Name: Évaluation systématique de spécimens de crânes de mammifères pour la pathologie dentaire et de l’articulation temporo-mandibulaire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 26 s
Description: Découvrez l'évaluation systématique de spécimens de crânes de mammifères pour la pathologie dentaire et l'articulation temporo-mandibulaire. Cette méthode fournit des résultats reproductibles pour l'anatomie maxillofaciale.

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Les auteurs remercient le Département d’ornithologie et de mammalogie de l’Académie des sciences de Californie à San Francisco, le Museum of Vertebrate Zoology de l’Université de Californie à Berkeley et le Museum of the North de l’Université de l’Alaska à Fairbanks d’avoir mis leurs collections à disposition pour cette recherche.

La présente étude a été menée à l’aide de spécimens du Département d’ornithologie et de mammalogie de l’Académie des sciences de Californie à San Francisco, du Museum of Vertebrate Zoology de l’Université de Californie à Berkeley et du Museum of the North de l’Université de l’Alaska à Fairbanks. L’autorisation d’examiner des spécimens de crânes et de publier des œuvres à partir des données a été obtenue auprès des musées qui possèdent et gèrent chaque collection.
1. Sélection des spécimens et documentation
<ol><li>Documenter les renseignements sur les spécimens, y compris les numéros d’identification, l’espèce, le sexe et le lieu d’origine. REMARQUE : Le nombre de spécimens conservés dans une collection donnée, ainsi que les détails des spécimens, peuvent être disponibles via la solution de gestion collaborative des collections Arctos (voir le tableau des matériaux). Aux fins de la présente étude, on a pris en compte les crânes de l’éléphant de mer du Nord (Mirounga angustirostris), du lynx roux de Californie (Lynx rufus californicus), du renard gris (Urocyon cinereoargenteus), de l’otarie à fourrure du Nord (Callorhinus ursinus), de la loutre de mer du Sud (Enhydra lutris nereis), du lion de montagne de Californie (Couguar Puma conolor) et du renard nain (Vulpes macrotis).</li>
	<li>Examinez le crâne pour vérifier l’exhaustivité des structures anatomiques. N’incluez pas de crânes gravement fragmentés de sorte que les structures anatomiques normales soient méconnaissables sans reconstruction approfondie.</li>
	<li>Si possible, estimer l’âge de l’échantillon au moment du décès en fonction de la fermeture des sutures crâniennes. Consultez la documentation pertinente pour connaître le moment de la fermeture de la suture crânienne, car cela varie pour chaque espèce cible.</li>
	<li>Remplacez les dents lâches par leurs alvéoles correspondantes. Utiliser les descriptions anatomiques publiées des espèces étudiées pour aider à reconnaître le type de dent de chaque dent lâche 25,26,27,28,29,30.</li>
</ol>2. Résultats anatomiques et développementaux
<ol><li>Inspectez successivement chaque quadrant dentaire et notez la présence ou l’absence de dents.</li>
	<li>Classer la perte de chaque dent comme congénitalement absente par rapport à la perte de dents acquises par rapport à l’absence artificielle. Examinez la zone de la dent manquante pour une marge osseuse lisse (congénitale), une alvéole vide avec un os alvéolaire de remodelage (acquis) ou une alvéole vide mais fortement soulignée (artificielle).</li>
	<li>Documentez toute dent caduque persistante ou toute dent surnuméraire (figure 1).</li>
	<li>Examinez la forme de chaque couronne dentaire et toute structure racinaire visible. Documentez le nombre de racines en examinant les dents détachées de leurs alvéoles. REMARQUE : Pour les dents qui ne peuvent pas être retirées de leur alvéole, les racines surnuméraires peuvent être identifiées par une protubérance supplémentaire, habituellement sur la face palatine ou linguale de la dent, ou par radiographies dentaires (Figure 2).</li>
	<li>Documenter la présence d’une hypoplasie de l’émail, caractérisée par un amincissement ou l’absence de la couche d’émail blanche réfléchissante de la dent, révélant la surface plus rugueuse de la dentine jaune beige.</li>
</ol>3. État parodontal
<ol><li>Utilisez une sonde parodontale en métal ou en plastique et un explorateur (voir le tableau des matériaux) pour déterminer la texture de l’os alvéolaire afin de déceler la présence de parodontite31. NOTE: Il n’y a pas de tissus mous, donc la gingivite ne peut pas être diagnostiquée, mais une vascularisation accrue, comme en témoigne un plus grand nombre de foramina vasculaires, indique une parodontite précoce (Figure 3).</li>
