Name: Extraction dynamique continue de sang du cœur de rat par une technique de microdialyse non invasive (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-09-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 52 s
Description: Découvrez une méthode de microdialyse non invasive pour le prélèvement dynamique continu de sang cardiaque chez le rat. Cette technique permet l'analyse en temps réel des biomarqueurs sanguins pour la recherche cardiovasculaire.

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Ce travail a été soutenu par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (82104533), la Fondation chinoise des sciences postdoctorales (2020M683273), le Département des sciences et de la technologie de la province du Sichuan (2021YJ0175) et le projet de R&D clé du Plan provincial des sciences et technologies du Sichuan (2022YFS0438). En attendant, les auteurs tiennent à remercier M. Yuncheng Hong, ingénieur principal en équipement chez TRI-ANGELS D&H TRADING PTE. LTD. (Singapour, Singapour), pour avoir fourni des services techniques pour les techniques de microdialyse.

Le protocole animal a été approuvé par le Comité administratif de l’Université de médecine traditionnelle chinoise de Chengdu (Numéro d’enregistrement: 2021-11). Des rats Sprague Dawley mâles (SD) exempts d’agents pathogènes spécifiés (8 à 10 semaines, 260 à 300 g) ont été élevés dans des cages de ventilation indépendantes, maintenant l’environnement de laboratoire à 22 °C et à 65 % d’humidité relative, et ont été utilisés pour la présente étude. Les animaux ont été obtenus d’une source commerciale (voir le tableau des matériaux). Tous les rats ont été habitués à une alimentation adaptative pendant 1 semaine avec de l’eau et un régime gratuits pendant la période.
1. Préparation expérimentale
<ol><li>Assembler l’équipement utilisé pour la microdialyse ou le prélèvement sanguin (voir le tableau des matières), comme le montre la figure 1.</li>
	<li>Préparer une solution anticoagulante de citrate de dextrose (DCA), contenant 3,50 mmol/L de citrate, 7,50 mmol/L de citrate de sodium et 13,60 mmol/L de glucose, comme liquide de perfusion pour le prélèvement sanguin de microdialyse (voir le tableau des matières).</li>
	<li>Avant utilisation, filtrer les DCA avec une unité de filtration membranaire de 0,22 μm et éliminer les bulles par ultrasons. Maintenir les DCA à 37 °C pour réduire la stimulation chez les rats SD.</li>
</ol>2. Inspection par perméabilité du système de tuyauterie de microdialyse
<ol><li>Fixez l’entrée de la sonde de l’unité de dialyse à l’aide de l’aiguille de la seringue, de l’adaptateur de tubulure et de la tubulure fep (voir le tableau des matériaux). REMARQUE: L’extrémité bleue de la sonde de microdialyse est pour l’afflux de liquide, et l’extrémité transparente est pour l’écoulement de liquide.</li>
	<li>Vérifiez la perméabilité du système de tuyauterie de microdialyse en perfusant ACDs18 dans le système de tuyauterie à une vitesse de 2 μL/min. REMARQUE: Si des DCA s’écoulent du site de prélèvement de l’échantillon, le système de microdialyse sans entrave peut être utilisé pour un prélèvement sanguin cardiaque supplémentaire. Si ce n’est pas le cas, la sonde sanguine doit être vérifiée pour détecter les fuites brisées ou si le joint tuyau-tuyau a été scellé.</li>
</ol>3. Implantation de sonde de microdialyse
<ol><li>Anesthésier les rats avec de l’isoflurane à 2 % dans un mélange air-oxygène de 0,6 L/min, fixer les rats complètement inconscients sur la table d’opération et maintenir la température corporelle à 37 °C à l’aide d’un mainteneur de la température animale (voir le tableau des matériaux).</li>
	<li>Retirez la fourrure du cou avec un rasoir électrique et désinfectez le site chirurgical avec trois cycles alternés de bétadine et d’alcool à 70%. Injecter de la bupivacaïne (1,5 mg/kg) au rat. Exposer la veine jugulaire droite par dissection contondante des tissus mous et du fascia périvasculaire à travers une incision de 1,5 cm le long de la ligne médiane du cou. NOTE: Tous les instruments et outils chirurgicaux utilisés dans l’expérience doivent être stérilisés à l’avance par autoclavage. Utilisez des gants stériles et des champs chirurgicaux. Toute l’opération expérimentale doit être réalisée dans un environnement stérile. Suivez les directives locales d’utilisation des animaux pour l’anesthésie et le régime analgésique.</li>
