Name: Modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale de souris induit par le phosphate de calcium (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-11-18T13:50:00.000+00:00
Duration: 5 min 14 s
Description: Découvrez un modèle d'anévrisme de l'aorte abdominale induit par phosphate de calcium chez la souris C57BL6J. Cette méthode rapide et économique permet d'étudier les mécanismes moléculaires et les stratégies thérapeutiques.

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Cette recherche a été financée par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (NSFC, 81730010, 91839302, 81921001, 31930056 et 91529203) et le National Key R&D Program of China (2019YFA 0801600).

Les études sur les animaux ont été réalisées conformément aux directives du Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux du Centre des sciences de la santé de l’Université de Pékin et ont été approuvées par le Comité d’éthique biomédicale de l’Université de Pékin (LA2015142). Toutes les souris pour la chirurgie ont été anesthésiées avec de l’isoflurane (1,5%-2%), et l’anesthésie a été soigneusement surveillée pour éviter la douleur ou l’inconfort pour les souris.
1. Préparation
<ol><li>Coupez des bandes de 0,3 cm de large de gants en caoutchouc sans poudre et de gaze.</li>
	<li>Achetez des souris mâles C57BL/6J âgées de 8 à 10 semaines. Hébergez les animaux dans un environnement climatisé avec un cycle lumière-obscurité de 12 h et un accès gratuit à la nourriture et à l’eau.</li>
	<li>Autoclavez la gaze, les cotons-tiges, les ciseaux et les forceps avant la chirurgie.</li>
	<li>Procurez-vous de la bétadine, de l’éthanol à 70 % et un lavage antiseptique des mains.</li>
	<li>Mettez un masque, une blouse et des gants stériles.</li>
</ol>2. Intervention chirurgicale
<ol><li>Donnez des comprimés de carprofène à croquer (dose de 5 mg/kg) à une souris C57BL/6J âgée de 8 à 10 semaines 2 à 4 h avant la chirurgie. Ensuite, placez la souris dans une chambre d’induction (206 mm x 210 mm x 140 mm) avec de l’isoflurane à un débit de 1,5% à 2%.<ol><li>Surveillez la souris pendant environ 5 minutes jusqu’à ce que la respiration soit visiblement ralentie. Assurez-vous que la souris n’a pas de réponse à la stimulation de la douleur avant la chirurgie.</li>
	</ol></li>
	<li>Appliquez une pommade ophtalmique sur les yeux et fournissez un soutien thermique avec un coussin chauffant ou une couverture. Confirmez la profondeur de l’anesthésie avec un pincement d’orteil toutes les 15 minutes pendant l’intervention chirurgicale.</li>
	<li>Rasez les poils abdominaux de la souris à l’aide d’une tondeuse électrique ou d’une crème dépilatoire. Écouvillonnez et essuyez la zone rasée avec de la bétadine, suivie d’éthanol à 70%, plusieurs fois dans un mouvement circulaire. Changez de gants pour maintenir la stérilité.</li>
	<li>Utilisez des ciseaux pour faire une incision de ~ 1,5 cm au bas de l’abdomen le long de la ligne médiane de l’abdomen.</li>
