Name: Tomographie optoacoustique multispectrale pour l’imagerie fonctionnelle en recherche vasculaire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-08T14:10:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Découvrez l'imagerie optoacoustique multispectrale pour l'évaluation fonctionnelle de la vascularisation cutanée in vivo. Cette méthode permet la détection précoce des altérations microvasculaires et le suivi thérapeutique en temps réel.

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Cette recherche est financée par ALIES et COFAC principaux fournisseurs de la technologie à l’étude, et par la Fundação para a Ciência e a Tecnologia (FCT) par le biais de la subvention UIDB/04567/2020 au CBIOS.

Le protocole expérimental a déjà été approuvé par le Comité d’éthique de la Faculté des sciences de la santé de l’Université (EC. ECTS/P10.21). Les procédures respectaient pleinement les principes de bonnes pratiques cliniques définis pour la recherche sur l’être humain13. Un échantillon pratique de six participants en santé des deux sexes (n = 3 par sexe) âgés en moyenne de 32,8 ± 11,9 ans a été choisi dans la communauté universitaire. Les participants sélectionnés devaient être normotendus, non-fumeurs et exempts de tout médicament ou complément alimentaire. La pression artérielle, la fréquence cardiaque et l’indice de masse corporelle ont également été enregistrés. Tous les participants ont été préalablement informés des objectifs et de la durée de l’étude et ont reçu un consentement écrit éclairé.
NOTE: Cette étude a été réalisée à l’aide de MSOTAcuity (voir Tableau des matériaux), ci-après dénommée plateforme d’imagerie optoacoustique.
1. Préparation à l’acquisition
Remarque : Dans la description expérimentale qui suit, les commandes d’écran sont en caractères gras.
<ol><li>Chargement des informations sur le sujet : Allumez l’équipement d’imagerie optoacoustique. Pendant que l’équipement se réchauffe, présentez les informations aux participants. La fenêtre de bienvenue principale du logiciel s’ouvre sur la vue d’ensemble de l’analyse. Introduisez les données (y compris le nom, la dénomination de l’étude, les données personnelles et toute observation pertinente) après avoir cliqué sur ID du patient et terminez la demande en appuyant sur Sélectionner.</li>
	<li>Sélection prédéfinie : Assurez-vous que le message Laser is Ready (Le laser est prêt) apparaît sur l’écran de l’équipement. Après le temps de préchauffage, la barre d’état du laser sur l’écran de l’équipement doit passer de Laser Standby à Laser is Ready. Pour ce protocole, le préréglage est conçu pour les chromophores Hb, HbO2 et la mélanine. Après avoir sélectionné le bon préréglage, la puissance laser sera testée.</li>
	<li>À ce stade, assurez-vous qu’il y a un message à l’écran qui rappelle à chaque participant dans la salle d’appliquer des lunettes de sécurité laser. Appuyez sur la pédale de l’interrupteur laser (alimentation) et attendez l’auto-vérification de la puissance laser. Après quelques secondes, une fenêtre apparaît avec l’état actuel du laser avec un rapport de contrôle. Relâchez cette fenêtre en appuyant sur le bouton OK disponible. REMARQUE: La plate-forme d’imagerie optoacoustique utilise un laser Nd: YAG, considéré comme un laser de classe 4 particulièrement dangereux pour l’œil humain. Ainsi, ce laser doit être manipulé avec des soins adéquats. ATTENTION : Aucune acquisition ne devrait avoir lieu sans s’assurer que toutes les procédures de sécurité, y compris une protection oculaire appropriée, sont en place.</li>
</ol>2. Positionnement et acquisition d’images
<ol><li>Acclimater le participant à l’environnement de laboratoire (21 °C ± 1 °C; 40%-60% d’humidité relative), en choisissant une position confortable pour minimiser les mouvements inutiles. Assurez-vous que la zone à scanner est préalablement nettoyée. REMARQUE: La recommandation du fabricant de nettoyer la zone à imager avec une solution éthanol/eau à 70% est recommandée. De plus, pour une meilleure acquisition d’image, l’épilation (le cas échéant) est suggérée.</li>
	<li>Support de sonde et stabilisation d’image<ol><li>Appliquez une fine couche de gel à ultrasons sur la tasse 3D. La stabilisation d’image nécessite de maintenir la tasse 3D dans la position d’imagerie souhaitée. Positionnez et stabilisez un bras verrouillable pour la zone d’intérêt. Le bras utilisé dans cette étude a été conçu à l’interne et construit avec des composants de profilés en aluminium (figure 1).</li>
