Name: Obtention d’un rétablissement rapide des poumons combinée à une perfusion régionale normamique abdominale dans le cadre d’un don contrôlé après une mort circulatoire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 54 s
Description: Découvrez une technique de récupération pulmonaire rapide par refroidissement combinée à une perfusion régionale normothermique abdominale pour le prélèvement d'organes chez les donneurs en asystole contrôlée.

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Les auteurs remercient tous les membres impliqués dans le programme de transplantation pulmonaire de l’hôpital universitaire Marqués de Valdecilla.

Ces interventions sont effectuées au chevet du patient dans l’unité de soins intensifs (USI). Ce protocole suit les directives du comité d’éthique de l’hôpital universitaire Marqués de Valdecilla et est conforme au cadre juridique espagnol concernant les procédures de don. Le consentement éclairé a été obtenu du plus proche parent pour l’enregistrement vidéo des procédures de recherche. La cDCD est envisagée chez les patients présentant des lésions cérébrales catastrophiques, un cœur en phase terminale ou une maladie neurodégénérative pour lesquels la décision d’arrêter le traitement de maintien de la vie (WSLT) a été prise. Les critères d’exclusion et l’évaluation pulmonaire sont les mêmes que pour les donneurs de mort cérébrale (tableau 1).
1. Interventions pré-mortem chez le donneur
<ol><li>Héparinisation : administrer par voie intraveineuse un bolus de 300 à 500 UI/kg d’héparine au donneur.</li>
	<li>Canulation REMARQUE: La canulation est effectuée par le chirurgien cardiovasculaire et est une procédure stérile.<ol><li>Préparez une table d’instrumentation stérile, avec tout le matériel nécessaire (kit ECMO et outils chirurgicaux), ainsi que le système d’électrocautérisation et d’aspiration.</li>
		<li>Préparez un champ chirurgical sur l’aine sélectionnée avec une solution désinfectante et des champs stériles.</li>
		<li>Faites une incision longitudinale de 8 à 10 cm avec une lame n ° 23, en contrôlant le saignement avec l’électrocautérisation et les clips Liga. Séparez les bords de la plaie avec un rétracteur et procédez à la dissection pour exposer l’artère fémorale et la veine. Embrassez les deux vaisseaux avec des boucles de vaisseaux pour contrôler le saignement.</li>
		<li>Choisir les diamètres de canule appropriés en fonction de la taille des récipients et suffisamment grands pour fournir un débit suffisant pour la perfusion des organes et pour éviter les problèmes d’étiage (généralement 21 français).</li>
		<li>Canuler la veine fémorale, en introduisant d’abord un fil métallique comme guide, suivi de dilatateurs progressifs pour enfin introduire la canule. Si un saignement est observé, effectuer une suture de cordon de bourse péri canule en polypropylène 4-0 pour le contrôle.</li>
		<li>Procédez de la même manière avec l’artère fémorale, en utilisant dans ce cas une canule à double lumière.</li>
		<li>Coupez un morceau de 10 cm de la ligne d’entrée ECMO. Insérez un connecteur droit muni d’un verrou Luer muni d’un robinet d’arrêt à trois voies assemblé à une extrémité de la pièce et reliez l’autre extrémité de la pièce à la canule artérielle (Figure 1).</li>
		<li>Purger les lignes ECMO. Utilisez une poire d’irrigation avec une solution saline pour remplir les lignes tout en vous connectant avec des canules. Connectez la ligne ECMO de sortie à la canule veineuse et la ligne ECMO d’entrée au connecteur droit avec le robinet d’arrêt à trois voies préalablement assemblé à la canule artérielle. Le robinet d’arrêt à trois voies peut être utilisé pour purger le système (Figure 2).</li>
		<li>Maintenez les lignes ECMO serrées. Fixez les deux canules à l’aine avec des sutures en soie de taille 1 pour éviter tout déplacement pendant le transfert.</li>
		<li>Placez une conduite de pression surveillée dans la canule de l’artère fémorale et dans l’artère radiale gauche du donneur.</li>
	</ol></li>
	<li>Mise en place d’un ballonnet d’occlusion aortique<ol><li>Prenons, à titre de référence, la distance entre le processus xiphoïde du donneur et l’extrémité distale de la canule artérielle et déterminer la longueur du cathéter à insérer pour atteindre l’aorte descendante thoracique. Placez une marque de référence dans le ballon avec une suture en soie ou un marqueur.</li>
		<li>Introduisez un guide métallique à travers la lumière libre de la canule de l’artère fémorale. Continuez avec le cathéter de la même manière, guidé par le fil métallique, et introduisez-le jusqu’à la marque référencée.</li>
		<li>Confirmer la position correcte du ballonnet d’occlusion à l’aide d’une radiographie thoracique portable ou d’une fluoroscopie (vérifier les marques radio-opaques du cathéter au-dessus du diaphragme).</li>
		<li>Vérifiez le bon fonctionnement du ballonnet d’occlusion en le remplissant avec une seringue à cône de 50 cc avec une solution saline pendant 4-5 s seulement, en confirmant que la pression artérielle de la canule fémorale disparaît tandis que la pression de l’artère radiale gauche est maintenue (Figure 3).</li>
		<li>Lorsque le pouls fémoral disparaît, notez le volume de remplissage comme volume minimum à utiliser pour bloquer l’aorte thoracique pendant la PNRA. Si un écoulement est détecté dans la canule fémorale, vérifier à nouveau le positionnement ou le remplissage correct.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Arrêt du traitement de maintien de la vie (WLST) et déclaration de décès
<ol><li>Transférez le donneur connecté au système ECMO dans la salle d’opération. Préparez et drapez le donneur de manière stérile.</li>