	<li>Faites un slipknot détachable en utilisant une suture chirurgicale 4-0 dans la veine jugulaire droite à l’extrémité distale du cœur pour bloquer temporairement le flux sanguin, et faites une incision de 1,5 cm dans la veine jugulaire droite près du cœur.</li>
	<li>Insérer un stylet de cathéter en forme d’aiguille (longueur 25 mm, diamètre 0,7 mm, voir le tableau des matériaux) dans la veine jugulaire droite vers l’extrémité proximale du cœur du rat, insérer la sonde de microdialyse sanguine (longueur totale de la sonde 24 mm, longueur de la membrane 10 mm) dans un cathéter et implanter la sonde avec une pince ophtalmique le long de l’incision oblique du stylet du cathéter19.</li>
	<li>Retirez le stylet du cathéter guidé et immergez complètement la membrane semi-perméable de la sonde (longueur de la membrane 10 mm, diamètre de la membrane 0,5 mm) dans la veine jugulaire droite. Démêlez le nœud détachable à l’extrémité distale du cœur pour rétablir le flux sanguin dans la veine jugulaire droite.</li>
	<li>Ligature de la sonde avec la veine jugulaire droite à l’aide de sutures chirurgicales 4-0 et enfiler sous-cutanéement le tube de queue de la sonde à l’arrière du cou. Voir la figure 2 pour les étapes spécifiques d’implantation de la sonde. REMARQUE : La coupure moléculaire par la sonde de microdialyse sanguine utilisée dans cette étude est de >20 kD. Les échantillons de sang prélevés contiennent des substances dont le poids moléculaire est inférieur à 20 kD.</li>
</ol>4. Échantillonnage par microdialyse
<ol><li>Une semaine après l’implantation de la sonde de microdialyse, les rats qui se remettent d’un traumatisme chirurgical subissent un prélèvement de microdialyse. Placez le rat éveillé dans un réservoir en mouvement libre (voir le tableau des matériaux) et connectez la sonde au système de microdialyse. Équilibrer la membrane de dialyse de la sonde en irriguant les DCA à un débit de 2 μL/min pendant 1 h.</li>
	<li>Prélever des échantillons de sang de microdialyse à un débit de 2 μL/min et les conserver temporairement dans un contenant fractionné à 4 °C. REMARQUE: Les échantillons de sang obtenus peuvent être testés directement par centrifugation à 20 000 x g pendant 10 minutes à température ambiante. Ou il pourrait être conservé à -80 °C pour les tests suivants. Lors du prélèvement d’échantillons, il est important de toujours observer si la sonde prolapsus et/ou fuit.</li>
</ol>5. Opération de post-échantillonnage
<ol><li>Anesthésier les rats SD avec de l’isoflurane à 2 % dans un mélange air-oxygène à 0,6 L/min.</li>
	<li>Disséquer pour confirmer à nouveau que la sonde est dans la veine jugulaire droite. Retirez la sonde de microdialyse de la veine jugulaire droite et mettez-la dans de l’eau ultrapure.</li>
	<li>Enfin, euthanasier les rats par inhalation d’isoflurane à 5%.</li>
	<li>Connectez la sonde au pipeline et rincez pendant la nuit à raison de 2 μL/min avec de l’eau ultrapure pour éliminer complètement le sel résiduel dans le tuyau et la sonde.</li>
	<li>Retirez la sonde et trempez-la dans de l’eau ultrapure. Conserver à 4 °C pour éviter que la membrane de dialyse de la sonde ne se contracte. REMARQUE: Si le volume de liquide de dialyse est incompatible avec le volume de liquide de perfusion, la sonde peut être bloquée par du sang coagulé. La sonde peut être placée dans la solution protéique pancréatique jusqu’à ce que la substance visible s’écaillette de l’extrémité de la membrane de la sonde.</li>
</ol>

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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Les MCV sont une maladie chronique courante dans les cliniques dont l’incidence augmente progressivement en Chine, et l’âge d’apparition a tendance à être plus jeune, provoquant l’inquiétude et la panique de la plupart des patients20,21. Étant la principale cause de décès dans le monde, les MCV peuvent induire un infarctus cérébral et d’autres maladies à forte mortalité, menaçant gravement la vie saine des patients22. Les MCV, y compris le...

