient à l'aide d'un biorapporteur HiBiT-RBD. Cette technique de haut débit améliore le diagnostic sérologique de la COVID-19.

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Nous apprécions et remercions l’assistance technique de Xiaohong He, Ricardo Marius, Julia Petryk, Bradley Austin et Christiano Tanese De Souza. Nous remercions également Mina Ghahremani pour la conception graphique. Nous tenons également à remercier toutes les personnes qui ont participé et donné leurs échantillons de sang pour cette étude. DWC est soutenu en partie par la faculté et le département de médecine de l’Université d’Ottawa.

REMARQUE: Le protocole décrit ci-dessous adhère à toutes les directives d’éthique conformément au code de protocole 20200371-01H.
1. Production et évaluation du bioreporter HiBiT-RBD
<ol><li>Produire une quantité suffisante de bioreporter HiBiT-RBD<ol>
<li>Se préparer à la culture cellulaire<ol>
<li>Préparer le milieu Eagle modifié (DMEM) complet de Dulbecco contenant 10 % de sérum fœtal bovin et 1 % de pénicilline/streptomycine. Ensuite, réchauffez le média dans un bain-marie à 37 °C.</li>
			<li>Allumez l’armoire de sécurité biologique (ESB) et utilisez de l’éthanol à 70 % v/v pour stériliser la surface de l’armoire.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Cultivez la lignée cellulaire.<ol>
<li>Retirez la lignée cellulaire de -80 °C ou de l’azote liquide et décongelez-la dans un bain-marie à 37 °C. REMARQUE: Une lignée cellulaire appropriée est facile à maintenir en culture, a une efficacité de transfection élevée et convient à la production de protéines exogènes. Rein embryonnaire humain, cellules HEK293 ont été utilisés pour ce protocole.</li>
			<li>Mélanger les cellules décongelées avec au moins 10 mL de milieu complet, pipeter la suspension cellulaire dans une boîte de Petri de 10 cm et faire tourbillonner la plaque pour répartir uniformément les cellules dans la boîte. Placez le plat dans un incubateur de culture cellulaire à 37 °C, 5 % de CO2 et 85 à 95 % d’humidité.</li>
			<li>Observez les cellules au microscope jusqu’à ce que le niveau de confluence atteigne 80-90%. À haute confluence, retirez le milieu, lavez les cellules avec une solution saline chaude tamponnée au phosphate (PBS) et ajoutez 1 mL d’acide tétraacétique à 0,25 % de trypsine-éthylènediamine pour détacher les cellules de la surface. REMARQUE: Les cellules HEK293 se détachent assez facilement. Par conséquent, l’étape de lavage doit être effectuée très doucement pour éviter le détachement accidentel et la perte de cellules.</li>
			<li>Après environ 5 minutes, regardez les cellules au microscope. Si toutes les cellules flottent, ajoutez au moins 4 mL de milieu et transférez la suspension cellulaire dans un nouveau tube stérile. Comptez les cellules à l’aide d’un hémocytomètre et ajoutez 1 × 106 cellules dans chaque puits d’une plaque de 6 puits pour la transfection. REMARQUE: Après 24 h, les cellules doivent être à 80% ou plus de confluent.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Transfection du plasmide HiBiT-RBD<ol>
<li>Utilisez 1 μg du plasmide d’expression HiBiT-RBD avec un réactif de transfection approprié. Incuber pendant 10-15 min à température ambiante, puis ajouter le volume total à chaque puits de la plaque, en forme de goutte. REMARQUE: Suivez le protocole de transfection du fabricant. Dans ce cas, un mélange (une quantité spécifiée) du réactif de transfection avec du DMEM a été ajouté au plasmide dilué (1 μg) dans le DMEM (voir le tableau des matériaux). Utiliser un marqueur contenant (p. ex. protéine fluorescente verte [GFP]) du plasmide comme témoin pour surveiller l’efficacité de la transfection.</li>
			<li>Le lendemain, remplacer le milieu contenant le mélange de transfection par un milieu complet. Observez bien le contrôle de la transfection 48 h après la transfection. REMARQUE: Si la transfection a été positive et efficace (plus de 80% GFP-positif), les cellules doivent être prêtes pour la récolte du biorapporteur HiBiT-RBD. La construction contient également His-tag, qui peut être utilisé pour obtenir une protéine purifiée à la place du surnageant total.</li>
			<li>Recueillir le surnageant dans des microtubes de 1,5 mL. Ajouter 500 μL de 1x tampon de lyse passive (PLB) aux cellules; incuber et agiter la plaque pendant 15 min à température ambiante pour la lyse cellulaire. REMARQUE: Le surnageant et la solution de lysat peuvent être conservés à -20 °C avec une perte d’intégrité mineure pendant au moins 6 mois. Selon Azad et al.22, le rapporteur est stable à une large plage de pH (4-12) et de température (4-42 °C).</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Évaluation du signal luminescent du bioreporter par dosage de la luciférase<ol>