	<li>Préparez et préparez les solutions et les lignes de préservation pulmonaire et abdominale. Gardez l’équipe chirurgicale nettoyée et stérile et prête dans la salle d’opération adjacente.</li>
	<li>Utilisez un chronomètre pour enregistrer les temps ischémiques chauds. REMARQUE: Le temps ischémique chaud fonctionnel (FWIT), défini comme le temps écoulé entre la pression artérielle systolique <60 mmHg et l’ANRP, est commencé pour les greffes abdominales et l’administration d’une solution de préservation pulmonaire par l’artère pulmonaire pour les poumons (une période de 5 minutes sans contact est incluse). Des limites supérieures de 30 min pour le foie et le pancréas et de 60 min pour les reins et les poumons sont envisagées.</li>
	<li>Permettre aux proches d’être avec leur proche pendant la WLST jusqu’à la déclaration de décès.</li>
	<li>Lancez WLST. L’extubation est facultative selon les souhaits du parent. Après la déclaration de décès, conduisez les proches hors de la zone chirurgicale.</li>
	<li>Après la période de 5 minutes sans contact, remplissez le ballon d’occlusion aortique avec le volume minimum préalablement déterminé qui assure la descente du bloc aortique thoracique.</li>
	<li>Si la pression de l’artère radiale gauche disparaît, initier l’ANRP. La pression de la canule fémorale se transformera en un flux continu non pulsatile fourni par l’ECMO.</li>
	<li>Si le débit dans la ligne radiale augmente parallèlement à la pression fémorale, arrêtez la PNRA et vérifiez la position correcte et le remplissage ou serrez l’aorte thoracique après une autre période de 5 minutes sans contact avant de rétablir la PRNA. La PRNA n’est pas commencée tant que l’occlusion aortique n’est pas complètement confirmée. REMARQUE: WLST peut être effectué dans la salle d’opération ou dans l’unité de soins intensifs selon la préférence des parents et des proches. S’il est effectué dans l’unité de soins intensifs, après la période de 5 minutes sans contact, le ballon est rempli et la fonction vérifiée, l’ARNP est initié et le donneur est transféré dans la salle d’opération où l’équipe chirurgicale est prête à commencer. Si un dysfonctionnement du ballonnet d’occlusion est détecté, l’ARNP est arrêté jusqu’à ce que l’aorte thoracique soit serrée dans la salle d’opération.</li>
</ol>3. Récupération pulmonaire et technique d’approvisionnement
REMARQUE : Les techniques de récupération pulmonaire et d’approvisionnement sont effectuées par le chirurgien thoracique et le coordonnateur de la transplantation (figure 4).
<ol><li>Effectuer une sternotomie moyenne: procéder à une incision cutanée verticale médiane de l’encoche suprasternale à la pointe du processus xiphoïde. Étendre l’incision au fascia pectoral et au périoste sternal par électrocautérisation.</li>
	<li>Divisez le ligament interclaviculaire et créez un plan par dissection digitale derrière le sternum, à la fois au niveau de l’encoche suprasternale et du processus xiphoïde. Divisez le sternum avec une scie électrique. Placez un rétracteur sternal et ouvrez-le soigneusement, en libérant le péricarde de la surface postérieure du sternum. Contrôlez tout point de saignement par électrocautérisation.</li>
	<li>Dans le même temps, réintuber et ventiler le donneur avec 100% d’oxygène et une pression expiratoire positive de 5 cm H2O.</li>
	<li>Si la bronchoscopie n’a pas été réalisée pendant le séjour du donneur à l’USI en tant que manœuvre critique de prise en charge du patient, elle peut être effectuée à ce stade par le deuxième chirurgien de l’équipe thoracique. Pour la bronchoscopie, introduisez un bronchoscope flexible à travers le tube endotrachéal et évaluez l’anatomie, l’aspect des muqueuses et les sécrétions claires.</li>
	<li>Ouvrez les deux cavités pleurales par incisions longitudinales dans la plèvre médiastinale.</li>
	<li>S’il y a des doutes ou des problèmes concernant un bloc adéquat des vaisseaux supra-aortiques avec le ballonnet d’occlusion, rétractez le poumon gauche médialement pour exposer et serrer l’aorte thoracique aussi bas que possible en vision directe.</li>
	<li>Examiner les poumons en effectuant une évaluation visuelle et palpatoire. Inspecter les bulles, les contusions, l’atélectasie, la pneumonie et les tumeurs occultes. Administrer 1 L de solution saline à 4 °C dans les deux cavités pleurales.</li>
	<li>Réduire la fraction inspirée d’oxygène à 50%. Ouvrez le péricarde avec une incision en T inversé. Rétractez latéralement les bords du péricarde avec 2-0 sutures de soie fixées à la peau avec des pinces anti-moustiques pour exposer les structures cardiaques.</li>
	<li>Placez une suture de corde de sac à main en polypropylène 4-0 sur l’artère pulmonaire principale sous la bifurcation. Effectuez une artériotomie avec une lame n ° 11 et dilatez avec une pince anti-moustique incurvée.</li>
	<li>Canuler l’artère pulmonaire (PA) avec une canule droite à angle droit serrée à l’extrémité. Connectez la canule artérielle pulmonaire à la conduite du système d’irrigation, en assemblant un connecteur droit avec un verrou Luer et un robinet d’arrêt à trois voies. Connectez le système d’irrigation à la solution de préservation pulmonaire. Purgez les lignes.</li>
	<li>Commencez à rincer 50 à 60 mL/kg de solution de conservation à froid de façon antégrade. Commencez à rincer 500 μg de prostaglandine diluée dans 100 mL de solution saline en même temps à travers le robinet d’arrêt à trois voies.</li>
	<li>Ouvrez directement l’appendice auriculaire gauche ou l’oreillette gauche pour permettre un drainage libre. Si des zones d’atélectasie sont trouvées, recrutez-les avec de courtes prises inspiratoires à une pression de 25-30 cm H2O.</li>
	<li>Une fois la conservation terminée, retirez la canule PA. Annoncez au reste de l’équipe l’intention de serrer la veine cava et de commencer l’excision cardiaque.</li>