Avec l’accélération du rythme de vie et l’augmentation de la pression psychologique, les maladies cardiovasculaires (MCV) ont tendance à survenir chez les jeunes, les personnes d’âge moyen et les personnes âgées 1,2. La morbidité et la mortalité des MCV sont élevées, avec les caractéristiques d’apparition aiguë, de progression rapide et d’évolution longue de la maladie, qui affectent gravement la sécurité des patients3. L’apparition de MCV peut être étroitement liée aux changements dans certains composants sanguins, tels que le cholestérol, les lipides sériques, la glycémie, les enzymes myocardiques et la protéine kinase K 4,5,6. La situation pertinente du patient peut être gérée plus rapidement en analysant les éléments d’examen sanguin de routine. Par conséquent, la qualité des échantillons de sang détermine la précision des résultats des tests. Cependant, les méthodes conventionnelles de prélèvement sanguin présentent des inconvénients inévitables, qui affectent sérieusement les résultats expérimentaux, tels qu’une grande zone de traumatisme, un petit volume de collecte de sang, des exigences élevées pour les opérateurs, l’incapacité de refléter les changements de médicaments en temps réel, un prétraitement fastidieux des échantillons de sang, une consommation importante d’animaux de laboratoire et le non-respect des exigences éthiques animales 7,8,9 . Avec les progrès continus de la technologie médicale, la qualité de la collecte de sang a également mis en avant des exigences plus élevées. Par conséquent, il est urgent de développer une nouvelle technologie de prélèvement sanguin pour surmonter les lacunes ci-dessus.
La microdialyse est une technique d’échantillonnage in vivo basée sur les principes de dialyse10. Dans des conditions de non-équilibre, les composés à mesurer sont diffusés et perfusés du tissu le long du gradient de concentration dans la sonde de microdialyse intégrée dans le tissu dans le dialysat, qui est continuellement éliminée avec le dialysat, atteignant le but d’échantillonnage du tissu vivant11,12. Par rapport aux méthodes d’échantillonnage traditionnelles, la technique de microdialyse présente de splendides avantages dans les aspects suivants13,14,15: suivi continu en temps réel des changements de divers composés dans le sang; l’échantillonnage ne nécessite aucun prétraitement fastidieux et peut réellement représenter la concentration du composé cible sur le site d’échantillonnage; les sondes peuvent être implantées dans différentes parties du corps pour étudier l’absorption, la distribution, le métabolisme, l’excrétion et la toxicité des composés cibles; l’échantillon acquis ne contient pas de macromolécules biologiques (>20 kD). Par conséquent, les échantillons de sang de meilleure qualité assurent une meilleure interprétation des MCV et du mécanisme traité par la médecine ethnique.
Les systèmes d’échantillonnage de microdialyse se composent généralement de pompes de micro-injection, de tubes de raccordement, de réservoirs de mouvement sans animaux, de sondes de microdialyse et de collecteursd’échantillons 16. En tant que partie la plus critique du dispositif du système de microdialyse, les sondes de microdialyse courantes comprennent des sondes concentriques, des sondes flexibles, des sondes linéaires et des sondes de dérivation17. Parmi celles-ci, les sondes flexibles sont des sondes souples et non métalliques, principalement utilisées pour prélever des échantillons dans les vaisseaux sanguins et les tissus périphériques tels que le cœur, les muscles, la peau et la graisse d’animaux éveillés et en mouvement libre ou anesthésiés13. Lorsqu’elle est en contact avec des vaisseaux sanguins ou des tissus, la sonde peut être pliée de manière flexible, évitant ainsi des dommages irréversibles à la sonde ou au site d’échantillonnage. Avec le développement continu de la technologie des sondes, l’application de la technologie de microdialyse dans divers domaines s’approfondit également. Dans cet article, le sang de cœur de rat a été acquis de manière dynamique et continue par la technologie de microdialyse non invasive grâce à la sonde flexible conçue pour la collecte de sang.