<li>Préparation des composants de la réaction<ol>
<li>Utilisez le surnageant comme source du biorapporteur. REMARQUE: Le surnageant et le lysat contiennent tous deux le biorapporteur HiBiT-RBD et peuvent être utilisés pour le test. Cependant, le surnageant est recommandé comme source pour des raisons expliquées dans les notes suivantes.</li>
			<li>Diluer le LgBiT et le substrat à 1x avant utilisation (la concentration en stock est de 100x). REMARQUE: Voir le tableau des matériaux pour plus de détails sur le LgBiT.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Dosage de la luciférase<ol>
<li>Transférer 50 μL du surnageant de chaque puits ou tube vers une plaque de 96 puits et ajouter 50 μL de 1x LgBiT à chaque puits. Incuber pendant 5 min à température ambiante.</li>
			<li>Ouvrez le logiciel du luminomètre, ajoutez 50 μL de substrat 1x (furimazine) à chaque puits, placez la plaque dans le luminomètre et exécutez le logiciel. REMARQUE: Ajouter le substrat immédiatement avant de lire la plaque pour éviter la consommation du substrat par les enzymes actives avant la mesure du signal.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>2. Détection des anticorps anti-RBD avec un test rapide et sensible
<ol><li>Test de détection d’anticorps HiBiT-RBD<ol>
<li>Préparez le biorapporteur HiBiT-RBD comme décrit à la section 1.1 du protocole. NOTE : Il est recommandé d’utiliser le surnageant pour le test suivant car il est plus simple à collecter et contient la version glycosylée mature de la protéine. De plus, le lysat contient plusieurs autres protéines qui pourraient interférer avec l’interaction HiBiT-RBD-anticorps.</li>
		<li>Combiner 50 μL du surnageant contenant du HiBiT-RBD avec 1 μg de l’anticorps commercial SARS-CoV-2-RBD dans un microtube de 1,5 mL. Ajouter 20 μL de protéine de liaison aux immunoglobulines (protéine G) à la solution. Augmentez le volume total à 300 μL en ajoutant PBS. REMARQUE: Le volume total du mélange peut être réduit à 150 μL. Des volumes totaux plus faibles ne sont pas recommandés car cela pourrait entraîner un mélange inadéquat d’anticorps avec le biorapporteur.</li>
		<li>Incuber le(s) tube(s) sur un agitateur à tube ou un rotateur pendant 30 min. Centrifuger à 12 000 × g pendant 30 s, jeter le surnageant et laver avec du PBS. Répétez le processus trois fois pour supprimer HiBiT-RBD libre. Remettre en suspension dans 50 μL de PBS et transférer sur une plaque de 96 puits.</li>
		<li>Ajouter 50 μL de 1x LgBiT et attendre 5 min. Ensuite, ajoutez 50 μL de 1x substrat NanoLuc. Lisez immédiatement le signal luminescent avec un luminomètre.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Détection à haut débit des anticorps spécifiques du SARS-CoV-2 à partir d’échantillons de sérum de patients
<ol><li>Préparez de plus grandes quantités du biorapporteur HiBiT-RBD pour un test à haut débit en suivant la section 1.1 du protocole.</li>
	<li>Combiner 20 μL de protéine magnétique G avec 50 μL du surnageant HiBiT-RBD dans un puits de plaque de 96 puits pour chaque échantillon. Ajouter 10 μL de l’échantillon de sérum à chaque puits et porter le volume total à 150 μL en ajoutant du PBS. REMARQUE : Utiliser à la fois des IgG non spécifiques (témoin négatif) et des anticorps neutralisants contre le SRAS-CoV-2 (témoin positif) à une concentration de 1 μg/mL, comme décrit à l’étape 2.1.2. De plus, des échantillons de sérum de souris vaccinées peuvent également être évalués pour les anticorps. Dans le cadre de ce test, des échantillons de sérum ont été prélevés au Campus général de l’Hôpital d’Ottawa selon une procédure approuvée et avec le consentement éclairé de personnes.</li>
	<li>Incuber pendant 30 min sur un shaker à température ambiante. Placez la plaque sur une rondelle magnétique pour précipiter le complexe protéine G-anticorps. REMARQUE: La structure spécifique de la laveuse magnétique précipitera le complexe sur les parois latérales de chaque puits.</li>
	<li>Jetez la solution dans la section centrale de chaque puits et ajoutez PBS pour le lavage. Répétez l’étape de lavage au moins trois fois pour éliminer l’excès de HiBiT-RBD. Ajouter 50 μL de 1x PBS et 50 μL de 1x LgBiT. Incuber pendant au moins 5 min à température ambiante.</li>
	<li>Préparez le logiciel du luminomètre, puis ajoutez 50 μL de substrat 1x. Placez la plaque dans la machine, exécutez le logiciel et enregistrez les signaux. Comparez les signaux des échantillons de sérum, des échantillons témoins et du fond (puits vides).</li>
</ol>

