Name: Détermination des relations d’auto-(in)compatibilité et d’inter-(in)compatibilité chez les agrumes à l’aide d’analyses manuelles de pollinisation, de microscopie et de génotype S (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-06-30T14:50:00.000+00:00
Duration: 7 min 12 s
Description: Découvrez une méthode rapide pour déterminer la compatibilité pollinique chez les agrumes en utilisant la microscopie et le génotypage S. Cette technique aide les sélectionneurs à choisir les arbres pollinisateurs adaptés pour améliorer la fertilité.

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Ce projet a été soutenu financièrement par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (32122075, 32072523).

1. Préparation pour la coloration au bleu d’aniline
<ol><li>Préparez les réactifs et les outils suivants pour l’expérience : une brosse à pollinisateur, une pince à épiler, un crayon, du papier sulfate, un sac de pollinisation, des sacs à fermeture à glissière, des trombones, du formaldéhyde, de l’acide acétique glacial, de l’éthanol absolu, des tubes centrifugeuses, des pinces, des compte-gouttes de colle, des lames de verre, des lames de couverture, des scalpels et du polyéthylène glycol.</li>
	<li>Préparer in vitro le milieu de germination contenant 0,02 % de MgSO4, 0,01 % de KNO 3, 0,03 % de Ca(NO 3)2, 0,01 % deH3BO 3, 20 % de PEG-4000 et 15 % de saccharose. Ajustez le pH à 6,0-6,2 avec KOH. Utilisez un agitateur magnétique car le PEG-4 000 est difficile à dissoudre.</li>
	<li>Préparer la solution fixatrice de Carnoy, qui est de l’éthanol absolu et de l’acide acétique glacial mélangés dans un rapport de 3:1. Préparer la solution de fixation FAA, qui contient 40% de formaldéhyde, 80% d’éthanol et d’acide acétique glacial (1:8:1). Préparer 4 M d’hydroxyde de sodium (NaOH) et la solution de bleu d’aniline, qui contient 0,1 % de bleu d’aniline dans 0,1 M K3PO4. Utilisez un flacon ambré pour conserver la solution de bleu d’aniline, car elle est sensible à la lumière.</li>
</ol>2. Collecte de pollen
<ol><li>Connaître à l’avance la période de floraison des arbres expérimentaux (Ma jia pummelo dans cette étude). Récoltez les fleurs matures non ouvertes du début de la période de floraison jusqu’au stade de floraison maximale et mettez-les dans un sac à fermeture à glissière. Les fleurs peuvent être conservées à 4 °C au réfrigérateur pendant 24 h.</li>
	<li>Apportez les fleurs au laboratoire. Utilisez une pince à épiler pour recueillir les anthères et placez-les dans une boîte de Petri contenant du papier filtre. Collectez des anthères de 20 à 30 fleurs.</li>
	<li>Placer la boîte de Petri contenant les anthères dans un four à 28 °C pendant 24 h jusqu’à ce que les grains de pollen sèchent. Pour l’organisation détaillée des fleurs, voir Hu et al.9.</li>
	<li>Mettez le pollen séché dans un tube à centrifuger de 1,5 mL. Conservez le pollen dans un sac à fermeture à glissière hermétique contenant du gel de silice à changement de couleur (déshydratant). Fermez le sac et étiquetez-le avec le nom de la variété de pollen et la date de stockage. Le pollen séché peut être conservé dans un réfrigérateur à −20 °C pendant 96 semaines16.</li>
</ol>3. Test de germination pollinique in vitro 
<ol><li>Versez 300 μL de milieu liquide dans une boîte de culture cellulaire ou le bouchon d’un tube à centrifuger de 2 mL et saupoudrez le pollen uniformément à l’aide d’une brosse de pollinisation. Incuber le pollen à 28 °C dans un environnement sombre humidifié pendant 12 h.</li>
	<li>Retirez le dessus de 1 mm de l’embout d’une pipette de 1 000 μL. Utilisez la pipette pour absorber le pollen avec une petite quantité de solution de culture et déplacez-le au centre de la lame de microscope. Couvrez-le d’un bordereau. Observez l’échantillon avec un microscope inversé à l’aide d’un objectif 10x.</li>
	<li>Effectuer trois répétitions indépendantes en utilisant approximativement la même densité pollinique pour chaque répétition17. Gérez visuellement la quantité de pollen, en vous assurant que toute la boîte de Petri est recouverte de pollen et que chaque boîte de Petri contient une quantité presque égale de pollen.</li>
	<li>Le pollen germé produit un tube pollinique d’une longueur environ deux fois supérieure à son diamètre. Calculer le taux de germination à partir de 20 champs visuels, ce qui donne le pourcentage de pollen germé dans tous les champs polliniques.</li>
</ol>4. Pollinisation
<ol><li>Choisissez une journée ensoleillée sans vent pour la pollinisation. Sélectionnez 10 bourgeons complètement développés sur le point de s’ouvrir, décollez soigneusement les pétales et veillez à ne pas les meurtrir.</li>
	<li>Utilisez un pinceau de pollinisation pour répandre une quantité suffisante de pollen viable sur la surface du stigmate et veillez à ne pas endommager le pistil. Pour l’autopollinisation, utilisez le pollen du même plant/cultivar. Pour la pollinisation croisée, utilisez le pollen d’une plante avec un génotype différent.</li>