<table><tbody><tr><td>Système d’anesthésie animale</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>R500IE</td><td></td></tr><tr><td>Mainteneur de la température animale</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>69020</td><td></td></tr><tr><td>Sonde de microdialyse sanguine</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialyse AB</td><td>T55347</td><td></td></tr><tr><td>Cathéter</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialyse AB</td><td>T55347</td><td></td></tr><tr><td>Citrate</td><td>Merck Chemical Technology (Shanghai) Co., Ltd</td><td>251275</td><td></td></tr><tr><td>Rasoir électrique</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>CP-5200</td><td></td></tr><tr><td>Fep tubing</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialysis AB</td><td>3409501</td><td></td></tr><tr><td>Réservoir de libre circulation pour animaux</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialyse AB</td><td>CMA120</td><td></td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Merck Chemical Technology (Shanghai) Co., Ltd</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>Pince hémostatique</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>F21020-16</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>R510-22</td><td></td></tr><tr><td>Micro-ciseaux</td><td>Beyotime Biotechnology Co., Ltd</td><td>FS221</td><td></td></tr><tr><td>Microdialyse tube de collecte</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialyse AB</td><td>7431100</td><td></td></tr><tr><td>Collecteur de microdialyse</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialysis AB</td><td>CMA4004</td><td></td></tr><tr><td>Microdialyse in vitro stand</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialyse AB</td><td>CMA130</td><td></td></tr><tr><td>Pompe de micro-injection de microdilyse</td><td> CMA Microdialyse AB</td><td>788130</td><td></td></tr><tr><td>Seringue de microdialyse (1,0 mL)</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialysis AB</td><td>8309020</td><td></td></tr><tr><td>Adaptateur de tubulure de microdialyse</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialyse AB</td><td>3409500</td><td></td></tr><tr><td>Membrane filtrante microporeuse</td><td>Merck Millipore Ltd.</td><td></td><td></td>R0DB36622</tr><tr><td>Sutures chirurgicales non résorbables</td><td>Shanghai Tianqing Biological Materials Co., Ltd</td><td>S19004</td><td></td></tr><tr><td>Table d’opération</td><td>Yuyan Scientific Instrument Co., Ltd</td><td>30153</td><td></td></tr><tr><td>Pince ophtalmique</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>F12016-15</td><td></td></tr><tr><td>Citrate de sodium</td><td>Merck Chemical Technology (Shanghai) Co., Ltd</td><td>1613859</td><td></td></tr><tr><td>Sprague Dawley&amp;nbsp ; (SD) rats</td><td>Chengdu Dossy Experimental Animals Co., Ltd</td><td>SYXK(<img alt="Équation 1 » src=" style="margin : auto ; ">)2019-049</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux chirurgicaux</td><td>Rayward Life Technology Co., Ltd</td><td>S14014-15</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux chirurgicaux</td><td>Shanghai Bingyu Fluid technology Co., Ltd</td><td>BY-103</td><td></td></tr><tr><td>Aiguille de seringue</td><td>&amp;nbsp ; CMA Microdialyse AB</td><td>T55347</td><td></td></tr><tr><td>Nettoyeur à ultrasons</td><td>Guangdong Goote Ultrasonic Co., Ltd</td><td>KMH1-240W8101</td><td></td></tr></tbody></table>

extraction dynamique continue de sang du cœur de rat par une technique de microdialyse non invasive

Dynamic Continuous Blood Extraction from Rat Heart via Noninvasive Microdialysis Technique

L’analyse dynamique des composants sanguins est d’une grande importance pour comprendre les maladies cardiovasculaires et leurs maladies connexes, telles que l’infarctus du myocarde, l’arythmie, l’athérosclérose, l’œdème pulmonaire cardiogénique, l’embolie pulmonaire et l’embolie cérébrale. Dans le même temps, il est urgent de percer la technique de prélèvement sanguin cardiaque continu chez les rats vivants afin d’évaluer l’efficacité de la thérapie de médecine ethnique distinctive. Dans cette étude, une sonde de microdialyse sanguine a été implantée dans la veine jugulaire droite de rats lors d’une intervention chirurgicale précise et non invasive. Des échantillons de sang cardiaque ont ensuite été prélevés à un débit de 2,87 nL/min à 2,98 mL/min en se connectant à un système de prélèvement d’échantillons de microdialyse en ligne. Plus important encore, les échantillons de sang acquis peuvent être stockés temporairement dans des récipients de microdialyse à 4 ° C. Le programme de collecte continue de sang en ligne basé sur la microdialyse sur le cœur de rat a grandement garanti la qualité des échantillons de sang, faisant progresser et dynamisant la rationalité scientifique de la recherche sur les maladies cardiovasculaires systémiques et évaluant la thérapie ethnomédicale du point de vue de l’hématologie.

Le protocole actuel a permis d’obtenir le sang cardiaque de rats conscients selon les paramètres d’échantillonnage définis dans l’équipement de microdialyse. Les échantillons de sang normaux doivent être rouge vif, tandis que les animaux atteints d’hypoxie, de caillots sanguins potentiels ou de maladie anémique peuvent avoir un violet foncé ou un rouge foncé. Les échantillons obtenus par la technique de microdialyse sanguine sont incolores, clairs et transparents, ce qui peut être utilisé pour analyser les marqueurs séri...