		<li>Après avoir placé la tasse 3D sur la zone d’intérêt, verrouillez partiellement le verrouillage du bras stabilisateur pour l’acquisition d’images. REMARQUE: La qualité et l’application uniforme du gel à ultrasons sont critiques; La présence de bulles d’air peut compromettre la définition de l’image.</li>
	</ol></li>
	<li>Acquisition d’images pour des conditions dynamiques, à l’aide de la manœuvre d’hyperémie réactive post-occlusive (PORH), dans l’onglet de menu Examen .<ol><li>Acquérir l’analyse de contrôle de base. Après avoir trouvé un champ de vision pour l’imagerie, avec le brassard de pression artérielle dégonflé en place, verrouillez solidement le bras de positionnement de la tasse 3D.</li>
		<li>Appliquez une pression minimale sur le site d’imagerie, car des pressions plus élevées pourraient compromettre les lectures. Poussez le préréglage par défaut du fabricant Hb, HbO 2 et Melanin qui mesure simultanément les chromophores pour Hb, HbO2 et mélanine. ATTENTION: Il est obligatoire de protéger les yeux avec des lunettes de sécurité appropriées pendant le fonctionnement. REMARQUE: Les phototypes de peau IV à VI (peau foncée) sont sujets à une mauvaise lecture, nécessitant une image témoin de base pour un traitement ultérieur. L’utilisation de lunettes de sécurité lors de l’acquisition d’images (lorsque le laser est actif) permet uniquement à l’œil humain de reconnaître les couleurs jaunes et bleues. Les couleurs peuvent être modifiées pendant le traitement de l’image.</li>
		<li>Sélectionnez la zone anatomique pour l’acquisition d’images de base. À des fins exploratoires, l’avant-bras ventral est recommandé. Continuez en appuyant sur la pédale de pédale laser. REMARQUE: Le bouton de l’écran tactile intitulé Affichage (couleur jaune), qui affiche l’image en direct à l’écran lorsque vous appuyez dessus. L’état de stabilité de l’image est affiché sous la forme d’une barre grise au milieu de l’écran tactile, indiquant la stabilité de la sonde 3D.<ol><li>Lorsque la stabilité de l’image est maximisée, prenez (ou capturez) un instantané de la zone en appuyant sur le bouton Snapshot de l’écran tactile. Chaque balayage acquerra 10 à 12 images à une profondeur acoustique de 150 mm pour chaque longueur d’onde définie dans le préréglage sur un temps d’acquisition de 2 s. Cette analyse d’acquisition de base comprendra un total de 30 à 36 images. REMARQUE: 10 images pour chaque chromophore détecté (Hb, HbO2 et mélanine) sont collectées avec une profondeur maximale de 15 mm.</li>
			<li>Continuez à appuyer sur la pédale de pédale laser pour une acquisition vidéo continue et faites attention au bouton Afficher (couleur jaune) sur l’écran tactile. L’image stabilisée apparaîtra. Appuyez sur Enregistrer (couleur bleue) pour commencer l’enregistrement de l’image en direct.</li>
			<li>Arrêtez l’enregistrement en appuyant sur le bouton Stop (de couleur noire). La plate-forme d’imagerie optoacoustique arrêtera l’enregistrement et rendra automatiquement la vidéo en mode de prévisualisation.</li>
		</ol></li>
		<li>Mesures dynamiques (illustration PORH) : Ajustez le brassard de pression au bras du patient au-dessus du coude pour illustrer cette manœuvre. Gonfler le brassard avec une pression supra systolique (~200 mmHg) et procéder selon les étapes 2.3.1 à 2.3.3.1 pour acquérir le système vasculaire imagé sous pression.</li>
		<li>Pour acquérir une vidéo afin d’évaluer l’impact de la libération de pression sur le système vasculaire imagé, ouvrez la soupape de pression tout en acquérant la vidéo comme en 2.3.3.2. Comme précédemment, suivez l’image en direct à l’écran. NOTE: Pour exécuter cette manœuvre, la pression supra systolique doit être maintenue pendant 1-5 min; Il est important d’être conscient que cette pression peut induire différents degrés de tolérance et d’inconfort chez le patient. Cet aspect doit être soigneusement géré pendant les expériences.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Protocole d’analyse d’images
<ol><li>Copiez les numérisations enregistrées dans un dossier sélectionné/dédié pour une sauvegarde et une analyse plus approfondie sur un poste de travail informatique distinct à l’aide du logiciel d’analyse dédié du fabricant. Chaque scan est stocké par temps d’acquisition et ordonné par le programme dans un dossier d’étude avec un code en cours d’exécution. REMARQUE: Une copie de sauvegarde est fortement recommandée. Travailler directement avec les données brutes enregistrées est possible mais fortement déconseillé, car toute panne potentielle du disque dur pourrait endommager les données brutes.</li>