	<li>Couvrir les fleurs pollinisées avec un sac en papier sulfate. Utilisez un trombone pour sceller le sac et empêcher la pollinisation par des pollens génotypiquement distincts.</li>
	<li>Inscrivez le nom de l’espèce ainsi que le nombre et l’heure de la pollinisation sur l’étiquette. Accrochez l’étiquette sur les branches près des fleurs pollinisées.</li>
</ol>5. Échantillonnage, fixation et conservation
<ol><li>Retirez les sacs de pollinisation environ 3-4 jours après la pollinisation et recueillez les fleurs pollinisées dans des sacs à fermeture à glissière.</li>
	<li>Retirez immédiatement les pétales, les récipients et les ovaires des fleurs et plongez les stigmates fusionnés aux styles dans un tube centrifuge contenant une solution fixatrice fraîchement préparée. Incuber les stigmates et les styles dans la solution fixatrice pendant une nuit à 4 °C.</li>
	<li>Le lendemain, jetez la solution fixatrice et lavez les stigmates et les styles deux à trois fois dans de l’éthanol à 95%.</li>
	<li>Transférer les styles dans une solution à 70% d’éthanol. Assurez-vous que l’échantillon est complètement immergé dans la solution. Les styles à ce stade peuvent être conservés à 4 ° C pendant 1-2 mois.</li>
</ol>6. Coloration au bleu aniline
<ol><li>Lavez les échantillons de style stockés dans de l’éthanol à 70% avec de l’eau distillée trois à quatre fois. Plonger dans une solution de NaOH de 4 M, sceller et incuber dans un bain-marie à 65 °C pendant 60 min. Au cours de cette étape, la couleur du style passe du jaune-blanc au rouge orangé.</li>
	<li>Faire tremper les styles dans de l’eau distillée pendant 30 min. Jetez l’eau distillée et lavez les styles avec de l’eau distillée trois à quatre fois ou jusqu’à ce que la couleur du style devienne jaune.</li>
	<li>Placer l’échantillon dans un tube de 10 mL, ajouter le bleu d’aniline jusqu’à ce que l’échantillon soit trempé et colorer pendant 12 h dans l’obscurité.</li>
	<li>Observez la croissance du tube pollinique avec un microscope à fluorescence.</li>
</ol>7. Microscopie à fluorescence
<ol><li>Avant d’observer les échantillons, placez la lame sur une table plate et ajoutez deux à trois gouttes de polyéthylène glycol à la surface de la lame.</li>
	<li>Lavez le style à observer avec de l’eau distillée. Utilisez un scalpel pour le diviser en deux moitiés le long de l’axe longitudinal. Placez la moitié du style sur la lame de verre et couvrez-la d’un couvercle.</li>
	<li>Placez la lame sur la scène du microscope au-dessus de l’ouverture et visualisez à l’aide d’un objectif 10x. Utilisez le filtre DAPI (excitation : 325-375 nm ; émission : 435-485 nm). Observez cinq styles pour chaque type de pollinisation. Observez la croissance du tube pollinique.</li>
</ol>8. Identification du génotype S par PCR
<ol><li>Extraire l’ADN génomique de l’échantillon de stigmatisation en utilisant la méthode CTAB18.<ol><li>Mettez les feuilles recueillies dans un tube à centrifuger de 2 ml et congelez-les dans de l’azote liquide. Préparer le tampon HCl:EDTA:NaCl:H2Odans un rapport de 1:1:3:5 et un mélange d’alcool isoamylique chloroforme dans un rapport de 24:1</li>
		<li>Ajouter 10 mL du tampon préparé, 0,2 g de CTAB et 200 μL de mercaptoéthanol dans un tube à centrifuger de 50 mL et les mettre au bain-marie à 65 °C pendant 5 minutes jusqu’à ce que la solution devienne claire et transparente.</li>
		<li>Mettez les lames dans un mortier, ajoutez les échantillons congelés, ajoutez de l’azote liquide et broyez. Mettez l’échantillon broyé dans un tube à centrifuger de 2 mL, ajoutez 600 μL de mélange CTAB, mettez-le au bain-marie à 65 °C pendant 60 minutes et mélangez-le à l’envers toutes les 30 minutes.</li>
		<li>Ajouter 700 μL du mélange d’alcool isoamylique chloroforme (24:1) et mélanger à l’envers pendant 10 min. Centrifuger à 24 °C à 12 000 x g pendant 10 min, pipeter le surnageant et transférer dans un tube à centrifuger de 1,5 mL.</li>
		<li>Ajouter 60 μL de solution de NaCl 5 M et 1 mL d’éthanol absolu, et mélanger à l’envers. Congeler à −20 °C pendant 30 min et centrifuger à 24 °C et 9 000 x g pendant 5 min.</li>
		<li>Jeter le surnageant, ajouter 1 mL de solution d’éthanol à 70 % et laisser à température ambiante pendant 1 à 2 h. Centrifuger à 24 °C, 9 000 x g pendant 5 min, jeter le surnageant, aspirer l’excès de solution d’éthanol et sécher à l’air pendant 5 min.</li>
		<li>Ajouter 100 μL d’eau stérile pour la dissoudre, mesurer la concentration d’ADN avec un spectrophotomètre et congeler dans un congélateur à -4 °C pour un stockage à long terme.</li>
		<li>Configurez le système de réaction RT-PCR. Préparer le mélange réactionnel suivant pour 10 μL contenant 5 μL de 2x PCRMix, 0,25 μL chacun d’amorce avant et arrière, 1 μL d’ADN (100 ng / μL) et 3,5 μL de H2O.</li>
	</ol></li>
	<li>Configurez le programme de PCR conformément au tableau 1. Le programme de PCR pour toutes les isoformes était de 95 °C pendant 5 min 32x (95 °C pendant 30 s, 55 °C pendant 30 s et 72 °C pendant 1 min) et de 72 °C pendant 5 min. Séparer les produits sur des gels TAE-agarose à 1,5% et photographier9. Vérifier le génotype S spécifié à l’aide de l’ADN génomique.</li>
</ol>

