Ici, des protocoles sont décrits pour préparer des assemblages de virus adaptés à l’analyse liquide-EM et cryo-EM à l’échelle nanométrique en utilisant la microscopie électronique à transmission.
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Article de méthode
* These authors contributed equally
Retraction Notice
This article, Advancing High-Resolution Imaging of Virus Assemblies in Liquid and Ice, has been retracted at the request of the Editors-in-Chief due to concerns about the integrity of the data presented. These concerns included: (a) Figure 3 was found to contain noise without structural features expected for a protein capsid; (b) critical half-map data necessary to verify resolution claims were not deposited; (c) there was a lack of system logs or controls to rule out stage drift regarding observed movements in Figure 3; and (d) the absence of protocols to address Brownian motion and beam-induced drift significantly weakened the reliability of the findings.<br/><br/>The corresponding author's indication she principally relied on RMEASURE program did not sufficiently address the publisher's concerns. After consulting external experts, the Editors-in-Chief concluded that the issues remain unresolved, and the data do not meet JoVE's standards for scientific reliability and reproducibility, requiring retraction. The corresponding author disagrees with the grounds for retraction. Co-authors DiCecco, Grandfield and Bator agree with the retraction. Other co-authors were unavailable for comment.
Ici, des protocoles sont décrits pour préparer des assemblages de virus adaptés à l’analyse liquide-EM et cryo-EM à l’échelle nanométrique en utilisant la microscopie électronique à transmission.
L’intérêt pour la microscopie électronique liquide (EM liquide) a explosé ces dernières années, car les scientifiques peuvent maintenant observer des processus en temps réel à l’échelle nanométrique. Il est extrêmement souhaitable de coupler des informations cryo-EM à haute résolution avec des observations dynamiques, car de nombreux événements se produisent à des échelles de temps rapides - de l’ordre de la milliseconde ou plus. Une meilleure connaissance des structures flexibles peut également aider à la conception de nouveaux réactifs pour lutter contre les agents pathogènes émergents, tels que le SRAS-CoV-2. Plus important encore, l’observation des matériaux biologiques dans un environnement fluide donne un aperçu unique de leur performance dans le corps humain. Les méthodes nouvellement développées ici sont présentées pour étudier les propriétés à l’échelle nanométrique des assemblages de virus dans la glace liquide et vitreuse. Pour atteindre cet objectif, des échantillons bien définis ont été utilisés comme systèmes modèles. Des comparaisons côte à côte des méthodes de préparation des échantillons et des informations structurelles représentatives sont présentées. Les caractéristiques sub-nanométriques sont montrées pour les structures résolues dans la plage de ~3,5-Å-10 Å. Parmi les autres résultats récents qui soutiennent ce cadre complémentaire, citons les connaissances dynamiques des candidats vaccins et des thérapies à base d’anticorps imagées dans un liquide. Dans l’ensemble, ces applications corrélatives font progresser notre capacité à visualiser la dynamique moléculaire, fournissant un contexte unique pour leur utilisation dans la santé et la maladie humaines.
La recherche biomédicale améliore notre compréhension de la santé et des maladies humaines grâce au développement de nouvelles technologies. L’imagerie à haute résolution transforme notre vision du nanomonde - nous permettant d’étudier les cellules et les molécules dans les moindres détails 1,2,3,4,5. L’information statique des composants dynamiques tels que les polymères mous, les assemblages de protéines ou les virus humains ne révèle qu’un instantané limité de leur récit complexe. Pour mieux comprendre l....
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1. Chargement du porte-échantillon pour liquide-EM
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Un TEM liquide fonctionnant à 200 kV a été utilisé pour toutes les expériences d’imagerie EM liquide et un cryo-TEM fonctionnant à 300 kV a été utilisé pour toute la collecte de données cryo-EM. Des images et des structures représentatives de plusieurs virus sont présentées pour démontrer l’utilité des méthodes sur divers sujets de test. Il s’agit notamment du virus adéno-associé recombinant de sous-type 3 (AAV), des assemblages sous-viraux du SARS-CoV-2 dérivés du sérum du patient et des particules à double couche du ro.......