	<li>Testez la présence d’une implication ou d’une exposition à la furcation en essayant d’insérer la sonde parodontale entre les racines de chaque dent à racines multiples. Selon le nombre de racines, plusieurs zones peuvent être nécessaires pour tester la furcation.</li>
	<li>Utiliser un protocole normalisé pour identifier les stades de l’aggravation progressive de la parodontite (tableau 1)32.</li>
</ol>4. Dents fracturées et lésions périapicales
<ol><li>Examiner chaque dent à la recherche d’une fracture, indiquée par la perte de substance dentaire avec des arêtes vives (figure 4).</li>
	<li>Déterminez si chaque fracture est compliquée ou non compliquée en essayant d’insérer l’explorateur dans la chambre pulpaire à partir du site fracturé. Les fractures compliquées sont indiquées par la pointe de l’explorateur tombant dans la chambre pulpaire.</li>
	<li>Consigner chaque type de fracture en fonction d’un système de classification normalisé (tableau 2)33.</li>
	<li>Examiner les dents à la recherche de signes de lésions périapicales, caractérisées par une expansion de l’os alvéolaire dans la région de l’apex de la racine de la dent avec des signes de vascularisation accrue (Figure 5). La fenestration au-dessus de l’agrandissement peut être présente ou non.</li>
</ol>5. Attrition/abrasion
<ol><li>Examiner chaque dent pour détecter l’attrition ou l’abrasion, indiquée par la perte de substance dentaire d’aspect lisse et vitreux et de bords arrondis (figure 6).</li>
	<li>Utilisez l’explorateur pour déterminer l’exposition de la chambre de pâte à partir de la région abrasée en essayant d’insérer l’embout de l’explorateur dans la chambre à pâte.</li>
	<li>Classer le degré d’attrition/abrasion de chaque dent à l’aide d’un système de classification normalisé (tableau 3)11. REMARQUE : Certaines espèces peuvent être plus sensibles à l’attrition ou à l’abrasion que d’autres en raison de leur comportement naturel. Par conséquent, la mise en scène de la gravité de l’attrition/abrasion peut être indiquée, ou le simple fait d’enregistrer la présence ou l’absence d’attrition/abrasion peut suffire.</li>
</ol>6. Pathologie de l’articulation temporo-mandibulaire
<ol><li>Inspecter les composantes osseuses de l’ATM, y compris la tête de la mandibule du processus condylien et la fosse mandibulaire de la partie pavimenteuse de l’os temporal, à la recherche de signes de pathologie de l’articulation temporo-mandibulaire, en excluant les artefacts tels que les traumatismes post-mortem (p. ex. « dommages au tiroir » ou artefacts de préparation)31 (figure 6).</li>
	<li>Inspecter indépendamment la tête mandibulaire et la fosse des deux côtés et utiliser un système de notation semi-quantitatif pour l’arthrose (OA) pour classer les lésions associées à chaque os (tableau 4)34.</li>
</ol>7. Traumatisme
<ol><li>Examinez le crâne à la recherche de tout signe de blessure traumatique. NOTE: La lésion traumatique chronique peut être différenciée de la lésion traumatique aiguë en fonction de la netteté des bords de la fracture et de toute preuve de remodelage osseux. Notez également que certaines espèces sauvages sont sujettes à des blessures par balle et que des blessures d’entrée / sortie peuvent être reconnues, ainsi que des restes de projectiles.</li>
</ol>8. Vérification d’autres paramètres
<ol><li>Selon l’espèce, examinez le crâne à la recherche d’anomalies supplémentaires.</li>
	<li>Vérifiez la résorption dentaire ou la perte de tissu dur dentaire due à la destruction odontoplaste idiopathique, qui est le plus souvent observée chez les félidés et peut être diagnostiquée radiographiquement par une perte de radiodensité avec ou sans perte de l’espace des ligaments parodontaux 19,21,35. REMARQUE: Les lésions de résorption dentaire peuvent également être ressenties avec un explorateur dentaire comme une rugosité dans la région cervicale de la dent, mais une confirmation radiographique est nécessaire pour le diagnostic.</li>
	<li>Vérifiez l’échinocrome, coloration violet foncé des tissus durs du crâne, car la consommation de certaines espèces d’échinodermes pigmentés peut être observée chez les loutres11.</li>
	<li>Vérifiez les caries dentaires, qui sont des caries de la surface de la dent liées au métabolisme des glucides alimentaires des bactéries acidogènes36. NOTE: Les lésions carieuses peuvent être découvertes en sondant la surface occlusale des dents avec une sonde dentaire pour révéler des piqûres ou des irrégularités17,18.</li>
	<li>Documenter les signes d’ostéomyélite ou de néoplasie, caractérisés par des lésions osseuses productives/destructrices irrégulières37. Consigner ces données de manière descriptive et inclure des mesures objectives de toute lésion.</li>
</ol>