	<li>Ouvrez le programme d’analyse sur le poste de travail. Choisissez le menu du programme > Ouvrir l’étude pour importer des fichiers et accéder aux analyses de sauvegarde. Ouvrez l’étude et faites défiler jusqu’au bas du dossier (avec les analyses enregistrées) pour rechercher les fichiers avec un fichier . Extension NOD. C’est le seul type de fichier reconnu par le logiciel pour ouvrir une étude. NOTE:. Les fichiers NOD sont nommés automatiquement avec un numéro courant attribué à chaque étude et ne contiennent aucune information sur le patient dans le nom du fichier.</li>
	<li>Pour la reconstruction d’image, ouvrez le module d’analyse d’image en accédant au logiciel Menu > Traitement avancé.<ol><li>Assurez-vous que les onglets du flux de travail du programme sont visibles (colorés en noir) dans la barre de menu supérieure (Figure supplémentaire 1) : Menu ; Vue d’ensemble de l’analyse; la reconstruction; correction de la fluence; Démixage spectral; Visualisation et analyse. Pendant l’analyse, tout onglet de workflow activé est coloré en bleu. REMARQUE: Si le traitement avancé n’est pas ouvert, le logiciel affiche uniquement Vue d’ensemble de la numérisation et Visualisation et analyse.</li>
	</ol></li>
	<li>Reconstruisez l’image via l’onglet Reconstruction du logiciel. Sélectionnez les analyses à reconstruire dans la partie gauche du menu principal du programme. Les analyses chargées apparaissent sur le côté droit de l’écran. Laissez les six longueurs d’onde d’émission optoacoustique par défaut (700, 730, 760, 800, 850 et 900 nm), car elles incluent le signal optoacoustique maximal pour HbO2 à 900 nm, pour Hb à 760 nm et mélanine à 700 nm.<ol><li>Effectuez la reconstruction de numérisation à l’aide de l’icône sur le côté droit. Suivez le workflow du programme en sélectionnant le préréglage Scan et le champ de vision (résolution). L’information est présentée dans le coin supérieur gauche de l’écran principal. Ajustez la vitesse du son pour régler la mise au point du balayage (Figure supplémentaire 2). Le panneau Reconstruction affiche également le nombre d’images de chaque scan acquis et permet d’analyser la sélection des répétitions (si nécessaire). REMARQUE: Chaque balayage est chargé avec une vitesse sonore par défaut de -90, qui doit être ajustée par l’utilisateur. La vitesse du son peut également être réglée automatiquement avec une fonction de mise au point automatique (AF).</li>
	</ol></li>
	<li>Appuyez sur le bouton Reconstruire les analyses en haut de l’écran pour passer à la reconstruction de numérisation. Un tableau de bord temporaire apparaîtra avec le message Job Processing. Ce panneau est également accessible à partir du menu > État du traitement. Une fois la reconstruction terminée, l’analyse de post-traitement de l’image doit passer à la correction de fluence.</li>
	<li>Activez la correction de fluence des images reconstruites dans le menu du tableau de bord. Les images reconstruites doivent être chargées pour la correction de fluence. Ceux-ci apparaissent avec un drapeau à côté de chaque numéro de numérisation. Les fichiers chargés seront immédiatement affichés sur le côté droit de l’écran en tant que reconstructions sélectionnées. Activez la correction de fluence en interagissant avec l’icône située à droite de l’écran (Figure supplémentaire 3). Poussez la ou les corrections de fluence de sauvegarde pour progresser.</li>
	<li>Après avoir enregistré la correction de fluence, effectuez le démélange spectral du préréglage acquis (Hb, HbO2 et mélanine). Sélectionnez l’onglet Démixage spectral pour ouvrir la liste des reconstructions sélectionnées pour le démixage spectral. Une liste avec chaque scan de l’étude sélectionnée sera affichée avec l’historique des étapes de traitement d’image précédentes.</li>
	<li>Chargez les fichiers de correction de fluence précédemment enregistrés. Les numérisations chargées seront immédiatement affichées sur le côté droit de l’écran en tant que reconstructions sélectionnées (Figure supplémentaire 4). Activez le démixage spectral en appuyant sur l’icône sur le côté droit de l’écran.<ol><li>Observez que les longueurs d’onde ne sont pas mélangées. Les six longueurs d’onde d’émission optoacoustique (700, 730, 760, 800, 850 et 900 nm) prises dans l’étape de reconstruction (étape 3.4) sont automatiquement choisies pour le démixage spectral. Modifiez les spectres souhaités à traiter (par exemple, Spectres : Hb, HbO2 et mélanine) à l’aide de l’icône XYZ , si nécessaire.</li>