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De nouvelles opportunités sont présentées pour rationaliser les flux de travail actuels de liquide EM en utilisant de nouveaux outils automatisés et des technologies adaptées du domaine cryo-EM. Les applications impliquant la nouvelle technique sandwich par micropuce sont importantes par rapport à d’autres méthodes, car elles permettent une analyse d’imagerie à haute résolution dans la glace liquide ou vitreuse. L’une des étapes les plus critiques du protocole consiste à produire des spécimens avec l’épaisseur de liquide.......
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Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents. L’auteur, Madeline J. Dressel-Dukes, est une employée de Protochips, Inc. et Michael Spilman est un employé de DirectElectron.
Les auteurs remercient le Dr Luk H. Vandenberghe (Harvard Medical School, Département d’ophtalmologie) pour avoir fourni AAV-3 purifié. Ce travail a été soutenu par les National Institutes of Health et le National Cancer Institute (R01CA193578, R01CA227261, R01CA219700 à D.F.K.).
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Acétone | Fisher Scientific | ; A11-1 | 1 |
| Outil de clipsage Autoloader | ThermoFisher Scientific | N/A | Également fournisseur de SubAngstrom |
| Clips de grille de chargeur automatique | ThermoFisher Scientific | N/A | Clips supérieurs et inférieurs |
| Grilles EM dorées recouvertes de carbone | Microcopie électronique Sciences | CF400-AU-50 | 400-mesh, 5 nm d’épaisseur |
| Sérum de patient COVID-19 | RayBiotech | CoV-Pos-S-500 | 500 microlitres de sérum PCR+ |
| Méthanol | Fisher Scientific | ; A412-1 | 1 Litre |
| Micropuces Microwell-integrad | Protochips, Inc. | EPB-42A1-10 | Réseaux de fenêtres 10x10 mm |
| TEMWindows micropuces | Simpore Inc. | SN100-A10Q33B | 9 grandes fenêtres, 10 nn |
| d’épaisseur TEMWindows micropuces | Simpore, Inc. ; | SN100-A05Q33A | 9 petites fenêtres, 5 nm d’épaisseur |
| Micropuces supérieures | Protochips, Inc. | EPT-50W | 500 mm x 100 mm fenêtre |
| Whatman #1 papier filtre | Whatman | 1001 090 | 100 pièces, 90 mm |
| équipement ; Détecteur d’électrons | |||
| directs DirectView | Espacement direct des pixels des électrons | 6 microns | |
| Falcon 3 EC Détecteur d’électrons directs | ThermoFisher Scientific | Espacement des pixels de 14 microns | |
| Gatan 655 Station de pompage sèche | Gatan, Inc. | ; Embout porte-pompe à 10-6 range | |
| Mark IV Vitrobot | ThermoFisher Scientific | unité de préparation d’échantillons à la pointe de la technologie ; | |
| PELCO easiGlow, unité de décharge luminescente | Ted Pella, Inc. | ; Mode de polarité négative | |
| Porte-échantillon Poseidon Select | Protochips, Inc. | ; Compatible FEI ; porte-échantillon | |
| Talos F200C TEM | ThermoFisher Scientific | 200 kV ; Liquid TEM | |
| Titan Krios G3 | ThermoFisher Scientific | 300 kV ; Cryo-TEM | |
| Logiciel disponible gratuitement | Lien vers le site web | Comments (facultatif) | |
| cryoSPARC | https://cryosparc.com/ | autre logiciel de traitement d’images | |
| CTFFIND4 | https://grigoriefflab.umassmed.edu/ctffind4 | programme de recherche CTF | |
| MotionCorr2 | |||
| RELION | https://www3.mrc-lmb.cam.ac.uk/relion/index.php?title=Main_Page | ||
| SerialEM | https://bio3d.colorado.edu/SerialEM/ | ||
| UCSF Chimera | https://www.cgl.ucsf.edu/chimera/ | progiciel d’analyse de structure moléculaire |
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