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<li>Clark, E. J., Chesnutt, S. R., Winer, J. N., Kass, P. H., Verstraete, F. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dental+and+temporomandibular+joint+pathology+of+the+American+black+bear+%28Ursus+americanus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Pathology%22%5BJournal%5D)">Dental and temporomandibular joint pathology of the American black bear (Ursus americanus).</a> Journal of Comparative Pathology. 156 (2-3), 240-250 (2017).</li>
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<li>Aghashani, A., Kim, A. S., Kass, P. H., Verstraete, F. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dental+pathology+of+the+California+bobcat+%28Lynx+rufus+californicus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Pathology%22%5BJournal%5D)">Dental pathology of the California bobcat (Lynx rufus californicus).</a> Journal of Comparative Pathology. 154 (4), 329-340 (2016).</li>
<li>Winer, J. N., Arzi, B., Leale, D. M., Kass, P. H., Verstraete, F. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dental+and+temporomandibular+joint+pathology+of+the+walrus+%28Odobenus+rosmarus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Pathology%22%5BJournal%5D)">Dental and temporomandibular joint pathology of the walrus (Odobenus rosmarus).</a> Journal of Comparative Pathology. 155 (2-3), 242-253 (2016).</li>
<li>Aghashani, A., Kim, A. S., Kass, P. H., Verstraete, F. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dental+and+temporomandibular+joint+pathology+of+the+California+mountain+lion+%28Puma+concolor+couguar%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Pathology%22%5BJournal%5D)">Dental and temporomandibular joint pathology of the California mountain lion (Puma concolor couguar).</a> Journal of Comparative Pathology. 156 (2-3), 251-263 (2017).</li>
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<li>Thrall, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aThrall%2C+DE+%22Textbook+of+Veterinary+Diagnostic+Radiology%22">Textbook of Veterinary Diagnostic Radiology</a>. , Elsevier. St. Louis, MO. (2012).</li>
<li>Tsugawa, A. J., Verstraete, F. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+to+obtain+and+interpret+periodontal+radiographs+in+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Techniques+in+Small+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">How to obtain and interpret periodontal radiographs in dogs.</a> Clinical Techniques in Small Animal Practice. 15 (4), 204-210 (2000).</li>
<li>Villamizar-Martinez, L. A., Tsugawa, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+imaging+of+oral+and+maxillofacial+anatomy+and+pathology%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Clinics+of+North+America%3A+Small+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Diagnostic imaging of oral and maxillofacial anatomy and pathology.</a> Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice. 52 (1), 67-105 (2022).</li>
<li>Plesker, R., Schulze, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dental+disease+in+slender+lorises+%28Loris+tardigradus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Zoo+Biology%22%5BJournal%5D)">Dental disease in slender lorises (Loris tardigradus).</a> Zoo Biology. 32 (5), 571-574 (2013).</li>
<li>Cabana, F., Nekaris, K. A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diets+high+in+fruits+and+low+in+gum+exudates+promote+the+occurrence+and+development+of+dental+disease+in+pygmy+slow+loris+%28Nycticebus+pygmaeus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Zoo+Biology%22%5BJournal%5D)">Diets high in fruits and low in gum exudates promote the occurrence and development of dental disease in pygmy slow loris (Nycticebus pygmaeus).</a> Zoo Biology. 34 (6), 547-553 (2015).</li>
<li>Kahle, P., Ludolphy, C., Kierdorf, H., Kierdorf, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dental+anomalies+and+lesions+in+Eastern+Atlantic+harbor+seals%2C+Phoca+vitulina+vitulina+%28Carnivora%2C+Phocidae%29%2C+from+the+German+North+Sea%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Dental anomalies and lesions in Eastern Atlantic harbor seals, Phoca vitulina vitulina (Carnivora, Phocidae), from the German North Sea.</a> PLoS One. 13 (10), 1-25 (2018).</li>
<li>Ludolphy, C., Kahle, P., Kierdorf, H., Kierdorf, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoarthritis+of+the+temporomandibular+joint+in+the+Eastern+Atlantic+harbour+seal+%28Phoca+vitulina+vitulina%29+from+the+German+North+Sea%3A+A+study+of+the+lesions+seen+in+dry+bone%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">Osteoarthritis of the temporomandibular joint in the Eastern Atlantic harbour seal (Phoca vitulina vitulina) from the German North Sea: A study of the lesions seen in dry bone.</a> BMC Veterinary Research. 14 (1), 1-14 (2018).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