		<li>Après avoir confirmé les paramètres ajustés, cliquez sur Start Spectral Unmixing pour que le démixage spectral progresse. Une barre de menus de traitement s’affiche, affichant la progression de l’opération. REMARQUE: Divers ajustements de paramètres sont possibles pendant le démixage spectral, et plusieurs méthodes de démélange sont disponibles. Dans ce protocole, la méthode de régression linéaire est utilisée comme norme pour démélanger Hb, HbO2 et mélanine.</li>
	</ol></li>
	<li>Accédez à l’onglet Visualisation et analyse . Cliquez sur une analyse activée pour afficher toutes les informations sur le sujet et les commentaires introduits à l’étape 1.1 (Figure supplémentaire 5). REMARQUE: Plusieurs analyses peuvent être visualisées en parallèle.<ol><li>Appuyez sur le bouton + pour créer une analyse à balayage multiple. Dans cette fenêtre, introduisez une vue à balayage multiple et appuyez sur le bouton Enregistrer . Après avoir enregistré le nom de la vue, un nouveau tableau de bord s’affiche, y compris tous les scans de l’étude analysée.</li>
		<li>Sélectionnez chaque analyse souhaitée à ajouter (chacune) à la vue d’analyse enregistrée. Ajoutez des analyses supplémentaires dans l’icône du coin supérieur gauche et elles s’afficheront automatiquement dans la vue Analyse.</li>
	</ol></li>
	<li>Dans la vue d’analyse, définissez des tables de choix de couleurs appropriées pour préparer l’image à l’analyse. Cliquez sur Plus d’options de contrôle d’image dans la barre de menus supérieure et activez l’icône Projection d’intensité maximale . Attribuez des couleurs aux calques en appuyant sur l’icône disponible dans le coin inférieur droit de l’affichage de l’image, à côté de l’affichage de l’image 2D+.</li>
	<li>Sélectionnez Plus pour modifier les couleurs de toutes les chaînes simultanément. Ce menu affiche tous les chromophores non mélangés et permet la sélection de plusieurs couches pour l’affichage. REMARQUE: Déplacer la souris sur les icônes du logiciel affiche leur nom en gris comme affiché dans le protocole.</li>
	<li>Ajustez l’intensité des couleurs de chaque calque avec les outils disponibles en bas à gauche de l’écran. REMARQUE: Le réglage avec interpolation min/max pour chaque canal donne généralement de bons résultats.</li>
</ol>4. Analyse de la région d’intérêt (ROI)
REMARQUE : La sélection d’une région d’intérêt (ROI) est obligatoire pour l’analyse des données.
<ol><li>Identifiez le ROI à analyser. Entourez le retour sur investissement avec les formes disponibles (dans la barre de menus) dans l’image XY tout en traçant le même retour sur investissement dans les vues orthogonales disponibles dans les axes XZ et YZ (Figure supplémentaire 6). REMARQUE : Une forme de polygone a été utilisée pour l’analyse du retour sur investissement actuel.<ol><li>Suivez la forme ROI dans les axes XZ et YZ restants (exemple de la figure 2) tout en plaçant plusieurs couches de polygones avec la fonction Ajouter une interpolation et Supprimer des sous-régions . Les données peuvent être tracées après avoir défini/sélectionné le retour sur investissement souhaité.</li>
		<li>Appuyez sur l’icône Importer la région d’intérêt pour la quantification et observez la composante multispectrale affichée sur le côté droit de l’écran comme un détail graphique du retour sur investissement sélectionné.</li>
		<li>Exportez les données ROI en appuyant sur l’icône Excel en bas de la vue graphique des données ROI. L’ensemble du paquet de données de toutes les régions est exporté sous forme de paquet vers une feuille de calcul pour une analyse ultérieure. La figure 3 montre les données d’un participant qui s’est soumis à un brassard de pression gonflé à 200 mmHg et le système vasculaire a été analysé par rapport à l’état de repos vasculaire à 0 mmHg.</li>
	</ol></li>
	<li>Quantifier plusieurs objets ROI simultanément en suivant les étapes 4.1-4.1.3.</li>
	<li>Exportez des images à partir du même menu que les fichiers TIFF avec toutes les données intégrées et le contour du retour sur investissement intégré (Figure 2).</li>
</ol>