<ol><li>Matsumoto, D., Tao, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recognition+of+S-RNases+by+an+S+locus+F-box+like+protein+and+an+S+haplotype-specific+F-box+like+protein+in+the+Prunus-specific+self-incompatibility+system%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Recognition of S-RNases by an S locus F-box like protein and an S haplotype-specific F-box like protein in the Prunus-specific self-incompatibility system.</a> Plant Molecular Biology. 100 (4-5), 367-378 (2019).</li>
<li>Goldberg, E. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Species+selection+maintains+self-incompatibility%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Species selection maintains self-incompatibility.</a> Science. 330 (6003), 493-495 (2010).</li>
<li>Zhang, L., Wang, R., Zhao, G., Wang, A., Lin, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+study+on+fruit+quality+of+Guangfeng+Ma+jia+pummelo+and+Pinghe+red+pummelo%5BTitle%5D)+AND+%22China+Agricultural+Science+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Comparative study on fruit quality of Guangfeng Ma jia pummelo and Pinghe red pummelo.</a> China Agricultural Science Bulletin. 37 (22), 126-130 (2021).</li>
<li>Min, H. E., Chao, G. U., Juyou, W. U., Shaoling, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+on+self-incompatibility+mechanism+in+fruit+trees%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Horticulturae+Sinica%22%5BJournal%5D)">Recent advances on self-incompatibility mechanism in fruit trees.</a> Acta Horticulturae Sinica. 48 (4), 759-777 (2021).</li>
<li>Fujii, S., Kubo, K., Takayama, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-self-+and+self-recognition+models+in+plant+self-incompatibility%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Plants%22%5BJournal%5D)">Non-self- and self-recognition models in plant self-incompatibility.</a> Nature Plants. 2 (9), 2-9 (2016).</li>
<li>Meng, X., Sun, P., Kao, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((S-RNase-based+self-incompatibility+in+Petunia+inflata%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Botany%22%5BJournal%5D)">S-RNase-based self-incompatibility in Petunia inflata.</a> Annals of Botany. 108 (4), 637-646 (2011).</li>
<li>Liang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+of+self-compatibility+by+a+mutant+Sm-RNase+in+citrus%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Plants%22%5BJournal%5D)">Evolution of self-compatibility by a mutant Sm-RNase in citrus.</a> Nature Plants. 6 (2), 131-142 (2020).</li>
<li>Thomas, S. G., Franklin-Tong, V. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-incompatibility+triggers+programmed+cell+death+in+Papaver+pollen%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Self-incompatibility triggers programmed cell death in Papaver pollen.</a> Nature. 429, 305-309 (2004).</li>
<li>Hu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Downregulated+expression+of+S2-RNase+attenuates+self-incompatibility+in+%26%2334%3BGuiyou+No.+1%26%2334%3B+pummelo%5BTitle%5D)+AND+%22Horticulture+Research%22%5BJournal%5D)">Downregulated expression of S2-RNase attenuates self-incompatibility in &#34;Guiyou No. 1&#34; pummelo.</a> Horticulture Research. 8 (1), 199(2021).</li>
<li>Guo, H., Halitschke, R., Wielsch, N., Gase, K., Baldwin, I. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mate+selection+in+self-compatible+wild+tobacco+results+from+coordinated+variation+in+homologous+self-Incompatibility+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Mate selection in self-compatible wild tobacco results from coordinated variation in homologous self-Incompatibility genes.</a> Current Biology. 29 (12), 2020-2030 (2019).</li>
<li>Sun, P., Li, S., Lu, D., Williams, J. S., Kao, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pollen+S-locus+F-box+proteins+of+petunia+involved+in+S-RNase-based+self-incompatibility+are+themselves+subject+to+ubiquitin-mediated+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">Pollen S-locus F-box proteins of petunia involved in S-RNase-based self-incompatibility are themselves subject to ubiquitin-mediated degradation.</a> The Plant Journal. 83 (2), 213-223 (2015).</li>
<li>Hua, Z., Kao, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+components+of+a+putative+petunia+S-locus+F-box-containing+E3+ligase+complex+involved+in+S-RNase-based+self-incompatibility%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of components of a putative petunia S-locus F-box-containing E3 ligase complex involved in S-RNase-based self-incompatibility.</a> Plant Cell. 18 (10), 2531-2553 (2006).</li>