L’anatomie des dents et des mâchoires est un exemple par excellence d’évolution divergente et reflète fidèlement l’histoire naturelle, le comportement et l’état de santé d’une espèce. La santé buccodentaire d’une personne peut jouer directement dans sa survie et sa forme physique. La présente étude décrit une manière systématique, reproductible et détaillée d’évaluer la santé dentaire et les anomalies de l’ATM des spécimens de musée qui peuvent refléter une pathologie dans les populations vivantes.
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Le développement des mâchoires et des dents marque un moment critique dans l’évolution et le développement des vertébrés. Alors que les mâchoires se sont initialement développées dans le cadre d’un mécanisme de respiration chez les espèces aquatiques et marines, les dents offraient une nouvelle façon d’appréhender et de traiter les proies 1,2. Depuis le développement des mâchoires et des dents, les organismes ont évolué d’innombrables variations anatomiques qui correspondent à leur fonction et reflètent le rôle écologique auquel ils appartiennent. En raison de leur nature minéralisée, les dents et les crânes représentent une abondance d’informations qui persistent dans l’environnement et les archives fossiles et peuvent offrir une myriade d’informations sur l’écologie, l’état de santé et le comportement des individus et, par extension, des espèces.
L’acquisition d’informations relatives aux dents et aux mâchoires des animaux et la caractérisation de la forme et de la pathologie présente de nombreux avantages. La reconnaissance des processus pathologiques courants peut améliorer les efforts de conservation des espèces sauvages et optimiser les soins aux animaux captifs 3,4,5. Par exemple, l’information recueillie à partir de spécimens de crânes de musée a été utilisée pour faire des inférences sur l’exposition du phoque gris de la Baltique (Halichoerus grypus) et des phoques communs (Phoca vitulina) aux polluants environnementaux tels que les organochlorés au fil du temps6,7, bien qu’une relation causale entre les lésions orofaciales et les polluants n’ait pas été confirmée. En outre, les maladies de la cavité buccale sont parmi les maladies les plus répandues chez les espèces domestiques, et la compréhension de l’état de santé buccodentaire des espèces sauvages peut faire progresser la médecine clinique et la gestion des espèces domestiques 8,9.
Comme les animaux ont développé une telle variation de la forme craniofaciale normale et de la dentition, il peut être difficile de caractériser et de comparer ces aspects entre les espèces. Comprendre l’écologie et le comportement naturel d’un organisme, ainsi que son environnement typique, est impératif avant de tenter d’examiner son crâne. Cela entraînera la formation de questions et d’hypothèses sur la dentition d’une espèce particulière et enrichira inévitablement les conclusions de l’analyse des données. Par exemple, il est essentiel de reconnaître que le régime alimentaire typique de la loutre de mer du Sud (Enhydra lutris nereis) comprend des mollusques à carapace dure, des crustacés et des échinodermes pour contextualiser le degré et l’effet de l’attrition et/ou de l’abrasion des dents10,11. Bien que l’on puisse supposer la probabilité qu’un individu d’une espèce développe certaines maladies dentaires, il est essentiel de disposer d’un protocole systématique, précis et reproductible pour évaluer la pathologie dentaire. Cela devrait inclure une évaluation de l’occlusion, des résultats anatomiques et développementaux, de la maladie parodontale, des résultats endodontaux et de la pathologie de l’articulation temporo-mandibulaire (ATM). L’élaboration d’un tel protocole avec une analyse statistique similaire permettra une comparaison détaillée des maladies dentaires et de l’ATM d’une espèce à l’autre. Une méthode systématique a été utilisée pour caractériser la pathologie des articulations dentaires et temporo-mandibulaires chez de nombreuses espèces de mammifères et s’est avérée transposable à des organismes de formes diverses 11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22, 23,24.
Pour comparer les données futures sur d’autres espèces, il est important d’avoir une méthode acceptée pour évaluer les maladies des dents et des mâchoires qui peut être appliquée à une variété d’espèces. Cet article vise à détailler une approche standardisée et organisée pour évaluer la pathologie dentaire et ATM des échantillons de crâne.