<ol><li>Iskander-Rizk, S., vander Steen, A. F. W., van Soest, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoacoustic+imaging+for+guidance+of+interventions+in+cardiovascular+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Physics+in+Medicine+and+Biology%22%5BJournal%5D)">Photoacoustic imaging for guidance of interventions in cardiovascular medicine.</a> Physics in Medicine and Biology. 64 (16), (2019).</li>
<li>Cakmak, H. A., Demir, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA+and+cardiovascular+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Balkan+Medical+Journal%22%5BJournal%5D)">MicroRNA and cardiovascular diseases.</a> Balkan Medical Journal. 37 (2), 60-71 (2020).</li>
<li>Li, Z., Gupte, A. A., Zhang, A., Hamilton, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pet+imaging+and+its+application+in+cardiovascular+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Methodist+DeBakey+Cardiovascular+Journal%22%5BJournal%5D)">Pet imaging and its application in cardiovascular diseases.</a> Methodist DeBakey Cardiovascular Journal. 13 (1), 29-33 (2017).</li>
<li>Karlas, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+optoacoustics%3A+From+mice+to+men+-+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Photoacoustics%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular optoacoustics: From mice to men - A review.</a> Photoacoustics. 14, 19-30 (2019).</li>
<li>MacRitchie, N., Noonan, J., Guzik, T. J., Maffia, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+imaging+of+cardiovascular+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Molecular imaging of cardiovascular inflammation.</a> British Journal of Pharmacology. 178 (21), 4216-4245 (2021).</li>
<li>Granja, T., Andrade, S., Rodrigues, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optoaccoustic+tomography+-+good+news+for+microcirculatory+research%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+and+Biopharmaceutical+Research%22%5BJournal%5D)">Optoaccoustic tomography - good news for microcirculatory research.</a> Biomedical and Biopharmaceutical Research. 18 (2), 1-13 (2022).</li>
<li>Tan, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total-body+PET%2FCT%3A+Current+applications+and+future+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Roentgenology%22%5BJournal%5D)">Total-body PET/CT: Current applications and future perspectives.</a> American Journal of Roentgenology. 215 (2), 325-337 (2020).</li>
<li>Masthoff, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multispectral+optoacoustic+tomography+of+systemic+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biophotonics%22%5BJournal%5D)">Multispectral optoacoustic tomography of systemic sclerosis.</a> Journal of Biophotonics. 11 (11), 201800155(2018).</li>
<li>Hu, S., Wang, L. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoacoustic+imaging+and+characterization+of+the+microvasculature%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Photoacoustic imaging and characterization of the microvasculature.</a> Journal of Biomedical Optics. 15 (1), 011101(2010).</li>
<li>Wu, M., Awasthi, N., Rad, N. M., Pluim, J. P. W., Lopata, R. G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+ultrasound+and+photoacoustic+imaging+in+cardiology%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Advanced ultrasound and photoacoustic imaging in cardiology.</a> Sensors (Basel). 21 (23), 7947(2021).</li>
<li>Yang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+ultrasound+priors+in+optoacoustic+reconstruction%3A+Improving+clinical+vascular+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Photoacoustics%22%5BJournal%5D)">Soft ultrasound priors in optoacoustic reconstruction: Improving clinical vascular imaging.</a> Photoacoustics. 19, 100172(2020).</li>
<li>Dean-Ben, X. L., Gottschalk, S., Mc Larney, B., Shoham, S., Razansky, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+optoacoustic+methods+for+multiscale+imaging+of+in+vivo+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Society+Reviews%22%5BJournal%5D)">Advanced optoacoustic methods for multiscale imaging of in vivo dynamics.</a> Chemical Society Reviews. 46 (8), 2158-2198 (2017).</li>
<li>World Medical Association. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((World+Medical+Association+Declaration+of+Helsinki%3A+ethical+principles+for+medical+research+involving+human+subjects%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">World Medical Association Declaration of Helsinki: ethical principles for medical research involving human subjects.</a> JAMA. 310 (20), 2191-2194 (2013).</li>
</ol>