<li>Entani, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ubiquitin-proteasome-mediated+degradation+of+S-RNase+in+a+solanaceous+cross-compatibility+reaction%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">Ubiquitin-proteasome-mediated degradation of S-RNase in a solanaceous cross-compatibility reaction.</a> The Plant Journal. 78 (6), 1014-1021 (2014).</li>
<li>Abdallah, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+self-incompatibility+and+genetic+diversity+in+diploid+and+hexaploid+plum+genotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Analysis of self-incompatibility and genetic diversity in diploid and hexaploid plum genotypes.</a> Frontiers in Plant Science. 10, 896(2019).</li>
<li>Herrera, S., Lora, J., Hormaza, J. I., Herrero, M., Rodrigo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+production+in+the+new+generation+of+apricot+cultivars%3A+self-incompatibility%2C+S-RNase+allele+identification%2C+and+incompatibility+group+assignment.+%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Optimizing production in the new generation of apricot cultivars: self-incompatibility, S-RNase allele identification, and incompatibility group assignment. </a> Frontiers in Plant Science. 9, 527(2018).</li>
<li>Yuan, S. C., Chin, S. W., Lee, C. Y., Chen, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phalaenopsis+pollinia+storage+at+sub-zero+temperature+and+its+pollen+viability+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Botanical+Studies%22%5BJournal%5D)">Phalaenopsis pollinia storage at sub-zero temperature and its pollen viability assessment.</a> Botanical Studies. 59 (1), 1(2018).</li>
<li>Liang, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+evolution+of+genes+related+to+self-incompatibility+in+citrus%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Identification and evolution of genes related to self-incompatibility in citrus.</a> , Huazhong Agricultural University. Wu'han, China. PhD Thesis (2019).</li>
<li>Cheng, Y. J., Guo, W. W., Yi, H. L., Pang, X. M., Deng, X. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+protocol+for+genomic+DNA+extraction+from+Citrus+species%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Molecular+Biology+Reporter%22%5BJournal%5D)">An efficient protocol for genomic DNA extraction from Citrus species.</a> Plant Molecular Biology Reporter. 21 (2), 177-178 (2003).</li>
<li>Wei, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+S-genotypes+of+63+pummelo+germplasm+resources%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Horticulturae+Sinica%22%5BJournal%5D)">Identification of S-genotypes of 63 pummelo germplasm resources.</a> Acta Horticulturae Sinica. 49 (5), 1111-1120 (2021).</li>
<li>de Nettancourt, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incompatibility+in+angiosperms%5BTitle%5D)+AND+%22Sexual+Plant+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Incompatibility in angiosperms.</a> Sexual Plant Reproduction. 10, 185-199 (1997).</li>
<li>Igic, B., Lande, R., Kohn, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+self-incompatibility+and+its+evolutionary+consequences%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Plant+Sciences%22%5BJournal%5D)">Loss of self-incompatibility and its evolutionary consequences.</a> International Journal of Plant Sciences. 169 (1), 93-104 (2008).</li>
<li>Guerrero, B. I., Guerra, M. E., Rodrigo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+pollination+requirements+in+Japanese+plum+by+phenological+monitoring%2C+hand+pollinations%2C+fluorescence+microscopy+and+molecular+genotyping%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Establishing pollination requirements in Japanese plum by phenological monitoring, hand pollinations, fluorescence microscopy and molecular genotyping.</a> Journal of Visualized Experiments. (165), e61897(2020).</li>
<li>Herrera, S., Lora, J., Hormaza, J. I., Rodrigo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+self-+and+inter-%28in%29compatibility+relationships+in+apricot+combining+hand-pollination%2C+microscopy+and+genetic+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Determination of self- and inter-(in)compatibility relationships in apricot combining hand-pollination, microscopy and genetic analyses.</a> Journal of Visualized Experiments. (160), e60241(2020).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont rien à divulguer.