<table><tbody><tr><td>Solution collaborative de gestion de collection Arctos</td><td>https://arctosdb.org</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gants</td><td></td><td></td><td></td>en nitrile jetables</tr><tr><td>Explorateur/sonde dentaire à double extrémité, poignée #2</td><td>Hu Friedy</td><td>541-5860</td><td></td></tr><tr><td>Appareil photo</td><td></td><td></td><td></td>numérique haute résolution</tr><tr><td>Source</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>lumineuse Loupe ( En option)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Loupes de grossissement chirurgicales (en option)</td><td>Surgitel</td><td>EVC00TTL</td><td></td></tr></tbody></table>

Évaluation systématique de spécimens de crânes de mammifères pour la pathologie dentaire et de l’articulation temporo-mandibulaire

Systematic Assessment of Mammalian Skull Specimens for Dental and Temporomandibular Joint Pathology

Les spécimens de crânes de musée représentent un moyen non invasif, informatif et facilement accessible d’étudier les lésions de l’articulation temporo-mandibulaire (ATM), la pathologie dentaire et les variations anatomiques chez de nombreuses espèces de mammifères. L’étude des dents et des mâchoires d’un éventail d’espèces peut présenter un défi nécessitant une attention aux détails et une compréhension de l’anatomie normale d’une espèce. Dans le présent article, un protocole systématique et précis d’examen des spécimens de crâne est discuté qui a été appliqué à une variété de mammifères pour définir les maladies caractéristiques dans la région oromaxillo-faciale. La procédure décrite est à la fois précise, reproductible et adaptable aux formes et à l’anatomie très différentes du crâne et des dents d’une espèce à l’autre. Plus précisément, les échantillons sont examinés pour les dents manquantes, les maladies parodontales, les maladies endodontales, la pathologie de l’ATM et les variations anatomiques. Les résultats de la recherche sur les spécimens de musée peuvent refléter l’histoire naturelle, la santé et l’état pathologique des individus et des espèces. De plus, ces données peuvent éclairer les efforts de recherche écologique et de conservation, ainsi que les soins aux individus captifs.

Le protocole actuel aboutit à une combinaison de données objectives et semi-subjectives, et le résultat positif dépend de l’évaluation précise et reproductible des échantillons. Plusieurs observateurs connaissant l’anatomie normale de l’espèce cible et comprenant la pathologie dentaire et maxillo-faciale générale doivent idéalement être présents pour évaluer chaque échantillon afin de minimiser systématiquement les biais. L’évaluation de chaque spécimen doit être discutée et un consensus doit être obtenu. Aucun seuil pou...

