Mise en place d’un modèle simple et efficace chez le rat pour l’imagerie peropératoire des glandes parathyroïdes

La glande parathyroïde est un petit organe avec des fonctions très importantes. Notre protocole peut être utilisé pour développer de nouvelles technologies d’identification PG qui peuvent aider les chirurgiens à le protéger pendant la thyroïdectomie pour le cancer de la thyroïde. Le principal avantage de ce modèle est qu’il peut observer une nette différence entre la thyroïde et les PG grâce à l’imagerie négative de l’IONP.

De plus, le coût et la difficulté opérationnelle sont considérablement inférieurs pour ce modèle de rat que pour les modèles de grands animaux. Pour commencer, placez un coussin chauffant préchauffé sur la table d’opération afin de maintenir la température corporelle de l’animal pendant la chirurgie, puis transférez le rat anesthésié vers un champ chirurgical placé sur la table d’opération. À l’aide d’élastiques, fixez les membres du rat à la table d’opération et placez un oreiller cylindrique en drapé sous l’épaule du rat pour pencher sa tête en arrière, exposant complètement la région du cou, puis appliquez une crème dépilatoire sur la région du cou, jusqu’à l’espace sous-maxillaire, jusqu’au processus xiphoïde et des deux côtés à l’extérieur du muscle sternocléidomastoïdien.

Après trois minutes, essuyez délicatement les cheveux et la crème dépilatoire avec un mouchoir. Ensuite, à l’aide d’une boule de coton iodophore, stérilisez le milieu du cou et la zone environnante. dont les poils sont enlevés.

Couvrez l’animal avec un champ chirurgical, en gardant le trou aligné avec la zone désinfectée. À l’aide du scalpel, faites une incision longitudinale d’environ cinq centimètres dans la ligne médiane antérieure du cou du rat. Soulevez la peau le long des deux côtés de l’incision et, à l’aide de ciseaux, coupez longitudinalement le long de la linea alba cervicalis.

Utilisez une pince pour séparer le muscle sternohyoïdien et le muscle sternothyroïdien. Serrez les muscles séparés devant le cou à l’aide d’une pince vasculaire et tirez le tissu serré à l’extérieur. À l’aide de l’aiguille, passez la suture à travers le tissu serré.

Faites un nœud et fixez la suture au champ chirurgical de la table d’opération. Localisez le cartilage thyroïdien en fonction de sa forme de bouclier et le cartilage cricoïde en fonction de sa forme d’anneau comme limite supérieure dans la zone d’opération, puis localisez la trachée en fonction de sa forme d’anneau cartilagineux tubulaire à l’avant et au milieu du cou comme limite inférieure dans la zone d’opération. Localisez la glande thyroïde, une glande rouge en forme de papillon située de l’autre côté de la trachée entre les limites supérieure et inférieure.

Ensuite, localisez deux glandes parathyroïdes de forme fusiforme qui sont rougeâtres, mais plus légères que la glande thyroïde environnante avec une certaine limite sur les côtés supérieur et externe de la glande thyroïde. Prenez une photo frontale des glandes parathyroïdes avec la trachée, la thyroïde et le larynx. Disséquez l’arrière de l’œsophage et, à l’aide d’un rétracteur, exposez le côté droit des glandes parathyroïdes.

Prenez une photo de droite des glandes parathyroïdes avec la glande thyroïde et la trachée, et exposez et capturez de la même manière le côté gauche des glandes. Utilisez une seringue à insuline pour injecter localement 10 microlitres de suspension de nanoparticules d’oxyde de fer noir au centre de la glande thyroïde et appuyez doucement sur le site d’injection avec de la gaze pendant cinq secondes, puis observez la diffusion rapide des nanoparticules d’oxyde de fer noir dans les glandes thyroïdes, mais pas dans les glandes parathyroïdes, car cela colore négativement les glandes parathyroïdes et les différencie de la thyroïde environnante. Prenez les photos avant, gauche et droite des glandes parathyroïdes colorées négativement ainsi que de la trachée, de la glande thyroïde et du larynx.

Après injection, l’agent de contraste, les nanoparticules d’oxyde de fer noir, diffuse facilement dans la glande thyroïde et la colore en noir, mais ne peut pas infiltrer la glande parathyroïde en raison de leur densité tissulaire élevée. L’analyse histologique de nanoparticules d’oxyde de fer noir injectées dans la glande thyroïde a révélé que les glandes parathyroïdes sont enrichies de cellules principales étroitement alignées, tandis que la glande thyroïde présente de nombreuses lumières lâches indiquant une densité tissulaire beaucoup plus faible. Deux choses importantes doivent être rappelées dans cette procédure.

Tout d’abord, la posture du rat. Nous avons recommandé de pencher les oreilles et la tête en arrière, exposant complètement la région du cou. Deuxièmement, lorsque nous injectons les IONPs, nous devrions utiliser une aiguille fine car la surface thyroïdienne est pleine de vaisseaux sanguins.

Cette procédure peut également être réalisée par imagerie par autofluorescence du PG, qui est non invasive, fournit des informations en temps réel et n’utilise pas de colorant comme agent de contraste, mais le signal d’autofluorescence est faible et l’efficacité de l’imagerie est également faible. D’autres chercheurs peuvent utiliser ce modèle de rat simple et efficace pour développer et évaluer de nouvelles technologies et produits d’identification PG au lieu d’utiliser de grands animaux plus compliqués et coûteux tels que les chiens et les porcs.