Les auteurs ne signalent aucun conflit d’intérêts.

Ce protocole met l’accent sur les étapes de travail considérées comme des exigences pratiques pour faire fonctionner ce nouvel instrument d’imagerie optoacoustique, du positionnement adéquat (participant, sonde) nécessaire à la stabilisation de la sonde 3D à l’acquisition d’images, à la sélection du retour sur investissement, en passant par la reconstruction et l’analyse d’images.
L’approche expérimentale proposée, utilisant des acquisitions « instantanées » et des images obtenues dans des con...

Les maladies cardiovasculaires sont les principales causes récurrentes de décès dans le monde et représentent un fardeau énorme pour tout système de santé 1,2. La technologie a grandement contribué à l’élargissement de notre compréhension de la physiopathologie cardiaque et vasculaire fondamentale, en fournissant des outils de diagnostic plus précis et la possibilité d’une détection précoce de la maladie et d’une prise en charge plus efficace. Les techniques d’imagerie offrent la possibilité de mesurer non seulement la performance cardiaque et des principaux vaisseaux, mais aussi, à une échelle beaucoup plus petite, de calculer la densité capillaire, la perfusion et le volume locaux et le dysfonctionnement endothélial, entre autres caractéristiques. Ces technologies ont offert les premières perspectives quantitatives en biologie vasculaire avec une application clinique directe. Les changements dans la densité capillaire, la réduction de la perfusion locale ou l’occlusion correspondent probablement à une condition ischémique, ce qui contribue à expliquer le rôle croissant de l’imagerie, devenant un outil indispensable dans la recherche et la pratique cardiovasculaires 3,4,5.
Au cours des dernières années, l’imagerie fonctionnelle a constamment donné le ton en matière d’innovation technologique, avec l’échographie (US), la spectroscopie proche infrarouge (NIRS), la tomographie par émission de positrons (TEP), la tomodensitométrie (TDM) et l’imagerie par résonance magnétique (IRM) comme exemples bien connus. Cependant, de multiples préoccupations limitent leur application, du coût et de la sécurité des patients (ainsi que du confort) au contraste et à la résolutionde l’image 6,7. La tomographie optoacoustique (OT) a récemment émergé comme une nouvelle direction dans la recherche vasculaire optique. Cette technologie, centrée sur la détection des ondes ultrasonores générées par la dilatation thermoélastique du tissu impacté par des impulsions laser ultracourtes, est connue depuis quelques temps 6,8. Cette réaction physique de développement thermique et d’expansion tissulaire évoque un signal acoustique détecté par un transducteur à ultrasons. L’utilisation d’impulsions lumineuses du visible au proche infrarouge et l’absence d’un signal de fond acoustique améliorent la profondeur de résolution. Le contraste détecté résulte des chromophores les plus importants présents (hémoglobine ou mélanine). Par rapport à d’autres technologies, l’OT présente les avantages suivants : (1) ne nécessitant aucun contraste (imagerie sans étiquette), (2) un meilleur contraste et une meilleure résolution avec moins d’artefacts que l’échographie, et (3) un prix inférieur, une acquisition plus rapide et une facilité d’utilisation 6,9,10,11.
La tomographie optoacoustique multispectrale (MSOT) fait partie de la génération la plus récente d’instruments OT. Construite avec un oscillateur paramétrique optique accordable (OPO) pompé par un laser Nd:YAG fournissant des impulsions d’excitation, une image 3D est acquise par des signaux résolus dans le temps détectés à partir d’impulsions d’excitation ultrasonores à haute fréquence à des longueurs d’onde de 680 nm à 980 nm avec un taux de répétition allant jusqu’à 50 Hz12. La plateforme d’imagerie optoacoustique permet de quantifier différents chromophores en profondeur (jusqu’à 15 mm). Des variables telles que HbO2, Hb et mélanine sont facilement accessibles. D’autres variables d’intérêt, telles que l’hémoglobine oxygénée maximale (Max HbO2) et l’hémoglobine désoxygénée (Max Hb), sont également disponibles. Les algorithmes de reconstruction du logiciel du fabricant permettent de calculer d’autres variables telles que la densité vasculaire (μVu), la distance moyenne inter-unités (ζAd) et le volume capillaire (mm3).
La présente étude explore les aspects opérationnels essentiels de ce nouveau système afin de mieux comprendre ses aspects pratiques et ses applications potentielles dans la recherche préclinique cardiovasculaire.

<table><tbody><tr><td>Manchette</td><td>PIC</td><td>107001</td><td></td></tr><tr><td>Rideaux</td><td>Pajunk</td><td>021151-1501</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol 70 %</td><td>Sigma Aldrich</td><td>EX0281</td><td></td></tr><tr><td>Gogless</td><td>Univet</td><td>559G.00.00.201</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Amoos</td><td>5601856202331.00</td><td></td></tr><tr><td>MSOT</td><td>iThera</td><td>MSOTAbras</td><td></td></tr><tr><td>stabilisateur</td><td>ARTICLE</td><td></td><td>Auto-conçu et assemblé</td></tr><tr><td>Gel à ultrasons</td><td>Parker Laboratories</td><td>308</td><td></td></tr><tr><td>Crème d’épilation à la cire</td><td>Veet</td><td>kkdg08hagd</td><td></td></tr></tbody></table>

tomographie optoacoustique multispectrale pour l’imagerie fonctionnelle en recherche vasculaire

Multispectral Optoacoustic Tomography for Functional Imaging in Vascular Research