Dans les cultures fruitières, la parthénocarpie et le SI sont des caractères importants car ils ouvrent la voie à des fruits sans pépins - un trait très apprécié par les consommateurs. L’auto-incompatibilité favorise le rejet de l’auto-pollen et, ainsi, empêche la consanguinité20. Parmi les agrumes, le pummelo est une variété auto-incompatible7. Près de 40% de toutes les espèces d’angiospermes présentent SI21. Ce trait empêche la nouaison, réduit le ...

L’auto-incompatibilité (SI) est un mécanisme génétiquement contrôlé présent chez environ 40% des espèces d’angiospermes. Dans ce processus, le pistil rejette le pollen d’une plante avec le même génotype SI et, ainsi, empêche l’autofécondation 1,2. Ma jia pummelo est une variété locale de la province de Jinasu, en Chine, avec les excellentes qualités de gros fruits roses, une riche teneur en jus, un goût aigre-doux et une peau épaisse3. Bien que le SI favorise le croisement, il a un impact négatif sur le rendement et la qualité des fruits4 et nécessite des arbres pollinisateurs appropriés avec des génotypes SI distincts pour des taux de nouaison fiables et des rendements élevés. À l’heure actuelle, il existe deux principaux types d’IS, l’auto-incompatibilité sporophytique (SSI), représentée par les Brassicaceae, et l’auto-incompatibilité gamétophytique (GSI), représentée par Rosaceae, Papaveraceae, Rutaceae et Solanaceae 5,6,7,8.
Les agrumes sont l’une des cultures fruitières les plus importantes au monde. Le système GSI basé sur la S-RNase se retrouve dans de nombreuses accessions d’agrumes et influence négativement le taux de nouaison9. Dans ce système, le SI est contrôlé par le locus S, un locus polymorphe unique avec deux allèles complexes qui portent les déterminants du pistil S et les déterminants S du pollen7. Le déterminant féminin est la S ribonucléase (S-RNase), et le déterminant masculin est le locus S F-box (SLF)7. Les cellules du pistil sécrètent des protéines S-RNase. Les S-RNases non-soi sont reconnues par les protéines SLF, ce qui conduit à l’ubiquitination et à la dégradation des S-RNases non-soi par la voie du protéasome 26S. En revanche, les auto-S-RNases sont capables d’accumuler et d’inhiber la croissance du tube pollinique (PT) parce qu’elles échappent aux protéines SLF et, par conséquent, sont empêchées d’ubiquitinzation10,11,12,13.
Ici, nous rapportons une technique in vivo qui est utile pour identifier les génotypes S et les degrés de compatibilité et d’incompatibilité du pollen. Le protocole consiste à extraire l’ADN total des feuilles et à prédire le génotype S à l’aide d’amorces spécifiques S. De plus, la coloration au bleu d’aniline et la microscopie à fluorescence suivie d’une pollinisation manuelle fournissent des preuves du degré de compatibilité et d’incompatibilité. La procédure de pollinisation semi-in vivo, qui implique la pollinisation manuelle des fleurs en laboratoire14,15, a également été adaptée pour évaluer les degrés d’autocompatibilité et d’incompatibilité. Cependant, nous avons également utilisé la pollinisation au champ suivie de l’ensachage des fleurs pour éviter la contamination par du pollen indésirable afin de permettre aux tubes polliniques de se développer dans des conditions naturelles. Ce protocole est simple et direct et fournit les informations nécessaires à la sélection réussie d’arbres pollinisateurs appropriés.