	<li>Utilisez un coton-tige stérile humidifié avec une solution saline normale pour retirer soigneusement l’intestin jusqu’à ce que l’aorte infrarénale soit visible.</li>
	<li>Disséquer le tissu conjonctif et la graisse de l’aorte infrarénale pour une section d’environ 0,5 cm. Remarquez les petits vaisseaux du côté dorsal et évitez de les déchirer. Il n’est pas nécessaire de séparer l’aorte abdominale de la veine principale abdominale.</li>
	<li>Emballez un morceau de la bande de gants en caoutchouc imbibée de solution saline sous l’aorte abdominale et la veine principale abdominale. Utilisez un coton-tige pour essuyer l’excès de liquide.</li>
	<li>Emballez un morceau de gaze imbibé de 0,5 M de CaCl2 sur l’adventice du système vasculaire abdominal infrarénal pendant 10 min. Pour le groupe des souris factices, remplacer le CaCl2 0,5 M par une solution saline normale.</li>
	<li>Retirez la gaze et emballez un autre morceau de gaze imbibé de solution de PBS pendant 5 minutes pour générer des cristaux de CaPO4 in situ dans l’adventice de l’aorte.</li>
	<li>Retirez délicatement la bande de gants en caoutchouc et la gaze. Réinitialisez le tractus intestinal de la souris.</li>
	<li>Suturer l’incision abdominale et la peau avec une suture 5-0.</li>
	<li>Placez la souris sur un coussin chauffant jusqu’à ce qu’elle reprenne conscience. Fournir un logement de récupération de la douleur postopératoire et une analgésie, selon le comité local d’éthique animale.</li>
	<li>Hébergez la souris pendant encore 14 jours. Surveillez la souris de près après la chirurgie et observez-la au moins 1x chaque jour par la suite. Effectuez une nécropsie immédiatement si des souris meurent pendant cette période.</li>
</ol>3. Récolte pour l’imagerie des aortes
<ol><li>14 jours après la chirurgie, sacrifiez les souris en utilisant du CO2.</li>
	<li>Coupez les cavités thoracique et abdominale de la souris ventralement et ouvrez l’oreillette droite.</li>
	<li>Perfuser les souris avec un tampon PBS à travers le ventricule gauche du cœur pour éliminer le sang dans l’aorte, puis perfuser avec 4% de paraformaldéhyde comme décrit précédemment8.</li>
	<li>Récoltez l’aorte sous le stéréoscope.</li>
	<li>Placer les aortes récoltées dans des tubes contenant 5 mL de paraformaldéhyde à 4 % pendant 48 h.</li>
	<li>Enlevez soigneusement le tissu adventice et la graisse sous le stéréoscope et épinglez l’aorte sur une plaque de cire noire avec des aiguilles d’insectes.</li>
	<li>Acquérir des images aortiques.</li>
</ol>4. Evaluation de la dégradation des fibres élastiques
<ol><li>Couper les tissus anévrismaux de l’aorte en cryosections en série (7 μm d’épaisseur).</li>
	<li>Analysez les fibres élastiques à l’aide d’un kit de coloration élastique commercial van Gieson (EVG) selon le protocole du fabricant.</li>
	<li>Classer la dégradation de l’élastine. Grade 1 : dégradation de <25 %; grade 2 : dégradation de 25 % à 50 %; grade 3 : dégradation de 50 % à 75 %; ou grade 4 : dégradation de >75 %.</li>
</ol>