	<li>Administrer 1-1,2 L de solution saline au donneur avant de serrer les veines de cava pour éviter une diminution du débit de la pompe due à la perte de retour veineux sanguin du thorax.</li>
	<li>Placez une pince croisée dans la veine inférieure du cava, en vous assurant qu’il y a suffisamment de moignon pour le foie. Liférer et diviser la veine cava inférieure avec le brin de soie n ° 3.</li>
	<li>Attacher et diviser la veine cava supérieure caudale à azygote avec le brin de soie n ° 3. Fixez le moignon distal avec une pince.</li>
	<li>Laissez les pinces rester dans le champ chirurgical, en prenant soin de ne pas les retirer par accident, sinon l’ANRP sera compromise. Excise le reste du cœur d’une manière standard.</li>
	<li>Après l’excision cardiaque, retirez les poumons en suivant la même procédure qu’avec les donneurs de mort cérébrale, comme décrit ci-dessous.<ol><li>Divisez les ligaments pulmonaires inférieurs, ouvrez le péricarde postérieur et exposez l’œsophage. Libérer les attaches médiastinales postérieures du poumon avec dissection émoussée, assurant une hémostase prudente.</li>
		<li>Disséquer les artères pulmonaires loin de l’aorte. Isolez la trachée au-dessus de la carène et passez une agrafeuse TA autour.</li>
		<li>Gonfler les poumons à 50%-60% du volume courant avant de retirer le tube endotrachéal et diviser la trachée. Retirez tout accessoire restant et extrayez le bloc pulmonaire du donneur.</li>
	</ol></li>
	<li>Vérifiez soigneusement la cavité thoracique pour détecter tout point de saignement, en particulier la ligature de la veine azygos et la cautérisation des vaisseaux ou des capillaires du médiastin postérieur, des structures paratrachéales et des tissus environnants. Une perte de sang continue peut diminuer le débit de la pompe.</li>
	<li>Prenez le bloc pulmonaire à la table arrière et procédez à la chirurgie de banc. Séparez les poumons gauche et droit.</li>
	<li>Avec un cathéter de Foley avec une ampoule gonflée à l’extrémité, effectuer séquentiellement, à travers chaque veine pulmonaire, un rinçage rétrograde avec 0,2-0,25 L de solution de conservation à froid.</li>
	<li>Emballer chaque poumon dans un premier sac stérile contenant uniquement une solution de conservation au froid, entouré de deux autres sacs en plastique, et conserver dans un réfrigérateur portatif contenant une solution saline glacée à 4 °C.</li>
	<li>Lorsqu’un système de perfusion pulmonaire ex vivo est indiqué, suivez les étapes ci-dessous pour les connexions de l’appareil à l’artère pulmonaire et à la trachée pendant l’obtention pulmonaire.<ol><li>Préserver le tronc principal de l’artère pulmonaire et pas seulement sa bifurcation lors de l’approvisionnement.</li>
		<li>Si ce n’est pas possible, prenez un morceau de 3-4 cm de l’aorte pour le suturer postérieurement à la bifurcation de l’artère pulmonaire pour remplacer le tronc de l’artère pulmonaire.</li>
		<li>Répartir la trachée de quatre à cinq anneaux au-dessus de la carène pour avoir une longueur suffisante pour l’intubation.</li>
		<li>Gardez et stockez les poumons en bloc.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Perfusion régionale normothermique abdominale
<ol><li>Lancez l’ANRP après avoir rempli le ballonnet d’occlusion aortique et vérifié le bon fonctionnement.</li>
	<li>Fixer les points cibles de surveillance suivants : débit de la pompe = 2-2,5 L/min, pression continue de 60-65 mmHg dans la canule de l’artère fémorale, température = 37 °C, pH = 7,35-7,45, hématocrite >25%.</li>
	<li>Obtenir des échantillons de sang de la canule de l’artère fémorale avec une seringue de 10 ml après le début de l’ANRP et toutes les 30 minutes pour l’analyse biochimique hépatique et rénale, les taux de lactate sérique, les gaz artériels sanguins et les valeurs d’hématocrite. Maintenir l’ARNP pendant au moins 90-120 min.</li>
	<li>Jeter le foie si les valeurs de l’alanine transaminase (ALT) ou de l’aspartate transaminase (AST) sont plus de quatre fois supérieures à la limite normale supérieure pendant la PNRA.</li>
</ol>5. Récupération hépatique et rénale
REMARQUE: La récupération hépatique et rénale est effectuée par le chirurgien hépatique et le chirurgien rénal, respectivement.
<ol><li>Effectuer une laparotomie moyenne: procéder à une incision cutanée verticale médiane le long de la linea alba, du processus xiphoïde (joindre à la sternotomie précédente) au pubis, en courbant l’incision autour de l’ombilic. Utilisez l’électrocautérisation pour disséquer la graisse sous-cutanée et les couches fasciales superficielles jusqu’à la gaine droite.</li>
	<li>Disséquer à travers les composants antérieur et postérieur de la gaine droite et ouvrir le péritoine pour accéder à la cavité péritonéale. Élargissez l’incision en enfonçant les doigts dans le trou créé, en prenant soin de ne pas blesser les structures sous-jacentes. Placez les rétracteurs pour avoir une exposition adéquate de l’abdomen.</li>
	<li>Évaluer la qualité macroscopique des organes abdominaux en effectuant des évaluations visuelles et palpatoires. Une biopsie du foie peut être effectuée si une préoccupation est soulevée, comme avec les donneurs de mort cérébrale.</li>
	<li>Si les valeurs chimiques sont correctes et que l’aspect macroscopique est normal, validez les organes.</li>
	<li>Arrêtez le périphérique ECMO. Rincer la solution de conservation des organes abdominaux via la canule artérielle fémorale et utiliser la canule veineuse fémorale pour l’exsanguination.</li>
	<li>Se procurer des organes abdominaux adaptés à la transplantation d’une manière standard comme dans DBD27,28.</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’il n’y a pas de conflits d’intérêts.