<table><tbody><tr><td>éthanol absolu</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>10009218</td><td></td></tr><tr><td>Bleu d’aniline</td><td>Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Acide borique, H3BO3</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>10004818</td><td></td></tr><tr><td>Bouteille brune</td><td>Labgic Technology Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nitrate de calcium tétrahydraté, Ca(NO3 )2</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>80029062</td><td></td></tr><tr><td>Tube centrifuge</td><td>Labgic Technology Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubes à centrifuger</td><td>Labgic Technology Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CTAB</td><td>GEN-VIEW SCIENTIFIC INC</td><td>57-09-0(CAS)</td><td></td></tr><tr><td>Chute</td><td>Jiangsu Songchang Medical Equipment Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Acide éthylènediaminetétraacétique, EDTA</td><td>Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd</td><td>10009617</td><td></td></tr><tr><td>Forceps</td><td>LUXIANZI Biotechnology Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>formaldéhyde</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>10010018</td><td></td></tr><tr><td>Broyeur rapide d’échantillons entièrement automatique</td><td>Shanghai Jingxin Industrial Development Co., Ltd</td><td>Tissuelyser-96</td><td></td></tr><tr><td>acide</td> <td>acétique glacialSinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>10000218</td><td></td></tr><tr><td>Grinding Tube</td><td>Shanghai Jingxin Industrial Development Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alcool isoamylique</td><td>Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd</td><td>10003218</td><td></td></tr><tr><td>Alcool isopropylique</td><td>Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd</td><td>80109218</td><td></td></tr><tr><td>label</td><td>M& G Chenguang Stationery Co., Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Leica DMi8</td><td>Shanghai Leica Co., Ltd</td><td>21903797</td><td></td></tr><tr><td>Sulfate de magnésium heptahydraté, MgSO4</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>10013018</td><td></td></tr><tr><td>MICROSCOPE Verre de couverture</td><td>Zhejiang Shitai Industrial Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd</td><td>10019318</td><td></td></tr><tr><td>trombones</td><td>M& G Chenguang Stationery Co., Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>crayon</td><td>M& G Chenguang Stationery Co., Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>brosse pollinisatrice</td><td>Shanghai Yimei Plastics Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polyéthylène glycol, PEG 6000</td><td>Pékin Dingguo Changsheng Biotechnology Co., Ltd</td><td>DH229-1</td><td></td></tr><tr><td>Polyéthylène glycol, PEG-4000</td><td>Guangzhou saiguo biotech Co., Ltd</td><td>1521GR500</td><td></td></tr><tr><td>Hydroxyde de potassium, KOH</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>10017008</td><td></td></tr><tr><td>Nitrate de potassium, KNO3</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td>10017218</td><td></td></tr><tr><td>Scalpel</td><td>Jiangsu Songchang Medical Equipment Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Slide</td><td>Zhejiang Shitai Industrial Co., Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hydroxyde de sodium, NAOH</td><td>Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd</td><td>10019718</td><td></td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd</td><td></td><td></td>10021418</tr><tr><td>papier sulfate</td><td>Taizhou Jinnong Mesh Factory</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Thermostat bain-marie</td><td>Shanghai Jinghong Experimental Equipment Co., Ltd</td><td>L-909193</td><td></td></tr><tr><td>Trichlorométhane</td><td>Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd</td><td>10006818</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate tripotassique tribasique trihydraté, K3PO4</td><td>Shanghai Lingfeng Chemical Reagent Co., Ltd</td><td>20032318</td><td></td></tr><tr><td>Tris-HCl</td><td>GEN-VIEW SCIENTIFIC INC</td><td>1185-53-1</td><td></td></tr><tr><td>sacs à fermeture éclair</td><td>M& G Chenguang Stationery Co., Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>&beta ;-Mercaptoéthanol</td><td>GEN-VIEW SCIENTIFIC INC</td><td>60-24-2(CAS)</td><td></td></tr></tbody></table>

détermination des relations d’auto-(in)compatibilité et d’inter-(in)compatibilité chez les agrumes à l’aide d’analyses manuelles de pollinisation, de microscopie et de génotype s