<ol><li>Kent, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abdominal+aortic+aneurysms%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Abdominal aortic aneurysms.</a> The New England Journal of Medicine. 371, 2101-2108 (2014).</li>
<li>Patelis, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+in+the+research+of+abdominal+aortic+aneurysms+development%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Research%22%5BJournal%5D)">Animal models in the research of abdominal aortic aneurysms development.</a> Physiological Research. 66 (6), 899-915 (2017).</li>
<li>Gertz, S. D., Kurgan, A., Eisenberg, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aneurysm+of+the+rabbit+common+carotid+artery+induced+by+periarterial+application+of+calcium-chloride+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Aneurysm of the rabbit common carotid artery induced by periarterial application of calcium-chloride in vivo.</a> Journal of Clinical Investigation. 81 (3), 649-656 (1988).</li>
<li>Yamanouchi, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+aneurysmal+dilation+associated+with+apoptosis+and+inflammation+in+a+newly+developed+calcium+phosphate+rodent+abdominal+aortic+aneurysm+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Accelerated aneurysmal dilation associated with apoptosis and inflammation in a newly developed calcium phosphate rodent abdominal aortic aneurysm model.</a> Journal of Vascular Surgery. 56 (2), 455-461 (2012).</li>
<li>Wang, Y. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+apolipoprotein+E%2C+age+and+aortic+site+on+calcium+phosphate+induced+abdominal+aortic+aneurysm+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Influence of apolipoprotein E, age and aortic site on calcium phosphate induced abdominal aortic aneurysm in mice.</a> Atherosclerosis. 235 (1), 204-212 (2014).</li>
<li>Zhao, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unspliced+xbp1+confers+VSMC+homeostasis+and+prevents+aortic+aneurysm+formation+via+foxo4+interaction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Unspliced xbp1 confers VSMC homeostasis and prevents aortic aneurysm formation via foxo4 interaction.</a> Circulation Research. 121 (12), 1331-1345 (2017).</li>
<li>Jia, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+macrophage+TFEB-14-3-3+epsilon+interface+by+naringenin+inhibits+abdominal+aortic+aneurysm%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Discovery%22%5BJournal%5D)">Targeting macrophage TFEB-14-3-3 epsilon interface by naringenin inhibits abdominal aortic aneurysm.</a> Cell Discovery. 8 (1), 21(2022).</li>
<li>Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole+animal+perfusion+fixation+for+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Whole animal perfusion fixation for rodents.</a> Journal of Visualized Experiments. (65), e3564(2012).</li>
<li>Yu, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CYLD+deubiquitinates+nicotinamide+adenine+dinucleotide+phosphate+oxidase+4+contributing+to+adventitial+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">CYLD deubiquitinates nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase 4 contributing to adventitial remodeling.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 37 (8), 1698-1709 (2017).</li>
<li>Altobelli, E., Rapacchietta, L., Profeta, V. F., Fagnano, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+factors+for+abdominal+aortic+aneurysm+in+population-based+studies%3A+A+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Environmental+Research+and+Public+Health%22%5BJournal%5D)">Risk factors for abdominal aortic aneurysm in population-based studies: A systematic review and meta-analysis.</a> International Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (12), 2805(2018).</li>
<li>Theivacumar, N. S., Stephenson, M. A., Mistry, H., Valenti, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diabetes+mellitus+and+aortic+aneurysm+rupture%3A+A+favorable+association%5BTitle%5D)+AND+%22Vascular+and+Endovascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Diabetes mellitus and aortic aneurysm rupture: A favorable association.</a> Vascular and Endovascular Surgery. 48 (1), 45-50 (2014).</li>
<li>Tanaka, T., Takei, Y., Yamanouchi, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperglycemia+suppresses+calcium+phosphate-induced+aneurysm+formation+through+inhibition+of+macrophage+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Heart+Association%22%5BJournal%5D)">Hyperglycemia suppresses calcium phosphate-induced aneurysm formation through inhibition of macrophage activation.</a> Journal of the American Heart Association. 5 (3), 003062(2016).</li>
<li>Lu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcutaneous+angiotensin+II+infusion+using+osmotic+pumps+induces+aortic+aneurysms+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Subcutaneous angiotensin II infusion using osmotic pumps induces aortic aneurysms in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (103), e53191(2015).</li>
<li>Urry, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutral+sites+for+calcium+ion+binding+to+elastin+and+collagen%3A+A+charge+neutralization+theory+for+calcification+and+its+relationship+to+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Neutral sites for calcium ion binding to elastin and collagen: A charge neutralization theory for calcification and its relationship to atherosclerosis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 68 (4), 810-814 (1971).</li>
<li>Li, Z. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Runx2+%28runt-related+transcription+factor+2%29-mediated+microcalcification+is+a+novel+pathological+characteristic+and+potential+mediator+of+abdominal+aortic+aneurysm%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Runx2 (runt-related transcription factor 2)-mediated microcalcification is a novel pathological characteristic and potential mediator of abdominal aortic aneurysm.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 40 (5), 1352-1369 (2020).</li>
<li>Kelly, M. J., Igari, K., Yamanouchi, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoclast-like+cells+in+aneurysmal+disease+exhibit+an+enhanced+proteolytic+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Osteoclast-like cells in aneurysmal disease exhibit an enhanced proteolytic phenotype.</a> International Journal of Molecular Sciences. 20 (19), 4689(2019).</li>
</ol>