Bien que l’utilisation simultanée de la perfusion à froid pulmonaire avec ARNP dans la cDCD ait été publiée pour la première fois en 2014, très peu d’expériences ont été décrites pour ce25,26,29. De plus, l’utilisation des poumons cDCD, quelle que soit la technique utilisée, reste faible dans la plupart des pays.
Les étapes critiques de ce protocole sont l’utilisation d’interventions pré-mortem; une m...

Le don après mort circulatoire (DCD) a commencé en Espagne avec des donneurs non contrôlés. En 1996, le premier document de consensus national sur le DCD a été publié comme guide pour la pratique du don non contrôlé après une mort circulatoire1 (uDCD), établissant également un moratoire sur le don contrôlé après une mort circulatoire (cDCD). En 2012, un nouveau consensus a émergé établissant la base et le cadre législatif de la pratique de la DCDuM et de la cDCD2. Actuellement, l’Espagne est l’un des pays les plus actifs dans le domaine de la désertification, atteignant le taux de donneurs après décès circulatoire le plus élevé au monde3. Ce type de donateur représentait près de 35% du total des donateurs en 2021 dans le pays, avec une baisse marquée de l’uDCD et des donateurs étant exclusivement cDCD4.
L’obtention d’organes dans la cDCD est généralement effectuée à l’aide de la technique de récupération ultra-rapide5. Après la déclaration de décès et lorsque la période de non-contact est écoulée, une sternotomie et une laparotomie rapides sont effectuées. L’aorte abdominale et l’artère pulmonaire sont canulées et rincées avec des solutions de perfusion froide pour préserver les organes abdominaux et thoraciques, et un refroidissement topique est effectué avant le prélèvement6. Dans cette situation, la cDCD est caractérisée par les conséquences imprévisibles de l’ischémie chaude, après l’arrêt du traitement de maintien de la vie. Les lésions ischémiques pendant cette période d’hypotension agonique et d’hypoxie progressive, suivies de la période de non-contact après l’arrêt cardiaque, sont encore exacerbées par la période ultérieure d’ischémie froide7. Cette combinaison d’ischémie chaude et froide semble être préjudiciable, en particulier aux greffes abdominales 8,9,10, générant plus de réticence chez les professionnels à l’utilisation de ces organes à partir de donneurs de cDCD.
Pour minimiser ces risques, un modèle de préservation in situ , basé sur les expériences antérieures des équipes espagnoles travaillant dans uCDC11, a été développé avec un intérêt croissant. L’utilisation de systèmes d’oxygénation par membrane extracorporelle (ECMO) pour rétablir le flux sanguin après la mort et avant la récupération du greffon peut inverser les déviations métaboliques résultant de l’ischémie et restaurer la physiologie cellulaire12. La perfusion régionale normothermique abdominale (ANRP) peut améliorer la qualité des organes endommagés ischémiques dans cDCD13. La fonction des organes peut être évaluée et améliorée, ce qui permet une meilleure sélection des greffons abdominaux pour la transplantation.
Des expériences multicentriques internationales récentes fournissent des preuves que l’ANRP par rapport à la technique de récupération rapide (RR) aide à surmonter les limitations traditionnelles de la cDCD, à réduire les taux de complications biliaires post-transplantation, à faciliter la transplantation réussie de foies plus âgés et à améliorer la survie du greffon hépatique14,15. Dans les reins, il semble améliorer les résultats à court terme avec une fonction de greffon retardée plus faible et des taux de survie du greffon à 1 anplus élevés 16. Avec ces preuves, l’ANRP dans la cDCD a acquis des avantages par rapport à la technique de récupération rapide pour l’obtention de greffes abdominales et est maintenant appliquée dans plusieurs pays européens et d’autres parties du monde17,18.
L’utilisation de poumons provenant de donneurs de cDCD, cependant, a été rapidement adoptée dans le monde entier. Un temps ischémique chaud fonctionnel pulmonaire allant jusqu’à 60 min ne semble pas affecter la survie19. Au cours de la dernière décennie, plusieurs centres et expériences multi-institutionnelles ont rapporté des résultats après une transplantation pulmonaire à partir de cDCD comparables à ceux de DBD20,21. La technique RR est la méthode de routine pour l’obtention des poumons: les poumons sont refroidis par voie topique et retirés après avoir été rincés avec une solution de conservation à froid22.
Les premières expériences combinant ANRP et RR des poumons dans cDCD ont été rapportées par deux groupes du Royaume-Uni23,24. Des années plus tard, une variante de cette technique ajoutant des interventions pré-mortem a été publiée25. Les résultats présentent cette double technique d’approvisionnement comme sûre et efficace pour les greffes abdominales et thoraciques26. Évidemment, la procédure de don devient plus complexe. Elle nécessite des ressources technologiques et humaines, des capacités organisationnelles suffisantes et a un coût économique plus élevé. Tout cela peut décourager les professionnels de commencer un programme. Le but de cette étude est de présenter un protocole particulièrement axé sur les interventions pré-mortem, la canulation et la mise en place d’un ballonnet d’occlusion aortique, avec des trucs et astuces tirés de l’expérience, et de commenter les différents détails techniques à prendre en compte lors du prélèvement pulmonaire lorsque l’ARNP est utilisé. À l’heure actuelle, au Centre, les donneurs de cDCD sont devenus la principale source de greffes pour la transplantation thoracique et abdominale.