L’insuffisance microcirculatoire a été reconnue dans divers processus pathologiques, sous-jacent à ce thème croissant dans la recherche vasculaire. Ces dernières années, le développement de systèmes d’imagerie en direct a donné le ton (analytique) à la recherche fondamentale et clinique, dans le but de créer de nouveaux instruments capables de fournir des critères d’évaluation quantifiables en temps réel présentant un intérêt et une application cliniques. La spectroscopie proche infrarouge (NIRS), la tomographie par émission de positrons (TEP), la tomodensitométrie (TDM) et l’imagerie par résonance magnétique (IRM) sont disponibles, entre autres techniques, mais le coût, la résolution d’image et le contraste réduit sont reconnus comme des défis courants. La tomographie optoacoustique (OT) offre une nouvelle perspective sur l’imagerie fonctionnelle vasculaire, combinant des capacités d’absorption optique et de résolution spatiale de pointe (de la résolution optique micrométrique à la résolution acoustique millimétrique) avec la profondeur des tissus. Dans cette étude, nous avons testé l’applicabilité de la tomographie optoacoustique multispectrale (MSOT) pour l’imagerie fonctionnelle. Le système utilise un oscillateur paramétrique optique accordable (OPO) pompé par un laser Nd: YAG, fournissant des impulsions d’excitation détectées par une sonde 3D à des longueurs d’onde de 680 nm à 980 nm. Les images obtenues à partir de l’avant-bras humain ont été reconstruites à l’aide d’un algorithme spécifique (fourni dans le logiciel du fabricant) basé sur la réponse de chromophores spécifiques. L’hémoglobine oxygénée maximale (Max HbO 2) et l’hémoglobine désoxygénée (Max Hb), l’hémoglobine totale (HbT) et la saturation moyenne en oxygène (mSO2) à la densité vasculaire (μVu), aux distances moyennes inter-unités (ζAd) et au volume sanguin capillaire (mm3) peuvent être mesurées à l’aide de ce système. Le potentiel d’applicabilité trouvé avec ce système OT est pertinent. Les développements logiciels en cours amélioreront sûrement l’utilité de ce système d’imagerie.

Les données fournies par l’imagerie optoacoustique peuvent être analysées dans des images d’exportation post-traitées (Figure 2) et des données tracées (Figure 3). Le but ici était d’introduire le fonctionnement de l’imagerie fonctionnelle optoacoustique et d’explorer son application dans la recherche vasculaire plus communément connue. Pour cela, nous avons comparé les images acquises au repos et après une occlusion de 200 mmHg d’une artère d’alimentation majeu...

Le présent protocole décrit l’acquisition d’images optoacoustiques multispectrales du système vasculaire cutané humain in vivo . Il s’agit notamment de la quantification de l’hémoglobine et de la mélanine, considérées comme des chromophores d’intérêt pour l’analyse fonctionnelle.

Tomographie optoacoustique multispectrale pour l’imagerie fonctionnelle en recherche vasculaire

Microcirculatory impairment has been recognized in various disease processes, underlying this growing theme within vascular research. In recent years, the ...