<ol><li>Ullah, H., Ullah, A., Gul, A., Mousavi, T., Khan, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+coronavirus+2019+%28COVID-19%29+pandemic+outbreak%3A+A+comprehensive+review+of+the+current+literature%5BTitle%5D)+AND+%22Vacunas%22%5BJournal%5D)">Novel coronavirus 2019 (COVID-19) pandemic outbreak: A comprehensive review of the current literature.</a> Vacunas. , (2020).</li>
<li>Coronavirus update (Live). Worldometer. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.worldometers.info/coronavirus/">https://www.worldometers.info/coronavirus/</a> (2021).</li>
<li>Cacciapaglia, G., Cot, C., Sannino, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Second+wave+COVID-19+pandemics+in+Europe%3A+a+temporal+playbook%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Second wave COVID-19 pandemics in Europe: a temporal playbook.</a> Scientific Reports. 10 (1), 15514(2020).</li>
<li>World Health Organization. COVID-19 vaccines. World Health Organization. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.who.int/emergencies/diseases/novel-coronavirus-2019/covid-19-vaccines">https://www.who.int/emergencies/diseases/novel-coronavirus-2019/covid-19-vaccines</a> (2021).</li>
<li>Hueston, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+antibody+response+to+SARS-CoV-2+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Open+Forum+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">The antibody response to SARS-CoV-2 infection.</a> Open Forum Infectious Diseases. 7 (9), (2020).</li>
<li>Lan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+of+the+SARS-CoV-2+spike+receptor-binding+domain+bound+to+the+ACE2+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Structure of the SARS-CoV-2 spike receptor-binding domain bound to the ACE2 receptor.</a> Nature. 581 (7807), 215-220 (2020).</li>
<li>Azad, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implications+for+SARS-CoV-2+vaccine+design%3A+fusion+of+Spike+glycoprotein+transmembrane+domain+to+receptor-binding+domain+induces+trimerization%5BTitle%5D)+AND+%22Membranes%22%5BJournal%5D)">Implications for SARS-CoV-2 vaccine design: fusion of Spike glycoprotein transmembrane domain to receptor-binding domain induces trimerization.</a> Membranes. 10 (9), 215(2020).</li>
<li>Piccoli, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+neutralizing+and+immunodominant+sites+on+the+SARS-CoV-2+Spike+receptor-binding+domain+by+structure-guided+high-resolution+serology%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mapping neutralizing and immunodominant sites on the SARS-CoV-2 Spike receptor-binding domain by structure-guided high-resolution serology.</a> Cell. 183 (4), 1024-1042 (2020).</li>
<li>Premkumar, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+receptor-binding+domain+of+the+viral+spike+protein+is+an+immunodominant+and+highly+specific+target+of+antibodies+in+SARS-CoV-2+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Immunology%22%5BJournal%5D)">The receptor-binding domain of the viral spike protein is an immunodominant and highly specific target of antibodies in SARS-CoV-2 patients.</a> Science Immunology. 5 (48), (2020).</li>
<li>Walls, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elicitation+of+potent+neutralizing+antibody+responses+by+designed+protein+nanoparticle+vaccines+for+SARS-CoV-2%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Elicitation of potent neutralizing antibody responses by designed protein nanoparticle vaccines for SARS-CoV-2.</a> Cell. 183 (5), 1367-1382 (2020).</li>
<li>Azad, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoluciferase+complementation-based+biosensor+reveals+the+importance+of+N-+linked+glycosylation+of+SARS-CoV-2+Spike+for+viral+entry%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Nanoluciferase complementation-based biosensor reveals the importance of N- linked glycosylation of SARS-CoV-2 Spike for viral entry.</a> Mol Ther. , 0074-0075 (2021).</li>
<li>Bastos, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+accuracy+of+serological+tests+for+covid-19%3A+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BMJ%22%5BJournal%5D)">Diagnostic accuracy of serological tests for covid-19: systematic review and meta-analysis.</a> BMJ. 370, 2516(2020).</li>
<li>Bioluminescent Reporters | Reporter Gene Applications | An Introduction to Reporter Genes. Promega. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.promega.ca/resources/guides/cell-biology/bioluminescent-reporters/#references-6d127eb8-eeae-40b7-86e9-fe300545e8fa">https://www.promega.ca/resources/guides/cell-biology/bioluminescent-reporters/#references-6d127eb8-eeae-40b7-86e9-fe300545e8fa</a> (2021).</li>
<li>Fleiss, A., Sarkisyan, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+brief+review+of+bioluminescent+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Genetics%22%5BJournal%5D)">A brief review of bioluminescent systems.</a> Current Genetics. 65 (4), 877-882 (2019).</li>
<li>Nouri, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+kinome-wide+screen+using+a+NanoLuc+LATS+luminescent+biosensor+identifies+ALK+as+a+novel+regulator+of+the+Hippo+pathway+in+tumorigenesis+and+immune+evasion%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">A kinome-wide screen using a NanoLuc LATS luminescent biosensor identifies ALK as a novel regulator of the Hippo pathway in tumorigenesis and immune evasion.</a> The FASEB Journal. 33 (11), 12487-12499 (2019).</li>
<li>Boute, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NanoLuc+Luciferase+-+a+multifunctional+tool+for+high+throughput+antibody+screening%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">NanoLuc Luciferase - a multifunctional tool for high throughput antibody screening.</a> Frontiers in Pharmacology. 7, 27(2016).</li>
<li>Nouri, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+celastrol+as+a+novel+YAP-TEAD+inhibitor+for+cancer+therapy+by+high+throughput+screening+with+ultrasensitive+YAP%2FTAZ-TEAD+biosensors%5BTitle%5D)+AND+%22Cancers%22%5BJournal%5D)">Identification of celastrol as a novel YAP-TEAD inhibitor for cancer therapy by high throughput screening with ultrasensitive YAP/TAZ-TEAD biosensors.</a> Cancers. 11 (10), 1596(2019).</li>
<li>Azad, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SARS-CoV-2+S1+NanoBiT%3A+A+nanoluciferase+complementation-based+biosensor+to+rapidly+probe+SARS-CoV-2+receptor+recognition%5BTitle%5D)+AND+%22Biosensors+and+Bioelectronics%22%5BJournal%5D)">SARS-CoV-2 S1 NanoBiT: A nanoluciferase complementation-based biosensor to rapidly probe SARS-CoV-2 receptor recognition.</a> Biosensors and Bioelectronics. 180, 113122(2021).</li>
<li>Brown, E. E. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+critical+determinants+of+ACE2-SARS+CoV-2+RBD+interaction%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Characterization of critical determinants of ACE2-SARS CoV-2 RBD interaction.</a> International Journal of Molecular Sciences. 22 (5), 2268(2021).</li>
<li>Azad, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+gain-of-functional+screen+identifies+the+Hippo+pathway+as+a+central+mediator+of+receptor+tyrosine+kinases+during+tumorigenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">A gain-of-functional screen identifies the Hippo pathway as a central mediator of receptor tyrosine kinases during tumorigenesis.</a> Oncogene. 39 (2), 334-355 (2020).</li>
<li>Schwinn, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR-Mediated+tagging+of+endogenous+proteins+with+a+luminescent+peptide%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Chemical+Biology%22%5BJournal%5D)">CRISPR-Mediated tagging of endogenous proteins with a luminescent peptide.</a> ACS Chemical Biology. 13 (2), 467-474 (2018).</li>
<li>Azad, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+NanoBiT-based+serological+assay+detects+SARS-CoV-2+seroconversion%5BTitle%5D)+AND+%22Nanomaterials%22%5BJournal%5D)">A high-throughput NanoBiT-based serological assay detects SARS-CoV-2 seroconversion.</a> Nanomaterials. 11 (3), 807(2021).</li>
</ol>

