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Surveillance continue simple de la glycémie chez des souris en mouvement libre
Surveillance continue simple de la glycémie chez des souris en mouvement libre
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JoVE Journal Biology
Simple Continuous Glucose Monitoring in Freely Moving Mice

Surveillance continue simple de la glycémie chez des souris en mouvement libre

Full Text
7,684 Views
03:25 min
February 24, 2023

DOI: 10.3791/64743-v

Doron Kleiman1, Mika Littor1,2, Mahmoud Nawas3, Rachel Ben-Haroush Schyr1, Danny Ben-Zvi1

1Department of Developmental Biology and Cancer Research, Institute of Medical Research Israel-Canada,The Hebrew University-Hadassah Medical School, 2Department of Military Medicine and “Tzameret”, Faculty of Medicine,Hebrew University of Jerusalem, and Medical Corps, Israel Defense Forces, 3Department of Surgery,Hadassah Medical Center-Ein Kerem Campus

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a straightforward method for implanting a commercial continuous glucose monitor (CGM) in mice to track glucose levels. The technique offers significant advantages, eliminating the need for complex microsurgery or bleeding, thus facilitating studies in obesity and diabetes models.

Key Study Components

Research Area

  • Diabetes research
  • Metabolic phenotype identification
  • Glucose monitoring in animal models

Background

  • Importance of monitoring glucose levels in obesity and diabetes research
  • Challenges associated with traditional surgical approaches
  • Need for effective methods to explore glucose management phenotypes

Methods Used

  • The procedure for inserting a CGM cannula
  • Mice as the biological model system
  • Utilization of suture techniques and sensor activation

Main Results

  • The method successfully secured the CGM cannula for extended monitoring
  • Data collected revealed new insights into metabolic phenotypes
  • Demonstrated feasibility and efficiency in data acquisition from mice

Conclusions

  • The study illustrates a reliable protocol for glucose monitoring in mice
  • This method contributes to advancing research in metabolic disorders

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this glucose monitoring method?
It simplifies the monitoring process and eliminates the need for invasive surgery or bleeding, making it less stressful for the mice.
How long can the CGM monitor glucose levels?
The method allows for continuous data collection, with effective monitoring over multiple days, as demonstrated in a three-day data collection period.
What biological models can benefit from this technique?
The technique is particularly useful in mouse models of obesity and diabetes, aiding in the identification of glucose management phenotypes.
What preparations are necessary before implanting the CGM?
It involves shaving the midline of the mouse's back, using depilatory cream, and making a small incision for cannula placement.
Are there any specific challenges when implementing this method?
The critical step is the careful insertion of the cannula and securing it properly to ensure it remains in place during the monitoring period.
Can the data collection parameters be adjusted?
Yes, the scripts provided allow modulation of various parameters during data analysis.
What type of data does this method produce?
The method produces continuous glucose monitoring data, which can reveal metabolic insights in mouse models.

Ici, nous décrivons une méthode simple pour implanter un glucomètre continu commercial conçu pour les patients sur des souris et fournir les scripts pour analyser les résultats.

Notre protocole offre une méthode simple et peu coûteuse pour surveiller les niveaux de glucose chez la souris. Le principal avantage de cette technique est qu’elle ne nécessite pas de microchirurgie difficile et n’implique pas de saignement ou de manipulation des souris. Cette méthode peut être utilisée pour identifier les phénotypes de gestion du glucose insaisissables dans des modèles murins d’obésité et de diabète.

Lors de la tentative de ce protocole, l’étape la plus critique est l’insertion de la canule sous la peau et le resserrement des sutures internes afin de maintenir la canule en place. Pour commencer, rasez la ligne médiane du dos de la souris anesthésiée et utilisez une crème dépilatoire pour assurer une épilation complète. Ouvrez et chargez le capteur.

Montez ensuite le capteur sur le dispositif de montage du capteur pour exposer la bande et le côté canule du capteur. La canule est vide de l’aiguille. Suturer deux points de suture coniques 5-0 à la bande des deux côtés de la canule.

Pour la préparation de la peau dorsale, faites une incision de deux millimètres au centre de la zone rasée au-dessus de la colonne vertébrale à l’aide de ciseaux tranchants. Insérez brièvement de petites pinces avec un bord émoussé sous la peau pour former une petite poche sous-cutanée, de sorte que la canule puisse être insérée facilement dans la poche. Passez une suture à travers la peau de chaque côté de l’incision.

Pour l’insertion du capteur, retirez complètement le capteur du dispositif de montage du capteur et maintenez-le avec une pince pour empêcher le ruban environnant de coller à lui-même. Insérez délicatement la canule dans la poche sous-cutanée. Tirez les sutures de chaque côté, serrez-les et attachez-les pour fixer le capteur fermement en place.

Cela empêchera la canule de glisser hors de la poche sous-cutanée une fois que le ruban adhésif se desserrera avec le temps, coupez les extrémités des sutures et jetez-les. Fixez du ruban adhésif entourant le capteur et faites huit sutures discontinues autour du capteur en fixant la bordure des capteurs collée à la peau. Activez le capteur.

Une fois la canule insérée et le CGM activé avec succès, collectez les données à l’aide du récepteur. Les données de sortie brutes de trois jours à partir d’une seule souris utilisant le code fourni sont affichées ici. Les paramètres de l’axe et tous les autres paramètres peuvent être modulés dans le code.

Ici, les données pour trois jours sont affichées pour plus de clarté. La fabrication d’une poche sous-cutanée et l’ajout de quelques sutures permettent à la canule du capteur de rester en place plus longtemps. Les données continues acquises à l’aide de cette technique nous ont permis de découvrir un phénotype métabolique insaisissable dans une souche de souris spécifique.

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