<table><tbody><tr><td>Flacon 5 mL Héparine 1000 UI/mL</td><td>ROVI</td><td></td><td>Pour l’héparinisation du donneur</td></tr><tr><td><fort>KIT ECMO (MATÉRIAUX POUR LA CANULATION)</td><td></td><td></td><td></td>Lignes</tr> de <tr><td>pression artérielle</td><td>BEXEN MEDICAL</td><td>137.15</td><td>Ligne de pression artérielle por artère radiale et canule fémorale</td></tr><tr><td>Ciseaux pansements</td><td>SURGIMEDIC</td><td>BC-881R</td><td>Cisaille pour couper les lignes</td></tr> <tr><td>ECMOCanule veineuse Bio-medicus 21 Fr (7,0 mm) x 27,5 po (69,9 cm)</td><td>MEDTRONIC</td><td>96670-121</td><td>Canule veineuse Solution</td></tr> de <tr><td>clhorhexidine 2 %</td><td></td><td></td> Solution <td>désinfectante</td></tr><tr><td>Dispositif ECMO Maquet Rotaflow</td><td>Maquet, Rasttat, Allemagne</td><td></td><td>Système ECMO</td></tr><tr><td>Poignée électrocautérisée</td><td>DEXTRO</td><td>SW12200</td><td></td></tr><tr><td>EndoReturn Canule artérielle Kit&nbsp ; 21-23F</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>ER21B, ER23B</td><td>Canule artérielle avec une double lumière à connexion ECMO et pour introduire un ballonnet d’oclussion aortique</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 titane medium</td><td>ETHICON</td><td>MCS30</td><td>Ligaclips pour contrôler les saignements lors d’un curage ganglionnaire à l’aine</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 titane small</td><td>ETHICON</td><td>MCS20</td><td>Ligaclips pour contrôler les saignements lors d’un curage ganglionnaire</td></tr> <tr><td>à l’aineKit d’insertion Bio-medicus 180cm</td><td>MEDTRONIC</td><td>96551</td><td>Kit d’insertion pour canules ECMO, avec cathéter, guide-fil métallique et dilatateurs</td></tr><tr><td>Poire d’irrigation</td><td>MEDLINE DYNDE</td><td>20125</td><td>Poire à remplir de sérum physiologique et purger les lignes ECMO au site de connexion avec les canules</td></tr><tr><td>Seringue à cône Luer 50cc</td><td>CARDIONATUR</td><td>60ML</td><td>Seringue remplie de sérum physiologique pour remplir le ballonnet</td></tr> <tr><td>d’occlusionMersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Suture incurvée en soie pour fixation de canules ECMO</td></tr><tr><td>Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>Suture en polypropylène pour cordon de bourse dans les vaisseaux fémoraux ou suture vasculaire</td></tr><tr><td>Prolene 5/0 , 60 cm</td><td>ETHICON</td><td>8325</td><td>Suture en polypropylène pour suture vasculaire</td></tr><tr><td>Prolene 5/0, 90 cm</td><td>ETHICON</td><td>8720</td><td>Suture en polypropylène pour suture vasculaire</td></tr><tr><td>Cathéter à ballonnet pour greffe de stent Reliant&nbsp ; 12F</td><td>Medtronic, Irlande</td><td>AB46</td><td>Ballon d’occlusion aortique introduit par l’artère fémorale. Il est utilisé comme endoclamp</td></tr><tr><td>Lame de scalpel n° 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Lame Scapel n° 23</td><td>INTRAVEN</td><td>150023</td><td></td></tr><tr><td>Tube en silicone</td><td>IBERHOSPITEX</td><td>0027224-P</td><td>Tube en silicone pour connecter le système d’aspiration</td></tr><tr><td>Soie tressée Sofsilk n° 1</td><td>brins COVIDIEN</td><td>L-12</td><td>Mèche de soie pour le contrôle de la ligature ou du saignement</td></tr><tr><td>Soie tressée Sofsilk n° 3 brins</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Fil de soie pour le contrôle de la ligature ou du saignement</td></tr><tr><td>connecteur droit 3/8"x3/8 » avec Luer lock</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0022</td><td>Pièce pour connecter la canule artérielle avec la ligne ECMO et le robinet d’arrêt à trois voies pour la ligne de pression et le prélèvement sanguin</td></tr><tr><td>Pack de coussinets chirurgicaux</td><td>TEXPOL</td><td>146500</td><td></td></tr><tr><td>Agrafeuse chirurgicale</td><td>COVIDIEN</td><td>8886803712</td><td>Agrafeuse pour fermer la plaie chirurgicale</td></tr><tr><td>Robinet d’arrêt à trois voies</td><td>BD CONNECTA</td><td>394501</td><td>Robinet d’arrêt à trois voies pour connecter la canule fartérienne à la conduite de pression</td></tr><tr><td>Boucle vasculaire grande</td><td>MEDLINE</td><td>VLMAXR</td><td>Boucle vasculaire pour embrasser l’artère fémorale et la veine pour le contrôle des saignements.</td></tr><tr><td>Boucle vasculaire</td><td>MEDLINE</td><td>VLMINR</td><td>Boucle vasculaire pour embrasser l’artère fémorale et la veine pour le contrôle des saignements.</td></tr><tr><td>Yankauer terminal d’aspiration 50 V</td><td>DEXTROMEDICA</td><td>349701</td><td>Terminal d’aspiration pour l’aspiration pendant la dissection chirurgicale</td></tr><tr><td>OUTILS CHIRURGICAUX POUR CANULATION</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adson écarteur 20 cm et 33 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince</td><td></td><td></td><td></td>aortique</tr><tr><td>Boyd Scissors 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince à dissection sans mâchoires 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Écarteur Farabeuf petits</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ciseaux Mayo droits 14 cm et 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux Metzembaum 18 cm, 20 cm et 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince à moustiques droite et incurvée</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguille 18 cm et 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince à dissection Russ 15 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manche de scalpel n° 23 et n° 21,&nbsp ; 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dissecteur chirurgical 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MATÉRIAUX POUR L’APPROVISIONNEMENT PULMONAIRE</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 cc seringue</td><td>BD DISCARDIT</td><td>309110</td><td></td></tr><tr><td>Alprostadil 500 mcgs solution injectable</td><td>PFIZER</td><td></td><td>Prostaglandine injectée avec une solution de préservation pulmonaire</td></tr><tr><td>Cartouche GIA jetable Steril 6/Ca</td><td>MEDTRONIC</td><td>1141634</td><td></td></tr><tr><td>Agrafeuse GIA jetable 60/3.8 3/Ca</td><td>MEDTRONIC</td><td>2802122</td><td>Agrafeuse pour la trachée et la division bronquiale</td></tr><tr><td>Cathéter de Foley 18 Ch</td><td>Folysil Folysil, Coloplast</td><td>AA6118</td><td>Cathéter urinaire utilisé pour les veines pulmonaires canulées pour la perfusion</td></tr> <tr><td>rétrogradeSolution de préservation pulmonaire Perfadex 1000 mL</td><td>Medisan, Uppsala, Sweeden</td><td>19811 ( boîte de 10 unités)</td><td>Solution de préservation pulmonaire</td></tr><tr><td>Mersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Suture courbée en soie pour sutures péricardiques</td></tr><tr><td>Canule veineuse pédiatrique</td><td>SORIN GROUP</td><td>V132-12</td><td>Canule utilisée pour la canulation de l’artère pulmonaire</td></tr><tr><td>Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>suture en polypropylène pour cordon de bourse dans l’artère pulmonaire</td></tr><tr><td>Lame de scalpel n° 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Soie tressée Sofsilk n° 1 brins</td><td>COVIDIEN</td><td>L-12</td><td>Fil de soie pour fixer la canule artérielle avec le garrot</td></tr><tr><td>Soie tressée Sofsilk n° 3 brins</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Fil de soie pour ligature des vaisseaux</td></tr><tr><td>Sacs</td><td></td><td></td><td>stériles Pour conserver et stocker les poumons.</td></tr><tr><td>Connecteur droit 1,4"/1,4 » avec luer lock</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0032</td><td>Pièce pour connecter la canule artérielle de l’artère pulmonaire avec la ligne de préservation et le robinet d’arrêt à trois voies pour la prostaglandine</td></tr><tr><td>Robinet d’arrêt à trois voies</td><td>BD CONNECTA 394501</td><td></td><td>Robinet d’arrêt à trois voies pour connecter la canule fartérienne à la conduite de pression</td></tr><tr><td>Kit uromatique pour l’irrigation à double dérivation</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4007N</td><td>Système d’irrigation pour solution de préservation pulmonaire</td></tr><tr><td>Kit uromatique pour l’irrigation à une seule sonde</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4002</td><td>Système d’irrigation pour solution de préservation pulmonaire</td></tr> <tr><td><fort>OUTILS CHIRURGICAUX POUR L’APPROVISIONNEMENT PULMONAIRE</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince</td><td></td><td></td><td></td>transversale aortique</tr><tr><td>Scie</td><td></td><td></td><td></td>chirurgicale à batterie</tr><tr><td>Cooley vasculaire </td><td></td><td></td><td></td>Pince</tr><tr><td>Pince à dissection 18 cm et 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Écarteur</td><td></td><td></td><td></td>sternal Finochietto</tr><tr><td>Ciseaux Metzembaum 20 cm et 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince à moustiques incurvée 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinces vasculaires</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>OUTILS CHIRURGICAUX POUR ORGANE ABDOMINAL APPROVISIONNEMENT </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Écarteurs articulés Adson Pince</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Allis 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinces</td><td></td><td></td><td></td>aortiques</tr><tr><td>Ciseaux Boyd 17 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguilles</td><td></td><td></td><td></td>Castroviejo</tr><tr><td>Cooley Pinces vasculaires</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince Crile courbée 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Écarteur Davis 24,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince de dissection DeBakey 19,7 cm et 24,1 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinces vasculaires DeBakey Pince</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>de dissection 18 cm et 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince Duval 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Écarteurs Farabeuf</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plateaux rénaux 300 cc et 500 cc</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince Kocher droite 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Écarteurs Langenbeck 21 cm et 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux Mayo droits et courbés, 17 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince à moustiques droite et courbée, 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguilles 15 cm, 18 cm, 23 cm et 23 cm.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince à péan 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux Potts 19cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince Rochester courbée 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince Rochester droite 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince à dissection Russ 15 cm et 20 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manches de</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>scalpelEnrouleur Senn-Mueller 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