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Le nombre croissant de personnes infectées par le SARS-CoV-2 et les efforts continus pour la vaccination mondiale nécessitent des tests sérologiques sensibles et rapides qui peuvent être utilisés dans les enquêtes sérologiques à grande échelle. Des recherches récentes montrent que les biorapporteurs à base de nanoluciférase fractionnée peuvent être utilisés pour développer de tels tests. Nous avons récemment développé le biorapporteur HiBiT-RBD pour concevoir un test qui peut être utilisé pour détecter rapidement et de m...

L’émergence récente d’un nouveau coronavirus, le SRAS-CoV21, a causé plus de 2 800 000 décès et 128 millions d’infections au 30 mars 20212. En raison de l’absence d’une procédure de traitement fiable et bien établie pour les thérapies cliniques du SRAS-CoV-2, de nombreux efforts ont été déployés pour limiter la transmission virale et, plus important encore, pour développer un traitement efficace et robuste ou un vaccin3. À ce jour, plus de 50 candidats vaccins contre la COVID-19 font l’objet d’essais rapportés par l’Organisation mondiale de la Santé4. La détection d’anticorps contre le SARS-CoV-2 est d’une importance capitale pour déterminer la stabilité à long terme de la réponse humorale lors de l’administration du vaccin ainsi que chez les patients guéris de la COVID-195. Certaines études ont démontré qu’il est possible que les patients guéris du SRAS-CoV-2 perdent la plupart des anticorps de liaison à la RBD après 1 an5,6,7,8,9. Des recherches plus approfondies sont nécessaires pour mieux comprendre l’immunité durable, et des plates-formes de détection d’anticorps plus sensibles peuvent aider à poursuivre ces travaux. Les rapports sur l’immunité soutenue des infections légères par le SRAS-CoV-2, qui suggèrent des réponses anticorps à long terme, constituent également un domaine d’étude intéressant et utile. Une méthode de détection rapide et précise est essentielle pour surveiller les anticorps dans le sérum des individus afin de fournir plus d’informations sur l’immunité dans la population.
Comme d’autres coronavirus, le SARS-CoV-2 utilise la glycoprotéine de pointe saillante pour se lier à l’enzyme de conversion de l’angiotensine-2 (ACE2) afin d’initier une cascade d’événements qui conduisent à la fusion des membranes virale et cellulaire6,7. Plusieurs études ont récemment prouvé que la RBD de la protéine Spike joue un rôle crucial dans l’obtention d’une réponse anticorps puissante et spécifique contre le SARS-CoV28,9,10,11. En particulier, les corrélations observées par Premkumar et coll. entre le titre d’anticorps liant la RBD et la puissance de neutralisation du plasma des patients par le SRAS-CoV-2 sont compatibles avec le fait que la RBD est un compartiment immunogène de la structure du virus9. Dans cet esprit, de nombreux tests diagnostiques disponibles pour la détection des anticorps sars-CoV-2 sont longs et coûteux, nécessitent une longue procédure d’incubation et de lavage (test immuno-enzymatique [ELISA]), ou manquent de sensibilité et de précision (test immunologique à flux latéral [LFIA])12. Par conséquent, une méthode sérologique complémentaire quantitative et rapide de détection des anticorps dérivés de la COVID-19 avec une sensibilité élevée, une réponse rapide et un coût relativement faible répondrait au besoin d’un test sérologique fiable pour la surveillance épidémiologique du SRAS-CoV-2.
Collectivement, les limites des essais sérologiques actuels ont incité à étudier le système de déclaration bioluminescente en tant qu’agent de diagnostic potentiel dans les futures enquêtes sérologiques. La bioluminescence est une réaction enzyme/substrat naturelle, avec émission de lumière. La nanoluc luciférase est la plus petite (19 kDa), mais le système le plus brillant par rapport à Renilla et à la luciole luciférase (36 kDa et 61 kDa, respectivement)13,14. En outre, Nanoluc a le rapport signal / bruit le plus élevé et la stabilité parmi les systèmes mentionnés précédemment. L’intensité de signal élevée de Nanoluc prend en charge la détection de très faibles quantités de fusions rapporteures15. Nanoluc Binary Technology (NanoBiT) est une version divisée du système Nanoluc, qui est composé de deux segments: petit BiT (11 acides aminés; SmBiT) et grand BiT (LgBiT) avec des interactions d’affinité relativement faible (KD = 190 μM) pour former un complexe luminescent16. NanoBiT est largement utilisé dans diverses études impliquant l’identification des interactions protéine-protéine15,17,18,19 et des voies de signalisation cellulaire11,20,21.
Récemment, un autre petit peptide avec une affinité nettement plus élevée pour LgBiT (KD = 0,7 nM) a été introduit, à savoir le système HiBiT Nano-Glo, à la place de SmBiT. La haute affinité et le signal fort du test Nano-Glo « add-mix-read » font de HiBiT une étiquette peptidique luminescente quantitative appropriée. Dans cette approche, la balise HiBiT est ajoutée à la protéine cible en développant une construction imposant une interférence structurelle minimale. La fusion de la protéine HiBiT se lierait activement à la contrepartie LgBiT, produisant une enzyme luciférase hautement active pour générer une bioluminescence détectable en présence de réactifs de détection (Figure 1). De même, nous avons développé un système basé sur HiBiT Nano-Glo pour mesurer facilement le titre d’anticorps neutralisants dans le sérum des individus guéris du SRAS-CoV-2 et avons récemment développé un RBD SARS-CoV-2 marqué HiBiT. Cet article décrit le protocole de production du biorapporteur HiBiT-RBD à l’aide de procédures et d’équipements de laboratoire standard, et montre comment ce biorapporteur peut être utilisé dans un test rapide et efficace pour détecter les anticorps ciblant le SARS-CoV-2 RBD.