Le présent protocole décrit les techniques d’évaluation systématique des échantillons de crâne afin de caractériser les variations anatomiques et développementales et les anomalies des dents, les maladies parodontales, les maladies endodontales et les pathologies de l’articulation temporo-mandibulaire.

Museum skull specimens represent a non-invasive, informative, and readily available means to study temporomandibular joint (TMJ) lesions, dental ...

Nous collaborons depuis un certain temps avec l’Académie des sciences de Californie et d’autres musées pour documenter la pathologie dentaire des mammifères de l’ouest des États-Unis, y compris les ours, les mammifères marins, les félidés et les canidés, et l’avantage de cette technique qui permet d’obtenir des résultats reproductibles à travers les espèces. Notre protocole est un excellent moyen de mettre en œuvre la méthode scientifique. Les projets antérieurs ont été formateurs pour les étudiants vétérinaires et les étudiants prédentaires, et les collaborateurs ont développé une compréhension de l’anatomie maxillo-faciale normale, de l’analyse de données et de la rédaction scientifique.L’articulation temporo-mandibulaire, ou ATM, est l’une des articulations les plus importantes du corps des mammifères, car elle affecte la respiration, l’alimentation, la boisson et d’autres fonctions telles que la protection. Les informations obtenues à partir de l’étude de l’ATM et de ses troubles sont cruciales pour la science de la conservation, car elles affectent la survie et la condition physique. Ce protocole peut donner un aperçu de la santé des animaux de compagnie et des animaux exotiques, de la biologie évolutive et de l’écologie. Cette méthode est spécifique à la région maxillo-faciale buccale des espèces de mammifères.Les conditions préalables à l’utilisation de cette méthodologie sont d’avoir une bonne compréhension de l’anatomie normale de l’espèce et d’avoir une bonne connaissance pratique de la pathologie dentaire en général pour reconnaître les lésions. Documenter les renseignements sur le spécimen, y compris les numéros d’identification, l’espèce, le sexe et le lieu d’origine. Examinez le crâne pour vérifier l’exhaustivité des structures anatomiques.Estimer l’âge de l’échantillon au moment du décès en fonction de la fermeture des sutures crâniennes. Pour le crâne de renard gris, les jeunes adultes ont des sutures ouvertes à la base du crâne, tandis que les sutures des adultes plus âgés se sont fermées. Consultez la documentation pertinente pour connaître le moment de la fermeture de la suture crânienne, car cela varie pour chaque espèce cible.Remplacez les dents lâches par leurs alvéoles correspondantes. Inspectez chaque quadrant dentaire successivement et notez la présence ou l’absence de dents. Classer la perte de chaque dent comme étant soit congénitalement absente ou acquise perte de dent, soit artificiellement absente.Documentez les dents caduques persistantes ou les dents surnuméraires. Examinez la forme de la couronne de chaque dent et toute structure racinaire visible. Documentez le nombre de racines en examinant les dents lâches de leurs alvéoles.Examinez les dents à la recherche de racines supplémentaires. Utilisez une sonde parodontale en métal ou en plastique et un explorateur pour déterminer la texture de l’os alvéolaire à la recherche de signes de parodontite. Essayez d’insérer la sonde parodontale entre les racines de chaque dent à racines multiples pour vérifier la présence d’une implication ou d’une exposition à la furcation.Selon le nombre de racines, plusieurs zones doivent être testées pour la furcation. Examinez chaque dent pour détecter une fracture comme l’indique la perte de substance dentaire avec des arêtes vives. Pour déterminer si chaque fracture est compliquée ou non, essayez d’insérer la sonde dans la chambre pulpaire à partir du site fracturé.Examiner les deux côtés du crâne et les dents pour trouver des signes de lésions périapicales caractérisées par une expansion de l’os alvéolaire dans la région de l’apex de la racine de la dent avec des signes de vascularisation accrue. Examinez chaque dent pour détecter l’attrition ou l’abrasion indiquée par la perte de substance dentaire avec un aspect lisse et vitreux et des bords arrondis. Essayez d’insérer l’embout de l’explorateur dans la chambre de pâte pour déterminer l’exposition de la chambre de pâte à partir de la région abrasée.Inspectez les composants osseux de l’articulation temporo-mandibulaire, y compris la tête de la mandibule, le processus condylien et la fosse mandibulaire de l’os temporal squameux. Vérifiez les signes de pathologie de l’articulation temporo-mandibulaire, tout en excluant les artefacts tels que les traumatismes post-mortem, les dommages aux tiroirs ou les artefacts de préparation. Ensuite, examinez le crâne à la recherche de signes de blessure traumatique.Le protocole actuel aboutit à une combinaison de données objectives et semi-subjectives, et le résultat dépend de l’évaluation précise et reproductible des spécimens; par exemple, chez Mirounga angustirostris, des dents caduques persistantes ont été observées, et une racine surnuméraire a été observée chez Lynx rufus californicus. Chez Urocyon cinereoargenteus, une parodontite de stade deux a été observée, caractérisée par une vascularisation accrue de l’os alvéolaire. Le troisième stade était caractérisé par une perte osseuse modérée et une atteinte de furcation.Le stade quatre était caractérisé par une perte osseuse alvéolaire sévère. Des dents fracturées ont été observées chez Callorhinus ursinus et des lésions périapicales chez Enhydra lutris nereis. L’arthrose de l’articulation temporo-mandibulaire a été observée chez le couguar Puma concolor avec une surface articulaire irrégulière, une exposition osseuse sous-chondrale et une porosité des processus condyliens mandibulaires.Un échantillon exempt de toute pathologie détectable ou d’une maladie minimale ou d’une variation anatomique a été trouvé et documenté pour servir de norme de comparaison. Les aspects les plus importants de ce protocole sont la familiarité avec l’anatomie maxillo-faciale et dentaire normale d’une espèce, la reconnaissance des tissus affectés et la documentation diligente des résultats. Les études futures de l’ATM fourniront des informations sur l’histologie, la biomécanique et l’observation de l’animal dans la nature.Cela mettra en contexte la pathologie trouvée dans le spécimen de musée. Notre travail a fourni une méthodologie solide pour l’analyse et a fourni des points de référence importants pour le travail comparatif avec d’autres espèces dans d’autres parties du monde.