obtention d’un rétablissement rapide des poumons combinée à une perfusion régionale normamique abdominale dans le cadre d’un don contrôlé après une mort circulatoire

Lung Rapid Recovery Procurement Combined with Abdominal Normothermic Regional Perfusion in Controlled Donation after Circulatory Death

Le don contrôlé après mort circulatoire (cDCD) a contribué à augmenter le nombre de donneurs dans le monde entier. Les expériences publiées au cours des dernières années confirment que les résultats après une transplantation pulmonaire à partir de cDCD sont similaires à ceux des donneurs de mort cérébrale; Cependant, l’utilisation des poumons provenant de donneurs d’asystole reste faible. Plusieurs raisons peuvent être impliquées: des cadres juridiques différents entre les pays et les centres avec différentes interventions pré-mortem, des soins inadéquats aux donneurs de poumons avant l’approvisionnement, ou même une mauvaise expérience des procédures et protocoles cDCD.
Initialement, la technique de récupération rapide était couramment utilisée pour l’obtention d’organes thoraciques et abdominaux dans la cDCD, mais, au cours de la dernière décennie, la perfusion régionale normothermique abdominale (ANRP) avec des dispositifs d’oxygénation par membrane extracorporelle est devenue une méthode utile pour rétablir le flux sanguin vers les organes abdominaux, permettant leur amélioration de la qualité et leur évaluation fonctionnelle avant la transplantation. Cela rend la procédure de don plus complexe et génère des doutes sur les lésions des greffons dues à la double température.
L’objectif de cet article est de décrire un protocole basé sur une expérience en un seul centre avec des donneurs Maastricht III combinant refroidissement pulmonaire récupération rapide dans le thorax et perfusion régionale normothermique abdominale. Des trucs et astuces axés sur les interventions pré-mortem et les techniques de procédure d’obtention pulmonaire sont expliqués. Cela peut aider à minimiser la réticence des professionnels à utiliser cette technique combinée et encourager d’autres centres donneurs à l’utiliser, malgré la complexité accrue de la procédure.

Nous avons effectué une analyse descriptive de 30 transplantations pulmonaires effectuées à l’hôpital universitaire Marqués de Valdecilla avec des poumons obtenus à partir de donneurs de cDCD au cours des 2 dernières années, 2020 et 2021. Les caractéristiques démographiques des donateurs et des receveurs, les données techniques, les résultats postopératoires et les résultats à court terme sont présentés ici. Ces résultats sont présentés sous forme de nombres absolus et de pourcentages pour les variables catégorielles et ...

Le protocole combine une technique de récupération rapide de refroidissement pulmonaire avec une perfusion régionale normothermique abdominale pour l’obtention de greffes abdominales chez des donneurs asystoles contrôlés, ce qui est une méthode sûre et utile pour élargir le bassin de donneurs.

Obtention d’un rétablissement rapide des poumons combinée à une perfusion régionale normamique abdominale dans le cadre d’un don contrôlé après une mort circulatoire

Controlled donation after circulatory death (cDCD) has contributed to increasing donor numbers all over the world. Experiences published in the last years ...