<table><tbody><tr><td>5x Tampon de lyse passive</td><td>Promega</td><td>E194A</td><td>30 mL</td></tr><tr><td>Bio-Plex Rondelle magnétique portable</td><td>Bio-Rad</td><td>171020100</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Sigma</td><td>D6429-500ml</td><td></td></tr><tr><td>Dual-Glo luciférase Assay System</td><td>Promega</td><td>E2940</td><td>100 mL kit</td></tr><tr><td>Sérum de veau fœtal (FBS)</td><td>Sigma</td><td>F1051</td><td></td></tr><tr><td>HiBiT-RBD Plasmide</td><td></td><td></td><td>gacggatcgggagatctcccgatcctatggt gcactctcagtacaatctgctctgatgccgcata gttaagccagtatctgctccctctgtgtgtgtgtgt aggtcgctgagtagtgcgcgagcaaaattta agctacaacaaggcaaggcaaggcttgaccgacaa ttgcatgaagaatctgcttagggttaggcgtttttg cgctgcttgtacgggccagatatacgc gttgacattgattgactagttattaatagt aatcaattacggggtcatttcatagcccat atatggagttccgttacataacttacggtaa atggcccgcgcctggctgaccgcccaacgaccc ccgcattgacgtcaataatgacgtcatccc atagtaacgccaatagggactttccattgacgtc aatgggtggagtatttacggtaaactgcccact tggcagtacatcaagtgtatcatatgccaagta 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gtaacaggagagcgagggaggtatgtaggc ggtgctacagagttcttgaagtggctaact acggctacactagaagaagagtatttggtatc tgcgctctgctgaagccagttaccttcggaaa aagagttggtagctctctgatgatccggcaaacaaa ccaccgctggtagcggtggtttgtgtga agcagcagattacgcgcagaaaaaaaggat ctcaagaagagatttttgattttttctacggggt ctgacgctcagtggaacgaacgaaaactcacgttaa gggattttggtcatgagattatcaaaaaggatct tcacctagatccttttaaattaaaaaaatgagtt ttaaatcaatctaaagtatatatgagtaaactt ggtctgacagttaccaatgcttaatcagtgagg cacctatctcagcgatctgtgtttattgttcatcca tagttgcctgactccccgtcgtgtagataactac gatacgggagggcttaccatctggccccagt ctgcaatgataccgcgagacccacgctcacc ggctccagatttatcagcataataaaccagccag ccggaagggccgagcgcagaagtggtcctg caactttatccgcctccatccagtttattattttt gccgggaagctagagagtaagtagttcgccagtt aatagtttgcgcaacgttgttgccattgctacag gcatcgtggtcacgctcgtcgtttttggtatgg cttcattcagctccggttcccaacgatcaaggc gagttacatgatcccccatgttgtgcaaaaaag cggttagctccttcggtcctccgatcgttgtca gaagtaagttggccgcagtgttatcactcatggt tatggcagcactgcagtgtcatcatgcatggtaagatgcttgtggtatgcg gcgaccgagttgctctcttgcgcggcgtcaatacg ggataataccgcgccacatagcagaactttaa aagtgctcatgcatggaaaacgttcttcggggc gaaaactctcaaggatcttaccgctgttgagat ccagttcgatgtaacccactcgtgcacccaact gatcttcagcattttttcaccagcgtttc tgggagcaaaaacaggaaggcaaaatgc cgcaaaaaagggaataagggcgacacgga aatgttgaatactctctctttttcaat attattgaagcatttattatcagggttattgtc tcatgagcggatacatatttgaatgtattt agaaaaaataggggttccgcgca catttccccgaaaagtcacctgacgtc</td></tr><tr><td>LgBiT</td><td>Promega</td><td>N3030</td><td></td></tr><tr><td>pénicilline Streptomycin</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td></td><td></td>15140122</tr><tr><td>Perce Protein G Perce Perce</td><td>Magnétique Thermo Fisher Scientific</td><td>88848</td><td></td></tr><tr><td>PolyJet In Vitro DNA Transfection Réactif</td><td>Signagen</td><td>SL100688.5</td><td></td></tr><tr><td>SARS-CoV-2 (2019-nCoV) Spike Neutralisant l’anticorps, souris Mab</td><td>SinoBiological</td><td>40592-MM57</td><td></td></tr><tr><td>Synergy Mx Lecteur de microplaques</td><td>BioTek</td><td></td><td>Luminaire à 96 puits</td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>2520056</td><td>0,25 %</td></tr></tbody></table>