Le présent protocole décrit une méthode simple et efficace pour la collecte dynamique et en temps réel du sang de cœur de rat à l’aide de la technique de microdialyse.

Extraction dynamique continue de sang du cœur de rat par une technique de microdialyse non invasive

Dynamic analysis of blood components is of great importance in understanding cardiovascular diseases and their related diseases, such as myocardial ...

Notre technique dynamique de collecte continue de sang à partir d’un cœur de rat est très importante pour analyser les composants sanguins, contribuant ainsi à la compréhension des maladies cardiovasculaires et de leurs maladies connexes. Par rapport aux méthodes d’échantillonnage traditionnelles, cette technique présente les avantages d’être in vivo, en temps réel, dynamique et non invasive, sans micromolécules biologiques et sans prétraitement d’échantillon de titre pour un test étranger. Cette technique n’est pas seulement applicable aux maladies cardiovasculaires, mais devrait également fonctionner pour le diagnostic et le traitement des maladies en détectant les biomarqueurs sanguins combinés à la chromatographie liquide en phase élevée et à la spectrométrie de masse.Cette méthode peut être utilisée pour étudier les maladies cardiovasculaires telles que l’infarctus du myocarde, l’apnée et l’athérosclérose. En outre, il s’applique également à l’œdème pulmonaire cardiogénique et à l’embolie pulmonaire et cérébrale. Après avoir effectué la préparation expérimentale, fixez l’entrée de la sonde de l’unité de dialyse avec l’aiguille de la seringue, l’adaptateur de tubulure et la tubulure FEP.Vérifiez la perméabilité du système de tuyauterie de microdialyse en perfusant une solution anticoagulante de citrate de dextrose dans le système de tuyauterie. Faites une incision pour exposer la veine jugulaire droite par dissection contondante des tissus mous et du fascia périvasculaire. À l’aide d’une suture chirurgicale 4-0, faites un nœud glissant détachable dans la veine jugulaire droite à l’extrémité distale du cœur pour bloquer temporairement le flux sanguin.Ensuite, faites une incision dans la veine jugulaire droite près du cœur. Insérez un stylet de cathéter en forme d’aiguille dans la veine jugulaire droite vers l’extrémité proximale du cœur du rat. Insérez la sonde de microdialyse sanguine dans un cathéter et implantez la sonde avec une pince ophtalmique le long de l’incision oblique du stylet du cathéter.Retirez le stylet du cathéter guidé et immergez complètement la membrane semi-perméable de la sonde dans la veine jugulaire droite. Démêlez le nœud glissant détachable à l’extrémité distale du cœur pour rétablir le flux sanguin dans la veine jugulaire droite. Ensuite, utilisez des sutures chirurgicales 4-0 pour ligaturer la sonde avec la veine jugulaire droite.Placez le rat éveillé dans un réservoir en mouvement libre et connectez la sonde au système de microdialyse. Ensuite, irriguer la solution anticoagulante de citrate de dextrose à raison de deux microlitres par minute pendant une heure pour équilibrer la membrane de dialyse de la sonde. Prélever des échantillons de sang de microdialyse et les conserver temporairement dans un contenant fractionné de quatre degrés Celsius.Pour reconfirmer que la sonde est dans la veine jugulaire droite, disséquez le rat. Retirez la sonde de microdialyse de la veine jugulaire droite et mettez-la dans de l’eau ultrapure. Connectez la sonde au pipeline et rincez pendant la nuit à l’eau ultrapure pour éliminer soigneusement le sel résiduel dans le tuyau et la sonde.Les échantillons de sang normaux apparaissaient rouge vif tandis que des caillots sanguins potentiels ont été observés dans des échantillons hypoxiques. Les échantillons obtenus par la technique de microdialyse sanguine étaient incolores, clairs et transparents. Pour éviter la destruction de la membrane et le glissement ou le déplacement de la sonde, nous devons faire attention lorsque nous plaçons et immergeons la sonde dans la veine jugulaire du rat.Les échantillons de sang obtenus grâce à la technique de microdialyse peuvent être utilisés pour analyser les biomarqueurs de différentes maladies et la distribution sanguine de médicaments et de métabolites rares.