Determination of Self-(In)compatibility and Inter-(In)compatibility Relationships in Citrus Using Manual Pollination, Microscopy, and S-Genotype Analyses

Citrus utilise l’auto-incompatibilité basée sur la S-RNase pour rejeter l’auto-pollen et, par conséquent, nécessite des arbres pollinisateurs à proximité pour une pollinisation et une fécondation réussies. Cependant, l’identification de variétés appropriées pour servir de pollinisateurs est un processus qui prend beaucoup de temps. Pour résoudre ce problème, nous avons développé une méthode rapide d’identification des cultivars d’agrumes compatibles avec la pollinisation qui utilise l’électrophorèse sur gel d’agarose et la coloration au bleu d’aniline. La compatibilité du pollen est déterminée en fonction de l’identification des génotypes S en extrayant l’ADN total et en effectuant des tests de génotypage basés sur la PCR avec des amorces spécifiques. De plus, les styles sont collectés 3-4 jours après la pollinisation manuelle et une coloration au bleu aniline est effectuée. Enfin, l’état de croissance des tubes polliniques est observé avec un microscope à fluorescence. La compatibilité et l’incompatibilité du pollen peuvent être établies en observant si la croissance du tube pollinique est normale ou supprimée, respectivement. En raison de sa simplicité et de son rapport coût-efficacité, cette méthode est un outil efficace pour déterminer la compatibilité et l’incompatibilité du pollen de différentes variétés d’agrumes afin d’établir des groupes d’incompatibilité et des relations d’incompatibilité entre différents cultivars. Cette méthode fournit des informations essentielles pour la sélection réussie d’arbres pollinisateurs appropriés et, ainsi, facilite l’établissement de nouveaux vergers et la sélection de parents appropriés pour les programmes de reproduction.

Pour les expériences faites ici, des fleurs matures ont été sélectionnées, les anthères ont été collectées, séchées dans un four et le pollen a germé à 28°C pendant 12 h. La viabilité du pollen et les taux de germination ont été quantifiés comme le montre la figure 1.
Les agrumes ont été pollinisés manuellement, et la compatibilité et l’incompatibilité du pollen ont été évaluées à l’aide de la coloration au bleu d’aniline et de la microscopie à fluorescence. Le po...

Ce protocole fournit une méthode rapide pour déterminer la compatibilité et l’incompatibilité du pollen chez les cultivars d’agrumes.

Détermination des relations d’auto-(in)compatibilité et d’inter-(in)compatibilité chez les agrumes à l’aide d’analyses manuelles de pollinisation, de microscopie et de génotype S

Citrus uses S-RNase-based self-incompatibility to reject self-pollen and, therefore, requires nearby pollinizer trees for successful pollination and ...