détection de l’anticorps du domaine de liaison au récepteur du sars-cov-2 à l’aide d’un biorapporteur basé sur hibit

Detection of SARS-CoV-2 Receptor-Binding Domain Antibody using a HiBiT-Based Bioreporter

L’émergence de la pandémie de COVID-19 a accru le besoin de meilleures méthodes de détection sérologique pour déterminer l’impact épidémiologique du coronavirus 2 du syndrome respiratoire aigu sévère (SARS-CoV-2). Le nombre croissant d’infections par le SRAS-CoV-2 soulève la nécessité de meilleurs tests de détection des anticorps. Les méthodes actuelles de détection des anticorps compromettent la sensibilité pour la vitesse ou sont sensibles mais prennent beaucoup de temps. Une grande partie des anticorps neutralisant le SRAS-CoV-2 ciblent le domaine de liaison aux récepteurs (RBD), l’un des principaux compartiments immunogènes du SARS-CoV-2. Nous avons récemment conçu et développé un RBD (NanoLuc HiBiT-RBD) hautement sensible et marqué au bioluminescent pour détecter les anticorps du SRAS-CoV-2. Le texte suivant décrit la procédure à suivre pour produire le complexe HiBiT-RBD et un test rapide pour évaluer la présence d’anticorps ciblant rbD à l’aide de cet outil. En raison de la durabilité du produit protéique HiBiT-RBD sur une large plage de températures et de la procédure expérimentale plus courte qui peut être achevée en 1 h, le protocole peut être considéré comme une alternative plus efficace pour détecter les anticorps du SRAS-CoV-2 dans les échantillons de sérum des patients.

Les signaux provenant à la fois du lysat cellulaire contenant du HiBit-RBD et du surnageant des cellules transfectées ont été enregistrés (Figure 2) pour évaluer la source de protéines appropriée. HiBiT-RBD et LgBit ont été utilisés séparément comme contrôles, et les données ont montré un faible arrière-plan par rapport à un signal fort lorsque les deux parties ont été combinées. Par conséquent, l’interaction HiBiT-RBD avec LgBiT est nécessaire pour générer une enzyme active pour la digestio...

Le protocole décrit la procédure de production du complexe protéique du domaine de liaison au récepteur HiBiT et son application pour la détection rapide et sensible des anticorps anti-SARS-CoV-2.

Détection de l’anticorps du domaine de liaison au récepteur du SARS-CoV-2 à l’aide d’un biorapporteur basé sur HiBiT

The emergence of the COVID-19 pandemic has increased the need for better serological detection methods to determine the epidemiologic impact of severe ...