L’application périaortique de CaPO4 est une approche robuste pour induire l’AAA chez la souris. Plusieurs études ont utilisé le modèle CaPO4 et ont systématiquement rapporté qu’il s’agit d’une méthode rapide et reproductible pour étudier l’AAA chez la souris 7,9. Ce modèle est considéré comme récapitulant une partie des caractéristiques de l’anévrisme de l’aorte humaine et fournissant des informations mécanistes sur la pathogenèse de l’AAA, ...

Un anévrisme de l’aorte abdominale (AAA) est une maladie cardiovasculaire mortelle caractérisée par une dilatation permanente de l’aorte abdominale, avec des taux de mortalité élevés une fois la rupture survenue. L’AAA est associé au vieillissement, au tabagisme, au sexe masculin, à l’hypertension et à l’hyperlipidémie1. Il a été démontré que plusieurs processus pathologiques contribuent à la formation d’AAA, notamment la protéolyse des fibres de la matrice extracellulaire, l’infiltration des cellules immunitaires et la perte des cellules musculaires lisses vasculaires. Actuellement, les mécanismes pathologiques de l’AAA restent insaisissables et il n’existe aucun médicament éprouvé pour le traitement de l’AAA1. La recherche sur l’AAA humain est limitée en raison de l’existence de peu d’échantillons aortiques humains; ainsi, plusieurs modèles AAA animaux induits par des modifications chimiques ont été établis et largement adoptés, y compris la perfusion sous-cutanée d’angiotensine II (AngII), l’incubation périvasculaire ou intraluminale d’élastase et l’application périvasculaire de phosphatede calcium 2. Un modèle murin couramment utilisé est l’application de phosphate de calcium (CaPO4) à l’adventice de l’aorte abdominale infrarénale, ce qui est rentable et ne nécessite pas de modification génétique.
L’application périaortique directe de CaCl2 sur l’artère carotide de lapins pour induire un changement anévrysmal a été initialement rapportée par Gertz et al.3 et a ensuite été appliquée aux aortes abdominales de souris. Le modèle a été développé par Yamanouchi et al. pour accélérer la dilatation aortique en utilisant des cristaux CaPO 4 chez la souris4. L’infiltration de CaPO4 dans les aortes de souris récapitule de nombreuses caractéristiques pathologiques observées chez les AAA humains, notamment l’infiltration profonde des macrophages, la dégradation de la matrice extracellulaire et le dépôt de calcium. Les facteurs de risque de l’AAA humain, tels que l’hyperlipidémie, augmentent également l’AAA induit par CaPO4 chez la souris5. Contrairement à l’AAA induit par la perfusion AngII chez les souris ApoE-/- ou LDLR-/-, l’AAA induit par CaPO 4 se produit dans la région aortique infrarénale, qui imite l’AAA humain. Actuellement, cette méthode a été largement appliquée pour évaluer la sensibilité au développement de l’AAA chez les souris génétiquement modifiées et évaluer les effets anti-AAA des médicaments 6,7.

<table><tbody><tr><td>CaCl2</td><td>MECKLIN</td><td>C805225</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Biomed</td><td>SH5001-01</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>HARVEYBIO</td><td>MB5051</td><td></td></tr><tr><td>Ventilateur pour petits animaux</td><td>RWD</td><td>H1550501-012</td><td></td></tr></tbody></table>

modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale de souris induit par le phosphate de calcium

A Calcium Phosphate-Induced Mouse Abdominal Aortic Aneurysm Model

Un anévrisme de l’aorte abdominale (AAA) est une maladie cardiovasculaire potentiellement mortelle qui survient dans le monde entier et se caractérise par une dilatation irréversible de l’aorte abdominale. Actuellement, plusieurs modèles murins AAA induits chimiquement sont utilisés, chacun simulant un aspect différent de la pathogenèse de l’AAA. Le modèle AAA induit par le phosphate de calcium est un modèle rapide et rentable par rapport aux modèles AAA induits par l’angiotensine II et l’élastase. L’application de cristaux de CaPO4 à l’aorte de la souris entraîne une dégradation des fibres élastiques, une perte de cellules musculaires lisses, une inflammation et un dépôt de calcium associé à la dilatation aortique. Cet article présente un protocole standard pour le modèle AAA induit par CaPO4. Le protocole comprend la préparation du matériel, l’application chirurgicale du CaPO4 à l’adventice de l’aorte abdominale infrarénale, la récolte des aortes pour visualiser les anévrismes de l’aorte et les analyses histologiques chez la souris.

14 jours après l’application de CaPO4, les souris mâles C57BL/6J ont été euthanasiées et leurs aortes ont été récoltées et nettoyées. La morphologie des aortes a été imagée pour visualiser la formation d’AAA. Comme le montre la figure 1A-B, l’application de CaPO4 a entraîné une dilatation de l’aorte abdominale infrarénale. Histologiquement, CaPO4 a entraîné une dégradation spectaculaire des fibres élastiques, comme l’illustre...

Ce protocole décrit un modèle murin d’anévrisme de l’aorte abdominale induit par le phosphate de calcium (AAA) pour étudier les caractéristiques pathologiques et les mécanismes moléculaires des AAA.

Modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale de souris induit par le phosphate de calcium

An abdominal aortic aneurysm (AAA) is a life-threatening cardiovascular disease that occurs worldwide and is characterized by irreversible dilation of the ...

Ce protocole décrit le modèle murin d’anévrisme de l’aorte abdominale triple A induit par le phosphate de calcium pour étudier les caractéristiques pathologiques des mécanismes moléculaires de l’anévrisme de l’aorte abdominale. Le modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale induit par le phosphate de calcium est un modèle rapide et rentable par rapport au tube d’angiotensine et aux modèles d’anévrisme de l’aorte abdominale induite par l’élastase. La démonstration de la procédure sera Zeyu Cai, post-médecin ici, un membre de notre laboratoire.Pour commencer, coupez des bandes de 0,3 centimètre de large de gants en caoutchouc sans poudre et de gaze. Ensuite, achetez des souris C57BL6J Mayo âgées de huit à dix semaines et hébergez les animaux dans un environnement climatisé avec un cycle d’obscurité légère de 12 heures et un accès gratuit à la nourriture et à l’eau. Ensuite, autoclavez la gaze, les cotons-tiges, les ciseaux et les forceps avant la chirurgie, et obtenez de la bétadine, de l’éthanol à 70% et un lavage antiseptique des mains.Rasez les poils abdominaux de la souris anesthésiée à l’aide d’une tondeuse électrique ou d’une crème dépilatoire. Ensuite, écouvillonnez et essuyez la zone rasée avec de la bétadine, suivie de 70% d’éthanol plusieurs fois dans un mouvement circulaire. Ensuite, faites une incision d’environ 1,5 centimètre au bas de l’abdomen le long de la ligne médiane de l’abdomen à l’aide de ciseaux.À l’aide d’un coton-tige stérile humidifié avec une solution saline normale, retirez délicatement l’intestin jusqu’à ce que l’aorte infrarénale soit visible. Ensuite, disséquez le tissu conjonctif et la graisse de l’aorte infrarénale sur une section d’environ 0,5 centimètre tout en évitant toute déchirure dans les petits vaisseaux du côté dorsal. Ensuite, emballez un morceau de la bande de gants en caoutchouc imbibée de solution saline sous l’aorte abdominale et la veine principale abdominale tout en essuyant l’excès de liquide à l’aide d’un coton-tige.Ensuite, emballez un morceau de gaze imbibé de chlorure de calcium 0,5 molaire sur l’adventice du système vasculaire abdominal infrarénal pendant 10 minutes. Retirez la gaze et emballez un autre morceau de gaze imbibé de solution de PBS pendant cinq minutes pour générer des cristaux d’orthophosphate de calcium en C2 dans l’adventice de l’aorte. Ensuite, retirez délicatement la bande de gants en caoutchouc et la gaze.Après avoir réinitialisé le tractus intestinal de la souris, suturez l’incision abdominale et la peau avec une suture cinq zéro. Ensuite, placez la souris sur un coussin chauffant jusqu’à ce qu’elle reprenne conscience. Hébergez la souris pendant encore 14 jours et surveillez-la de près après la chirurgie et observez-la au moins tous les jours par la suite.Après 14 jours de chirurgie, ouvrez les cavités thoracique et abdominale de la souris euthanasiée ventralement et ouvrez l’oreillette droite. Analysez les souris avec un tampon PBS à travers le ventricule gauche du cœur pour éliminer le sang dans l’aorte, puis perfuse avec 4% de paraformaldéhyde comme décrit dans le manuscrit. Retirez soigneusement le tissu adventice et la graisse au microscope.Ensuite, récoltez l’aorte et placez-la dans un tube contenant cinq millilitres de paraformaldéhyde à 4% pendant 48 heures. Ensuite, épinglez l’aorte sur une plaque de cire noire avec des aiguilles d’insectes et procédez à l’acquisition d’images aortiques. Après 14 jours d’application d’orthophosphate de calcium, la morphologie des aortes a été imagée pour visualiser la formation d’anévrisme de l’aorte abdominale.Il a été observé que l’orthophosphate de calcium entraînait une dilatation de l’aorte abdominale infrarénale et entraînait une dégradation spectaculaire des fibres élastiques, comme l’illustrent les cassures de l’élastine. Utiliser un coton-tige stérile humidifié avec une solution saline normale pour enlever l’intestin jusqu’à ce que l’aorte infrarénale soit visible, puis extraire le tissu conjonctif et la graisse de l’aorte infrarénale. Dans l’ensemble, le modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale induit par le phosphorate de calcium est une approche rapide et rentable pour explorer les mécanismes moléculaires et les stratégies thérapeutiques de l’anévrisme de l’aorte abdominale et pourrait être appliqué en parallèle avec les autres modèles pour imiter pleinement les caractéristiques de l’anévrisme de l’aorte abdominale humaine.