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Médecine

Ce protocole décrit une méthode pour collecter le liquide interstitiel cardiaque à partir du coeur de rat isolé et perfusé. Pour séparer physiquement le transudat interstitiel du perfusat d'effluent veineux coronaire, le coeur perfusé de Langendorff est inversé et le transudat (fluide interstitiel) formé sur la surface cardiaque est recueilli à l'aide d'un cap de latex doux.

Le modèle de coeur inversé pour la collecte de transudat interstitielle à partir du coeur de rat isolé

Nous décrivons ici une méthode pour en vivo microdialyse analyser le communiqué de l’aspartate et du glutamate dans l’hippocampe ventral de rats épileptiques et non-épilepsie, en combinaison avec des enregistrements EEG. Les concentrations extracellulaires de l’aspartate et le glutamate peuvent être corrélées avec les différentes phases de la maladie.

Microdialyse d’acides aminés excitateurs durant les enregistrements EEG en se déplaçant librement des Rats

Nous décrivons ici une configuration pour l’enregistrement simultané de l’électrocardiographie et intra-artérielle pression artérielle (PA) chez les rats expérimentaux, qui peuvent être faits avec un équipement standard dans les animaleries et peuvent être appliquées à physiologique ou pharmacologique études pour étudier les mécanismes pathogènes ou thérapeutiques en médecine cardiovasculaire.

Enregistrement simultané de l’électrocardiographie et envahissantes sang pression mesure chez les Rats

Cet article présente une méthode efficace pour effectuer l’ischémie myocardique et la reperfusion chronique suivante chez les rats utilisant une approche mini-invasive. En outre, la fonction hémodynamique ventriculaire gauche des rats est évaluée par échocardiographie et méthodes cardiaques de travail isolées.

Méthode invasive semi-minimale pour induire l’infarctus du myocarde chez les rats et l’évaluation de la fonction cardiaque par un système cardiaque de travail isolé

L’étalon-or en cardiologie pour les expériences fonctionnelles cellulaires et moléculaires sont les cardiomyocytes. Cet article décrit les adaptations à la technique non-Langendorff pour isoler les cardiomyocytes de souris.

Une méthode simple et efficace pour isoler systématiquement les cardiomyocytes de souris

Le présent protocole décrit la canulation aortique et la perfusion rétrograde du cœur murin néonatal ex-vivo .  Une stratégie à deux personnes, utilisant un microscope à dissection et une aiguille de petit calibre émoussée, permet une canulation fiable. La quantification de la tension contractile longitudinale est réalisée à l’aide d’un capteur de force relié à l’apex du ventricule gauche.

Technique modifiée pour l’utilisation de cœurs murins néonatals dans la préparation de Langendorff

Le protocole fournit ici un échantillonnage dynamique détaillé en temps réel du liquide extracellulaire de l’hippocampe de rats éveillés à l’aide d’un système de microdialyse.

Collecte dynamique en temps réel de liquide extracellulaire hippocampique de rats conscients à l’aide d’un système de microdialyse

Le protocole montre des prélèvements répétés de liquide céphalorachidien et de sang de rats épileptiques effectués en parallèle avec une surveillance continue du vidéo-électroencéphalogramme (EEG). Ceux-ci sont essentiels pour explorer les liens possibles entre les changements dans diverses molécules de fluides corporels et l’activité convulsive.

Prélèvement de liquide céphalorachidien et de sang de la veine caudale latérale chez le rat pendant les enregistrements EEG

Ce protocole décrit une méthode de mesure de la pression et du volume ventriculaires gauches à l’aide de la technique de conductance pression-volume. Cette méthode permet une surveillance continue et en temps réel des effets des médicaments sur le cœur.

Détection en temps réel des effets de l’acide férulique sur le ventricule gauche du rat à l’aide d’un cathéter de conductivité pression-volume

Ce protocole décrit la fabrication de matériaux avancés et les méthodes ex vivo de cœur de rat pour la biointerface bidirectionnelle optique et électrique, permettant une stimulation cardiaque précise, l’enregistrement et la modélisation de l’infarctus pour la recherche bioélectronique.

Interfaces électriques et optoélectroniques bidirectionnelles dans des cœurs de rat ex vivo sains et ischémiques

Découvrez une méthode de microdialyse non invasive pour le prélèvement dynamique continu de sang cardiaque chez le rat. Cette technique permet l'analyse en temps réel des biomarqueurs sanguins pour la recherche cardiovasculaire.

Extraction dynamique continue de sang du cœur de rat par une technique de microdialyse non invasive

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