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Cette technique permet d’identifier efficacement le génotype S et d’identifier avec précision l’auto-incompatibilité des agrumes, fournissant les informations nécessaires à la sélection d’arbres pollinisateurs appropriés. Il s’agit d’une technique rapide, simple et fiable pour sélectionner les arbres parents appropriés dans les programmes de sélection. Cette technique est simple et facile à faire et faire l’expérience pour la première fois nécessite de la patience et du soin.L’identification du génotype S et la conception de l’amorce spécifique S nécessitent plus d’attention et de soin. Yu Hu, un étudiant diplômé en master de mon laboratoire, fera la démonstration de la procédure. Commencez la collecte de pollen en apportant les fleurs de Majia pomelo, Citrus maxima, au laboratoire.Recueillir les anthères à l’aide d’une pince à épiler et les placer dans une boîte de Petri contenant du papier filtre. Sécher les grains de pollen en plaçant la boîte de Petri contenant les anthères dans un four à 28 degrés Celsius pendant 24 heures. Après séchage, conservez le pollen dans un sac à fermeture à glissière hermétique Micro Centron contenant du gel de silice à changement de couleur.Fermez le sac et étiquetez-le avec le nom de la variété de pollen et la date de stockage. Versez 300 microlitres de milieu liquide dans le bouchon d’un tube centrifuge de deux millilitres et saupoudrez le pollen uniformément à l’aide d’une brosse de pollinisation. Placez le pollen dans une boîte noire humidifiée et incuber à 28 degrés Celsius pendant 12 heures.Après l’incubation, coupez l’embout supérieur d’un millimètre d’une pointe de pipette de 1 000 microlitres et aspirez le pollen avec une petite quantité de solution de culture. Placez le pollen au centre de la lame de microscope et recouvrez-le d’un couvercle. Une fois cela fait, observez l’échantillon avec un microscope inversé à l’aide d’un objectif 10X.Effectuer trois répétitions indépendantes en utilisant approximativement la même densité pollinique pour chaque réplication. Pour la pollinisation, utilisez un pinceau de pollinisation pour répandre une quantité suffisante de pollen viable sur la surface du stigmate, en veillant à ne pas endommager le pistil. Couvrir les fleurs pollinisées avec un sac en papier sulfate et empêcher la pollinisation par des pollens génotypiquement distincts en scellant le sac à l’aide d’un trombone.Inscrivez le nom de l’espèce ainsi que le nombre et l’heure de la pollinisation sur l’étiquette. Accrochez l’étiquette sur les branches près des fleurs pollinisées. Retirez les sacs de pollinisation environ trois à quatre jours après la pollinisation et recueillez les fleurs pollinisées dans des sacs à fermeture à glissière.Retirez immédiatement les pétales, les récipients et les ovaires des fleurs et plongez le stigmate fusionné pour le coiffer dans un tube centrifuge contenant une solution fixatrice fraîchement préparée. Incuber le stigmate et le style dans la solution fixatrice pendant la nuit à quatre degrés Celsius. Le lendemain, jetez la solution fixatrice avant de laver le stigmate et de coiffer deux à trois fois dans de l’éthanol à 95%.Ensuite, ajoutez une solution à 70% d’éthanol au style, en vous assurant que l’échantillon est complètement immergé dans la solution. Les styles à ce stade peuvent être stockés à quatre degrés Celsius pendant un à deux mois. Pour la coloration au bleu d’aniline, laver les échantillons de style stockés dans de l’éthanol à 70% avec de l’eau distillée trois à quatre fois.Immergez-le dans une solution d’hydroxyde de sodium à quatre molaires et scellez-le avant de l’incuber dans un bain-marie à 65 degrés Celsius pendant 60 minutes. Au cours de cette étape, la couleur du style passe du jaune-blanc au rouge orangé. Ensuite, faites tremper les styles dans de l’eau distillée.Après 30 minutes, jetez l’eau distillée et lavez les styles avec de l’eau distillée trois à quatre fois ou jusqu’à ce que la couleur du style devienne jaune. Ensuite, ajoutez le bleu d’aniline jusqu’à ce que l’échantillon soit immergé et incuber pendant 12 heures dans l’obscurité. Observez la croissance du tube pollinique au microscope à fluorescence.Placez la diapositive sur une table plate. Divisez le style en deux moitiés le long de l’axe longitudinal à l’aide d’un scalpel. Placez la moitié du style sur une lame de verre et ajoutez deux à trois gouttes de polyéthylène glycol à la surface de la lame.Ensuite, couvrez-le d’un bordereau de couverture. Une fois cela fait, placez la lame sur la platine du microscope au-dessus de l’ouverture et visualisez à l’aide d’un objectif 10X. Utilisez le filtre DAPI et observez la croissance du tube pollinique.Observez cinq styles pour chaque type de pollinisation. La viabilité pollinique des Citrus maxima et les taux de germination ont été quantifiés par microscopie fluorescente. Le pollen compatible a germé avec succès à la surface du stigmate et a produit un tube pollinique normal, qui s’est développé et a finalement conduit à la fécondation dans l’ovaire.En revanche, des tubes polliniques incompatibles se sont développés à travers environ 2/3 du style, puis ont cessé de croître. L’électrophorèse sur gel d’agarose a détecté le produit d’ADN amplifié à l’aide des amorces spécifiques du locus S. Il a montré l’amplification du produit ADN entre 500 et 1 000 paires de bases.Le génotype S correspondant a été identifié. 21 haplotypes S chez différentes espèces d’agrumes ont été identifiés à l’aide de cette méthode. L’étape de pollinisation est critique.Seule une pollinisation réussie peut assurer l’observation ultérieure des tubes polliniques. La technique a été utilisée pour analyser les traits d’auto-incompatibilité et pour explorer et identifier les déterminants féminins de l’auto-incompatibilité. Cette méthode est importante pour la recherche sur l’auto-incompatibilité et les programmes de sélection.Il peut également aider la communauté agricole à sélectionner des arbres pollinisateurs pour leurs vergers.

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JoVE Journal

Biology

Biologie

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