Mon laboratoire a travaillé dans la recherche sur la COVID-19 et nous avons récemment mis au point un nouveau test qui nous a permis de détecter rapidement et avec précision les anticorps anti-SRAS-CoV-2. Ce protocole décrit un test à haut débit pour détecter les anticorps anti-SARS-CoV-2 dans les échantillons de sérum des patients, ce qui est essentiel compte tenu de la pandémie actuelle. La majorité des tests sérologiques actuels sacrifient la vitesse pour la sensibilité ou vice versa.Nos données montrent que notre test est à la fois sensible et a un temps de réponse rapide. Afin de produire une quantité suffisante de biorapporteur HiBiT-RBD élevé, commencez par vous préparer à la culture cellulaire. Tout d’abord, préparez le milieu d’aigle modifié complet de Dulbecco contenant 10% de sérum bovin fœtal et 1% de pénicilline et de streptomycine.Ensuite, réchauffez les médias dans un bain-marie à 37 degrés Celsius. Allumez l’armoire de sécurité biologique et utilisez de l’éthanol à 70 % pour stériliser la surface de l’armoire. Pour cultiver la lignée cellulaire, retirez-la de moins 80 degrés Celsius ou d’azote liquide et décongelez-la dans un bain-marie de 37 degrés Celsius.Mélanger les cellules décongelées avec au moins 10 millilitres de milieu complet. Pipettez la suspension cellulaire dans une boîte de Petri de 15 centimètres et faites tourbillonner la plaque pour répartir les cellules uniformément. Placez le plat dans un incubateur de culture cellulaire à 37 degrés Celsius, 5% de dioxyde de carbone et 85 à 95% d’humidité.Observez les cellules au microscope jusqu’à ce que le niveau de confluence atteigne 80 à 90% À haute confluence, retirez le milieu, lavez les cellules avec du PBS chaud et ajoutez trois à cinq millilitres de 0,25% de trypsine-EDTA pour détacher les cellules de la surface. Après environ cinq minutes, regardez les cellules au microscope. Si toutes les cellules flottent, ajoutez au moins quatre millilitres de milieu et transférez la suspension cellulaire dans un nouveau tube stérile.Comptez les cellules à l’aide d’un hémocytomètre et ajoutez un million de cellules dans chaque puits d’une plaque de six puits pour la transfection. Pour effectuer la transfection du plasmide HiBiT-RBD, utilisez un microgramme du plasmide d’expression HiBiT-RBD avec un réactif de transfection approprié. Incuber pendant 10 à 15 minutes à température ambiante, puis ajouter le volume total à chaque puits de la plaque goutte à goutte.Le lendemain, remplacer le milieu contenant le mélange de transfection par un milieu complet. Observez bien le contrôle de la transfection 48 heures après la transfection. Recueillir le surnageant dans des microtubes de 1,5 millilitre.Ajouter 500 microlitres de tampon de lyse passive 1X ou PLB aux cellules, puis incuber et agiter la plaque pendant 15 minutes à température ambiante pour la lyse cellulaire. Ensuite, pour évaluer le signal de luminescence du bioreporter à l’aide d’un test de luciférase, préparez d’abord les composants de la réaction et utilisez le surnageant comme source du bioreporter. Diluer le grand BiT et le substrat à 1X avant utilisation.Transférez 50 microlitres du surnageant de chaque puits ou tube vers une plaque de 96 puits et ajoutez 50 microlitres de 1X grand BiT à chaque puits. Incuber pendant cinq minutes à température ambiante. Ouvrez le logiciel du luminomètre, ajoutez 50 microlitres de substrat 1X à chaque puits, placez la plaque dans le luminomètre et exécutez le logiciel.Afin d’effectuer le test de détection d’anticorps HiBiT-RBD, préparez le bioreporter HiBiT-RBD comme décrit précédemment et combinez 50 microlitres du surnageant contenant du HiBiT-RBD avec un microgramme de l’anticorps commercial SARS-CoV-2 RBD dans un microtube de 1,5 millilitre. Ajouter 20 microlitres de protéine de liaison aux immunoglobulines ou de protéine G à la solution. Porter le volume total à 300 microlitres en ajoutant pbS.Incuber les tubes sur un agitateur à tube ou un rotateur pendant 30 minutes. Centrifuger à 12 000 G pendant 30 secondes. Ensuite, jetez le surnageant et lavez-le avec du PBS.Répétez le processus trois fois pour supprimer HiBiT-RBD libre. Remettez en suspension les cellules dans 50 microlitres de PBS et transférez-les sur une plaque de 96 puits. Ajoutez 50 microlitres de 1X grand BiT et attendez cinq minutes.Ajoutez ensuite 50 microlitres de substrat 1X NanoLuc. Lisez immédiatement le signal de luminescence avec un luminomètre. Préparer de plus grandes quantités du biorapporteur HiBiT-RBD pour un essai à haut débit et combiner 20 microlitres de protéine G magnétique avec 50 microlitres du surnageant HiBiT-RBD dans chaque puits d’une plaque de 96 puits pour chaque échantillon.Ajouter 10 microlitres de l’échantillon de sérum à chaque puits et porter le volume total à 150 microlitres en ajoutant du PBS. Incuber pendant 30 minutes sur un agitateur à température ambiante. Ensuite, placez la plaque sur une rondelle magnétique pour précipiter le complexe d’anticorps de la protéine G.Jetez la solution dans la section centrale de chaque puits et ajoutez PBS pour le lavage. Répétez l’étape de lavage au moins trois fois pour éliminer l’excès de HiBiT-RBD. Ajouter 50 microlitres de 1X PBS et 50 microlitres de 1X grand BiT et incuber pendant au moins cinq minutes à température ambiante.Préparez le logiciel du luminomètre. Ajoutez ensuite 50 microlitres de substrat 1X. Placez la plaque dans la machine, exécutez le logiciel et enregistrez les signaux.Comparez les signaux des échantillons de sérum, des échantillons de contrôle et du signal de fond des puits vides. Les signaux provenant à la fois du lysat cellulaire contenant du HiBiT-RBD et du surnageant des cellules transfectées ont été enregistrés pour évaluer la source de protéines appropriée. Les données ont montré un arrière-plan faible par rapport à un signal fort lorsque les deux parties ont été combinées.L’ajout de protéine G aide à la précipitation des anticorps. Le test a été utilisé pour comparer le signal d’un anticorps neutralisant commercial du SRAS-CoV-2 avec une IgG témoin. Le signal d’anticorps spécifique était robuste, tandis que l’anticorps témoin avait un niveau proche du niveau de fond luminescent.Le virus de la stomatite vésiculeuse vésiculeuse atténuée recombinante ou VSV avec une mutation à la position 51 de la protéine M exprimant la RBD exogène a été utilisé pour vacciner des souris. Le sérum prélevé sur des souris vaccinées a produit un signal robuste par rapport à aucun signal chez les souris injectées avec VSV témoin. Ce protocole peut être utilisé pour la détection des anticorps anti-SARS-CoV-2 dans des échantillons de sérum de patients.Les étapes de lavage après l’incubation avec la protéine G sont essentielles pour réduire le fond. De plus, il est important d’ajouter le substrat le plus rapidement possible pour éviter la perte de signal. Avec quelques étapes d’optimisation supplémentaires, le même test peut être utilisé pour analyser des échantillons de sang et pourrait être une méthode efficace pour déterminer les anticorps anti-SARS-CoV-2 dans les échantillons de sang de patients.