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Dans cette étude, l'utilisation d'un dispositif de chargement in situ couplée à la tomographie micro-ordinateur à rayons X pour la biomécanique articulaire fibreux en sera discuté. Lectures expérimentales identifiables avec un changement global de la biomécanique articulaire seront les suivants: 1) les forces réactionnaires en fonction du déplacement, c'est-dent déplacement dans l'alvéole et sa réponse réactionnaire à charge, 2) en trois dimensions (3D) configuration spatiale et...

In situ à la compression de chargement et d&#39;imagerie non invasive corrélative de l&#39;os-ligament parodontal-dent Fort commune

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Ici, nous présentons un protocole pour l’étude du mouvement des dents orthodontiques (OTM), servant de modèle approprié pour étudier les mécanismes d’adaptation osseuse, de résorption radiculaire et de réponse des cellules osseuses aux stimuli mécaniques. Ce guide complet fournit des informations détaillées sur le modèle OTM, l’acquisition de la micro-tomodensitométrie et l’analyse ultérieure.

Étude du mouvement orthodontique des dents chez la souris

Ce protocole décrit comment la mesure de la force de morsure et du seuil de retrait de la tête peut capturer le comportement de la douleur dans la douleur inflammatoire de l’articulation temporo-mandibulaire (ATM) induite par l’adjuvant de Freund complet (CFA).

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Ici, nous décrivons en profondeur une méthode, basée sur la tomographie micro-informatisée, pour segmenter et mesurer des modèles 3D d’os craniomaxillo-faciaux chez la souris, afin de mieux évaluer le développement de l’os craniomaxillo-facial chez la souris que ce qui est possible avec les méthodes actuelles.

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Évaluation systématique de spécimens de crânes de mammifères pour la pathologie dentaire et de l’articulation temporo-mandibulaire

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