Ce protocole utilisant la technologie optoacoustique nous permet d’évaluer l’état vasculaire d’un patient en temps réel grâce à l’imagerie fonctionnelle. Et nous pouvons explorer les scans d’images 3D collectés dans des conditions statiques ou dynamiques. L’intérêt potentiel d’une telle approche est énorme et a un impact sur de nombreux domaines liés à la santé.Le système fournit une visualisation in vivo de la structure vasculaire de la peau à différentes profondeurs. Cela signifie que nous pouvons accéder à la fois au plexus cutané, le superficiel et le plus profond, bien que cela nécessite une expérience répétée de la part de l’opérateur. Avec une imagerie détaillée et vraiment fonctionnelle, la détection précoce et la caractérisation de la déficience microvasculaire sont possibles et peuvent être intégrées comme outil de diagnostic ou protocole de suivi pour évaluer la progression de la maladie et / ou les effets du traitement. Pour charger les informations sur le sujet, commencez par allumer l’équipement d’imagerie optoacoustique.Pendant que l’équipement se réchauffe, présentez les informations sur le participant. La fenêtre de bienvenue principale du logiciel s’ouvre sur la vue d’ensemble de l’analyse. Introduisez les données après avoir cliqué sur ID patient et terminez l’application en appuyant sur Sélectionner.Assurez-vous que le laser est prêt en vérifiant l’écran de l’équipement. Après le temps de préchauffage, la barre d’état laser sur l’écran de l’équipement doit passer de la veille laser. Sélectionnez le préréglage d’acquisition optoacoustique, hémoglobine, oxyhémoglobine et mélanine, dans l’écran d’examen.Appuyez sur la pédale de l’interrupteur laser et attendez l’auto-vérification de la puissance laser. Après quelques secondes, une fenêtre apparaît avec l’état actuel du laser avec un rapport de contrôle Libérez cette fenêtre en appuyant sur le bouton OK disponible. Acclimatez le participant à l’environnement du laboratoire, en choisissant une position confortable pour minimiser les mouvements inutiles.Assurez-vous que la zone à scanner est préalablement nettoyée. Appliquez une fine couche de gel à ultrasons sur la tasse 3D. La stabilisation de l’image est obtenue en maintenant la coupe 3D dans la position d’imagerie souhaitée à l’avant-bras volontaire.Après avoir placé la tasse 3D sur la zone d’intérêt, verrouillez partiellement le verrouillage du bras stabilisateur pour l’acquisition d’images. Sélectionnez la zone anatomique pour l’acquisition d’images de base. À des fins exploratoires, l’avant-bras ventral est recommandé.Appliquez une pression minimale sur le site d’imagerie afin que les lectures de pression plus élevées puissent être correctement acquises. Lorsque la stabilité de l’image est maximisée, capturez un instantané de la zone en appuyant sur le bouton Instantané de l’écran tactile. Acquérir l’analyse de contrôle de base.Pour observer la manœuvre d’hyperémie réactive post-occlusive, il est nécessaire d’enregistrer une acquisition de base avec le brassard de pression dégonflé placé dans la zone brachiale souhaitée du bras du volontaire. Après avoir suivi les étapes précédentes, maintenez enfoncée la pédale de pédale laser pour une acquisition vidéo continue et faites attention au bouton Afficher sur l’écran tactile. L’image stabilisée apparaîtra.Appuyez sur Enregistrer pour commencer l’enregistrement d’images en direct. Des mesures dynamiques sont nécessaires pour observer la manœuvre d’hyperémie réactive post-occlusive. Gonflez le brassard avec une pression suprasystolique et procédez à l’acquisition d’images du système vasculaire sous pression.Pour acquérir une vidéo afin d’évaluer l’impact de la libération de pression sur le système vasculaire imagé, ouvrez la soupape de surpression tout en acquérant la vidéo. Suivez l’image en direct à l’écran. Arrêtez l’enregistrement en appuyant sur le bouton Arrêter.La plate-forme d’imagerie optoacoustique arrêtera l’enregistrement et rendra automatiquement la vidéo en mode Aperçu. Dans le plan XY, le signal de mélanine peut également être observé dans les plans YZ et XZ, indiquant la limite de l’épiderme. L’occlusion de l’artère brachiale provoque une certaine stase dans les plus gros vaisseaux, visualisée par la sonde OT.En conséquence, nous avons détecté une augmentation des signaux globaux d’hémoglobine réduite et oxydée sous la forme d’une augmentation des couleurs bleues et rouges aux axes XY, YZ et XZ. Le signal de mélanine confirme le bon démélange spectral car il reste constant pendant l’acquisition d’images d’hyperémie réactive post-occlusive. Contrairement à l’oxyhémoglobine enregistrée, les signaux d’hémoglobine et d’hémoglobine qui changent avec la pression du brassard change avec le temps. Il est essentiel de manipuler correctement la sonde 3D pour obtenir des images de bonne qualité.La maîtrise de la manipulation de la sonde est cruciale pour une acquisition et une analyse correctes des données. Ici, nous montrons comment utiliser le système dans des conditions statiques et dynamiques. Dans ce cas, nous avons utilisé la manœuvre d’hyperémie réactive post-occlusive, qui est un challenger classique pour explorer les mécanismes adaptatifs locaux.Nous pouvons appliquer les mêmes stratégies avec différents positionnements, en mesurant dans d’autres sites du corps, et appliquer d’autres défis, bien sûr. Les méthodologies établies, telles que la télémétrie Doppler laser ou la photopléthysmographie, bien que très utiles, sont des mesures ponctuelles fournissant des informations limitées et indiscriminées partiellement liées à la perfusion. L’information fonctionnelle obtenue avec ce système n’est pas comparable de la zone d’intérêt à la profondeur et aux variables fournies.Les mesures ici sont effectuées de manière non invasive in vivo et en temps réel. Le potentiel de recherche et de diagnostic avec application clinique est énorme.

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Bioengineering

Bioingénierie

Un système bi-mode d'imagerie a été développé pour les non-contact avec l'évaluation de l'oxygénation des tissus cutanés et la fonction vasculaire.

Double mode d&#39;imagerie de l&#39;oxygénation des tissus cutanés et la fonction vasculaire

Optique résolution microscopie photoacoustique (OR-PAM) est une technologie émergente capable d'imagerie d'absorption optique des...

Tridimensionnelle optique résolution microscopie photoacoustique

Photoacoustique ophtalmologie (PAOM), une modalité d'imagerie optique basée sur l'absorption, fournit l'évaluation complémentaire de la rétine aux technologies actuellement disponibles imagerie ophtalmique. Nous rapportons l'aide de PAOM intégré domaine spectral tomographie par cohérence optique (SD-OCT) pour une utilisation simultanée imagerie rétinienne chez le rat multimodal.

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Microscopie photoacoustique à résolution acoustique et optique à commutation commutable pour<em&gt; In vivo</em&gt; Imagerie vasculaire de sang de petit animal

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Tomographie optoacoustique multispectrale pour l’imagerie fonctionnelle en recherche vasculaire

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