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JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

Quantitatives à haut débit, en temps réel, et sans étiquette de détection biomoléculaire (ADN, protéines, etc) sur...

Détection biomoléculaire employant le capteur interférométrique Réflectance Imaging (IRIS)

La vidéo montre le dosage de la luciférase utilisé pour quantifier les protéines marquées à la luciférase. Le test utilise une enzyme luciférase modifiée composée d’un gros fragment qui se lie au petit fragment, qui est conjugué à une protéine d’intérêt. Les sous-unités liées forment une enzyme active qui, en présence du substrat, libère un signal luminescent. Ce signal est ensuite quantifié à l’aide d’un luminomètre.

Le test de la luciférase : un test à haut débit pour mesurer les signaux luminescents à l’aide de biorapporteurs basés sur le système de nanoluciférase

Dans cette vidéo, nous montrons le test basé sur le système biorapporteur HiBit-RBD pour détecter les anticorps neutralisants du SARS-CoV-2. Ce système cible le domaine RBD viral en utilisant un système rapporteur bioluminescent contenant HiBiT fusionné au domaine RBD.

Bioreporter Assay : une technique sensible utilisant un système de rapporteur bioluminescent pour détecter les anticorps du SARS-CoV-2

Le protocole décrit ici décrit décrit une méthode rapide et efficace pour mesurer les anticorps neutralisants contre la protéine de pointe du SRAS-CoV-2 en évaluant la capacité des échantillons de sérum de convalescent à inhiber l’infection par un virus de la stomatite vésiculeuse marqué par une protéine fluorescente verte améliorée pseudotypée avec une glycoprotéine de pointe.

Détection des anticorps neutralisants du SRAS-CoV-2 à l’aide de l’imagerie fluorescente à haut débit de l’infection à pseudovirus

Un système d’analyse de flux pour les essais multiplexés à base de billes qui fournit une lecture à deux rapporteurs a été utilisé pour le développement de tests sérologiques et de neutralisation des anticorps multiplex qui peuvent mesurer simultanément les anticorps IgG et IgM neutralisants pour le SARS-CoV-2.

Un test de neutralisation rapide et multiplex à double rapporteur IgG et IgM SARS-CoV-2 pour un système d’analyse de débit à base de billes multiplexées

Dans ce protocole, les points quantiques conjugués au pic recombinant du SARS-CoV-2 permettent aux tests cellulaires de surveiller la liaison du pic à hACE2 au niveau de la membrane plasmique et l’endocytose ultérieure des protéines liées dans le cytoplasme.

Imagerie confocale à haut débit des trimères de pointes SRAS-CoV-2 conjuguées aux points quantiques pour suivre la liaison et l’endocytose dans les cellules HEK293T

Cet article décrit une méthode pratique pour surveiller les changements dynamiques dans les titres d’anticorps pour deux isotypes d’immunoglobulines simultanément (IgA, IgM ou IgG) résultant d’une réponse immunitaire à l’infection ou à la vaccination contre le SRAS-CoV-2. Ce « panel de réponse immunitaire Covid-19 multianalyte » utilise trois immunoessais indirects construits sur des microsphères codées qui sont lues à l’aide d’un lecteur multiplex basé sur le flux avec une capacité « double...

Surveillance dynamique de la séroconversion à l’aide d’un test d’immunobilles multianalytes pour le Covid-19

Le présent protocole décrit de nouveaux outils pour les tests de liaison SPR afin d’examiner la liaison CV-N à l’HA, à la glycoprotéine S, aux glycanes de type hybride apparentés et aux oligosaccharides à haute teneur en mannose. SPR est utilisé pour déterminer le KD pour lier le CV-N dimérique ou monomère à ces glycanes.

Ingénierie d’agents antiviraux par résonance plasmonique de surface

Ici, nous décrivons un immunodosage fluorescent multiplex nouvellement développé qui utilise un système de cytométrie en flux à double rapporteur pour détecter simultanément deux épitopes uniques de protéine de pointe sur des particules virales intactes du coronavirus 2 du syndrome respiratoire aigu sévère sévère (SRAS-CoV-2) qui avaient été capturées par des microsphères magnétiques couplées à l’enzyme de conversion de l’angiotensine 2.

Profilage d’épitopes de protéines de surface sur des particules virales par stratégie de double rapporteur multiplex

Nous décrivons une plateforme d’immunoessais récemment développée basée sur les principes de la biologie synthétique acellulaire et la technique dot-blot pour la détection personnalisable de la réponse anticorps dans les sérums humains et animaux.

Cell-free dot blot en tant que plateforme d’immunodosage pratique et adaptable pour la détection de la réponse anticorps dans les sérums humains et animaux

Découvrez une méthode de détection rapide et sensible des anticorps anti-SARS-CoV-2 dans le sérum patient à l'aide d'un biorapporteur HiBiT-RBD. Cette technique de haut débit améliore le diagnostic sérologique de la COVID-19.

Détection de l’anticorps du domaine de liaison au récepteur du SARS-CoV-2 à l’aide d’un biorapporteur basé sur HiBiT

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