Le rétablissement multi-organes pour un don contrôlé après un décès cardiaque est un défi. Cette méthode augmente la complexité de l’ensemble de la procédure, mais elle offre de meilleurs résultats pour les destinataires. Cette méthode minimise les dommages ischémiques produits par l’hypotension et l’arrêt cardiaque après l’arrêt du traitement de maintien de la vie chez les donneurs.Pour commencer, administrez par voie intraveineuse un bolus d’héparine au donneur. Préparez ensuite une table d’instrumentation stérile avec tout le matériel nécessaire, l’électrocautérisation et le système d’aspiration. Préparez un champ chirurgical sur l’aine sélectionnée avec une solution désinfectante et des champs stériles.Faites une incision longitudinale de huit à 10 centimètres avec une lame numéro 23 et contrôlez le saignement avec l’électrocautérisation et Ligaclips. Séparez les bords de la plaie avec un écarteur et procédez à la dissection pour exposer l’artère fémorale et la veine. Embrassez les vaisseaux fémoraux avec un brin de soie pour contrôler le saignement.Sélectionnez les diamètres de canule appropriés en fonction de la taille des récipients décrite dans le manuscrit du texte. Canuler la veine fémorale, en introduisant d’abord un fil métallique comme guide, suivi de dilatateurs progressifs pour enfin introduire la canule. Procéder de la même manière avec l’artère fémorale à l’aide d’une canule à double lumière.Coupez un morceau de 10 centimètres de la ligne d’entrée ECMO. Insérez un connecteur droit avec un verrou de leurre avec un robinet d’arrêt à trois voies assemblé à une extrémité de la pièce et connectez l’autre extrémité à la canule artérielle. Purger les lignes ECMO.Utilisez une irrigation associée à une solution saline pour remplir les conduites tout en vous connectant avec des canules. Connectez la ligne ECMO de sortie à la canule veineuse et la ligne ECMO d’entrée au connecteur droit avec le robinet d’arrêt à trois voies préalablement assemblé à la canule artérielle. Le robinet d’arrêt à trois voies peut être utilisé pour purger le système.Maintenez les lignes ECMO serrées. Fixez les deux canules à l’aine avec des sutures en soie de taille un pour éviter le déplacement pendant le transfert. Placez une conduite de pression surveillée dans la canule de l’artère fémorale et l’artère radiale gauche du donneur.Ensuite, initiez la mise en place du ballonnet d’occlusion aortique en prenant la distance entre le processus xiphoïde du donneur et l’extrémité distale de la canule artérielle comme référence pour déterminer la longueur du cathéter à insérer pour atteindre l’aorte descendante thoracique. Placez une marque de référence dans le ballon avec une suture en soie ou un marqueur. Introduisez un guide métallique à travers la lumière libre de la canule de l’artère fémorale.Continuez avec le cathéter guidé par le fil métallique et introduisez-le jusqu’à la marque référencée. Confirmez la position correcte du ballon d’occlusion. Vérifiez le bon fonctionnement du ballonnet d’occlusion en le remplissant de solution saline pendant quatre à cinq secondes à l’aide d’une seringue à cône de 50 centimètres cubes.Confirmer que la pression artérielle de la canule fémorale disparaît, tandis que la pression de l’artère radiale gauche est maintenue. Pour effectuer une sternotomie médiane, procéder à une incision cutanée verticale médiane de l’encoche suprasternale à la pointe du processus xiphoïde. Étendre l’incision au fascia pectoral et au périoste sternal par électrocautérisation.Divisez le ligament interclaviculaire et créez un plan par dissection digitale derrière le sternum, à la fois au niveau de l’encoche suprasternale et du processus xiphoïde. Divisez le sternum avec une scie électrique. Placez un rétracteur sternal et ouvrez-le soigneusement, en libérant le péricarde de la surface postérieure du sternum.Contrôlez tout point de saignement par électrocautérisation. Dans le même temps, ventilez le donneur avec 100% d’oxygène et une pression positive et expiratoire de cinq centimètres d’eau. Pour la bronchoscopie, introduire un bronchoscope flexible dans le tube endotrachéal.Ouvrez les deux cavités pleurales par incisions longitudinales dans la plèvre médiastinale. Si des erreurs sont rencontrées lors de l’examen des vaisseaux supra-aortiques avec le ballonnet d’occlusion, rétracter le poumon gauche médialement pour exposer et serrer l’aorte thoracique aussi bas que possible en vision directe. Examiner les poumons en effectuant des évaluations visuelles et palpataires, en inspectant les bulles, la contusion, l’atélectasie, la pneumonie et les tumeurs occultes.Administrer une solution saline d’un litre de quatre degrés Celsius dans les deux cavités pleurales. Réduire la fraction inspirée d’oxygène à 50%Ouvrez le péricarde avec une incision en T inversé. Rétractez latéralement les bords du péricarde avec 2-0 sutures de soie fixées à la peau avec des pinces anti-moustiques pour exposer les structures cardiaques.Placez une suture à cordon de bourse en polypropylène 4-0 sur l’artère pulmonaire principale sous la bifurcation. Effectuez une artériotomie avec une lame numéro 11 et dilatez avec une pince anti-moustique incurvée. Canuler l’artère pulmonaire avec une canule droite à angle droit serrée à l’extrémité.Connectez la canule de l’artère pulmonaire à la conduite du système d’irrigation, en assemblant un connecteur droit avec un verrou de leurre et un robinet d’arrêt à trois voies. Connectez le système d’irrigation à la solution de préservation pulmonaire et purgez les lignes. Commencez à rincer 50 à 60 millilitres par kilogramme de solution de conservation à froid de manière antégrade.Commencez à rincer 500 microgrammes de prostaglandine diluée dans 100 millilitres de solution saline en même temps à travers le robinet d’arrêt à trois voies. Ouvrez directement l’atrium gauche pour permettre un drainage libre. Si des zones d’atélectasie sont trouvées, recrutez-les avec de courtes prises inspiratoires à une pression d’eau de 25 à 30 centimètres.Une fois la conservation terminée, retirez la canule de l’artère pulmonaire et annoncez au reste de l’équipe l’intention de serrer la veine cava et de commencer l’excision cardiaque. Placez une pince croisée dans la veine inférieure du cava, en vous assurant qu’il y a suffisamment de moignon pour le foie. Liférer et diviser la veine cava inférieure avec un brin de soie numéro trois.Attachez et divisez la veine cava supérieure fémorale de la caudale à l’azygote avec un brin de soie numéro trois. Fixez le moignon distal avec une pince. Laissez les pinces rester dans le champ chirurgical, en veillant à ne pas les retirer par accident, sinon le dispositif ECMO et l’ARNP seront compromis.Excise le reste du cœur dans une fonction standard. Après l’excision cardiaque, retirez les poumons en suivant la même procédure qu’avec les donneurs de mort cérébrale. Divisez les ligaments pulmonaires inférieurs, ouvrez le péricarde postérieur et exposez l’œsophage.Libérer les attaches médiastinales postérieures du poumon avec dissection émoussée, assurant une hémostase prudente. Disséquer les artères pulmonaires loin de l’aorte. Isolez la trachée au-dessus de la carène et passez une agrafeuse TA autour.Gonfler les poumons à 50 à 60% du volume courant avant de retirer le tube endotrachéal et de diviser la trachée. Retirez toutes les pièces jointes restantes et extrayez le bloc pulmonaire du donneur. Vérifiez soigneusement la cavité thoracique pour détecter les points de saignement, car une perte de sang continue peut diminuer le débit de la pompe.Le pourcentage de patients atteints de maladie pulmonaire interstitielle était le plus élevé, suivi de la bronchopneumopathie chronique obstructive et de la bronchectasie. La plupart des receveurs avaient des antécédents de tabagisme. Seulement 16,7 % souffraient d’hypertension systémique et 10 % de diabète sucré.L’hypertension pulmonaire était présente chez 14 receveurs. Un receveur avait besoin d’un maintien extracorporel peropératoire des fonctions vitales pendant la chirurgie avec ECMO. Le temps médian d’ischémie à froid était de 292,5 minutes pour la première greffe et de 405 minutes pour la seconde.Il n’y a eu aucun décès peropératoire. Deux receveurs ont eu besoin d’un soutien ECMO postopératoire en raison d’un dysfonctionnement primaire du greffon. Le délai médian pour l’intubation postopératoire était de 24 heures.Le séjour à l’USI était de 3,1 jours et le séjour à l’hôpital était de 18,9 jours. Un rejet cellulaire aigu au cours des trois premières semaines était présent chez 12 receveurs. Il n’y a pas eu de mortalité hospitalière et la survie à 30 jours était de 100%Les points clés de cette méthode sont les interventions pré-mortem, la canulation, la mise en place d’un ballonnet d’occlusion aortique et les mesures visant à éviter la perte de volume et le débit de la pompe pendant la préservation et l’approvisionnement pulmonaires.Cette méthode a été appliquée aux donneurs pédiatriques avec un taux accru d’utilisation des greffons et une excellente survie des receveurs.