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Cette vidéo montre comment provoquer un anévrisme aortique abdominal (AAA) chez des souris par perfusion intraluminale transitoires de l'élastase pancréatique porcine dans le segment sous-rénal de l'aorte abdominale. Le modèle a la possibilité d'ajouter bon aperçu du pathobiologie de AAA en raison de l'émergence des cultures transgéniques et des souris knockout de nombreux gènes.

Création d&#39;expérimental murin anévrismes aortiques abdominaux avec l&#39;élastase

Cet article décrit une méthodologie détaillée d’utiliser un caoutchouc de silicone de plomb radio-opaque pour perfuse la vascularisation murine pour la quantification de diamètre aortique dans un modèle murin d’anévrisme de l’aorte et de dissection.

Analyse quantitative de Micro-CT de Aortopathy dans un modèle murin d’anévrisme de l’aorte induite par la β-aminopropionitrile et Dissection

Ce nouveau modèle crée des anévrismes aurifiques aurifiques abdominaux infrarérérés robustes chez les porcs à l'aide d'une combinaison d'angioplastie ballon, d'élastase/perfusion de collagène, d'application topique d'élastase et d'administration aminopropionitrile composée de composés oraux, qui interfère avec le collage.

Modèle porcin de l'anévrisme aortique abdominal infrarenal

Le présent protocole décrit une méthode chirurgicale normalisée pour le modèle AAA induit par l’élastase par l’application directe d’élastase à l’adventice de l’aorte abdominale infrarénale chez la souris.

Modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale de souris induit par l’application périvasculaire d’élastase

Ce manuscrit présente un protocole permettant d’établir un modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale chez la souris à l’aide de chlorure de calcium et d’élastase, combinant les avantages des méthodes de modélisation précédentes. Ce modèle peut être utilisé pour étudier les mécanismes physiopathologiques sous-jacents aux anévrismes de l’aorte abdominale.

Un modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale chez la souris par infiltration péri-adventice de chlorure de calcium et d’élastase

Ce protocole décrit une approche chirurgicale méthodique pour modéliser les anévrismes avancés de l’aorte abdominale chez la souris en combinant l’application directe d’élastase sur l’aorte infrarénale et l’administration de ß-aminopropionitrile dans l’eau de boisson.

Modélisation avancée de l’anévrisme de l’aorte abdominale chez la souris par l’association de l’élastase topique et du ß-aminopropionitrile oral

Ce protocole fournit une méthode reproductible et fiable pour induire des anévrismes de l’aorte abdominale (AAA) chez des souris C57BL/6 en utilisant la sensibilisation à l’elastine et l’application d’élastase périvasculaire, en tant que modèle AAA incorporant une composante immunosensibilisation.

Création fiable d’un modèle d’anévrisme aortique abdominal murien utilisant la sensibilisation à l’élastine et l’élastase périvasculaire

L'angiogenèse, la germination des vaisseaux sanguins préexistants vasculaire, est associée à des processus naturels et pathologiques. Ici nous démontrons un test anneau aortique qui permet potentialisateurs angiogéniques et inhibiteurs d'être directement ajoutés à anneaux aortiques dans la culture. La germination et l'excroissance neovessel peut être déterminé en examinant les anneaux aortiques sur une période de 6-12 jours.

Assay anneau aortique

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L&#39;imagerie in vivo et des traitements thérapeutiques dans un modèle de souris orthotopique de cancer des ovaires

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L&#39;isolement et la culture primaire de cellules endothéliales aortiques de souris

Découvrez un modèle d'anévrisme de l'aorte abdominale induit par phosphate de calcium chez la souris C57BL6J. Cette méthode rapide et économique permet d'étudier les mécanismes moléculaires et les stratégies thérapeutiques.

Modèle d’anévrisme de l’aorte abdominale de souris induit par le phosphate de calcium

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