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Greffons marginaux, tels que les foies gras, les greffes de donneurs plus âgés, ou des foies prélevés après la mort cardiocirculatoire (DDC) tolèrent, stockage statique classique froide mal. Nous avons développé un nouveau modèle de subnormothermic ex vivo perfusion du foie pour la conservation, l'évaluation et la réparation des greffes de foie marginaux avant la transplantation.

Technique de Subnormothermic<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Foie de perfusion pour l&#39;entreposage, de l&#39;évaluation et de réparation des marginaux greffes du foie

Nous décrivons une méthode ex vivo machine à perfusion de greffes de foie humain à la température subnormothermic (21 ° C).

Foie conservation et de récupération fonctionnelle humaine par des moyens de Subnormothermic machine à perfusion

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Modèle de don chez les grands animaux après mort circulatoire et perfusion régionale normamère pour l’évaluation cardiaque

Dans ce protocole, un modèle de transplantation hépatique orthotopique porcine après entreposage statique à froid d’organes de donneurs pendant 20 h sans pontage veino-veineux pendant la greffe est décrit. L’approche utilise une technique chirurgicale simplifiée avec minimisation de la phase hépatique et une gestion sophistiquée du volume et du vasopresseur.

Transplantation hépatique porcine sans pontage veino-veineux comme modèle de donneur à critères étendus

Nous présentons ici un protocole d’évaluation d’un cœur implanté hétérotopiquement après préservation ex situ normothermique dans le modèle du rat.

Modèle de rat de transplantation cardiaque hétérotopique perfusée ex situ normamère

Ce protocole décrit la méthodologie d’établissement d’un modèle porcin utilisant une perfusion automatique (MP) à température variable pour la préservation du foie du donneur, suivie d’une transplantation hépatique orthotopique (OLTx). Il vise à promouvoir le taux de réussite d’OLTx en utilisant le don de donneurs après mort circulatoire (DCD) hépatique et à établir un modèle stable.

Conservation du don de porcs après mort circulatoire (DDC) par perfusion et transplantation hépatique orthotopique

L’objectif est de développer un nouveau modèle de perfusion pulmonaire ex vivo (EVLP) chez le rat capable de maintenir une fonction pulmonaire constante pendant 4 h tout au long de l’EVLP et de fournir à l’industrie des spécificités de mise en œuvre qui offriront une méthode solide pour appliquer l’EVLP à des modèles de rongeurs.

Mise en place d’un nouveau système de perfusion pulmonaire ex vivo pour les poumons de rat après mort circulatoire

Le protocole décrit ici un modèle porcin haute fidélité de transplantation cardiaque après un don après mort circulatoire en utilisant la perfusion ex vivo de l’allogreffe.

Un modèle porcin haute-fidélité de transplantation cardiaque orthotopique après don après mort circulatoire

Ce protocole présente un modèle de perfusion pulmonaire ex-vivo chez le rat intégrant une exposition transitoire à un stress thermique calibré, favorisant des mécanismes de protection endogènes pour le reconditionnement thérapeutique des greffons pulmonaires endommagés. L’approche est évolutive et reproductible et soutient le développement de thérapies non médicamenteuses pour améliorer le succès de la transplantation pulmonaire.

Préconditionnement thermique lors de la perfusion pulmonaire ex-vivo pour la réhabilitation de greffons pulmonaires endommagés avant transplantation

Découvrez une technique de récupération pulmonaire rapide par refroidissement combinée à une perfusion régionale normothermique abdominale pour le prélèvement d'organes chez les donneurs en asystole contrôlée.

Obtention d’un rétablissement rapide des poumons combinée à une perfusion régionale normamique abdominale dans le cadre d’un don contrôlé après une mort circulatoire (Vidéo) | JoVE Journal

Obtention d’un rétablissement rapide des poumons combinée à une perfusion régionale normamique abdominale dans le cadre d’un don contrôlé après une mort circulatoire

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